葛宇新,張洋,田振華,于源華,郭瑞,張昊
(1.長(zhǎng)春理工大學(xué) 校醫(yī)院,長(zhǎng)春 130022;2.長(zhǎng)春理工大學(xué) 生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院,長(zhǎng)春 130022)
基于碳點(diǎn)標(biāo)記的(1-3)-β-D葡聚糖的熒光檢測(cè)方法
葛宇新1,張洋2,田振華2,于源華2,郭瑞2,張昊2
(1.長(zhǎng)春理工大學(xué) 校醫(yī)院,長(zhǎng)春 130022;2.長(zhǎng)春理工大學(xué) 生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院,長(zhǎng)春 130022)
血清中(1,3)-β-D葡聚糖(βG)的含量已經(jīng)成為臨床上檢測(cè)侵襲性真菌感染的指標(biāo),利用原核表達(dá)并純化獲得能夠與βG特異性結(jié)合的美洲鱟屬G因子α亞基片段a(Gαa)蛋白,將Gαa蛋白與碳點(diǎn)偶聯(lián)獲得生物熒光傳感器“碳點(diǎn)/Gαa蛋白”,建立基于碳點(diǎn)標(biāo)記的βG熒光檢測(cè)方法。經(jīng)測(cè)定該傳感器的最佳的激發(fā)波長(zhǎng)為360nm,其發(fā)射波長(zhǎng)為470nm,且熒光強(qiáng)度與βG濃度呈正線性相關(guān),該檢測(cè)方法線性范圍是9.375~150pg/mL,最低檢測(cè)限為9.375pg/mL,批間、批內(nèi)精密度均不小于5%,準(zhǔn)確度(回收率)在97%~102%之間,該方法靈敏、快速、成本低,具有廣闊的應(yīng)用前景。
(1,3)-β-D葡聚糖;美洲鱟屬G因子α亞基片段a特異性蛋白;碳量子點(diǎn);真菌感染
近三十年來,隨著器官移植、腫瘤化療、免疫抑制劑使用、創(chuàng)傷性醫(yī)療操作等的不斷增多,侵襲性真菌感染(invasive fungal infection,IFI)的發(fā)病率和病死率顯著上升。美國(guó)非艾滋病患者中致死性真菌感染的發(fā)病率逐年上升[1]。
真菌的細(xì)胞壁主要成分為(1,3)-β-D葡聚糖(βG)。當(dāng)真菌進(jìn)入人體血液或深部組織后,經(jīng)吞噬細(xì)胞的吞噬、消化等處理,βG從胞壁中釋放出來,使血液及其它體液中βG含量增高。在臨床上,正常人體血液中的(1,3)-β-D葡聚糖含量應(yīng)小于10pg/mL,若含量大于20pg/mL,可診斷此病人患有侵襲性真菌感染,當(dāng)含量在10pg/mL與20pg/mL之間,表明該檢驗(yàn)品有(1,3)-β-D葡聚糖存在,此人存在被侵襲性真菌感染的危險(xiǎn)[2,3]。生物標(biāo)志物(G和GM試驗(yàn))分別被列入真菌診斷和治療的指南,歐洲癌癥治療研究組織和美國(guó)國(guó)家過敏癥與傳染病研究所霉菌病研究組批準(zhǔn)用于真菌診斷[4]。因此對(duì)βG進(jìn)行測(cè)定,實(shí)現(xiàn)真菌感染的早期診斷并對(duì)檢測(cè)結(jié)果為陽性的患者及時(shí)進(jìn)行治療,是提高患者生存質(zhì)量的關(guān)鍵[5-6]。
國(guó)內(nèi)外關(guān)于檢測(cè)真菌(1,3)-β-D葡聚糖的方法主要為鱟試劑法:鱟試劑(鱟的血細(xì)胞提取物)在1983年首先收載于美國(guó)藥典。Fungitec-G glucan試劑主要成分是東方鱟的細(xì)胞裂解產(chǎn)物,其判斷標(biāo)準(zhǔn)為 20ng/L[7];而 Glcatell試劑則使用美洲鱟的細(xì)胞裂解產(chǎn)物作為主要原料,使用的判斷標(biāo)準(zhǔn)為60ng/L[8-9]。這種檢測(cè)方法靈敏度很高,但是鱟血屬于天然材料,易出現(xiàn)資源的枯竭,目前在某些地區(qū)鱟已經(jīng)被列為二級(jí)保護(hù)動(dòng)物。由于鱟試劑的成本比較高,且需對(duì)樣品進(jìn)行前處理,測(cè)定時(shí)間長(zhǎng)[10-11]。因此建立靈敏、簡(jiǎn)便、低成本檢測(cè)(1,3)-β-D葡聚糖的測(cè)定方法,對(duì)真菌感染早期診斷、治療效果和康復(fù)判斷具有重大意義。
近年來,熒光碳點(diǎn)(CDs)以高穩(wěn)定性、低毒性、低成本的優(yōu)勢(shì),在各種生物檢測(cè)領(lǐng)域里起到很大的作用,熒光碳點(diǎn)具有獨(dú)特的性質(zhì),碳點(diǎn)在特定的激發(fā)波長(zhǎng)下會(huì)產(chǎn)生熒光,這種熒光在碳點(diǎn)與其他物質(zhì)結(jié)合后會(huì)隨著所加的物質(zhì)濃度的上升而出現(xiàn)熒光峰值的上升或是下降,或者熒光峰值會(huì)出現(xiàn)藍(lán)移或紅移[12-14]。研究這種現(xiàn)象的規(guī)律與檢測(cè)所加物質(zhì)濃度呈一定的關(guān)系,從而通過此規(guī)律達(dá)到對(duì)待檢測(cè)物未知濃度的檢測(cè)。
碳量子點(diǎn)因其粒徑小(1-10nm),從而具有獨(dú)特優(yōu)越的光學(xué)、電子和表面可修飾性等性質(zhì),已成為納米生物光子學(xué)領(lǐng)域的新貴,被廣泛應(yīng)用在生物標(biāo)記領(lǐng)域。高質(zhì)量的碳量子點(diǎn)溶液具備以下特點(diǎn):廣泛的尺寸范圍、較窄的尺寸分布、良好的穩(wěn)定性以及高熒光性。
通過鱟試劑可以檢測(cè)真菌感染,表示鱟血中存在某種特異性蛋白可以與真菌細(xì)胞壁的βG結(jié)合,因此在基因組文庫中篩選出能夠與βG特異性結(jié)合的蛋白質(zhì)基因序列,利用基因重組技術(shù),克隆該段基因,通過原核大量表達(dá)Gαa蛋白,過親和層析Ni柱純化蛋白,得到高純度蛋白質(zhì)可以與碳點(diǎn)通過脫水縮合反應(yīng)結(jié)合,構(gòu)建生物熒光傳感器,用于檢測(cè)樣品中(1,3)-β-D葡聚糖的含量。當(dāng)特異性蛋白質(zhì)與碳點(diǎn)結(jié)合物濃度固定時(shí),樣品的熒光值的增加量在一定范圍內(nèi)與樣品所含βG量呈正相關(guān)。
本實(shí)驗(yàn)用的實(shí)驗(yàn)儀器包括:Synergy2熒光酶標(biāo)儀(美國(guó)BioTek公司);96孔微孔黑板(美國(guó)Corning公司);RF-5301PC熒光分光光度計(jì)(日本島津公司);HZQ-F160全溫振蕩培養(yǎng)箱(哈東聯(lián)公司);Tecnai G2 20透射電鏡(美國(guó)FEI公司)。
本實(shí)驗(yàn)用的實(shí)驗(yàn)試劑包括:工程菌E.coli BL21-pET-15b-Gαa(上海生物工程有限公司構(gòu)建);氨基修飾的碳點(diǎn)(蘇州大學(xué)贈(zèng)予);(1,3)-β-D葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)品(購自上海源葉生物有限公司);IPTG、N-乙基-N’-(3-二甲基氨丙基)碳二亞胺鹽酸鹽(EDC)(購自Sigma-Aldrich);其余試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。
根據(jù)GenBank:AB547712.1上登記的美洲鱟屬G因子α亞基片段a(Gαa)的基因序列,大小是1251bp,合成 BL21-pET-15b-Gαa的工程菌。將含有重組質(zhì)粒的E.coli BL21菌株接種到LB液體培養(yǎng)液中表達(dá),表達(dá)條件是20℃,160rpm,LB培養(yǎng)基中加入IPTG至終濃度為1mM,培養(yǎng)48小時(shí)。培養(yǎng)后,將培養(yǎng)液進(jìn)行離心分離,回收所得的沉淀物(菌體)。將沉淀物用PBS洗滌2次,然后用NPI-1(PBS,含有咪唑1 mmol/L,pH 7.4)重懸菌體,加入溶菌酶,通過反復(fù)凍融和超聲破碎,離心取上清。過Ni柱時(shí)按照上海悅克生物科技有限公司的Ni-NTA親和層析柱的說明書純化目的蛋白,進(jìn)行SDS-PAGE凝膠電泳檢測(cè)。
用透射電鏡掃描碳點(diǎn),觀察碳點(diǎn)的形貌和大小。
用熒光分光光度計(jì),檢測(cè)1mL的碳點(diǎn),在不同的激發(fā)波長(zhǎng)下,觀察熒光光譜的變化,最終找到規(guī)律并選出最佳的激發(fā)波長(zhǎng)。
將碳點(diǎn)按照體積梯度稀釋,在紫外照射下用肉眼觀察樣品熒光光強(qiáng)的變化。用熒光分光光度計(jì),輸入最佳的激發(fā)波長(zhǎng),得到的熒光峰值,用峰值繪制曲線,研究熒光碳點(diǎn)的水溶性和均一性。
用紫外可見分光光度計(jì)測(cè)量蛋白的濃度,用PBS緩沖溶液配制Gαa蛋白濃度為2.0mg/mL,用量6mL,加入5μL的EDC,在37℃下反應(yīng)30min,活化蛋白中的-COOH。用超濾離心管離心,將多余的EDC除去,然后加入2mL的碳點(diǎn)(-NH4修飾),37℃下反應(yīng)3h,制備成檢測(cè)真菌感染時(shí)(1,3)-β-D葡聚糖含量的生物熒光傳感器。
檢測(cè)原理是,利用碳點(diǎn)上帶有的-NH4與Gαa蛋白中-COOH發(fā)生脫水縮合反應(yīng),即將Gαa蛋白連在碳點(diǎn)上;加入待檢測(cè)物(1,3)-β-D葡聚糖,βG可與Gαa蛋白特異性氨基酸序列結(jié)合,從而進(jìn)一步增加碳點(diǎn)的的體積;而碳點(diǎn)的熒光強(qiáng)度會(huì)隨著待測(cè)物濃度的上升而出現(xiàn)熒光峰值上升的現(xiàn)象。通過分析熒光峰值上升程度與βG濃度之間關(guān)系,可以獲得βG檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)曲線,進(jìn)而可以檢測(cè)溶液中的Gαa蛋白濃度。
為了保證碳點(diǎn)熒光的穩(wěn)定性,研究在不同溫度、反應(yīng)時(shí)間、pH值和在25mM Mg2+用量條件下對(duì)反應(yīng)的影響,根據(jù)反應(yīng)曲線最終確定最佳反應(yīng)條件。
在96孔黑板中加入200μL生物熒光傳感器和30μL用蒸餾水梯度稀釋的(1,3)-β-D葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)品,加入6μL Mg2+,在溫度37℃下反應(yīng)10min,放入熒光酶標(biāo)儀中,輸入最佳激發(fā)波長(zhǎng)和檢測(cè)參數(shù),檢測(cè)熒光強(qiáng)度。設(shè)定含有(1,3)-β-D葡聚糖的樣品熒光光強(qiáng)與空白對(duì)照熒光光強(qiáng)之差為傳感器響應(yīng)值(熒光值),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
對(duì)所建立的方法進(jìn)行了批間、批內(nèi)精密度實(shí)驗(yàn)、準(zhǔn)確度(回收率)實(shí)驗(yàn)和穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)。
對(duì)重組工程菌采用IPTG誘導(dǎo),使其表達(dá)Gαa蛋白,過Ni柱純化蛋白,向Ni柱中依次加入,BL21-pET-15b-Gαa總蛋白、NPI-1、NPI-20(PBS,含有咪唑 20mmol/L,pH 7.4)、NPI-30(PBS,含有咪唑 30mmol/L,pH 7.4)和 NPI-200(PBS,含有咪唑200mmol/L,pH 7.4),收集流出樣,經(jīng)過SDS-PAGE鑒定,結(jié)果如蛋白電泳圖1所示,6號(hào)條帶為純化后的Gαa蛋白,純化產(chǎn)物在約40kDa處有一條明顯表達(dá)帶,與預(yù)期蛋白分子量相符,Gene Tools軟件分析結(jié)果顯示純化后Gαa蛋白含量達(dá)到85%。
圖1 Gαa蛋白誘導(dǎo)表達(dá)及純化SDS-PAGE電泳
用透射電鏡掃描碳點(diǎn),結(jié)果如圖2所示,得到其大小在1nm-10nm之間,符合正態(tài)分布,碳點(diǎn)的大小居中在5nm。說明該氨基修飾碳點(diǎn)均一性較好,可用于后續(xù)試驗(yàn)。
圖2 TEM對(duì)碳點(diǎn)的表征
用熒光分光光度計(jì)檢測(cè)碳點(diǎn)在不同激發(fā)波長(zhǎng)340nm~400nm下的熒光光譜變化,最終找到最佳的激光波段,如圖3所示,在360nm波長(zhǎng)的激發(fā)下,熒光發(fā)射光強(qiáng)在430nm時(shí)可達(dá)到最高值。當(dāng)激發(fā)波長(zhǎng)發(fā)生變化時(shí),碳點(diǎn)的熒光光譜出現(xiàn)了紅移或是藍(lán)移現(xiàn)象,熒光峰值也隨之變化。
圖3 在不同波長(zhǎng)激發(fā)下的熒光光譜
將碳點(diǎn)用蒸餾水進(jìn)行5次稀釋,稀釋比例分別為1、1∶2、1∶4、1∶8、1∶16、1∶32。對(duì)溶液進(jìn)行紫外光照射,觀察溶液發(fā)射的熒光光強(qiáng)變化,如圖4左上方所示,碳點(diǎn)在紫外光下照射發(fā)出藍(lán)色的熒光,熒光光強(qiáng)隨著碳點(diǎn)的梯度稀釋而減弱。
用熒光分光光度計(jì),檢測(cè)不同濃度的碳點(diǎn),在檢測(cè)儀器中輸入最佳激發(fā)波長(zhǎng)360nm,檢測(cè)熒光光強(qiáng)的峰值并繪制曲線。如圖4所示,X軸為碳點(diǎn)的相對(duì)濃度,Y軸為最高熒光強(qiáng)度值,曲線R2=0.999,說明碳點(diǎn)的水溶性和均一性良好。
圖4 不同濃度碳點(diǎn)的熒光強(qiáng)度變化
碳點(diǎn)-Gαa蛋白熒光生物傳感器檢測(cè)(1,3)-β-D葡聚糖原理如圖5所示,氨基修飾碳點(diǎn)與Gαa蛋白羧基進(jìn)行脫水縮合反應(yīng),合成熒光生物傳感器,該傳感器上的蛋白質(zhì)可與待檢測(cè)樣品中βG特異性結(jié)合,待反應(yīng)結(jié)束后熒光傳感器在激發(fā)光波長(zhǎng)為360nm處進(jìn)行激發(fā),檢測(cè)發(fā)射光熒光光譜。結(jié)果顯示在470nm處出現(xiàn)峰值,且隨著βG濃度增加,熒光光譜峰值也隨之增加。
圖5 實(shí)驗(yàn)原理
圖6 反應(yīng)條件的研究
對(duì)不同溫度、pH值、反應(yīng)時(shí)間、和25mM Mg2+的用量對(duì)實(shí)驗(yàn)反應(yīng)數(shù)據(jù)的影響進(jìn)行了實(shí)驗(yàn)摸索。結(jié)果如圖6所示,圖6(a)為對(duì)反應(yīng)溫度的摸索,當(dāng)溫度從10℃增加到60℃時(shí),可知37℃為最佳反應(yīng)溫度;圖6(b)為對(duì)溶液pH的摸索,溶液pH值在4~9的反應(yīng)體系時(shí),可知偏中性pH=6.8為最佳反應(yīng)pH;圖6(c)為對(duì)反應(yīng)時(shí)間的摸索,當(dāng)時(shí)間從0min增加到60min時(shí),從圖可知10min為最佳反應(yīng)時(shí)間;圖6(d)為25mM Mg2+的用量摸索,當(dāng)用量從0μL增加到12μL時(shí),從圖可知6μL為最佳反應(yīng)用量。
在黑色的酶標(biāo)板中加入200μL生物熒光傳感器和30μL用蒸餾水稀釋的βG,加入6μL的25mM Mg2+,在溫度37℃下反應(yīng)10min,用熒光酶標(biāo)儀在360nm激發(fā),470nm檢測(cè)溶液發(fā)射的熒光光強(qiáng)。將測(cè)得的熒光值繪制成標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果如圖7所示,X軸為βG濃度,Y軸為實(shí)測(cè)熒光值減去空白熒光值,線性范圍是9.375-150pg/mL。對(duì)βG標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行梯度稀釋進(jìn)行檢測(cè),測(cè)得最低檢測(cè)限為9.375pg/mL。
圖7 不同濃度的βG在生物熒光傳感器中的熒光強(qiáng)度
做5組平行實(shí)驗(yàn),對(duì)所建立的方法進(jìn)行了批間、批內(nèi)精密度、準(zhǔn)確度(回收率)和穩(wěn)定性測(cè)定。結(jié)果如表1所示,批間和批內(nèi)的變異系數(shù)均小于5%,準(zhǔn)確度(回收率)在97%~102%之間,在7天內(nèi),生物熒光傳感器保持穩(wěn)定。
表1 實(shí)驗(yàn)方法學(xué)的評(píng)估
本文表達(dá)了與(1,3)-β-D葡聚糖特異性結(jié)合的美洲鱟G因子α亞基片段a(Gαa)蛋白,蛋白質(zhì)量為40kDa,濃度為2mg/mL。氨基化修飾碳點(diǎn)平均直徑5nm,具有良好的水溶性和均一性。文中采用EDC/NHS氨基與羧基脫水縮合反應(yīng),將Gαa蛋白與碳點(diǎn)偶聯(lián),構(gòu)建了定量檢測(cè)(1,3)-β-D葡聚糖的生物熒光傳感器,并對(duì)該熒光檢測(cè)方法進(jìn)行優(yōu)化,熒光強(qiáng)度與(1,3)-β-D葡聚糖濃度呈正線性相關(guān),檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)曲線y=10.697x+148.52,R2=0.993,檢測(cè)下限9.375pg/mL。該方法批間和批內(nèi)變異系數(shù)CV均小于5%,準(zhǔn)確度(回收率)在97%~102%之間。
市售βG測(cè)定試劑盒均采用天然鱟血作為檢測(cè)試劑,鱟屬于二級(jí)保護(hù)動(dòng)物,因此該方法不僅成本高,而且易出現(xiàn)資源枯竭,長(zhǎng)期將對(duì)生態(tài)環(huán)境的穩(wěn)定造成破壞。本文原核表達(dá)了(1,3)-β-D葡聚糖特異性結(jié)合美洲鱟G因子α亞基片段a(Gαa)蛋白,與氨基化碳點(diǎn)偶聯(lián),建立了熒光傳感檢測(cè)方法,能夠?qū)崿F(xiàn)(1,3)-β-D葡聚糖的定量檢測(cè),無需采集天然珍惜鱟血作為試劑,在降低檢測(cè)成本的同時(shí),保護(hù)了野生生物資源。采用酶標(biāo)板可以實(shí)現(xiàn)高通量96個(gè)樣本的檢測(cè),節(jié)約大量人力物力。本方法對(duì)(1,3)-β-D葡聚糖的檢測(cè)下限為9.375pg/mL,優(yōu)于市售(1,3)-β-D葡聚糖測(cè)定試劑盒的11pg/mL,達(dá)到國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)。因此,建立的生物熒光傳感器定量檢測(cè)(1,3)-β-D葡聚糖的方法具有高靈敏、高特異性、快速、高通量、低成本的特點(diǎn),具有廣泛的應(yīng)用價(jià)值。
[1]Liao WQ,Gu JL.Current situation of and countermeasures to antifungal agent resistance[J].Pharmaceutical Care and Research,2006(3):917-922.
[2]田振華.(1,3)-β-D葡聚糖的檢測(cè)方法學(xué)研究[D].長(zhǎng)春:長(zhǎng)春理工大學(xué),2016.
[3]De Pauw B,Walsh TJ,Donnelly JP,et al.Revised definitions of invasive fungal disease from the European organization for research and treatment of cancer/invasive fungalinfectionscooperative group and the national institute of allergy and infectious diseases mycoses study group[J].Consensus Group.Clin Infect Dis,2008(46):1813-1821.
[4]Kedzierska A,KochanP,Pietrzyk A,et al.Current status of fungal cell wall components in the immunodiagnostics of invasive fungal infections in humans:galactomannan,mannan and(1→3)-β-D-glucan antigens[J].Eur J Clin Microbiol Infect Dis,2007(26):755-766.
[5]Odabasi Z,Mattiuzzi G,Estey E.Beta-D-glucan as a diagnostic adjunct for invasive fungal infections:validation,cutoff development,and performance in patients with acute myelogenous leukemia and myelodysplastic syndrome[J].Clin Infect Dis,2004,39(2):199-205.
[6]Mokaddas E,Khan Z U,Ahmad S,et al.Value of(1-3)-beta-glucan,candida mamman and candida DNA detection in the diagnosis of candidaemia[J].ClinMicrobiol Infect,2011,17(10):1549-1553.
[7]Shimizu A,Oka H,Matsuda T,et al.(1-3)-betaglucan is a diagnostic and negative prognostic marker for pneumocystis carinii pneumonia in patients with connective tissue disease[J].ClinExpRheumatol,2005,23(5):678-680.
[8]Persat F,Ranque S,Derouin F,et al.Contribution of the(1-3)-beta-glucan assay for diagnosis of incasive fungal infections[J].ClinMicrobiol,2008,46(3):1009-1013.
[9]Pickering JM,Sant HW,Bowles C A,et al.Evaluation of a(1-3)-beta-glucan assay for diagnosis of invasive fungal infections[J].ClinMicrobiol,2005,43(12):5957-5962.
[10]Weng ZH,Hong SG.The Distribution and Habit of Horseshoe Crabs[J].Chinese Journal of Zoology,2001(05):621-626.
[11]金剛,蔡國(guó)平.中國(guó)鱟血細(xì)胞原代培養(yǎng)及部分生物學(xué)現(xiàn)象觀察[J].水生生物學(xué)報(bào),2008,32(5):770-773.
[12]Manman Yang,Hao Li,Juan Liu,et al.Convenient and sensitive detection of norfloxacin with fluorescent carbon dots[J].Journal of Materials Chemistry B,2014(2):7964-7970.
[13]Hao Li,Weiqian Kong,Juan Liu,et al.Carbon dots for photoswitching enzyme catalytic activity[J].Journal of Materials Chemistry B,2014(2):5652-5658.
[14]Hao Li,Juan Liu,Manman Yang,et al.Highly sensitive,stable,and precise detection of dopamine with carbon dots/tyrosinase hybrid as fluorescent probe[J].RSC Advances,2014(4):46437-46443.
A High Selective and Specific Fluorescent Test Method for The Detection of(1,3)-β-D-Glucan
GE Yuxin1,ZHANG Yang2,TIAN Zhenhua2,YU Yuanhua2,GUO Rui2,ZHANG Hao2
(1.Hospital of Changchun University of Science and Technology,Changchun 130022;2.School of Life Science and Technology,Changchun University of Science and Technology,Changchun 130022)
The concentration of(1,3)-beta-D glucan(βG)in human serum is a clinical testing index of invasive fungal infection,a beta-glucan binding protein of horseshoe crab(limulus polyphemus)factor G-subunit α fragment-a(Gαa)was expressed in Escherichia coli BL21,Coupling of amination retouching carbon dots with G protein and establishing a“carbon dots/Gαa protein”fluorescent sensor for βG detection.The sensor excitation wavelength was 360 nm,emission wavelength was 460nm.The fluorescent and the concentration of βG were a positive linear correlation.,the detection range was 9.375~150pg/mL,the limit of detection was 9.375 pg/mL.The CV values within batch and between batches were all less than 5%,accuracy(recovery) were between 97%~102%.The novel fluorescent sensor for the detection of βG was low cost,rapid,high selective,sensitivity and specificity.
(1,3)-β-D-glucan;Gαa protein;carbon dots;fungus.
O613.71
A
1672-9870(2017)04-0133-05
2017-04-17
吉林省科技廳資助項(xiàng)目(20140309013YY)
葛宇新(1971-),女,本科,主管護(hù)士,E-mail:837349751@qq.com