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        γ—聚谷氨酸發(fā)酵過程中體積氧傳遞系數(shù)的控制

        2017-11-15 16:59:18李恩白雪冉茂雙張慧莉
        江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2017年17期
        關(guān)鍵詞:轉(zhuǎn)速發(fā)酵產(chǎn)量

        李恩+白雪+冉茂雙+張慧莉

        摘要:研究了發(fā)酵罐的轉(zhuǎn)速對γ-聚谷氨酸產(chǎn)量的影響。結(jié)果表明,在轉(zhuǎn)速為500 r/min,體積氧傳遞系數(shù)KLa為250 h-1時,供氧比較合適,γ-聚谷氨酸的產(chǎn)量為34 g/L。研究結(jié)果為進一步通過改善發(fā)酵條件來提高γ-聚谷氨酸的產(chǎn)量奠定了良好基礎(chǔ)。

        關(guān)鍵詞:轉(zhuǎn)速;體積氧傳遞系數(shù);γ-聚谷氨酸;發(fā)酵;產(chǎn)量

        中圖分類號: S188+.4文獻標志碼: A文章編號:1002-1302(2017)17-0286-03

        收稿日期:2016-04-08

        基金項目:國家自然科學(xué)基金(編號:21366028)。

        作者簡介:李恩(1989—),男,碩士研究生,研究方向為發(fā)酵工程。E-mail:932699007@qq.com。

        通信作者:張慧莉,副教授,研究方向為發(fā)酵工程。E-mail:79105878@qq.com。γ-聚谷氨酸(poly γ-glumatic acid,γ-PGA)是由微生物發(fā)酵產(chǎn)生的水溶性多聚氨基酸,由L-谷氨酸、D-谷氨酸通過γ-酰胺鍵結(jié)合形成的高分子聚合物,通常相對分子質(zhì)量在10萬~100萬之間[1]。作為一種新型的綠色環(huán)保高分子聚合物,γ-PGA具有對人體和環(huán)境無毒害、可降解、可再生的優(yōu)點,廣泛用作藥物緩釋材料[2],土壤、沙地的蓄水保水劑[3],食品的水凝膠[4-5],化妝品的保濕劑[6]以及高強度纖維[7]等。

        微生物發(fā)酵過程優(yōu)化的主要目標在于通過一系列調(diào)控措施實現(xiàn)生產(chǎn)菌株和/或產(chǎn)物的高產(chǎn)量、高產(chǎn)率和高生產(chǎn)效率[8]。在此過程中,須要對影響發(fā)酵過程的各種因素進行系統(tǒng)分析,包括外因(基于微生物反應(yīng)原理的培養(yǎng)環(huán)境優(yōu)化技術(shù))和內(nèi)因(基于代謝特性的分階段培養(yǎng)技術(shù))、外因定量化(基于動力學(xué)模型分析的優(yōu)化和控制技術(shù))和內(nèi)因定量化(基于代謝通量分析的過程優(yōu)化技術(shù))等,其中動力學(xué)模型和代謝通量分析還可以在優(yōu)化的基礎(chǔ)上對發(fā)酵過程進行預(yù)測和驗證[9]。

        體積氧傳遞系數(shù)KLa是發(fā)酵罐放大的重要參數(shù)之一,目前大多采用氧電極在動態(tài)下測定。由溶氧電極測得的響應(yīng)曲線使用傳遞函數(shù)法估算KLa,須要分別實測2條響應(yīng)曲線來定KLa,另須計算一階和二階導(dǎo)數(shù)[10]。在聚谷氨酸的生物發(fā)酵生產(chǎn)過程中,由于聚谷氨酸具有的高黏度的特性,導(dǎo)致了發(fā)酵液中后期黏度變大。聚谷氨酸發(fā)酵液的這種高黏度的特性給發(fā)酵過程中氧傳遞、氣液混合以及熱量傳遞等帶來了很大的困難,因此提高聚谷氨酸發(fā)酵中的氧傳遞系數(shù)這一問題也成了提高聚谷氨酸發(fā)酵水平的主要影響因素[11]。

        1材料與方法

        1.1菌種

        枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis C10),為筆者所在實驗室保存菌種。

        1.2培養(yǎng)基

        種子培養(yǎng)基:10 g/L蛋白胨,5 g/L牛肉膏,10 g/L葡萄糖,5 g/L NaCl,自然pH值;分為固體平面培養(yǎng)基(須加瓊脂粉20 g/L)和液體培養(yǎng)基。

        發(fā)酵培養(yǎng)基:60 g/L葡萄糖,18 g/L NHCl4,0.5 g/L MgSO4·7H2O,1.5 g/L KH2PO4,0.04 g/L FeCl3·6H2O,0.104 g/L MnSO4·H2O,0.11 g/L CaCl2,20 g/L檸檬酸鈉和20 g/L谷氨酸鈉。

        1.3發(fā)酵培養(yǎng)方法

        1.3.1菌種活化從甘油管中吸取50~200 μL菌液,稀釋后涂布于平板固體種子培養(yǎng)基上,于32 ℃培養(yǎng)24 h。

        1.3.2種子培養(yǎng)使用接種針從種子培養(yǎng)基平板挑取發(fā)育良好的單菌落接種于液體種子培養(yǎng)基上,裝液量為30 mL(250 mL搖瓶,下同),于32 ℃、200 r/min培養(yǎng)12~20 h。

        1.3.3發(fā)酵培養(yǎng)將準備好的種子菌液接種到發(fā)酵培養(yǎng)基中,接種量為10%,裝液量為30 mL,于32 ℃、200 r/min培養(yǎng)36~48 h。

        1.3.4發(fā)酵罐培養(yǎng)方法發(fā)酵在15 L發(fā)酵罐(SY-3000E,上海世遠生物設(shè)備工程有限公司)內(nèi)進行,裝液量8 L,基本培養(yǎng)基原位蒸汽滅菌115 ℃,20 min,加入單獨滅菌的檸檬酸鈉(20 g/L)、谷氨酸鈉(20 g/L)和NH4CL(18 g/L)溶液。種子D600 nm達到4以上時接入發(fā)酵罐,接種量8%~10%;溫度自動控制為32 ℃,通氣量400 L/h,攪拌轉(zhuǎn)速200~600 r/min。

        1.4生物量的測定

        細胞密度的測定:以水為空白對照,將培養(yǎng)液液稀釋后用Spectrumlab 22PC紫外/可見光分光光度計于600 nm處測定菌懸液的吸光度。調(diào)整稀釋倍數(shù)使分光光度計讀數(shù)在0.3~0.8之間。

        1.5發(fā)酵液中PGA產(chǎn)量的測定(稱重法)

        取10 mL發(fā)酵液,13 000 r/min離心30 min,去除菌體。取5 mL上清液,加入4倍體積甲醇,充分混合,置于4 ℃,30 min。8 000 r/min,10 min離心收集沉淀。棄去上清,沉淀在60 ℃烘干至恒質(zhì)量。將所用離心管精確稱質(zhì)量(萬分之一天平),沉淀烘干前后質(zhì)量相減,即得γ-PGA產(chǎn)量。

        1.6葡萄糖含量的測定

        采用DNS法進行測定[12]

        1.7氧傳遞系數(shù)KLa的測定

        1.7.1亞硫酸鹽法測定搖瓶體積氧傳遞系數(shù)將50 mL 0.4 mol/L 亞硫酸鈉溶液裝入250 mL的三角瓶中,滴入 1 mL Cu2+,取樣m1=2 mL移入裝有20 mL 0.05 mol/L的碘、碘化鉀溶液置于100 mL三角瓶中。

        然后將250 mL三角瓶上搖瓶機持續(xù)搖150 min后,再取樣m2=2 mL移入另一支裝有20 mL 0.05 mol/L碘、碘化鉀溶液的100 mL三角瓶中。endprint

        用0.025 mol/L硫代硫酸鈉標準液滴定,在樣品液顏色由深藍色變成淺藍色時,加入1%淀粉指示劑,繼續(xù)滴定至藍色褪去即為終點。

        1.7.2用動態(tài)法測發(fā)酵罐的氧傳遞系數(shù)在發(fā)酵穩(wěn)定后溶氧量(DO)穩(wěn)定下降的階段暫停通氣,并將攪拌暫停,根據(jù)培養(yǎng)液中溶氧量變化速率可以求出攝氧率。當液體的溶氧量下降到一定程度時(不應(yīng)低于臨界溶氧量)恢復(fù)通氣,則培養(yǎng)液中溶氧量逐漸升高,最后恢復(fù)到原先的水平[13]。

        動態(tài)法測定時,只需測定1個變量——溶氧量(C)隨時間的變化,因此對于安裝有快速響應(yīng)復(fù)膜氧電極的發(fā)酵罐,可以用記錄儀描繪的溶氧量變化曲線(圖1)非常方便地求出。

        2結(jié)果與分析

        2.1用亞硫酸鹽法測定搖瓶體積氧傳遞系數(shù)

        為了給發(fā)酵放大提供依據(jù),首先用亞硫酸鹽氧化法對250 mL錐形瓶溶氧性能進行測定。在裝液量相同(30 mL)的條件下,測定不同轉(zhuǎn)速下?lián)u瓶的體積氧傳遞系數(shù)。結(jié)果所示,在裝液量相同的情況下,轉(zhuǎn)速越高,KLa的值越高,但其增長速度變緩,產(chǎn)量的增加幅度也隨之變小。由表1可知,最合適的轉(zhuǎn)速為200 r/min,KLa的值為260 h-1左右。

        2.2動態(tài)法測定發(fā)酵罐的體積氧傳遞系數(shù)

        要將搖瓶中的各項優(yōu)化條件在大規(guī)模培養(yǎng)中完全重現(xiàn)是

        2.3.1轉(zhuǎn)速對產(chǎn)物γ-PGA產(chǎn)量的影響試驗中通過改變攪拌轉(zhuǎn)速控制不同的KLa值,從而達到控制發(fā)酵液的溶氧量水平。發(fā)現(xiàn)低溶氧量對發(fā)酵不利;隨著溶氧量的提高,聚谷氨酸的產(chǎn)量有明顯增長,發(fā)酵時間也進一步縮短。將KLa值控制在 250 h-1 左右時,發(fā)酵結(jié)果較好(表3)。

        2.3.4對底物葡萄糖消耗的影響葡萄糖作為聚谷氨酸發(fā)酵的碳源,其消耗曲線可以作為發(fā)酵過程的重要標志。低轉(zhuǎn)速(200、300 r/min)下,由于KLa值的低下供氧不足,菌體的生長緩慢,葡萄糖的消耗隨之放緩。把發(fā)酵時間延長至 48 h 結(jié)束時,200 r/min轉(zhuǎn)速下葡萄糖剩余接近2/3, 300 r/min 轉(zhuǎn)速

        下葡萄糖剩余接近1/2。在400 r/min轉(zhuǎn)速下,隨著KLa值的升高,發(fā)酵36 h結(jié)束時,葡萄糖剩余僅剩 1/3。而在KLa接近250 h-1(轉(zhuǎn)速為500、600 r/min)時,葡萄糖在發(fā)酵30 h時,接近消耗殆盡(圖4)。葡萄糖的消耗變化曲線從另一方面反映了KLa對發(fā)酵的重大影響。

        3結(jié)論

        本試驗進行了聚谷氨酸發(fā)酵過程中有關(guān)供氧條件的研究。結(jié)果表明,在最合適的轉(zhuǎn)速200 r/min下,KLa的最適值為260 h-1左右。在發(fā)酵罐進行放大培養(yǎng)以后,得到最合適的發(fā)酵罐轉(zhuǎn)速為500 r/min,此時KLa的最適值為250 h-1左右,兩者經(jīng)過相互驗證,證明在提高轉(zhuǎn)速的情況下,KLa和產(chǎn)物γ-PGA的增長都極為有限。本研究為后期改良發(fā)酵條件來提高γ-PGA產(chǎn)量奠定了良好基礎(chǔ),但是在此基礎(chǔ)上從錐形瓶的30 mL擴大到發(fā)酵罐的8 L培養(yǎng)體系的過程中,發(fā)酵罐產(chǎn)量只有錐形瓶產(chǎn)量的60%左右,還有進一步提升的空間。今后,將研究其他發(fā)酵條件對聚谷氨酸的產(chǎn)量影響的工作。

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        doi:10.15889/j.issn.1002-1302.2017.17.075endprint

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