戴凌,蔣志慶,張廣鈺,甘信利
(桂林醫(yī)學院附屬醫(yī)院,廣西桂林 541001)
胃癌患者血清miR-21水平變化及意義
戴凌,蔣志慶,張廣鈺,甘信利
(桂林醫(yī)學院附屬醫(yī)院,廣西桂林 541001)
目的觀察胃癌患者血清miR-21的水平變化,并探討其意義。方法選取胃癌患者60例(觀察組),同期與之年齡、性別相匹配的體檢中心健康人群60例作為對照組,測定兩組受試者血清miR-21水平,并分析血清miR-21水平與胃癌患者組織分化程度、臨床分期、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移、腫瘤大小、年齡、性別的相關(guān)性。結(jié)果觀察組血清miR-21水平高于對照組(Plt;0.05),預(yù)后良好者血清miR-21水平低于預(yù)后不良者(Plt;0.05)。血清miR-21水平與胃癌患者的組織分化程度、腫瘤大小、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移及TNM分期有關(guān)(P均﹤0.05);與患者的年齡、性別無關(guān)(P均gt;0.05)。結(jié)論胃癌患者血清miR-21水平升高,miR-21可能參與胃癌的發(fā)生發(fā)展。
胃癌;微小RNA-21;臨床病理特征
胃癌是世界上常見的惡性腫瘤之一,其致死率在腫瘤引起的死亡中排名第三[1]。據(jù)最新研究報道,全球每年約有952 000例胃癌患者,且每年約有700 000例死于胃癌[2]。引起胃癌的原因有多種:宿主的易感性,幽門螺桿菌的感染,環(huán)境因素,特別是飲食模式和吸煙[3]。根除幽門螺桿菌對于減少胃癌的發(fā)生有很大作用,但大部分胃癌患者就診時已處于晚期。CA199和CEA是兩大常見的腫瘤標志物,但診斷胃癌的特異性和敏感性較低。微小RNA(miRNAs)是小的單鏈RNA分子,其長度為18~25個核苷酸,在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)節(jié)基因表達。研究發(fā)現(xiàn),miRNAs參與細胞的多種生物學過程,包括增殖、分化、凋亡、生長等[4],且miRNAs在癌癥發(fā)生發(fā)展中起重要作用[5]。其中,miR-21與腫瘤進展關(guān)系密切,包括肝細胞肝癌、胃癌、成膠質(zhì)細胞瘤、神經(jīng)膠質(zhì)瘤、喉癌[6]等。2015年1~12月,我們觀察了胃癌患者血清miR-21的水平變化,并探討其意義。
1.1 臨床資料 選擇本院2015年1~12月診斷為原發(fā)性胃癌患者60例(觀察組),男35例、女25例,年齡45~70歲,其中﹤60歲者20例,≥60歲者40例。組織病理類型的判斷標準均參照WHO胃癌的病理學分類組織分化程度:低分化19例,中分化20例,高分化21例;有淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移30例;TNM分期:Ⅰ+Ⅱ期22例,Ⅲ+Ⅳ期38例。隨訪1年,失聯(lián)12例,獲隨訪48例,48例中預(yù)后良好(判斷標準:無死亡,無遠處轉(zhuǎn)移,無復(fù)發(fā))30例,預(yù)后不良18例(死亡6例,發(fā)生轉(zhuǎn)移10例,復(fù)發(fā)2例)。另選取同期與觀察組匹配的體檢中心查體健康人群60例作為對照組。病例排除標準:嚴重電解質(zhì)紊亂者;嚴重肝腎功能不全、心功能不全、嚴重感染者;神志不清,無法配合者。所有受試者獲得知情同意,并已通過我院倫理委員會的批準。兩組年齡、性別具有可比性。
1.2 胃癌患者血清miR-21水平檢測 抽取患者空腹靜脈血液樣本2 mL,3 500 r/min,離心15 min,分離血清,置于-70 ℃低溫冰箱保存。采用TRIzol法從血清內(nèi)提取總RNA,然后反轉(zhuǎn)錄成cDNA(PrimeScript RT Reagent Kit,Takara)。用qRT-PCR法測定血清總miR-21,用U6 miRNA作為對照。miR-21擴增引物:正向引物:5′-ACGTTGTGTAGCTTATCAGACTG-3′,反向引物:5′-AATGGTTGTTCTCCACACTCTC-3′;U6 miRNA擴增引物:正向引物:5′-ATTGGAACGATACAGAGAAGATT-3′,反向引物:5′-GGAACGCTTCACGAATTTG-3′。使用公式2-ΔΔCt計算miR-21相對表達量。
2.1 兩組患者血清miR-21水平比較 觀察組與對照組血清miR-21水平分別為50.23±4.78、18.62±5.14,兩組比較,Plt;0.05。預(yù)后良好者與預(yù)后不良者血清miR-21水平分別為22.15±3.78、36.74±4.21,二者比較,P﹤0.05。
2.2 血清miR-21水平與胃癌患者臨床病理特征的關(guān)系 血清miR-21水平與胃癌患者組織分化程度、腫瘤大小、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移及TNM分期有關(guān)(P均﹤0.05),與患者的年齡、性別無關(guān)(P均gt;0.05)。見表1。
表1 血清miR-21水平與胃癌患者臨床病理特征的關(guān)系
胃癌是世界上第二大常見腫瘤,目前仍缺乏有效診斷的特異性標志物。腫瘤的發(fā)生是一個復(fù)雜生物學過程,涉及到多種細胞因子、蛋白、生長分化因子的參與。近年來,關(guān)于miRNA與腫瘤發(fā)生發(fā)展的關(guān)系逐漸成為研究熱點,研究[7]發(fā)現(xiàn),miRNA與多種腫瘤的發(fā)生發(fā)展相關(guān)。
miRNAs參與人類30%~60%基因的轉(zhuǎn)錄后調(diào)節(jié)。由于一個miRNA可作用于上百個不同的基因,因此miRNA的功能失調(diào),可導(dǎo)致正常細胞向癌細胞轉(zhuǎn)化。國外文獻報道,超過一半的miRNAs基因位于腫瘤相關(guān)基因組區(qū)或脆性位點[8]。提示miRNAs在人類腫瘤的發(fā)生發(fā)展中起重要作用。miR-21的成熟形式亦稱作hsa-miR-21或miRNA21,由MIR21基因編碼而來。該基因位于染色體正義鏈17q23.2(55273409~55273480),與蛋白編碼基因TMEM49重疊[9]。miR-21受到多種細胞轉(zhuǎn)錄因子或細胞信號調(diào)節(jié),其基因轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)機制復(fù)雜。
本研究發(fā)現(xiàn),觀察組血清miR-21水平高于對照組,預(yù)后不良者血清miR-21水平高于預(yù)后良好者,差異均有統(tǒng)計學意義;血清miR-21水平與胃癌患者的組織分化程度、腫瘤大小、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移及TNM分期有關(guān);組織分化程度越低、腫瘤直徑越大、有淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移、臨床分期越高者血清miR-21水平越高,與國內(nèi)外研究報道一致。Chan等[10]研究認為,miR-21在胃癌組織中表達升高,且與胃癌患者的預(yù)后、臨床病理相關(guān)參數(shù)有關(guān),提示miR-21可作為胃癌診斷和預(yù)后的一項特異性分子標志物。miR-21在胃癌中的可能作用機制:PTEN是繼p53之后重要的腫瘤抑制蛋白,而PTEN是miR-21的靶基因,miR-21升高可抑制PTEN表達,從而促進胃癌的發(fā)生[11];miR-21基因的上游有STAT-3結(jié)合位點,STAT-3可促進miR-21表達,而STAT-3在腫瘤的病理生理過程中發(fā)揮重要作用,STAT-3激活Bcl-2、Bcl-X等抗凋亡基因,延遲細胞的生存周期[12];幽門螺桿菌感染是胃癌重要病因之一,Chan等[10]研究發(fā)現(xiàn),在幽門螺桿菌感染的胃組織中,miR-21表達升高。而Shiotani等[13]發(fā)現(xiàn),對胃癌患者進行幽門螺桿菌根除治療后,miR-21水平明顯下降。提示miR-21與幽門螺桿菌有一定關(guān)聯(lián)。
綜上所述,胃癌患者血清miR-21水平升高,miR-21可能參與胃癌患者的病情進展。
[1] Jmour O, Belaid A, Mghirbi F, et al. Gastric metastasis of bilateral breast cancer[J]. J Gastrointest Oncol, 2017,8(1):E16-E20.
[2] Corvalan RA. Epigenetics in the pathogenesis and early detection of gastric cancer[J]. Rev Med Chil, 2013,141(12):1570-1577.
[3] Sun K, Lai EC. Adult-specific functions of animal microRNAs[J]. Nat Rev Genet, 2013,14(8):535-548.
[4] Piazuelo MB, Correa P. Gastric cancer: Overview[J]. Colomb Med (Cali), 2013,44(3):192-201.
[5] Xiao J, Wang QX, Zhu YQ. Altered expression profile of micrornas in gastric stromal tumor[J]. J Huazhong Univ Sci Technolog Med Sci, 2015,35(6):842-850.
[6] Costa PM, Cardoso AL, Mano M, et al. MicroRNAs in glioblastoma: role in pathogenesis and opportunities for targeted therapies[J]. CNS Neurol Disord Drug Targets, 2015,14(2):222-238.
[7] Alshalalfa M. miRNA regulation in the context of functional protein networks: principles and applications[J]. Wiley Interdiscip Rev Syst Biol Med, 2014,6(2):189-199.
[8] Lu YZ, Deng AM, Li LH, et al. Prognostic role of phospho-PRAS40 (Thr246) expression in gastric cancer[J]. Arch Med Sci, 2014,10(1):149-153.
[9] Song WF, Wang L, Huang WY, et al. MiR-21 upregulation induced by promoter zone histone acetylation is associated with chemoresistance to gemcitabine and enhanced malignancy of pancreatic cancer cells[J]. Asian Pac J Cancer Prev, 2013,14(12):7529-7536.
[10] Chan SH, Wu CW, Li AF, et al. miR-21 microRNA expression in human gastric carcinomas and its clinical association[J]. Anticancer Res, 2008,28(2A):907-911.
[11] Wang LJ, He CC, Sui X, et al. MiR-21 promotes intrahepatic cholangiocarcinoma proliferation and growth in vitro and in vivo by targeting PTPN14 and PTEN[J]. Oncotarget, 2015,6(8):5932-5946.
[12] Zhou Q, Zheng X, Chen L, et al. Smad 2/3/4 Pathway Contributes to TGF-beta-Induced MiRNA-181b Expression to Promote Gastric Cancer Metastasis by Targeting Timp3[J]. Cell Physiol Biochem, 2016,39(2):453-466.
[13] Shiotani A, Murao T, Kimura Y, et al. Identification of serum miRNAs as novel non-invasive biomarkers for detection of high risk for early gastric cancer[J]. Br J Cancer, 2013,109(9):2323-2330.
10.3969/j.issn.1002-266X.2017.41.027
R735.2
B
1002-266X(2017)41-0080-03
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2017-05-24)