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        核桃殼中酚酸的提取及含量測定

        2017-10-16 15:09:27劉麗金周萍
        食品研究與開發(fā) 2017年20期
        關(guān)鍵詞:核桃殼硫酸鈉無水乙醇

        劉麗金,周萍

        (大理大學(xué)藥學(xué)與化學(xué)學(xué)院,云南大理671000)

        核桃殼中酚酸的提取及含量測定

        劉麗金,周萍*

        (大理大學(xué)藥學(xué)與化學(xué)學(xué)院,云南大理671000)

        采用單因素試驗(yàn)和正交設(shè)計(jì)對回流提取核桃殼中酚酸的工藝進(jìn)行優(yōu)化,以酚酸提取率為參考指標(biāo),考察乙醇濃度、提取溫度、提取時間、料液比對酚酸提取率的影響并采用普魯士蘭法測定不同產(chǎn)地核桃殼樣品中酚酸含量。結(jié)果表明,核桃殼中酚酸的最佳提取工藝條件為:30%乙醇,提取溫度80℃,提取時間60min,料液比為1∶21(g/mL);不同產(chǎn)地核桃殼樣品中酚酸含量存在差異,核桃殼樣品中酚酸平均含量為0.679%。

        核桃殼;酚酸;提??;含量測定

        Abstract:To optimize the extraction process of phenolic acids from Walnut shell,ethanol concentration,extracting temperature,extracting time,solid-liquid ratio were determinated by the single-factor experiment and orthogonal design,using the extracte rate of phenolic acids as index.Results showed that he optimum conditions were ethanol concentration 30%,extraction temperature 80℃,extraction time 60 min,solid-liquid ratio 1∶21(g/mL).The contents of phenolic acids in Walnut shell.from different sources were different.And the average content of phenolic acids was 0.679%.

        Key words:Walnut shell;phenolic acid;extraction;content determination

        核桃(JugLans regia L.)又名胡桃,素有“長壽之果”、“健腦之果”、“美容之果”的美稱[1]。核桃殼是核桃取仁后的外殼,民間可用于治療口腔潰瘍[2]、胃潰瘍[3]?,F(xiàn)代研究發(fā)現(xiàn)核桃殼中含有酚酸類[4]、黃酮類[5]、苷類等多種活性物質(zhì),具有抗氧化[6-7]、抗菌[8]、降脂、抗腫瘤[9-10]等藥理活性。目前關(guān)于核桃殼研究的報(bào)道,主要涉及核桃殼中的化學(xué)成分研究[11-13]、糖類的含量測定[14-15]、黃酮提取[16-17]、棕色素研究[18-19]和活性炭制備[20]等方面,有關(guān)核桃殼中酚酸類物質(zhì)的研究報(bào)道較少。酚酸類物質(zhì)具有抗氧化、抗腫瘤、抑菌、減肥、護(hù)肝、提高免疫力、改善情緒、抗炎、抗病毒和保護(hù)心血管等多種生物活性[21],具有較高的研究價值。本試驗(yàn)采用加熱回流提取的方法,優(yōu)化核桃殼中酚酸的提取工藝,測定并比較不同產(chǎn)地核桃殼中酚酸含量,以期為核桃廢棄資源的合理開發(fā)利用提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 儀器與材料

        核桃殼:采自云南省大理州,核桃取仁后自然風(fēng)干,經(jīng)鑒定為胡桃科核桃屬植物核桃(JugLans regia L.)的殼,粉碎過60目篩,根據(jù)來源不同依次編號為1#~16#。

        沒食子酸對照品(批號MUST-13040103,純度>98%):成都曼思特生物科技有限公司;無水乙醇、濃鹽酸、十二烷基硫酸鈉、三氯化鐵、鐵氰化鉀等均為分析純。

        TU-1901雙光束紫外分光光度計(jì):北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;UV-5500紫外可見分光光度計(jì):上海元析儀器有限公司;FA2004N電子天平:上海精密科學(xué)儀器有限公司;DZKW-4雙孔電子恒溫水浴鍋:上??莆鰧?shí)驗(yàn)儀器廠;SB-25-12DT超聲波清洗機(jī):寧波新芝生物科技股份有限公司。

        1.2 方法

        1.2.1 溶液的配制

        沒食子酸對照品溶液:精密稱取干燥至恒重的沒食子酸對照品適量,加蒸餾水溶解制成濃度為2.56 mg/mL的沒食子酸對照品儲備液。取1 mL沒食子酸對照品儲備液至100 mL容量瓶中,加蒸餾水定容至刻度,即得濃度為0.025 6 mg/mL的沒食子酸對照品溶液。

        樣品溶液:精密稱取樣品約0.5 g,按料液比為1∶21(g/mL)加入 30%乙醇,80℃回流提取 60 min,過濾,濾液轉(zhuǎn)移至100 mL容量瓶中,用蒸餾水定容至刻度,即得。

        1.2.2 最大吸收波長的選擇

        精密移取酚酸樣品溶液1.0 mL和沒食子酸對照品溶液1.0 mL,分別置于25 mL容量瓶中,加無水乙醇5.0 mL;0.3%十二烷基硫酸鈉溶液2.0 mL,0.6%FeCl3-0.9%K3[Fe(CN)4]溶液 1.0 mL,暗處放置 20 min 后用0.1 mol/L的鹽酸溶液定容至刻度。以相應(yīng)顯色劑為空白,于500 nm~900 nm波長范圍內(nèi)掃描,結(jié)果顯示,沒食子酸對照品溶液和酚酸樣品溶液均在729 nm波長處有最大吸收,所以選擇729 nm為測定波長。

        1.2.3 最佳顯色條件的確定

        1.2.3.1 無水乙醇用量的考察

        精密移取沒食子酸對照品溶液0.5 mL于25 mL容量瓶中,平行7份,分別加入無水乙醇1.0、2.0、3.0、4.0、5.0、6.0、7.0 mL后,依次加入0.3%十二烷基硫酸鈉溶液 2.0 mL,0.6%FeCl3-0.9%K3[Fe(CN)4]溶液1.0 mL,暗處放置20 min后用0.1 mol/L的鹽酸溶液定容至刻度,以相應(yīng)顯色劑為空白,于729 nm波長處測吸光度。

        1.2.3.2 0.3%十二烷基硫酸鈉溶液用量的考察

        精密移取沒食子酸對照品溶液0.5 mL于25 mL容量瓶中,平行6份,加入無水乙醇5.0 mL后,分別加入 0.3%十二烷基硫酸鈉溶液 0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0 mL,0.6%FeCl3-0.9%K3[Fe(CN)4]溶液 1.0 mL,暗處放置20 min后用0.1 mol/L的鹽酸溶液定容至刻度,以相應(yīng)顯色劑為空白,于729 nm波長處測吸光度。

        1.2.3.3 0.6%FeCl3-0.9%K3[Fe(CN)4]混合溶液用量的考察

        精密移取沒食子酸對照品溶液0.5 mL于25 mL容量瓶中,平行6份,加入無水乙醇5.0 mL,0.3%十二烷基硫酸鈉溶液1.5 mL后,分別加入0.6%FeCl3-0.9%K3[Fe(CN)4]混合溶液 0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0 mL,暗處放置20 min后用0.1 mol/L的鹽酸溶液定容至刻度,以相應(yīng)顯色劑為空白,于729 nm波長處測吸光度。

        1.2.3.4 暗處放置時間考察

        精密移取沒食子酸對照品溶液0.5 mL于25 mL容量瓶中,平行7份,加入無水乙醇5.0 mL,0.3%十二烷基硫酸鈉溶液 1.5 mL,0.6%FeCl3-0.9%K3[Fe(CN)4]混合溶液 2.0 mL,分別在暗處放置 0、10、20、30、40、50、60 min,用0.1 mol/L的鹽酸溶液定容至刻度,以相應(yīng)顯色劑為空白,于729 nm波長處測吸光度。

        1.2.4 酚酸提取單因素試驗(yàn)

        1.2.4.1 乙醇濃度對酚酸提取率的影響

        精密稱取1#樣品6份,每份約0.5 g,分別加入20%、30%、40%、50%、60%、70%的乙醇溶液30.0 mL,70℃加熱回流40 min,過濾,濾液用蒸餾水定容至100 mL,每份精密移取0.3 mL按“1.2.3”確定的最佳顯色條件顯色,于729 nm波長處測吸光度,計(jì)算酚酸提取率。

        1.2.4.2 提取溫度對酚酸提取率的影響

        精密稱取1#樣品6份,每份約0.5 g,加入40%乙醇 30.0 mL,分別于 40、50、60、70、80、90 ℃加熱回流40 min,過濾,濾液用蒸餾水定容至100 mL,每份精密移取0.3 mL按“1.2.3”確定的最佳顯色條件顯色,于729 nm波長測定吸光度,計(jì)算酚酸提取率。

        1.2.4.3 提取時間對酚酸提取率的影響

        精密稱取1#樣品6份,每份約0.5 g,加入40%乙醇 30.0 mL,分別于 80 ℃加熱回流 30、40、50、60、70 min后過濾,濾液用蒸餾水定容至100 mL,每份精密移取0.3 mL按“1.2.3”確定的最佳顯色條件顯色,于729 nm波長測定吸光度,計(jì)算酚酸提取率。

        1.2.4.4 料液比對酚酸提取率的影響

        精密稱取1#樣品8份,每份約0.5 g,分別按照料液比為 1∶3、1∶6、1∶9、1∶12、1∶15、1∶18、1∶21、1∶24(g/mL)加入 40%乙醇,80℃加熱回流 50 min后過濾,濾液用蒸餾水定容至100 mL,每份精密移取0.3 mL按“1.2.3”確定的最佳顯色條件顯色,于729 nm波長測定吸光度,計(jì)算酚酸提取率。

        1.2.5 酚酸提取正交試驗(yàn)

        結(jié)合單因素試驗(yàn)結(jié)果,以乙醇濃度、提取時間、提取溫度、料液比為影響因素,分別選3個水平進(jìn)行正交試驗(yàn),以酚酸提取率為指標(biāo),確定酚酸提取的最佳工藝條件。

        1.2.6 方法學(xué)考察

        1.2.6.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

        精密移取沒食子酸對照品溶液 0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL置25 mL容量瓶中,按“1.2.3”確定的最佳顯色條件顯色,于729 nm波長下測吸光度,以吸光度(Y)為縱坐標(biāo),質(zhì)量濃度(C)為橫坐標(biāo),進(jìn)行線性回歸分析。

        1.2.6.2 儀器精密度試驗(yàn)

        精密移取沒食子酸對照品溶液0.5 mL,按“1.2.3”確定的最佳顯色條件顯色,于729 nm波長處測定吸光度,連續(xù)測6次,計(jì)算RSD值。

        1.2.6.3 重復(fù)性試驗(yàn)

        精密稱取1#樣品6份,每份約0.5 g,按“1.2.1”項(xiàng)下方法制備樣品溶液,按“1.2.3”確定的最佳顯色條件顯色,在729 nm波長下測定吸光度,計(jì)算樣品中酚酸含量,計(jì)算RSD值。

        1.2.6.4 加樣回收率試驗(yàn)

        精密稱取已知酚酸含量(1.328%)的1#樣品9份,每份約0.5 g,分別按照對照品加入量與所取供試品中被測物質(zhì)含量之比約為 0.5∶1、1∶1、1.5∶1加入適量沒食子酸對照品,按“1.2.1”項(xiàng)下方法制備樣品溶液,按“1.2.3”確定的最佳顯色條件顯色,于729 nm處測定吸光度,計(jì)算回收率。

        1.2.7 不同核桃殼樣品中酚酸含量比較

        精密稱取1#~16#核桃殼粉末各3份,每份約0.5g,按“1.2.1”項(xiàng)下方法制備樣品溶液,按“1.2.3”確定的最佳顯色條件顯色,于729 nm波長下測定吸光度,計(jì)算酚酸含量。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 最佳顯色條件結(jié)果與分析

        2.1.1 無水乙醇的用量的考察

        無水乙醇用量考察結(jié)果見表1。

        表1 無水乙醇用量考察結(jié)果Table 1 Investigation results of anhydrous alcohol dosage

        由表1可知,無水乙醇加入量為5.0 mL時吸光度最大,確定無水乙醇的用量為5.0 mL。

        2.1.2 0.3%十二烷基硫酸鈉溶液用量的考察

        0.3%十二烷基硫酸鈉溶液用量結(jié)果見表2。

        由表2可知,0.3%十二烷基硫酸鈉溶液加入量為1.5 mL時吸光度最大,確定0.3%十二烷基硫酸鈉溶液的用量為1.5 mL。

        表2 0.3%十二烷基硫酸鈉溶液用量的考察結(jié)果Table 2 Investigation results of the dosage of 0.3%dodecyl sodium dodecyl sulfate

        2.1.3 0.6%FeCl3-0.9%K3[Fe(CN)4]混合溶液用量的考察

        0.6%FeCl3-0.9%K3[Fe(CN)4]混合溶液用量結(jié)果見表3。

        表3 0.6%FeCl3-0.9%K3[Fe(CN)4]混合溶液用量的考察結(jié)果Table 3 Investigation results of the dosage of 0.6%FeCl3-0.9%K3[Fe(CN)4]mixed solution

        由表3可知,混合溶液用量為2.0 mL時吸光度最大。確定0.6%FeCl3-0.9%K3[Fe(CN)4]混合溶液用量為2.0 mL。

        2.1.4 暗處放置時間考察

        暗處放置時間考察結(jié)果見表4。

        表4 暗處放置時間考察結(jié)果Table 4 Investigation results of the dark time

        由表4可知,放置時間為50 min時吸光度最大,確定暗處放置時間為50 min。

        綜上得最佳顯色條件為:無水乙醇5.0 mL,0.3%十二烷基硫酸鈉溶液1.5mL,0.6%FeCl3-0.9%K3[Fe(CN)4]混合溶液2.0 mL,暗處放置時間50 min。

        2.2 酚酸提取單因素試驗(yàn)結(jié)果與分析

        2.2.1 乙醇濃度對酚酸提取率的影響

        乙醇濃度對酚酸提取率的影響見圖1。

        圖1 乙醇濃度對酚酸提取率的影響Fig.1 Effection of ethanol concentration on the extraction of phenolic acids

        結(jié)果表明,酚酸提取率隨著乙醇濃度的提高呈現(xiàn)先增后降的趨勢,乙醇濃度為40%時提取率最大。

        2.2.2 提取溫度對酚酸提取率的影響

        提取溫度對酚酸提取率的影響見圖2。

        圖2 提取溫度對酚酸提取率的影響Fig.2 Effection of extraction temperature on the extraction of phenolic acids

        結(jié)果表明,溫度為80℃時酚酸的提取率最大。

        2.2.3 提取時間對酚酸提取率的影響

        提取時間對酚酸提取率的影響見圖3。

        圖3 提取時間對酚酸提取率的影響Fig.3 Effection of extraction time on the extraction of phenolic acids

        結(jié)果表明,酚酸提取率隨提取時間的增加呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢,提取時間為50 min時,酚酸的提取率最大。

        2.2.4 料液比對酚酸提取率的影響

        料液比對酚酸提取率的影響見圖4。

        結(jié)果表明,料液比為1∶18(g/mL)時,酚酸提取率最高。

        圖4 料液比對酚酸提取率的影響Fig.4 Effection of solid-liquid ratio on the extraction of phenolic acids

        2.3 酚酸提取正交試驗(yàn)結(jié)果與分析

        2.3.1 正交試驗(yàn)因素及水平

        在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,選擇提取溫度(A)、乙醇濃度(B)、提取時間(C)、料液比(D)為研究對象,采用四因素三水平正交試驗(yàn)研究酚酸在不同條件下的提取率。正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)的因素和水平見表5。

        表5 正交試驗(yàn)因素水平Table 5 Orthogonal experiment factor levels

        2.3.2 正交試驗(yàn)結(jié)果與分析

        對提取溫度(A)、乙醇濃度(B)、提取時間(C)、料液比(D)進(jìn)行正交試驗(yàn),結(jié)果見表6。

        表6 正交試驗(yàn)結(jié)果及分析Table 6 Results and analysis of orthogonal test

        結(jié)果表明所選4個因素對酚酸提取率大小影響順序?yàn)椋禾崛囟龋ˋ)>乙醇濃度(B)>料液比(D)>提取時間(C)。核桃殼中酚酸的最佳提取工藝為A2B1C3D3;即提取溫度為80℃,乙醇濃度為30%,提取時間為60 min,料液比為 1∶21(g/mL)。本試驗(yàn)采用加熱回流提取的方法,該法操作簡單,有良好的穩(wěn)定性和重復(fù)性。

        2.3.3 最佳工藝條件的驗(yàn)證

        按照上述優(yōu)選工藝條件即提取溫度為80℃,乙醇濃度為30%,提取時間為60 min,料液比為1∶21(g/mL)對1#樣品分別進(jìn)行3次驗(yàn)證,結(jié)果顯示:在最佳提取條件下,酚酸提取率平均值為1.327%,RSD值為1.23%,酚酸提取率均高于正交試驗(yàn)數(shù)據(jù),說明正交試驗(yàn)結(jié)果可靠,優(yōu)選出的工藝可行,該方法的重現(xiàn)性好。

        2.4 方法學(xué)考察結(jié)果與分析

        2.4.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

        以吸光度(Y)為縱坐標(biāo),質(zhì)量濃度(X)為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得回歸方程為Y=1.102X+0.002,相關(guān)系數(shù)r=0.999 3;沒食子酸溶液在0.204 8 μg/mL~1.024 μg/mL范圍內(nèi)呈現(xiàn)良好的線性關(guān)系。

        2.4.2 儀器精密度試驗(yàn)

        儀器精密度的RSD值為0.22%,表明儀器精密度良好。

        2.4.3 重復(fù)性試驗(yàn)

        測得核桃殼中酚酸平均含量為1.328%,RSD為2.8%,表明該方法的重復(fù)性良好。

        2.4.4 加樣回收率試驗(yàn)

        加樣回收率試驗(yàn)結(jié)果見表7。

        表7 加樣回收率試驗(yàn)結(jié)果Table 7 Test results of sample recovery

        2.5 不同產(chǎn)地核桃殼樣品中酚酸含量

        不同核桃殼樣品中酚酸含量見表8。

        由表8中試驗(yàn)結(jié)果可知,不同產(chǎn)地核桃殼樣品中酚酸含量不同,其中漾濞縣蒼山西鎮(zhèn)沙河村含量最高,下關(guān)鎮(zhèn)太邑彝族鄉(xiāng)江西橋最低;樣品中酚酸平均含量為0.679%。

        表8 不同產(chǎn)地核桃殼樣品中酚酸含量Table 8 Content of phenolic acids in walnut shell samples from different habitats

        3 結(jié)論與討論

        本試驗(yàn)采用加熱回流提取法提取核桃殼中酚酸,經(jīng)單因素及正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)得出核桃殼中酚酸的最佳提取工藝為:提取溫度為80℃,乙醇濃度為30%,提取時間為 60 min,料液比為 1∶21(g/mL)。

        不同來源的核桃殼樣品中酚酸平均含量為0.679%,其中漾濞縣沙河村的含量較高,為1.328%。不同產(chǎn)地核桃殼中酚酸含量不同,可能受核桃品種、海拔、氣候、土壤等因素的影響,具體原因有待進(jìn)一步考察研究。

        預(yù)試驗(yàn)分別考察冷浸、超聲、回流不同提取方法對酚酸提取率的影響,結(jié)果顯示采用回流提取時酚酸提取率最大,故將提取方法確定為回流提取。此外,根據(jù)酚酸的溶解性和極性,可選擇不同溶劑進(jìn)行提取,本試驗(yàn)前期分別以水、50%乙醇和50%甲醇為溶劑考察了溶劑對酚酸提取的影響,結(jié)果顯示以50%乙醇為溶劑時酚酸提取率較大,故確定乙醇為提取溶劑,并考察不同乙醇濃度對酚酸提取率的影響。

        酚酸含量測定常用的方法有Folin-酚法[22]和普魯士蘭法[23]。其中普魯士蘭法為較經(jīng)典的顯色方法,該法采用十二烷基硫酸鈉-FeCl3-K3[Fe(CN)4]-HCl系統(tǒng)進(jìn)行顯色,具有操作簡便、快速、經(jīng)濟(jì)、重現(xiàn)性好等優(yōu)點(diǎn);且該法加入試劑后立即形成深淺不同的顏色,容易辨別[24],故本試驗(yàn)選用普魯士蘭法顯色。不同文獻(xiàn)報(bào)道普魯士蘭法顯色劑用量不同,故試驗(yàn)前期先優(yōu)化顯色條件,確定顯色劑用量;試驗(yàn)確定最佳顯色條件為:無水乙醇5.0 mL,0.3%十二烷基硫酸鈉溶液1.5 mL,0.6%FeCl3-0.9%K3[Fe(CN)4]混合溶液 2.0 mL,暗處放置時間50 min。測定核桃殼中酚酸的含量時,顯色劑配制后,放置時間和顯色時間對吸光度影響較大。故應(yīng)嚴(yán)格控制反應(yīng)條件,顯色試劑應(yīng)現(xiàn)配現(xiàn)用,各樣品測定時平行操作。

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        Extraction and Content Determination of Phenolic Acids from Walnut Shell

        LIU Li-jin,ZHOU Ping*
        (Department of Pharmacy and Chemistry,Dali University,Dali 671000,Yunnan,China)

        2017-02-20

        10.3969/j.issn.1005-6521.2017.20.011

        劉麗金(1992—),女(漢),碩士研究生,研究方向:藥物分析。

        *通信作者:周萍(1972—),女(漢),教授,碩士生導(dǎo)師

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