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        黑龍江某豬場哺乳仔豬腹瀉病因分析

        2017-08-01 12:30:02高國強(qiáng)吳丹丹周玉龍侯喜林
        中國獸醫(yī)雜志 2017年6期
        關(guān)鍵詞:核苷酸毒株哺乳

        高國強(qiáng),曹 禹,吳丹丹,劉 宇,周玉龍,侯喜林

        (黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)動物科技學(xué)院,黑龍江 大慶 163319)

        黑龍江某豬場哺乳仔豬腹瀉病因分析

        高國強(qiáng),曹 禹,吳丹丹,劉 宇,周玉龍,侯喜林

        (黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)動物科技學(xué)院,黑龍江 大慶 163319)

        近年來,隨著養(yǎng)豬業(yè)快速發(fā)展,豬病也愈加復(fù)雜,尤其是仔豬腹瀉已經(jīng)成為當(dāng)前影響?zhàn)B豬業(yè)發(fā)展的主要因素之一。引起仔豬腹瀉的因素比較復(fù)雜,主要分為三類,一是環(huán)境和生產(chǎn)管理因素,如衛(wèi)生條件差,環(huán)境濕度過大,溫度不穩(wěn)定,日糧配比不合理等;二是細(xì)菌性腹瀉,病原主要有大腸桿菌、沙門菌、C型產(chǎn)氣莢膜梭菌等;三是病毒性腹瀉,主要有豬流行性腹瀉病毒、輪狀病毒、豬傳染性胃腸炎病毒等;此外,豬圓環(huán)病毒Ⅱ型、豬偽狂犬病病毒、豬繁殖與呼吸綜合征病毒、附紅細(xì)胞體等有時也可導(dǎo)致仔豬出現(xiàn)腹瀉癥狀。

        目前,哺乳仔豬腹瀉以豬流行性腹瀉病毒感染最為常見,一旦與其他病原混合感染,使病情更加復(fù)雜。關(guān)于豬流行性腹瀉病毒與豬偽狂犬病病毒和圓環(huán)病毒Ⅱ型混合感染的病例少見報道。2016年4月份,黑龍江某豬場哺乳仔豬暴發(fā)腹瀉,經(jīng)實(shí)驗室診斷確診病原為豬流行性腹瀉病毒、豬偽狂犬病病毒和豬圓環(huán)病毒Ⅱ型混合感染,現(xiàn)將該病例報道如下。

        1 材料

        1.1 主要試劑 TRIZol Reagent(invitrogen);Rever-Tra Ace qPCR RT Master Mix、pMD18-T載體和DNA Marker DL-2 000(TaKaRa公司);碧云天DNA提取試劑盒;引物由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。

        1.2 引物 參照文獻(xiàn)和國家或者地方診斷標(biāo)準(zhǔn)合成 PEDV(NY/T 544-2015)、TGEV(NY/T 548-2015)、RV[1]、CSFV[2]、PRRSV(DB33/T 822-2011)、PRV(GBT 18641-2002)和PCV(GBT 21674-2008) PCR診斷引物,PEDV M和 ORF3基因擴(kuò)增引物[3]等。

        1.3 樣本 無菌采集3日齡、10日齡和15日齡發(fā)病仔豬的內(nèi)臟器官和腸道內(nèi)容物。

        2 方法

        2.1 臨床診斷 通過流行病學(xué)、臨床癥狀和病理剖檢進(jìn)行初步診斷。

        2.2 實(shí)驗室診斷 根據(jù)臨床診斷結(jié)果對能夠引起哺乳仔豬腹瀉的主要病原體,豬流行性腹瀉病毒(PEDV)、豬輪狀病病毒(RV)、豬傳染性胃腸炎病毒(TGEV)、豬瘟病毒(CSFV)、豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)、豬偽狂犬病病毒(PRV)、圓環(huán)病毒(PCV)和大腸桿菌等進(jìn)行檢測。

        2.2.1 病毒檢測 應(yīng)用PCR方法對PEDV、TGEV、RV、CSFV、PRRSV、PRV和PCV等病毒進(jìn)行檢測。

        2.2.1.1 病毒的核酸制備 不同組織或者腸內(nèi)容物總RNA制備按照TRIZol Reagent 試劑盒說明書

        2.2.1.2 cDNA合成 按照Rever Tra Ace qPCR RT Master Mix試劑盒操作。取8μL RNA,65℃水浴5 min,迅速放入冰盒冰浴2 min。再加入2μL 5×RT Master Mix。37℃15 min,50℃5 min,98℃5 min。

        2.2.1.3 PCR 反應(yīng)體系25μL:r Taq Mix 12.5μL,去離子水 8.5μL,上、下游引物(25 pmol/μL)各1μL,cDNA 2.0μL。反應(yīng)條件:94℃10 min;94℃45 s,55℃(PEDV)/55℃(TGEV)/56℃(RV)/ 56℃(CSFV)/55℃(PRRSV)/65℃(PRV)/62℃(PCV)/56℃(PEDV ORF3)45 s,72℃90 s,35個循環(huán);72℃10 min,取反PCR產(chǎn)物15μL,在1%瓊脂糖凝膠中電泳23 min,在凝膠成像系統(tǒng)中觀察結(jié)果。

        2.3 PEDV M和ORF3基因序列分析 為了探討該豬場流行的PEDV與當(dāng)前流行毒株和疫苗毒株的系統(tǒng)進(jìn)化關(guān)系,為PEDV的防控提供理論依據(jù),對3頭病死豬體內(nèi)的PEDV M和ORF3基因進(jìn)行測序分析。按照常規(guī)方法,將純化后的M和ORF3 PCR產(chǎn)物分別連接到pMD18-T載體上,再轉(zhuǎn)化到DH5α大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞當(dāng)中得到重組菌,提取質(zhì)粒用限制性內(nèi)切酶SalⅠ和Bam HⅠ進(jìn)行雙酶切鑒定。鑒定陽性的重組菌株委托北京華大基因研究中心進(jìn)行測序。將測序結(jié)果在GenBank中進(jìn)行Blast分析,然后選取典型PEDV毒株應(yīng)用DNA-Star軟件進(jìn)行同源性分析。

        2.4 病原菌檢測 分別把仔豬內(nèi)臟器官和小腸內(nèi)容物接種TSA、血液營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基、S.S.瓊脂和麥康凱培養(yǎng)基,培養(yǎng)24 h后觀察菌落形態(tài)特征,進(jìn)行革蘭染色鏡檢和純培養(yǎng)。

        2.5 細(xì)菌致病性試驗 將小腸內(nèi)分離的大腸桿菌接種到普通營養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基中,于空氣浴搖床中180 r/min,37℃培養(yǎng)12 h。然后腹腔接種5只小鼠體重(18~25)g,1×109CFU/只,同時設(shè)對照組5只小鼠,注射同等計量的營養(yǎng)肉湯,連續(xù)觀察1周。

        3 結(jié)果

        3.1 臨床診斷結(jié)果 發(fā)病豬場存欄母豬2 000頭,哺乳仔豬暴發(fā)腹瀉,發(fā)病率60%,死亡率80%。哺乳仔豬各日齡段均有腹瀉發(fā)生,多數(shù)伴有震顫、抽搐、鳴叫等神經(jīng)癥狀。產(chǎn)房的仔豬出現(xiàn)體溫升高,有的鄰窩仔豬卻無異常。尸體剖檢可見仔豬消瘦,體表有糞便附著;全身淋巴結(jié)腫大;腎臟畸形,表面有針尖狀出血點(diǎn),腎盂內(nèi)有尿酸鹽沉積;膀胱黏膜有散在出血點(diǎn);肺臟膈葉輕微水腫;肝臟腫大、邊緣有出血點(diǎn),腹面有針尖狀壞死灶;小腸壁變薄,內(nèi)容物稀薄,其他臟器未見異常。

        3.2 病毒PCR鑒定結(jié)果 PEDV、PRV和PCV-2分別擴(kuò)增出與目的基因大小相符的特異性DNA片段,目的基因分別為774 bp、217 bp和1154 bp(見圖1、2、3)。CSFV、PRRSV、RV和 TGEV PCR結(jié)果為陰性。

        圖1 PEDV基因序列RT-PCR擴(kuò)增結(jié)果

        圖2 PRV基因序列PCR擴(kuò)增結(jié)果

        圖3 PCV基因序列PCR擴(kuò)增結(jié)果

        3.3 PEDV病毒M基因序列分析結(jié)果 3株P(guān)EDV中國ZD毒株M基因全長均為681 bp?;贛基因的核苷酸序列分析顯示,與標(biāo)準(zhǔn)株CV777相比,M基因37位由G→C,125位由T→C,180位由G→A,198、213、222、234、258位由C→T,285、618位由T→C,348位由T→A,640位由G→T。另外,毒株China ZD-1(KX852349)的17、146位由T→C,毒株China ZD-2(KX852350)的71位由T→A,659位由A→G。毒株China ZD-3(KY010201)的6位由T→C,320、604位由A→G。所推導(dǎo)的氨基酸序列分析顯示,China ZD-1的49位由M→T,China ZD-2的24位由I→N。其他結(jié)果如圖4所示。

        圖4 M基因核苷酸序列的遺傳進(jìn)化分析

        3.4 M基因的核苷酸及其推導(dǎo)的氨基酸同源性分析 3株P(guān)EDV中國ZD毒株M基因核苷酸和氨基酸的同源性分別為99.3%~99.4%和97.8%。與國內(nèi)疫苗株CV777(AF353511)相比,核苷酸和氨基酸的同源性為97.7%~97.8%和97.4%。與意大利毒株Italy/178509/2014(KT027429)同源性最近為100%。與2011年1株中國毒株ZY(KF150217)相對較近為99.6%和99.1%,與泰國毒株08NP05 (FJ196176)同源性相差最大為87.1%,其他結(jié)果如圖6所示。

        3.5 PEDV病毒ORF3基因序列分析結(jié)果 3株P(guān)EDV中國ZD毒株ORF3基因全長為675 bp?;贠RF3基因的核苷酸序列分析顯示,與標(biāo)準(zhǔn)株CV777相比,ORF3基因497、517位由A→G,160、235、301位由G→A,162、360、393、501位由T→C,237、243、264、274、369、439、450、489位由 C→T,238、546位由 T→G。另外,毒株 China ZD-1 (KX852337)的54位由G→A,62位由T→C,63位由C→T,毒株China ZD-2(KX852325)的32位由A→G,54位由G→A,62位由T→C,63位由C→T,毒株China ZD-3(KX852324)的152位由G→A。所推導(dǎo)的氨基酸序列分析顯示,80位由F→V,92位由L→F。其他結(jié)果如圖5所示。

        3.6 ORF3基因的核苷酸及其推導(dǎo)的氨基酸同源性分析 3株P(guān)EDV中國ZD毒株ORF3基因核苷酸和氨基酸的同源性分別為99.7% ~99.9%和98.7%~99.1%。它們與2014年1株日本毒株14JM-40(KT968512)為99.4% ~99.6%和98.7% ~99.1%;與2014年1株中國毒株LNCT2(KT323980)為99.4%~99.6%和93.3%~99.1%,與國內(nèi)疫苗株 CV777(AF353511)和韓國疫苗株 DR13 (EU054930)基因和氨基酸親源性較遠(yuǎn),基因同源性分別為96.6%~96.7%和97.6%~97.8%,氨基酸同源性分別為95.1%~95.6%和97.1%~97.6%,但是與3株毒株同源性最近的是2011年中國毒株CH/HLJHRB/2011(JQ027026)、CH/HBXX3/11 (JQ664731)和2013年美國毒株USA/Tennesse56/ 2013(KJ645654),同源性為98.7%~99.1%。其他結(jié)果如圖7所示。

        圖5 ORF3基因核苷酸序列的遺傳進(jìn)化分析

        圖6 M基因氨基酸序列的遺傳進(jìn)化分析

        圖7 ORF3基因氨基酸同源性的遺傳進(jìn)化分析

        3.7 細(xì)菌分離鑒定結(jié)果 在3頭被檢測仔豬腸道內(nèi)均分離到1種革蘭陰性桿菌,在麥康凱培養(yǎng)基上呈粉紅色,在伊紅美藍(lán)培養(yǎng)基上紫色有金屬光澤,在S.S.培養(yǎng)基上呈粉色菌落,與大腸桿菌特征相符[6],其他內(nèi)臟器官中未分離出細(xì)菌。大腸桿菌接種小鼠以后,連續(xù)觀察7 d試驗組與對照組小鼠均無異常反應(yīng),說明該大腸桿菌無致病性。

        4 討論

        綜合臨床診斷和實(shí)驗室診斷結(jié)果表明,該豬群暴發(fā)的哺乳仔豬腹瀉主要是由PEDV、PRV和PCV-2三種病毒混合感染所致。新生仔豬腹瀉目前已成為阻礙養(yǎng)豬業(yè)健康發(fā)展的主要因素之一,其病因復(fù)雜多樣導(dǎo)致臨床上防控該病異常困難。近幾年P(guān)EDV引起的新生仔豬腹瀉7日齡之內(nèi)死亡率較高,本次哺乳仔豬暴發(fā)腹瀉與以往不同之處表現(xiàn)為各個日齡段均有腹瀉,而且各個階段死亡率均較高,同時新生仔豬伴發(fā)神經(jīng)癥狀,這與PEDV混合感染PRV和PCV-2有直接關(guān)系。一般情況下,在新生仔豬腹瀉方面進(jìn)行病原學(xué)診斷時優(yōu)先檢測PEDV、TGEV、RV以及大腸桿菌,而本次病例警示我們,在哺乳仔豬腹瀉診斷時不要忽視PRV和PCV-2。通過最近報道來看,PEDV、PRV和PCV-2混合感染可能有增加的趨勢,這為目前的仔豬腹瀉防控提出了新的挑戰(zhàn)[4-5]。因此,PRV和PCV-2的有效防控對于降低新生仔豬腹瀉的發(fā)病率和死亡率具有重要意義。

        冠狀病病毒ORF5基因編碼的M蛋白是膜糖蛋白,在病毒粒子的組裝和出芽過程中具有重要的作用,同時也是病毒刺激機(jī)體產(chǎn)生免疫保護(hù)重要的結(jié)構(gòu)蛋白。對于不同的冠狀病病毒來說,M基因的同源性是很低的,但是對于同種冠狀病病毒來說M基因確是高度保守的。而ORF3對于PEDV來說,被認(rèn)為是一個重要的毒力基因[6-8]。ORF3基因在野生型和減毒型之間的差異可以作為分子標(biāo)記,并作為研究分子流行病學(xué)的潛在工具[7]。因此,M和ORF3基因常用于分析PEDV的分子流行病學(xué)。通過對本次腹瀉仔豬體內(nèi)的PEDV M和ORF3基因序列分析結(jié)果表明,本次檢測的3份樣本的PEDV M和ORF3基因同源性99.3% ~99.4%和99.7% ~99.9%,說明本場流行的PEDV毒株為不同的毒株。該3株毒株與國內(nèi)外的毒株都存在著差異。目前沒有特效藥物用于治療PEDV,其防控主要依靠疫苗,而不同地域的PEDV毒株差異較大,可能是本豬場免疫了PEDV、TGEV和RV三聯(lián)弱毒疫苗還依然暴發(fā)仔豬腹瀉的原因,可見研制適合本地區(qū)或者豬場的特色疫苗對于防控PEDV具有重要意義。

        [1] 張坤,何啟蓋.豬流行性腹瀉病毒、豬傳染性胃腸炎病毒和豬A群輪狀病毒多重RT-PCR檢測方法的建立及臨床應(yīng)用[J].畜牧獸醫(yī)學(xué)報,2010,41(8):1 001-1 005.

        [2] 劉建柱.豬瘟病毒豬細(xì)小病毒豬偽狂犬病病毒PCR檢測方法的建立[J].中國獸醫(yī)雜志,2005,41(10):17.

        [3] Xia Yang,Jin-yao Huo,F(xiàn)eng-mei Zheng,etal.Genetic variation analysis of reemerging porcine epidemic diarrhea virus prevailing in central China from 2010 to 2011[J].Virus Genes,2013,46:337-344.

        [4] 才讓卓瑪,宋秀紅.PRV、PCV-2、PRRSV與HPs混合感染的核酸檢測[J].家畜生態(tài)學(xué)報,2013,34(10):69-72.

        [5] 陶長城,朱保權(quán),李波.PEDV、PRV和PCV-2混合感染引起新生仔豬腹瀉的診治與分析[J].湖北畜牧獸醫(yī),2015,36(5):15-16.

        [6] 陳如敬.豬流行性腹瀉病毒FJ-11 A株的分離與ORF3基因序列分析[J].福建農(nóng)業(yè)學(xué)報,2011,26(6):947-951.

        [7] Xia Yang,Jin-yao Huo,F(xiàn)eng-mei Zheng,etal.Genetic variation analysis of reemerging porcine epidemic diarrhea virus prevailing in central China from 2010 to 2011[J].Virus Genes,2013,46:337-344.

        [8] Chen J F,Sun D B,Wang C B,et al.Molecular characterization and phylogenetic analysis ofmembrane protein genes ofporcine epidemic diarrhea virus isolates in China[J].Virus Genes,2008,36:355-364.

        2016-11-17

        高國強(qiáng)(1991-),男,碩士,主要從事獸醫(yī)傳染病學(xué)的研究,E-mail:2426456777qq.com

        周玉龍,E-mail:zhouyulong1980@163.com進(jìn)行,DNA制備按照碧云天DNA提取試劑盒說明書操作。

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