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        QuEChERS-高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測定植物源性 食品中噻氟隆和炔草隆殘留

        2017-10-15 11:23:14粟有志謝麗瓊
        分析科學(xué)學(xué)報 2017年4期
        關(guān)鍵詞:乙腈回收率基質(zhì)

        周 均, 粟有志, 李 芳, 辛 芳, 陸 平, 謝麗瓊

        (1.伊犁出入境檢驗檢疫局綜合技術(shù)服務(wù)中心,新疆伊寧 835000; 2.伊犁師范學(xué)院化學(xué)與環(huán)境科學(xué)學(xué)院,新疆伊寧 835000; 3.新疆大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,新疆烏魯木齊 830046)

        圖1 噻氟隆和炔草隆的化學(xué)結(jié)構(gòu)式Fig.1 Structural formula of thiazafluron and buturon

        噻氟隆(Thiazafluron)又名賽唑隆,化學(xué)名稱為1,3-二甲基-l-(5-三氟甲基-1,3,4-噻二唑-2-基)脲,它是一種內(nèi)吸性雜環(huán)脲類除草劑,主要用于去除棉花、玉米耕地中一年生和多年生的單子葉和雙子葉雜草[1]。炔草隆(Buturon)又名播士隆,化學(xué)名稱為1-甲基-l-(1-甲基丙炔-2-基)-3-(4-氯苯基)脲,一種苯基脲除草劑,主要用于農(nóng)作物芽前和苗后的闊葉及一年生雜草的控制[2]。噻氟隆和炔草隆結(jié)構(gòu)見圖1。研究表明,此類除草劑對人類有不同程度的毒性,甚至有致癌作用[3]。目前關(guān)于噻氟隆檢測方法的報道較少,僅見彭興等[4]建立的水果蔬菜中噻氟隆的液相色譜-飛行時間質(zhì)譜法的定性篩查方法;關(guān)于炔草隆的檢測方法,主要有液相色譜法[5 - 6]、液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[7 - 8]、液相色譜-飛行時間質(zhì)譜法[9 - 10]。QuEChERS技術(shù)是一種簡單、快速、廉價、高效、耐用、安全的樣品前處理方法,已廣泛用于食品中農(nóng)藥殘留的檢測[11 - 13]。

        本研究采用改進(jìn)的QuEChERS前處理方法,結(jié)合高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(HPLC-MS/MS)建立了同時分析植物源性食品中噻氟隆和炔草隆殘留的方法。該方法簡便快捷,精密度和回收率較好,適用于植物源性食品中噻氟隆和炔草隆殘留的快速確證和定量分析。

        1 實驗部分

        1.1 主要儀器與試劑

        1260-6460A液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀(美國,Agilent公司);Sigma3-18K臺式冷凍離心機(美國,Sigma公司);EYELA MMV-1000W振蕩器(日本,東京理化公司);GM 200刀式混合研磨儀(德國,Retsch公司);MS3型渦旋振蕩器(德國,IKA公司)。

        噻氟隆(純度99%)、炔草隆(純度98.5%)標(biāo)準(zhǔn)品購自德國Dr.Ehrenstorfer公司,乙腈、甲醇、丙酮、甲酸、乙酸乙酯、乙酸、正己烷均為色譜純(德國,Merck公司);乙二胺-N-丙基硅烷(PSA)粒徑40~60 μm、苯磺酸化聚苯乙烯/二乙烯苯(PCX)粒徑40~60 μm、聚苯乙烯/二乙烯苯(PEP)粒徑70~90 μm(美國Agela公司);酸性氧化鋁(ALA)、石墨化碳黑(GCB)和C18、氨基(NH2)粉(美國Agilent公司)。實驗用水為MiIIi-Q Advangtage A10 超純水系統(tǒng)(美國,Millipore公司)制備。

        分析樣品為實驗室送檢和市售樣品。

        1.2 標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制

        標(biāo)準(zhǔn)儲備溶液:稱取標(biāo)準(zhǔn)品噻氟隆和炔草隆各10 mg(精密稱定),置于10 mL容量瓶中,用甲醇溶解并定容至刻度,配成質(zhì)量濃度為1 000 mg/L的標(biāo)準(zhǔn)儲備液,于4 ℃冰箱中儲存?;|(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線的配制:稱取樣品約2.5 g(精密稱定),按照1.3節(jié)樣品前處理和1.4節(jié)儀器條件進(jìn)行分析,當(dāng)噻氟隆和炔草隆的定性定量離子信噪比均小于3時,樣品確定為空白基質(zhì);空白基質(zhì)按照1.3節(jié)前處理,獲得基質(zhì)空白提取液,逐步用基質(zhì)空白提取液將標(biāo)準(zhǔn)儲備液稀釋至相應(yīng)的工作濃度。

        1.3 樣品前處理

        白菜、葡萄、西紅柿、黃瓜等新鮮果蔬取其可食部分,切碎混勻,用混合研磨儀制成勻漿備用。葡萄干、枸杞樣品先置于-20 ℃冰箱放置6 h以上,將樣品中水分凍成固態(tài)冰,迅速取出樣品用混合研磨儀加工成粉末狀備用。大米和小麥粉樣品用粉碎機粉碎成粉末狀備用。

        葡萄、西紅柿、白菜、蘋果、黃瓜等新鮮果蔬樣品:稱取2.5 g樣品(精確0.01 g)于50 mL具塞離心管,加入5.0 mL酸化乙腈(含0.1%乙酸),渦旋30 s混勻,加入1.5 g NaCl,震蕩15 min,4 500 r/min離心3 min,取上清液1.0 mL于2 mL具塞離心管,加入吸附劑GCB 25 mg,渦旋30 s,6 000 r/min離心3 min,取上清液過0.22 μm尼龍膜,濾液待測。枸杞、大米、葡萄干及小麥粉等含水量較少樣品:稱取2.5 g樣品(精確0.01 g)于50 mL具塞離心管,加入5.0 mL超純水浸泡30 min,加入5 mL酸化乙腈,渦旋30 s,加入2.5 g NaCl,震蕩15 min,4 500 r/min離心3 min,取上清液1.0 mL于2 mL具塞離心管,加入吸附劑GCB 25 mg,渦旋30 s,4 000 r/min離心3 min,取上清液過0.22 μm尼龍膜,濾液待測。

        1.4 HPLC-MS/MS條件

        色譜條件:色譜柱:JADE-PAK CB-C18柱(100×2.1 mm,3 μm);柱溫:30 ℃;進(jìn)樣量:10 μL。流動相:A相為甲醇,B相為0.1%甲酸溶液(含5 mmol/mL乙酸銨),流速為0.25 mL/min。梯度洗脫程序如下:0~1.5 min,0%~65%A;1.5~6.5 min,65%~90%A;6.5~8.5 min,90%A;8.51~10 min,10%A。

        質(zhì)譜條件:電噴霧正離子模式(ESI+);多重反應(yīng)監(jiān)測(MRM);干燥氣溫度:300 ℃;干燥氣流量:10 L/min;鞘氣溫度:250 ℃;鞘氣流速:9 L/min;毛細(xì)管模式電壓4 000 V;監(jiān)測離子對、碰撞能量、碎裂電壓等見表1。

        表1 炔草隆和噻氟隆的質(zhì)譜分析參數(shù)Table 1 Mass spectrometric conditions of the pair ion for buturon and thiazafluron

        *Quantitative ion.

        2 結(jié)果與討論

        2.1 儀器條件的優(yōu)化

        分別采用ESI+和ESI-對噻氟隆和炔草隆進(jìn)行母離子掃描,結(jié)果表明兩者均較適合采用ESI+模式,從而確定噻氟隆的[M+H]+為m/z241.1,炔草隆的[M+H]+為m/z237.1。進(jìn)一步對子離子、碎裂電壓、碰撞能量等參數(shù)進(jìn)行優(yōu)化,獲得噻氟隆和炔草隆的二級質(zhì)譜全掃描圖見圖2。參照歐盟指令657/2002/EEC決議中有關(guān)規(guī)定,本文選擇離子豐度最高、本底干擾最小的兩個離子對作為特征離子對,其中信號較大的離子對作為定量離子。優(yōu)化后的質(zhì)譜參數(shù)詳見表1。

        圖2 噻氟隆和炔草隆的子離子掃描質(zhì)譜圖Fig.2 MS2 spectra of product ion scan for buturon and thiazafluron

        液相色譜-質(zhì)譜法分析樣品時,若選擇ESI+模式,在流動相中加入微量的甲酸可提供離子化所需要的H+,微量的乙酸銨可以減少[M+Na]+離子的形成,從而提高監(jiān)測離子的靈敏度。本研究比較了乙腈、甲醇組成的有機相(A相),以及不同濃度甲酸溶液、乙酸銨溶液、甲酸和乙酸銨混合溶液、純水所組成的無機相(B相),通過A相與B相的組合比較分析發(fā)現(xiàn),以甲醇-0.1%甲酸溶液(含5 mmol/L乙酸銨)為流動相時,噻氟隆和炔草隆的離子化效率較高。

        2.2 前處理條件的優(yōu)化

        圖3 不同提取溶劑對噻氟隆和炔草隆的提取效率Fig.3 Extraction efficiencies of thiazafluron and buturon with different solvents

        以枸杞為分析樣品,比較乙腈、酸化乙腈(含0.1%乙酸)、正己烷、乙酸乙酯、丙酮五種提取劑對噻氟隆和炔草隆的提取效果。結(jié)果(圖3)表明:采用丙酮、正己烷、乙酸乙酯作為提取劑時,回收率不能滿足要求;乙腈和酸化乙腈提取時,回收率在85%~100%,均可滿足分析要求。分別以乙腈和酸化乙腈提取空白樣品,獲得空白樣品提取液,以空白樣品提取液稀釋純?nèi)軇?biāo)準(zhǔn)溶液,獲得相同濃度的基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液和純?nèi)軇?biāo)準(zhǔn)溶液,分析樣品基質(zhì)對噻氟隆和炔草隆的影響,結(jié)果表明乙腈提取時噻氟隆和炔草隆的基質(zhì)效應(yīng)分別為66.5%和81.5%;而0.1%乙酸乙腈提取噻氟隆和炔草隆的基質(zhì)效應(yīng)分別為71.7%和86.1%。因此,最終確定酸化乙腈(含0.1%乙酸)作為提取劑。

        選擇QuEChERS前處理樣品,常選擇GCB去除花青素、葉綠素等色素化合物,PSA去除有機酸,C18去除脂肪和脂類等非極性有機物。以富含色素的枸杞為分析樣品,比較了PSA、C18、PCX、PEP、NH2、ALA、GCB 7種吸附劑對樣品的凈化效果。結(jié)果表明:C18凈化后,噻氟隆的回收率僅為62%;而其他6種吸附劑凈化后,噻氟隆和炔草隆的回收率均在80%~100%,均可滿足分析方法學(xué)的要求。通過比較不同吸附劑凈化后,噻氟隆和炔草隆的基質(zhì)效應(yīng),結(jié)果發(fā)現(xiàn)使用GCB凈化后,樣品的基質(zhì)干擾相對較小。同時GCB凈化后,樣品提取液較為清澈。故本文選擇GCB凈化樣品。進(jìn)一步確定GCB的用量。當(dāng)吸附劑用量為25、50、75、100 mg 時,對比噻氟隆和炔草隆的回收率和基質(zhì)效應(yīng)。結(jié)果表明,當(dāng)GCB用量為25~100 mg時,兩者的回收率在91.5%~104.7%范圍,基質(zhì)效應(yīng)為85%~90%,回收率和基質(zhì)效應(yīng)均無明顯差別,考慮節(jié)約成本,最終選擇GCB的用量為25 mg??瞻阻坭綐悠泛吞砑?倍定量限(LOQ)噻氟隆和炔草隆的空白樣品,經(jīng)提取和凈化后的MRM色譜圖分別見圖4和圖5。

        圖4 空白枸杞基質(zhì)中MRM色譜圖Fig.4 MRM chromatograms of a blank Chinese wolfberry

        圖5 空白枸杞中添加1倍LOQ濃度的噻氟隆和炔草隆的MRM色譜圖Fig.5 MRM chromatograms of a negative Chinese wolfberry sample spiked with Buturon and Thiazafluron at 1×LOQ concentration level

        2.3 基質(zhì)效應(yīng)、線性范圍、檢出限和定量限

        采用相對響應(yīng)值法[14],評定噻氟隆和炔草隆的基質(zhì)效應(yīng)(ME)。根據(jù)公式:ME=Am/Ac×100%,其中Am表示空白基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)響應(yīng)值;Ac表示純?nèi)軇?biāo)準(zhǔn)響應(yīng)值。當(dāng)ME在80%~120%之間表明基質(zhì)效應(yīng)可以忽略,但ME在50%~80%和120%~150%之間時,需要考慮如何消除基質(zhì)效應(yīng)。

        從表2可知,樣品基質(zhì)對噻氟隆和炔草隆均有抑制效應(yīng),部分基質(zhì)效應(yīng)不可忽略,需采用基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線消除樣品基質(zhì)效應(yīng)。空白樣品按照1.3節(jié)方法處理,獲得基質(zhì)空白提取液,逐步用基質(zhì)空白提取液將噻氟隆標(biāo)準(zhǔn)儲備液稀釋至0.2、0.4、1.0、2、4、10、20 ng/mL,炔草隆標(biāo)準(zhǔn)儲備液稀釋至0.5、1、2.5、5、10、25、50 ng/mL。以峰面積(y)對農(nóng)藥質(zhì)量濃度(x)作線性回歸,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,噻氟隆和炔草隆的相關(guān)系數(shù)(r2)均大于0.997。噻氟隆和炔草隆線性范圍、相關(guān)系數(shù)詳見表2。以信噪比(S/N)=3和S/N=10計算檢出限和定量限。噻氟隆的方法檢出限為0.1 μg/kg,定量限為0.4 μg/kg;炔草隆的方法檢出限為0.3 μg/kg,定量限為1.0 μg/kg。

        表2 噻氟隆和炔草隆的線性范圍、基質(zhì)效應(yīng)、線性關(guān)系Table 2 Linear range,matrix effects,linear relationships (r2) of thiazafluron and buturon

        y:peak area;x:mass concentration,ng/mL.

        2.4 方法的準(zhǔn)確度和精密度

        選擇葡萄、葡萄干、西紅柿、大米、蘋果、枸杞、黃瓜、小麥粉、白菜等空白樣品,以1、2、10倍LOQ為加標(biāo)水平進(jìn)行回收率實驗。所有樣品添加混合標(biāo)準(zhǔn)溶液后,靜置30 min,待農(nóng)殘被樣品充分吸收后,按照1.3節(jié)方法和1.4節(jié)條件進(jìn)行前處理和儀器測定,每個水平重復(fù)6次。由表3可知:噻氟隆的平均回收率為84.7%~107.7%,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為4.2%~16.3%;炔草隆的平均回收率為74.7%~110.0%,RSD為4.3%~12.8%。

        表3 噻氟隆和炔草隆的加標(biāo)回收率和相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(n=6)Table 3 Recoveries and relative standard deviations(RSDs) of thiazafluron and buturon(n=6)

        2.5 樣品測定

        利用本方法對市售的9種植物源性食品(葡萄、葡萄干、西紅柿、大米、蘋果、枸杞、黃瓜、小麥粉、白菜)共計60余份樣品進(jìn)行噻氟隆和炔草隆殘留量的監(jiān)測分析。結(jié)果均未檢測出目標(biāo)分析物。

        3 結(jié)論

        本研究以酸化乙腈為提取劑,樣品經(jīng)GCB吸附劑凈化,通過色譜和質(zhì)譜條件的優(yōu)化,建立了植物源性食品中噻氟隆和炔草隆殘留的檢測方法。該方法簡便快捷、靈敏度高、實用性強,方法學(xué)結(jié)果滿足國家標(biāo)準(zhǔn)(GB/T 27404-2008)《實驗室質(zhì)量控制規(guī)范-食品理化檢測》的相關(guān)要求,適用于植物源性食品中噻氟隆和炔草隆殘留的快速確證檢測。

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