張 琮 王嘉正 沈玉潔 周明霞 陳穎偉,2#
上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬新華醫(yī)院消化內(nèi)科1(200092) 上海市小兒消化與營(yíng)養(yǎng)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室2
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自噬誘導(dǎo)劑pp242對(duì)腫瘤壞死因子-α所致腸屏障損傷的影響*
張 琮1王嘉正1沈玉潔1周明霞1陳穎偉1,2#
上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬新華醫(yī)院消化內(nèi)科1(200092) 上海市小兒消化與營(yíng)養(yǎng)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室2
背景:腸屏障損傷和自噬異常均在炎癥性腸病的發(fā)病中起重要作用,但自噬是否參與腸屏障損傷的發(fā)生、發(fā)展目前尚無(wú)報(bào)道。目的:探討自噬誘導(dǎo)劑pp242對(duì)腫瘤壞死因子-α(TNF-α)所致腸屏障損傷的影響。方法:在Transwell小室中培養(yǎng)Caco-2細(xì)胞制備單層腸上皮屏障模型,并將其隨機(jī)分為對(duì)照組(不給予干預(yù))、TNF-α組(10 ng/mL TNF-α)、pp242組(1 μmol/L pp242)和TNF-α+pp242組(10 ng/mL TNF-α+1 μmol/L pp242)。以跨上皮細(xì)胞電阻(TEER)和FITC標(biāo)記葡聚糖通透性評(píng)估腸上皮屏障功能,蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)自噬相關(guān)蛋白LC3B-Ⅱ和p62的表達(dá)情況。結(jié)果:與對(duì)照組相比,TNF-α組TEER顯著降低(P<0.05),F(xiàn)ITC標(biāo)記葡聚糖通透性顯著升高(P<0.05),LC3B-Ⅱ和p62蛋白表達(dá)均顯著上調(diào)(P<0.05)。與TNF-α組相比,TNF-α+pp242組TEER顯著升高(P<0.05),LC3B-Ⅱ蛋白表達(dá)顯著上調(diào)(P<0.05),p62蛋白表達(dá)顯著下調(diào)(P<0.05)。結(jié)論:自噬誘導(dǎo)劑pp242通過(guò)激活自噬流緩解TNF-α所致的腸上皮屏障損傷。
自噬; 腸黏膜屏障; 上皮細(xì)胞; 腫瘤壞死因子α; 炎癥性腸病
炎癥性腸病(inflammatory bowel disease, IBD)是一組病因未明的慢性腸道炎癥性疾病,主要包括潰瘍性結(jié)腸炎(UC)和克羅恩病(CD),近年來(lái)其發(fā)病率逐漸增高[1]。隨著對(duì)IBD發(fā)病機(jī)制的深入探索,大量研究發(fā)現(xiàn)腸屏障功能受損以及自噬異??赡茉谄浒l(fā)病中起重要作用[2-3]。自噬是真核細(xì)胞受到內(nèi)外界因素(饑餓、壓力、致病菌等)刺激后通過(guò)溶酶體途徑對(duì)胞內(nèi)受損蛋白、衰老細(xì)胞器等物質(zhì)降解的過(guò)程[4],其狀態(tài)隨環(huán)境的改變而發(fā)生改變,但對(duì)于IBD腸道炎癥中自噬變化是否參與腸屏障損傷的發(fā)生、發(fā)展,目前尚未見(jiàn)報(bào)道。本研究通過(guò)將腫瘤壞死因子-α(TNF-α)作用于腸上皮屏障模型體外模擬IBD腸道炎癥環(huán)境,并以自噬誘導(dǎo)劑pp242進(jìn)行干預(yù),旨在探討自噬改變與IBD腸屏障損傷之間的關(guān)系。
一、細(xì)胞株和主要試劑
人結(jié)直腸腺癌細(xì)胞Caco-2細(xì)胞株購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院細(xì)胞庫(kù);胎牛血清、非必需氨基酸、青霉素/鏈霉素購(gòu)自Gibco公司;FITC標(biāo)記葡聚糖、兔抗LC3B多克隆抗體購(gòu)自Sigma公司;兔抗p62多克隆抗體購(gòu)自Santa Cruz公司;HRP標(biāo)記的山羊抗兔IgG購(gòu)自上海翊圣生物科技有限公司;Millicell電阻儀和ECL發(fā)光液購(gòu)自Merck Millipore公司;Transwell小室(孔徑為0.4 μm,有效膜面積為0.33 cm2)購(gòu)自Corning公司。
二、研究方法
1. 腸上皮屏障模型的建立:將狀態(tài)良好的Caco-2細(xì)胞以2×105/mL的密度接種于Transwell小室中,使用含10%胎牛血清、10 g/mL非必需氨基酸以及1%青霉素/鏈霉素的DMEM培養(yǎng)液,在37 ℃、5% CO2的條件下培養(yǎng)。隔日換液,培養(yǎng)7 d后監(jiān)測(cè)跨上皮細(xì)胞電阻(transepithelial electrical resistance, TEER),電阻穩(wěn)定后行下一步實(shí)驗(yàn)。
2. 細(xì)胞分組:將已構(gòu)建好的腸上皮屏障細(xì)胞模型隨機(jī)分為4組:對(duì)照組不給予干預(yù);TNF-α組給予10 ng/mL TNF-α培養(yǎng)48 h;pp242組給予1 μmol/L pp242培養(yǎng)24 h;TNF-α+pp242組給予10 ng/mL TNF-α預(yù)處理24 h后再加入1 μmol/L pp242處理24 h。
3. TEER的測(cè)定:藥物處理細(xì)胞模型后除去小室內(nèi)的培養(yǎng)液,Hank平衡鹽溶液(HBSS)沖洗細(xì)胞2遍,吸凈后在上下層小室中加入HBSS并使內(nèi)外液面相齊平,待電阻調(diào)零后,將電阻儀長(zhǎng)短電極分別插入下層小室和上層小室中,讀數(shù)穩(wěn)定后取同一組3個(gè)小室的平均值。由于空白Transwell膜具有一定的電阻值,故標(biāo)準(zhǔn)TEER等于實(shí)際測(cè)得值減去空白對(duì)照值后再乘以Transwell小室的有效膜面積,電阻值單位為Ω·cm2。
4. FITC標(biāo)記葡聚糖通透性測(cè)定:HBSS沖洗細(xì)胞后吸凈殘液,于上層小室加入0.1 mL含1 mg/mL FITC標(biāo)記葡聚糖的HBSS,下層小室加入0.6 mL空白HBSS,37 ℃孵育2 h后收集下層小室液體,上熒光酶標(biāo)儀測(cè)定熒光強(qiáng)度(激發(fā)波長(zhǎng)為480 nm,發(fā)射波長(zhǎng)為520 nm),結(jié)果以各組通透量與對(duì)照組通透量的百分比表示。
5. 蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)自噬流相關(guān)蛋白表達(dá):將處理后的細(xì)胞樣本置于含蛋白酶抑制劑的RIPA裂解液中,冰上裂解15 min,離心后所取的上清液即為總蛋白。取等量的蛋白樣品進(jìn)行SDS-PAGE電泳,隨后將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜上,室溫封閉2 h,加入兔抗LC3B或p62一抗(工作濃度1∶1 000)4 ℃孵育過(guò)夜。次日用PBST洗膜3次,加入二抗(工作濃度1∶5 000)室溫孵育1 h,PBST洗膜3次。ECL發(fā)光液處理后,將膜放入凝膠成像儀中進(jìn)行曝光采圖,應(yīng)用NIH的Image J 1.49v軟件對(duì)蛋白條帶進(jìn)行定量分析。
三、統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
一、各組腸上皮屏障模型TEER的改變
4組間TEER相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=239.85,P<0.001),以pp242組TEER最高。進(jìn)一步兩兩比較發(fā)現(xiàn),與對(duì)照組相比,TNF-α組(t=16.19,P<0.05)、TNF-α+pp242組(t=10.39,P<0.05)TEER顯著降低,pp242組顯著升高(t=8.47,P<0.05),且TNF-α+pp242組TEER又顯著高于TNF-α組(t=5.80,P<0.05)(表1)。
二、各組腸上皮屏障模型FITC標(biāo)記葡聚糖通透性的改變
4組間FITC標(biāo)記葡聚糖通透性相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=319.42,P<0.001),以TNF-α組最高。進(jìn)一步兩兩比較發(fā)現(xiàn),與對(duì)照組相比,TNF-α組、TNF-α+pp242組FITC標(biāo)記葡聚糖通透性顯著升高(t=23.40,P<0.05;t=22.21,P<0.05),而對(duì)照組與pp242組(t=1.95,P>0.05)、TNF-α組與TNF-α+pp242組(t=1.18,P>0.05)之間差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(表1)。
三、自噬相關(guān)蛋白LC3B-Ⅱ和p62的改變
4組間LC3B-Ⅱ蛋白表達(dá)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=40.89,P<0.001),以TNF-α+pp242組最高。4組間p62蛋白表達(dá)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=147.14,P<0.001),以TNF-α組最高。進(jìn)一步兩兩比較發(fā)現(xiàn),與對(duì)照組相比,TNF-α組(t=6.62,P<0.05)、pp242組(t=8.21,P<0.05)、TNF-α+pp242組(t=10.53,P<0.05)LC3B-Ⅱ蛋白表達(dá)均顯著升高,且TNF-α+pp242組又顯著高于TNF-α組(t=3.91,P<0.05)。與對(duì)照組相比,TNF-α組p62蛋白顯著升高(t=7.61,P<0.05),pp242組(t=11.64,P<0.05)、TNF-α+pp242組(t=7.95,P<0.05)顯著降低,且TNF-α+pp242組又顯著低于TNF-α組(t=15.56,P<0.05)(表1、圖1)。
1 Da=0.992 1 u
IBD在臨床上主要表現(xiàn)為反復(fù)發(fā)作的腹痛、腹瀉和黏液血便,并可出現(xiàn)肛瘺、腸梗阻、腸穿孔等嚴(yán)重并發(fā)癥,給患者帶來(lái)了巨大的心理和經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)。迄今IBD的發(fā)病機(jī)制尚未完全明確,通常認(rèn)為其發(fā)病與遺傳易感人群受到外界環(huán)境刺激后出現(xiàn)持續(xù)異常的免疫反應(yīng)相關(guān)[5]。大量臨床實(shí)踐表明,氨基水楊酸類(lèi)、糖皮質(zhì)激素、生物制劑等藥物對(duì)IBD病情的緩解有一定作用,但均不能完全治愈慢性炎癥[6]。因此,完善IBD的發(fā)病機(jī)制,積極尋找能干預(yù)和逆轉(zhuǎn)IBD進(jìn)程的靶點(diǎn)具有重要的臨床意義。
越來(lái)越多證據(jù)表明,腸上皮屏障受損是IBD發(fā)生、發(fā)展中的重要環(huán)節(jié)[7-8]。腸上皮屏障主要包括機(jī)械屏障、生物屏障、化學(xué)屏障和免疫屏障,在維持腸道穩(wěn)態(tài)中起重要作用。IBD腸屏障功能受損導(dǎo)致腸上皮通透性增加,使抗原物質(zhì)進(jìn)入黏膜固有層引起免疫反應(yīng),免疫反應(yīng)產(chǎn)生的大量致炎因子反過(guò)來(lái)作用于腸上皮,進(jìn)一步增加腸道通透性,導(dǎo)致惡性循環(huán),引起持續(xù)過(guò)度的免疫反應(yīng)[9]。因此,探索阻斷腸屏障損傷的途徑,恢復(fù)正常的腸上皮功能,可能為IBD提供新的治療策略。
自噬是維持細(xì)胞穩(wěn)態(tài)的重要代謝過(guò)程。細(xì)胞受到內(nèi)外界因素的刺激后,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)或高爾基體脫落的雙層膜包裹胞內(nèi)變性蛋白和衰老細(xì)胞器等物質(zhì)形成自噬小體,自噬小體與溶酶體融合后形成自噬溶酶體降解包裹的內(nèi)容物,降解后形成的小分子物質(zhì)被細(xì)胞重新利用,完成細(xì)胞的新陳代謝以及細(xì)胞器再生[4]。近十年的全基因組關(guān)聯(lián)分析(GWAS)研究[10-11]結(jié)果證實(shí),IBD患者的多個(gè)自噬相關(guān)基因(如IRGM、ATG16L1等)發(fā)生了多態(tài)性改變。進(jìn)一步的自噬基因功能研究表明,自噬在腸道胞內(nèi)菌的清除過(guò)程中起關(guān)鍵作用;自噬缺陷會(huì)導(dǎo)致持續(xù)性胞內(nèi)菌感染,引起Paneth細(xì)胞形態(tài)學(xué)異常和分泌功能的改變,誘發(fā)持續(xù)性腸道炎癥[12-13]。Saito等[14]發(fā)現(xiàn),TNF-α與自噬抑制劑可協(xié)同作用于腸上皮細(xì)胞,使細(xì)胞黏附能力下降,損傷上皮屏障功能,提示腸上皮屏障功能可能受自噬的調(diào)控。
表1 各組腸上皮屏障TEER、FITC標(biāo)記葡聚糖通透性和自噬相關(guān)蛋白表達(dá)的變化±s)
*與對(duì)照組比較,P<0.05;#與TNF-α組比較,P<0.05
本研究將TNF-α作用于腸上皮屏障體外模型以模擬IBD腸屏障損傷,并使用自噬誘導(dǎo)劑pp242進(jìn)行干預(yù),以TEER和FITC標(biāo)記葡聚糖通透性分別作為評(píng)估腸上皮屏障完整性和腸上皮對(duì)大分子通透性的指標(biāo),結(jié)果顯示pp242可顯著緩解TNF-α所致的TEER降低,但不能緩解TNF-α所致的FITC標(biāo)記葡聚糖通透性增加。初步說(shuō)明pp242誘導(dǎo)自噬可部分改善TNF-α所致的腸上皮屏障損傷。進(jìn)一步檢測(cè)自噬相關(guān)蛋白表達(dá)的變化發(fā)現(xiàn),TNF-α處理后LC3B-Ⅱ蛋白表達(dá)明顯升高,說(shuō)明自噬小體聚集增加。自噬是一個(gè)動(dòng)態(tài)連續(xù)的過(guò)程,主要包括誘導(dǎo)、成核、延長(zhǎng)、融合和降解5個(gè)步驟,當(dāng)自噬的誘導(dǎo)過(guò)程增加或自噬的降解過(guò)程受抑制時(shí),均可使細(xì)胞內(nèi)自噬小體增加,即表現(xiàn)為L(zhǎng)C3B-Ⅱ表達(dá)升高。p62為自噬成熟的標(biāo)志蛋白,主要通過(guò)自噬過(guò)程降解。本研究發(fā)現(xiàn),TNF-α作用后p62蛋白表達(dá)明顯升高,說(shuō)明上述LC3B-Ⅱ表達(dá)升高是自噬降解過(guò)程受抑制所致。而pp242處理后,LC3B-Ⅱ蛋白表達(dá)進(jìn)一步上升,但p62蛋白表達(dá)顯著降低。p62是一種主要通過(guò)自噬過(guò)程進(jìn)行降解的蛋白,其表達(dá)降低提示pp242作用可使自噬降解能力恢復(fù);pp242是一種自噬誘導(dǎo)劑,可促進(jìn)LC3B-Ⅱ水平上升,故TNF-α+pp242組LC3B-Ⅱ水平進(jìn)一步升高提示自噬流的恢復(fù)。結(jié)合上述腸屏障功能實(shí)驗(yàn)的結(jié)果,提示pp242可能通過(guò)解除TNF-α對(duì)自噬過(guò)程的抑制來(lái)促進(jìn)自噬流的通暢從而改善腸屏障功能損傷。
綜上所述,TNF-α誘導(dǎo)的腸上皮屏障損傷模型中存在自噬流的抑制,而自噬誘導(dǎo)劑pp242通過(guò)激活自噬并恢復(fù)自噬流的通暢,從而改善腸上皮屏障功能。本研究為尋找IBD可能的治療靶點(diǎn)提供了新思路,但研究結(jié)論仍需進(jìn)一步探討證實(shí)。
1 Ng SC. Emerging leadership lecture: Inflammatory bowel disease in Asia: emergence of a "Western" disease[J]. J Gastroenterol Hepatol, 2015, 30 (3): 440-445.
2 Landy J, Ronde E, English N, et al. Tight junctions in inflammatory bowel diseases and inflammatory bowel disease associated colorectal cancer[J]. World J Gastroenterol, 2016, 22 (11): 3117-3126.
3 Hooper KM, Barlow PG, Stevens C, et al. Inflammatory bowel disease drugs: A focus on autophagy[J]. J Crohns Colitis, 2017, 11 (1): 118-127.
4 Zhong Z, Sanchez-Lopez E, Karin M. Autophagy, inflammation, and immunity: A troika governing cancer and its treatment[J]. Cell, 2016, 166 (2): 288-298.
5 Malik TA. Inflammatory bowel disease: Historical perspective, epidemiology, and risk factors[J]. Surg Clin North Am, 2015, 95 (6): 1105-1122, v.
6 Dulai PS, Sandborn WJ. Next-generation therapeutics for inflammatory bowel disease[J]. Curr Gastroenterol Rep, 2016, 18 (9): 51.
7 Alipour M, Zaidi D, Valcheva R, et al. Mucosal barrier depletion and loss of bacterial diversity are primary abnormalities in paediatric ulcerative colitis[J]. J Crohns Colitis, 2016, 10 (4): 462-471.
8 Vivinus-Nébot M, Frin-Mathy G, Bzioueche H, et al. Functional bowel symptoms in quiescent inflammatory bowel diseases: role of epithelial barrier disruption and low-grade inflammation[J]. Gut, 2014, 63 (5): 744-752.
9 Lee SH. Intestinal permeability regulation by tight junction: implication on inflammatory bowel diseases[J]. Intest Res, 2015, 13 (1): 11-18.
10 Lu XC, Tao Y, Wu C, et al. Association between variants of the autophagy related gene -- IRGM and susceptibility to Crohn’s disease and ulcerative colitis: a meta-analysis[J]. PLoS One, 2013, 8 (11): e80602.
11 Márquez A, Núez C, Martínez A, et al. Role of ATG16L1 Thr300Ala polymorphism in inflammatory bowel disease: a study in the Spanish population and a meta-analysis[J]. Inflamm Bowel Dis, 2009, 15 (11): 1697-1704.
12 Cadwell K, Patel KK, Maloney NS, et al. Virus-plus-susceptibility gene interaction determines Crohn’s disease gene Atg16L1 phenotypes in intestine[J]. Cell, 2010, 141 (7): 1135-1145.
13 Conway KL, Kuballa P, Song JH, et al. Atg16l1 is required for autophagy in intestinal epithelial cells and protection of mice from Salmonella infection[J]. Gastroenterology, 2013, 145 (6): 1347-1357.
14 Saito M, Katsuno T, Nakagawa T, et al. Intestinal epithelial cells with impaired autophagy lose their adhesive capacity in the presence of TNF-α[J]. Dig Dis Sci, 2012, 57 (8): 2022-2030.
(2016-12-16收稿;2017-04-05修回)
Effect of Autophagy Inducer pp242 on Intestinal Barrier Dysfunction Induced by Tumor Necrosis Factor-α
ZHANGCong1,WANGJiazheng1,SHENYujie1,ZHOUMingxia1,CHENYingwei1,2.
1DepartmentofGastroenterology,XinhuaHospitalAffiliatedtoShanghaiJiaotongUniversitySchoolofMedicine,Shanghai(200092);2ShanghaiKeyLaboratoryofPediatricGastroenterologyandNutrition,Shanghai
Correspondence to: CHEN Yingwei, Email: way_01chen@hotmail.com
Background: Intestinal barrier dysfunction and autophagy abnormality play important roles in the mechanism of inflammatory bowel disease, however, whether autophagy has effect on intestinal barrier dysfunction has not been reported. Aims: To explore the effect of autophagy inducer pp242 on intestinal barrier dysfunction induced by tumor necrosis factor-α (TNF-α). Methods: Model of intestinal epithelial monolayer barrier was established with Caco-2 cells in Transwell chambers, and then randomly divided into four groups: control group (without any intervention), TNF-α group (10 ng/mL TNF-α), pp242 group (1 μmol/L pp242), TNF-α+pp242 group (10 ng/mL TNF-α+1 μmol/L pp242). The intestinal barrier function was evaluated by transepithelial electrical resistance (TEER) and flux of FITC-dextran. The protein expressions of autophagy related protein LC3B-Ⅱ and p62 were detected by Western blotting. Results: Compared with control group, TEER was significantly decreased (P<0.05), flux of FITC-dextran, protein expressions of LC3B-Ⅱ and p62 were significantly increased in TNF-α group (P<0.05). Compared with TNF-α group, TEER was significantly increased (P<0.05), protein expression of LC3B-Ⅱ was significantly increased (P<0.05) while protein expression of p62 was significantly decreased in TNF-α+pp242 group (P<0.05). Conclusions: Autophagy inducer pp242 relieves TNF-α-induced intestinal epithelial barrier dysfunction via activating autophagy flux.
Autophagy; Intestinal Mucosal Barrier; Epithelial Cells; Tumor Necrosis Factor-alpha; Inflammatory Bowel Disease
10.3969/j.issn.1008-7125.2017.06.004
*本課題由國(guó)家自然科學(xué)基金(81370485)資助
#本文通信作者,Email: way_01chen@hotmail.com