王乃輝,柳立軍,薛石龍,侯建文,景原雪,宋德瀟,岳豐,李艷梅,張學紅
(1.蘭州大學第一醫(yī)院生殖醫(yī)學??漆t(yī)院,蘭州 730000;2.甘肅省生殖醫(yī)學與胚胎重點實驗室,蘭州 730000)
無精子癥在男性不育人群中的發(fā)生率為10%~15%[1],對于這部分患者,供精是過去唯一的治療方案。隨著卵胞漿內(nèi)單精子注射(ICSI)的誕生,作為男性不育治療的睪丸組織活檢技術(shù)得以發(fā)展[2-3],包括采用睪丸精子抽吸術(shù)、經(jīng)皮附睪精子抽吸術(shù)、睪丸切開活檢取精、顯微睪丸切開取精等方式獲得睪丸精子,從而使無精子癥患者有可能獲得自己的遺傳后代。隨著冷凍技術(shù)的不斷發(fā)展,睪丸精子冷凍逐漸發(fā)展起來,為梗阻性和非梗阻性無精子癥患者帶來了福音[4]。國內(nèi)外研究者嘗試用多種方法保存睪丸活檢精子或ICSI治療后剩余睪丸精子,但其冷凍復(fù)蘇效果尚不十分理想,且冷凍方法及冷凍保護劑的使用也一直存在爭議[5]。如何提高睪丸精子冷凍復(fù)蘇率,減少或避免無精子癥患者行二次睪丸穿刺手術(shù),成為了眾多研究者的關(guān)注熱點。本研究采用不同冷凍載體和冷凍保護劑對人睪丸組織進行冷凍保存,力求尋找更佳的冷凍方案,提高凍存睪丸精子的復(fù)蘇率。
1.睪丸組織來源:收集2016年2~11月在蘭州大學第一醫(yī)院生殖醫(yī)學專科醫(yī)院行睪丸穿刺的患者(包括門診-診斷性睪丸穿刺及ICSI周期治療),經(jīng)知情同意,醫(yī)學倫理會批準同意,將剩余的有精子的睪丸組織納入試驗。共獲得46份睪丸組織樣本。
2.主要載體和試劑:1.8 ml冷凍管(Corning,美國),0.25 ml冷凍麥管(CryoBio System,法國)、超微量冷凍麥管(江蘇泰利達);甘油(sigma,美國),F(xiàn)asrun冷凍保護劑組合(包含冷凍液、解凍液、培養(yǎng)液)(江蘇泰利達),G-MOPS plus(Vitrolife,瑞典)。
3.主要儀器:IVF工作站(K-systems,丹麥),倒置顯微鏡(Nikon,日本)
1.分組:46份睪丸組織樣本,每份樣本平均分成4份,隨機分為A、B、C、D等4組冷凍。A組:1.8 ml冷凍管+甘油復(fù)合冷凍劑;B組:1.8 ml冷凍管+Fasrun冷凍劑;C組:0.25 ml麥管+Fasrun冷凍劑;D組:超微量冷凍麥管+Fasrun冷凍劑。
2.睪丸組織冷凍評估:冷凍前后,分別記錄各組前向運動精子數(shù)目、非前向運動精子數(shù)目、精子復(fù)蘇率。
3.睪丸組織冷凍與復(fù)蘇:將睪丸組織置于1 ml G-MOPSplus培養(yǎng)液中,機械切碎,觀察并記錄睪丸組織內(nèi)每200倍視野活動精子數(shù)量及正常形態(tài)精子數(shù)量。將睪丸組織離心,去除上清液后置于 Fasrun 培養(yǎng)液,在32℃、7% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)30 min。1 500 r/min,離心4 min,去上清,取1/4睪丸組織置于含有 G-MOPS plus的1.8 ml冷凍管中,巴氏吸管加2~3滴甘油,每滴加完后需充分搖勻(編為A組);其余睪丸組織按1﹕3比例加入 Fasrun 冷凍液。睪丸組織盡量混勻,將3/4睪丸組織平分為3份,分別加入到1.8 ml冷凍管、0.25 ml麥管、超微量冷凍麥管(分別編為B、C、D組)。然后將A、B、C、D組均放置于液氮上方5 cm處熏蒸10 min,投入液氮。睪丸組織液氮中凍存1周復(fù)蘇,將A、B、C、D組從液氮中取出,37℃水浴1 min后將睪丸組織轉(zhuǎn)入Fasrun解凍液,10 min后倒置顯微鏡下觀察并記錄睪丸精子復(fù)蘇情況。所有標本的冷凍復(fù)蘇操作均由一人完成。
4.觀察指標:冷凍前各組睪丸組織中活動精子(前向運動精子+非前向運動精子)數(shù)目/200倍視野;解凍復(fù)蘇后,各組睪丸組織中活動精子(前向運動精子+非前向運動精子)數(shù)目/(200倍視野),活動精子數(shù)目≥0.25/(200倍視野)的例數(shù)、活動精子數(shù)目≥0.1/(200倍視野)的例數(shù)(以此為易行ICSI例數(shù));睪丸精子形態(tài)。
本研究采用SPSS17.0軟件,計數(shù)資料的比較采用χ2檢驗進行分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
統(tǒng)計結(jié)果顯示,各組睪丸精子冷凍復(fù)蘇后與冷凍前相比,精子活力均顯著降低,其中前向運動精子降低更為明顯;D組復(fù)蘇率最高,顯著高于A、B兩組(P<0.05),C組顯著高于A組(P<0.05);D組略高于C組,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)(表1)。
冷凍復(fù)蘇后,睪丸精子的活力顯著下降,200倍視野能夠觀測到的活動精子數(shù)目過少,因此冷凍前記錄數(shù)據(jù)為活動精子數(shù)目≥0.5/(200倍視野)的例數(shù),冷凍后記錄數(shù)據(jù)為活動精子數(shù)目≥0.25/(200倍視野)和≥0.1/(200倍視野)的例數(shù),并以≥0.1/(200倍視野)例數(shù)為易行ICSI病例例數(shù)。統(tǒng)計結(jié)果顯示,D組冷凍復(fù)蘇后能夠容易找到正?;顒泳?易行ICSI)的例數(shù)顯著高于A組、B組(P<0.05),C組顯著高于A組(P<0.05)(表2)。
表1 冷凍前后各組間睪丸精子活力及復(fù)蘇率比較[(-±s),%]
注:各組均為46例;與D組相比,*P<0.05;與C組相比,#P<0.05;睪丸精子在200倍視野觀察,由于精子數(shù)目稀少,表中精子計數(shù)均為10個高倍視野數(shù)據(jù)
表2 不同冷凍方法對人睪丸精子冷凍保存效果的比較[n(%)]
注:與D組相比,*P<0.05;與C組相比,#P<0.05
隨著輔助生殖技術(shù)的發(fā)展,越來越多的無精子癥患者前來就醫(yī),使得睪丸穿刺活檢取精術(shù)的數(shù)量激增。曾經(jīng),診斷性睪丸穿刺術(shù)及ICSI后的睪丸組織多被視為醫(yī)療廢物而丟棄,患者若要二次進行ICSI周期,還需要再次行睪丸穿刺活檢,極大地增加了患者的痛苦。隨著冷凍技術(shù)的發(fā)展,睪丸組織冷凍保存成為現(xiàn)實,且有報道稱凍融睪丸組織精子與新鮮睪丸組織精子在ICSI治療時臨床結(jié)局無統(tǒng)計學差異[6]。但目前睪丸組織冷凍復(fù)蘇的總體效果并不理想[7],經(jīng)常需要患者在取卵當天再進行睪丸穿刺活檢取精,加重了患者的身心痛苦及經(jīng)濟負擔,且反復(fù)的睪丸穿刺手術(shù)增加了日后睪丸功能下降的風險[8]。對于非梗阻性無精癥者,即使前次手術(shù)取精成功,再次手術(shù)也有15%~20%的失敗風險[9]。睪丸活檢時凍存精子,以便用于后期ICSI治療,既可以避免反復(fù)睪丸穿刺手術(shù)給患者帶來的精神、肉體、經(jīng)濟方面的負擔,又能避免取卵日取精失敗從而導(dǎo)致無法正常受精,方便醫(yī)患雙方掌握治療進度。因此,尋求一種更優(yōu)的睪丸組織冷凍保存方案,提高睪丸精子復(fù)蘇率成為我們醫(yī)務(wù)工作者的一項嚴峻任務(wù)。
冷凍保護劑在睪丸精子冷凍復(fù)蘇過程中起著重要作用。睪丸精子冷凍中所用冷凍保護劑可分為滲透性保護劑和非滲透性保護劑,其中常用滲透性保護劑有:1,2-丙二醇、乙二醇、甘油和二甲基亞砜(DMSO)。1,2-丙二醇滲透性強且毒性較DMSO低;乙二醇可快速進入細胞內(nèi)置換細胞內(nèi)水分而減少滲透應(yīng)激;甘油及卵黃廣泛應(yīng)用于精液和睪丸細胞懸液冷凍,對精子有很好的保護作用;DMSO分子量小,有較強組織穿透性,對睪丸組織等固體組織及細胞懸液能起到較好的保護作用,是目前睪丸組織冷凍最常用的冷凍保護劑[5]。非滲透性保護劑中最常用的是蔗糖,其保護機制目前還不明確。本實驗中,冷凍前和解凍后,睪丸精子都要置于Fasrun冷凍保護劑組合的培養(yǎng)液中培養(yǎng)30 min,孵育睪丸精子,可以明顯提高睪丸精子的活力,以便更快速的篩選出可以用于ICSI的精子。此外,與甘油相比,F(xiàn)asrun冷凍保護劑中含有的DMSO具有低分子量,高滲透的特性[10],保證在冰晶形成的過程中,冷凍保護劑濃度增加時仍然能留在溶液中不被析出,從而減少冰晶形成對精子的損傷。在本實驗中,1.8 ml冷凍管+Fasrun冷凍劑組(B組)和1.8 ml冷凍管+甘油復(fù)合冷凍劑組(A組)比較,睪丸精子的復(fù)蘇率沒有統(tǒng)計學差異(P>0.05),但前者有優(yōu)于后者的趨勢。
睪丸精子冷凍另一個重要影響因素:選擇合適的載體[11]。與常規(guī)射出精液相比,睪丸組織中精子很少,且還有曲細精管等睪丸組織,應(yīng)用常規(guī)冷凍管回收率低。常用的睪丸組織冷凍載體有冷凍管、超細冷凍管和玻璃化冷凍載體,但對睪丸精子的保存效果還沒有定論[12]。本實驗應(yīng)用超微量冷凍麥管(D組),其體積小,降溫速率快,改善了凍融后精子活力,因此睪丸精子復(fù)蘇率明顯高于采用了1.8 ml冷凍管的兩組(A、B組)。由于載體體積過小,將睪丸組織放入載體所需時間長,所需載體數(shù)量多,增加了冷凍成本,所以超微量冷凍麥管更適用于極少量精子的冷凍。而對于1.8 ml冷凍管,其體積相對較大,所能冷凍的睪丸組織體積大,但由于所需冷凍液多,冷凍過程中冰晶的形成明顯增加睪丸精子的損傷,不適合用于睪丸精子的冷凍。同樣,精子冷凍復(fù)蘇后的存活率主要取決于細胞內(nèi)冰晶形成量,體積小、裝載冷凍保護劑少的載體,能夠增加升溫速率,使溫度能夠快速越過冰晶形成的溫度,從而減少冰晶形成,降低復(fù)溫對睪丸精子的損傷。另外,本實驗采用的液氮熏蒸法,在距離液氮相等的高度(5~10 cm)和相同的時間內(nèi),液氮吸收的熱量是相同的,載體體積越小,樣本的降溫速率越快。睪丸組織快速越過冰晶形成的溫度區(qū),減少了對精子的損傷。因此隨著載體體積的減小,睪丸精子的復(fù)蘇率逐漸升高。
冰晶的形成與冷凍速率有密切關(guān)系,而冷凍速率由冷凍保護劑和載體決定[13]。通過選擇適當?shù)睦鋬霰Wo劑和冷凍載體可減少細胞內(nèi)冰晶形成,從而提高精子的存活率。本實驗發(fā)現(xiàn),0.25 ml麥管+Fasrun冷凍保護劑組(C組),可以得到和超微量冷凍麥管+Fasrun冷凍保護劑組(D組)相近的睪丸精子復(fù)蘇率(78.26% vs.86.96%),但冷凍成本較低且操作過程也較精簡,提高了成本效益[14]。由于冷凍睪丸精子與液氮隔絕,避免了污染的可能,生物安全性高[15]。本實驗由于尚處于實驗階段,數(shù)據(jù)量還不夠大,且后期ICSI術(shù)后的受精率、種植率、妊娠率、流產(chǎn)率等數(shù)據(jù)還有待完善。
綜上所述,應(yīng)用改良的超微量冷凍麥管+Fasrun冷凍保護劑可以提高睪丸組織精子冷凍復(fù)蘇率,是一種比較理想的冷凍方案;0.25 ml麥管+Fasrun冷凍保護劑的冷凍復(fù)蘇效果稍低于超微量冷凍麥管+Fasrun冷凍保護劑組,但其冷凍成本方面優(yōu)勢明顯,也可作為一種備選方案。
[1] Verheyen G,Popovic-Todorovic B,Tournaye H. Processing and selection of surgically-retrieved sperm for ICSI:a review[J]. Basic Clin Androl,2017,27:6. doi:10.1186/s12610-017-0050-2. eCollection 2017.
[2] Craft I,Bennett V,Nicholson N. Fertilising ability of testicular spermatozoa[J].Lancet,1993,342:864.
[3] Palermo G,Joris H,Devroey P,et al. Pregnancies after intracytoplasmic injection of single spermatozoon into an oocyte[J]. Lancet,1992,340:17-18.
[4] Picton HM,Wyns C,Anderson RA,et al.A European perspective on testicular tissue cryopreservation for fertility preservation in prepubertal and adolescent boys[J]. Hum Reprod,2015,30:2463-2475.
[5] Onofre J,Baert Y,F(xiàn)aes K,et al. Cryopreservation of testicular tissue or testicular cell suspensions:a pivotal step in fertility preservation[J]. Hum Reprod Update,2016,22:744-761.
[6] 史海躍,陳慧,王華,等. 睪丸精子冷凍復(fù)蘇對ICSI 助孕結(jié)局的影響[J]. 生殖醫(yī)學雜志,2016,25:731-733.
[7] Gangraed BK. Cryopreservation of testicular and epididymal sperm:techniques and clinical outcomes of assisted conception[J]. Clinics(Sao Paulo),2013,68:131-140.
[8] Cohen J,Garrisi GJ,Congedo-Ferrara TA,et al. Cryopreservation of single human spermatozoa[J]. Hum Reprod,1997,12:994-1001.
[9] Verheyen G,Vernaeve V,Van Landuyt L,et al. Should diagnostic testicular sperm retrieval followed by cryopreservation for later ICSI be the procedure of choice for all patients with non-obstructive azoospermia? [J]. Hum Reprod,2004,19:2822-2830.
[10] Yildiz C,Mullen B,Jarvi K,et al. Effect of different cryoprotectant agents on spermatogenesis efficiency in cryopreserved and grafted neonatal mouse testicular tissue[J]. Cryobiology,2013,67:70-75.
[11] Liu F,Zou SS,Zhu Y,et al. A novel micro-straw for cryopreservation of small number of human spermatozoon[J]. Asian J Androl,2017,19:326-329.
[12] Baert Y,Van Saen D,Haentjens P,et al. What is the best cryopreservation protocol for human testicular tissue banking?[J]. Hum Reprod,2013,28:1816-1826.
[13] Liebermann J,Nawroth F,Isachenko V,et al. Potential importance of vitrification in reproductive medicine[J]. Biol Reprod,2002,67:1671-1680.
[14] Schiewe MC,Rothman C,Spitz A,et al. Validation-verification of a highly effective,practical human testicular tissue in vitro culture-cryopreservation procedure aimed to optimize pre-freeze and post-thaw motility[J]. J Assist Reprod Genet,2016,33:519-528.
[15] Yavin S,Aroyo A,Roth Z,et al. Embryo cryopreservation in the presence of low concentration of vitrification solution with sealed pulled straws in liquid nitrogen slush [J]. Hum Reprod,2009,24:797-804.