金華麗，姜海洋*

基于氮摻雜碳球生長金的酶傳感器檢測蔬菜中的克百威

金華麗，姜海洋*

（河南工業(yè)大學糧油食品學院，河南 鄭州 450001）

以氮摻雜碳球（nitrogen doped carbon spheres，N-Cs）為基質，制備新型的氮摻雜碳球生長金納米復合材料（N-Cs-Au），采用交聯(lián)法制備新型的基于N-Cs-Au修飾玻碳電極（glassy carbon electrode，GCE）的乙酰膽堿酯酶（acetylcholinesterase，AChE）生物傳感器（AChE/N-Cs-Au/GCE）并用于菠菜中克百威的定量分析。結果表明：N-Cs-Au具有較好的導電性和電催化活性，能夠有效地促進電子轉移，提高AChE/N-Cs-Au/GCE的靈敏度。利用AChE/N-Cs-Au/GCE對菠菜中的克百威進行檢測分析，克百威質量濃度的負對數與其對AChE/N-Cs-Au/GCE的抑制率在2.3×10-10～2.3×10-5g/L的線性范圍內呈良好的線性關系，線性方程為Y/%=-8.246 7X＋93.867 6（X為克百威質量濃度的負對數），R2為0.992 9，按抑制率10%計算，檢出限為6.763 9×10-11g/L，用AChE/N-Cs-Au/GCE對菠菜中的克百威進行檢測分析，樣品回收率在91.417 7%～95.859 7%之間，精密度較高，符合實驗要求，且該傳感器對常見的重金屬Pb、Cu、Cd和Mn有較好的抗干擾能力，為食品中克百威的檢測提供了一種新方法。

克百威；氮摻雜碳球生長；傳感器；檢測

克百威，別名呋喃丹，化學名稱為2,3-二氫-2,2-二甲基-7-苯并呋喃基甲氨基甲酸酯，分子式為C12H15NO3是一種常用的高效氨基甲酸酯類殺蟲劑和殺螨劑[1]?？税偻捎诰哂袕V譜性、觸殺、胃毒等作用被廣泛應用于棉花、甘蔗、茶樹、稻、玉米、馬鈴薯、花生、谷物、香蕉等80多種作物害蟲的防治?？税偻梢院腿梭w內的膽堿酯酶發(fā)生不可逆的結合[2]，因此毒性很高，而且在土壤中、昆蟲以及捕食昆蟲的鳥類、家禽等體內殘效期較長，其在土壤中的半衰期一般為30～60 d，極易造成二次中毒[3]。近些年來，由于克百威農藥過度以及不合理的使用對人們的飲食安全和生態(tài)環(huán)境造成了嚴重的威脅[4]，因此研究一種方便、快捷的檢測方法對食品中的克百威進行現(xiàn)場快速、有效地檢測分析具有重要的意義。

目前，關于克百威檢測的傳統(tǒng)方法有氣相色譜法、高效液相色譜法、質譜法等。這些方法雖然具有靈敏度、精密度高，準確度好等優(yōu)點，但其操作復雜，儀器價格昂貴而且需要專業(yè)人員操作[5-8]，因此不適合對克百威農藥現(xiàn)場、快速地檢測分析。基于酶傳感器的電化學分析法由于具有操作簡單、方便、快捷等優(yōu)點，因此，在對克百威現(xiàn)場快速篩查等方面存在較大的應用潛力[9]，是對克百威進行快速檢測的理想方法之一。

氮摻雜碳球（nitrogen doped carbon spheres，N-Cs）納米復合材料，由于碳球具有較大的比表面積，因此，為酶的附著提供了較好的結合位點，有利于酶促反應的進行[10-13]，同時納米金的引入進一步提高了N-Cs的導電性。目前，雖然關于N-Cs納米復合材料已有報道，但關于N-Cs生長金納米復合材料的報道鮮見發(fā)表。因此，本實驗以N-Cs-Au為基質，制備酶傳感器來對克百威進行快速、有效的定量分析。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

菠菜購自鄭州市高新區(qū)丹尼斯便利店；氯化乙酰膽堿（acetylcholine chloride，ATCl）、C3389型乙酰膽堿酯酶（acetylcholinesterase，AChE，236 U/mg） 美國Sigma公司；克百威 中國食品藥品檢定研究院；氯化鉀洛陽昊化化學試劑有限公司；亞鐵氰化鉀 天津市光復精細化工研究所；鐵氰化鉀 洛陽市化學試劑廠；實驗中所用到的試劑均為分析純。

1.2 儀器與設備

CHI-660E電化學工作站 上海辰華儀器有限公司；JSM-7001F場發(fā)射掃描電子顯微鏡 日本JEOL公司；KQ-100E型超聲波清洗器 昆山市超聲儀器有限公司；S25-2型恒溫磁力攪拌器 上海司樂儀器有限公司；ATY224型電子分析天平 島津國際貿易（上海）有限公司；移液槍 賽默飛世爾（上海）儀器有限公司。

1.3 方法

1.3.1 N-Cs-Au的制備

N-Cs納米材料參考文獻[14]制備。準確稱取N-Cs納米材料0.010 3 g于50 mL的具塞錐形瓶中，加入20.00 mL超純水，超聲分散2～3 h，使其分散均勻。在劇烈攪拌條件下，向N-Cs分散液中加入0.60 mL 1 g/100 mL的HAuCl4和0.20 mL 0.20 mol/L的K2CO3溶液，然后再迅速加入新鮮配制的0.04 mol/L的NaBH4溶液0.40 mL，重復滴加3～5 次，繼續(xù)攪拌5 min，即得納米金顆粒。

將上述懸濁液靜置，除去上清液，用超純水洗滌3 次，然后再稀釋到20.00 mL，在磁力攪拌條件下再加入0.10 mL 1 g/100 mL的HAuCl4和0.5 mL 0.04 mol/L的NH2OH·HCl溶液，繼續(xù)攪拌20 min，即得N-Cs-Au，然后于10 000 r/min、室溫條件下離心5 次，每次10 min，用超純水對離心產物洗滌3～5次，60 ℃條件下干燥，備用。

1.3.2 傳感器的制備

將玻碳電極（glassy carbon electrode，GCE）用1 000 目砂紙打磨后，分別用0.3 μm和0.05 μm的氧化鋁粉拋光至鏡面，然后依次用無水乙醇、二次蒸餾水進行超聲清洗3 次，每次3～5 min，在常溫條件下讓其自然干燥，備用[15-17]。用10 μL移液槍吸取4.0 μL的1.0 mg/mL的N-Cs-Au修飾液滴于GCE表面，然后用燒杯罩在上面（防止其被污染），常溫自然干燥，即得N-Cs-Au/GCE。然后再取1.0 μL 0.5 g/100 mL的殼聚糖溶液和2.0 μL 0.1 U/μL AChE以及1.0 μL 1 g/100 mL牛血清蛋白混合均勻，取其混合液滴加在N-Cs-Au/GCE電極表面，室溫條件下干燥，即得AChE/N-Cs-Au/GCE生物傳感器[18-20]。

1.3.3 樣品處理和測定

選用菠菜作為實際樣品對克百威進行加標實驗。準確稱取菠菜10.000 0 g，用搗碎機搗碎混勻，然后轉移至潔凈的表面皿中并用微量注射器吸取100 μL 5.103 5×10-3g/L克百威標準溶液，均勻噴撒在準備好的樣品上，蓋上保鮮膜，在4 ℃冰箱中放置1 h，然后用丙酮萃取過濾并轉移至100 mL容量瓶中定容，取一定量的上述溶液于5 mL磷酸鹽緩沖溶液（phosphate buffer saline，PBS）中分別制備5.103 5×10-6、5.103 5×10-7g/L和5.103 5×10-8g/L克百威溶液，對其進行定量分析。

2 結果與分析

2.1 不同材料的形貌表征

由圖1A可知，制備好的N-Cs納米復合材料呈球形，且表面無任何物質存在；由圖1B可知，經生長過金的N-Cs納米復合材料表面被負載了一層顆粒狀的物質，且相對均勻，這說明金納米顆粒已經很好地被負載到了N-Cs表面。

圖1 N-Cs（A）和N-Cs-Au（B）的掃描電鏡圖Fig. 1 SEM images of N-Cs (A) and N-Cs-Au (B)

2.2 電極的電化學表征

在10 mmol/L的[Fe(CN)6]3-溶液（含0.1 mol/L KCl）中分別對GCE、N-Cs-Au/GCE和AChE/N-Cs-Au/GCE進行交流阻抗分析，結果見圖2。

圖2 GCE（a）、N-Cs-Au/GCE（b）、AChE/N-Cs-Au/GCE（c）在10 mmol/L的[Fe(CN)6]3－（含0.1 mol/L KCl）溶液中的交流阻抗圖譜Fig. 2 Electrochemical impedance spectra of GCE (a), N-Cs-Au/GCE (b)and AChE/N-Cs-Au/GCE (c) in 10 mmol/L [Fe(CN)6]3- containing 0.1 mol/L KCl

由圖2可知，GCE電阻為375.5 Ω，N-Cs-Au/GCE電阻為195.5 Ω，與GCE相比電阻降低了47.94%，這說明N-Cs表面生長金以后，能夠有效提高電子的轉移速率，減小電極表面的阻抗，增加電極的導電性；當滴加上AChE以后電阻增大到481.3 Ω，與N-Cs-Au/GCE相比電阻增大了146.19%，這是因為AChE是不導電的生物大分子，阻礙了電子的傳遞，從而增加了電極表面的電阻，這同時也說明AChE已經很好地被固定到電極表面[21]。

2.3 ATCl在不同電極上的電化學行為

以pH 7.5的PBS（0.1 mol/L）為支持電解質，分別用AChE/GCE和AChE/N-Cs-Au/GCE對1 mmol/L的ATCl溶液進行差分脈沖掃描，其結果如圖3所示。

圖3 AChE/GCE（a）和AChE/N-Cs-Au/GCE（b）在1.0 mmol/L的ATCl溶液中的差分脈沖曲線Fig. 3 Differential pulse voltammetry curves of AChE/GCE (a) and AChE/N-Cs-Au/GCE (b) in 1.0 mmol/L ATCl

由圖3可知，AChE/GCE的氧化峰電流為1.033 μA，AChE/N-Cs-Au/GCE氧化峰電流為2.329 μA，與AChE/GCE相比氧化峰電流增加了1.254 6 倍，這說明AChE/N-Cs-Au/GCE具有較高的電催化活性，N-Cs-Au能夠有效地降低電極表面的阻抗，促進電子地轉移速率，提高傳感器的靈敏度。

2.4 不同交聯(lián)劑的選擇

分別以1 μL 0.5g/100 mL戊二醛和0.5 g/100 mL殼聚糖為交聯(lián)劑，制備AChE/N-Cs-Au/GCE生物傳感器，對1 mmol/L的ATCl進行差分脈沖掃描，其結果如圖4所示。

圖4 不同交聯(lián)劑條件下的差分脈沖曲線Fig. 4 Differential pulse voltammetry curves of sensors made with different crosslinking agents

由圖4可知，不用交聯(lián)劑制備的生物傳感器測得的氧化峰電流為1.625 μA；以0.5 g/100 mL戊二醛為交聯(lián)劑制備的生物傳感器測得的氧化峰電流為2.014 μA，與不用交聯(lián)劑制備的生物傳感器相比氧化峰電流提高了23.94%，這說明戊二醛能夠起到很好的交聯(lián)作用，防止酶分子從電極表面脫落，增加電極表面的響應信號。以0.5 g/100 mL殼聚糖為交聯(lián)劑制備的生物傳感器測得的氧化峰電流為2.392 μA，與以0.5 g/100 mL的戊二醛為交聯(lián)劑制備的生物傳感器測得的氧化峰電流相比提高了18.77%，這是因為戊二醛雖然能夠對酶起到很好的交聯(lián)作用，但其有一定的毒性，抑制了酶分子的活性[22]，而殼聚糖是天然的生物分子，無毒，具有較好的成膜特性，不僅能夠對酶分子起到很好的交聯(lián)作用，還能夠防止酶分子的聚集，因此具有較好的交聯(lián)效果，能夠有效促進酶促反應的進行，增加響應信號[23]。因此，本實驗選取0.5 g/100 mL殼聚糖為交聯(lián)劑制備的生物傳感器。

2.5 修飾量的選擇

以pH 7.5的PBS（0.1 mol/L）為支持電解質，分別以2.0、3.0、4.0、5.0、6.0 μL和7.0 μL的N-Cs-Au修飾GCE制備AChE/N-Cs-Au/GCE傳感器，對1.00 mmol/L的ATCl進行差分脈沖掃描，其結果如圖5所示。

由圖5可知，隨著N-Cs-Au修飾量的增加，AChE/N-Cs-Au/GCE傳感器在1.00 mmol/L的ATCl中測得的氧化峰電流呈現(xiàn)先增加后減小的趨勢，且當修飾量為4 μL時氧化峰電流達到最大為2.384 μA。這是因為當電極表面涂層過厚時會影響到反應物和生成物的傳質過程，同時厚度的增大，也會增加電極表面的阻抗，阻礙電極表面電子的轉移過程，致使電極響應變得遲緩，響應電流隨之降低。因此，N-Cs-Au的修飾量選取4 μL。

圖5 N-Cs-Au修飾量對AChE/N-Cs-Au/GCE傳感器的影響Fig. 5 Effect of N-Cs-Au loading on the response of AChE/N-Cs-Au/GCE biosensor

2.6 pH值優(yōu)化

圖6 pH值對AChE/N-Cs-Au/GCE傳感器的影響Fig. 6 Effect of pH on the response of AChE/N-Cs-Au/GCE biosensor

分別以pH6.0、6.5、7.0、7.5、8.0和8.5的PBS（0.1 mol/L）為支持電解質溶液，對1.00 mmol/L的ATCl進行差分脈沖掃描，其結果如圖6所示。由圖6可知，隨著PBS pH值的升高，氧化峰電流呈現(xiàn)先增大后減小的趨勢，且當pH 7.5時，氧化峰電流達到最大為2.328 μA，這是因為過強的酸堿性會對酶分子產生可逆或不可逆性的破壞，影響酶促反應的進行[24]。因此，本實驗選取pH 7.5的PBS為支持電解質。

2.7 抑制時間的選擇

圖7 克百威作用時間與抑制率之間的關系曲線Fig. 7 Relationship between percentage inhibition and incubation time with carbofuran

將制備好的AChE/N-Cs-Au/GCE生物傳感器置于1.00 mmol/L的ATCl溶液中，然后用2.3×10-5g/L的克百威對其進行抑制，記錄不同抑制時間的氧化峰電流，根據抑制前后峰電流值的變化計算出其抑制率，其結果如圖7所示。

由圖7可知，當加入2.3×10-5g/L的克百威后，克百威對AChE的抑制作用隨著時間的延長逐漸增大，且當抑制時間達到10 min后逐漸趨于平緩。因此克百威對AChE/N-Cs-Au/GCE生物傳感器的抑制時間選取10 min。

2.8 克百威質量濃度與其抑制率間的關系

在最佳實驗條件下分別用2.3×10-11～2.3×10-4g/L的克百威對AChE/N-Cs-Au/GCE進行抑制測定，其結果如圖8所示。

圖8 克百威質量濃度與其抑制率間的關系曲線Fig. 8 Relationship curve between percentage inhibition and carbofuran concentration

由圖8可知，克百威質量濃度的負對數與其對AChE/N-Cs-Au/GCE的抑制率在2.3×10-10～2.3×10-5g/L的范圍內呈良好的線性關系，線性范圍較寬，按抑制率10%計算，檢出限為6.763 9×10-11g/L，滿足實驗要求。與之前的文獻報道[25-28]相比，本實驗所構建的AChE/N-Cs-Au/GCE生物傳感器明顯優(yōu)于其他生物傳感器，結果如表1所示。

表1 AChE/N-Cs-Au/GCE生物傳感器與其他傳感器的結果比較Table 1 Performance comparison of AChE/N-Cs-Au/GCE for carbofuran detection with other biosensors

2.9 實際樣品的檢測結果

對實際樣品菠菜中的克百威進行檢測，由建立的標準曲線計算出克百威的含量，平行測定3 次，做回收率實驗，其結果如表2所示。

由表2可知，克百威加標回收率在91.417 7%～95.859 7%之間，精密度較高，符合實驗要求，適用于實際樣品中克百威的檢測分析。

表2 菠菜中克百威的檢測結果Table 2 Detection of carbofuran in actual spinach samples

2.10 傳感器的抗干擾分析

常見的重金屬元素可能會影響到酶的活性，進而影響到傳感器的穩(wěn)定性，影響其靈敏度，因此本實驗探討了常見重金屬Cr（50.00 mmol/L）、Pb（50.00 mmol/L）、Cu（50.00 mmol/L）、Cd（50.00 mmol/L）和Mn（50.00 mmol/L）[29-30]對傳感器的影響，結果如圖9所示。

圖9 不同重金屬對傳感器的影響Fig. 9 Effects of different heavy metals on the response of AChE/N-Cs-Au/GCE biosensor

由圖9可知，加入重金屬Pb、Cu、Cd和Mn后AChE/N-Cs-Au/GCE測得的氧化峰電流保持在空白電流的91.65%～103.68%之間，這說明Pb、Cu、Cd和Mn對傳感器的干擾較??；當加入重金屬Cr后電流值為原來的79.27%，降低了20.73%，這說明AChE/N-Cs-Au/GCE生物傳感器對Cr的抗干擾能力較差。

3 結 論

在N-Cs的基礎上制備了N-Cs-Au納米復合材料，采用交聯(lián)法制備了新型的AChE/N-Cs-Au/GCE傳感器并用于菠菜中克百威的定量分析。結果表明：N-Cs-Au具有較好的導電性和電催化活性，能夠有效地促進電子的轉移，提高AChE/N-Cs-Au/GCE傳感器的靈敏度。利用AChE/N-Cs-Au/GCE傳感器對菠菜中的克百威進行檢測分析，樣品回收率在91.417 7%～95.859 7%之間，精密度較高，符合實驗要求，且該傳感器對常見的重金屬Pb、Cu、Cd和Mn有較好的抗干擾能力，穩(wěn)定性較好，適用于克百威的現(xiàn)場檢測分析。

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Development of Acetylcholinesterase Biosensor for Detection of Carbofuran in Vegetables Based on Nitrogen-Doped Carbon Sphere-Gold Nanoparticles Composite Modified Electrode

JIN Huali, JIANG Haiyang*
(College of Grain and Oil, Henan University of Technology, Zhengzhou 450001, China)

An acetylcholinesterase (AChE) biosensor was prepared by cross-linking AChE and bovine serum albumin(BSA) onto nitrogen doped carbon sphere-gold (N-Cs-Au) nanoparticles composite modified glassy carbon electrode(GCE) and used for detecting carbofuran in spinach. The results showed that N-Cs-Au had a good electrical conductivity and catalytic activity, effectively promoting electron transfer and consequently improving the sensitivity of AChE/N-Cs-Au/GCE. It was found that there was a good linear relationship between the negative common logarithm of carbofuran concentration (X) in the range from 2.3 × 10-10to 2.3 × 10-5g/L and the percentage inhibition of the peak current by carbofuran (Y) as indicated by the equation∶ Y/% = -8.246 7X + 93.867 6 (R2= 0.992 9). As calculated by 10% inhibition,the limit of detection (LOD) for carbofuran was 6.763 9 × 10-11g/L. The sensor showed recoveries of 91.417 7%–95.859 7%for carbofuran in spiked spinach and high precision, which could meet the analytical requirements. Moreover, the sensor was free from the interference of common heavy metals such as Pb, Cu, Cd and Mn and could provide a new method for detecting carbofuran in foods.

carbofuran; nitrogen doped-carbon spheres-gold nanoparticles; sensor; detection

DOI∶10.7506/spkx1002-6630-201724048

TS207.7

A

1002-6630（2017）24-0296-06

金華麗, 姜海洋. 基于氮摻雜碳球生長金的酶傳感器檢測蔬菜中的克百威[J]. 食品科學, 2017, 38(24): 296-301.

10.7506/spkx1002-6630-201724048. http://www.spkx.net.cn

JIN Huali, JIANG Haiyang. Development of acetylcholinesterase biosensor for detection of carbofuran in vegetables based on nitrogen-doped carbon sphere-gold nanoparticles composite modified electrode[J]. Food Science, 2017, 38(24)∶ 296-301.(in Chinese with English abstract) DOI∶10.7506/spkx1002-6630-201724048. http∶//www.spkx.net.cn

2016-11-25

金華麗（1966—），女，教授，碩士，研究方向為食品工程與品質安全控制。E-mail：jinhuali66@163.com

*通信作者：姜海洋（1990—），男，碩士研究生，研究方向為食品工程與品質安全控制。E-mail：jianghaiyang523@163.com