廖夏旖，潘 航，Narayan Paudyal，李國(guó)煒，劉亞杰，方維煥，李肖梁

(浙江大學(xué)動(dòng)物科學(xué)學(xué)院 浙江大學(xué)動(dòng)物預(yù)防醫(yī)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，浙江 杭州 310058)

滿膛與凈膛冷鮮雞微生物污染特征分析

廖夏旖，潘 航，Narayan Paudyal，李國(guó)煒，劉亞杰，方維煥，李肖梁*

(浙江大學(xué)動(dòng)物科學(xué)學(xué)院 浙江大學(xué)動(dòng)物預(yù)防醫(yī)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，浙江 杭州 310058)

探索滿膛與凈膛方式屠宰加工的冷鮮雞中重要微生物污染情況，以期為冷鮮雞的微生物控制技術(shù)開(kāi)發(fā)提供依據(jù)。研究分別采集屠宰加工后第0～2天的滿膛雞與凈膛雞的開(kāi)膛處肌肉，采用國(guó)標(biāo)法和實(shí)時(shí)熒光定量檢測(cè)法進(jìn)行總菌數(shù)檢測(cè)以及大腸菌群、空腸彎曲菌等微生物分類計(jì)數(shù)，并使用SPSS軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。研究結(jié)果表明，凈膛雞中菌落總數(shù)、大腸菌群數(shù)和空腸彎曲菌3個(gè)指標(biāo)的檢測(cè)合格率均低于滿膛雞；凈膛雞的總菌數(shù)和大腸菌群數(shù)顯著高于滿膛雞；不同禽類屠宰場(chǎng)來(lái)源的滿膛雞總菌數(shù)和大腸菌群數(shù)差異顯著，而凈膛雞差異不顯著；在第0～2天低溫(4 ℃)儲(chǔ)存貨架期內(nèi)，凈膛雞的微生物污染變化與滿膛雞差異不顯著，但凈膛雞中微生物的增殖速度較滿膛雞緩慢。16S rDNA檢測(cè)，凈膛雞和滿膛雞中均存在多種微生物，但在種類上也存在著一定的差異，其中陰溝腸桿菌等7種微生物未在滿膛雞中檢測(cè)到。凈膛雞和滿膛雞微生物均存在著超標(biāo)現(xiàn)象；凈膛雞中的二次污染較為嚴(yán)重；在貨架期保鮮方面，凈膛雞具有優(yōu)勢(shì)。結(jié)果為冷鮮雞的微生物控制技術(shù)開(kāi)發(fā)以及凈膛工藝的優(yōu)化提供依據(jù)。

滿膛雞； 凈膛雞； 凈膛工藝； 二次污染

從“戰(zhàn)勝”禽流感等禽類疾病傳播、促進(jìn)養(yǎng)禽業(yè)健康發(fā)展的長(zhǎng)遠(yuǎn)計(jì)，加強(qiáng)家禽流通市場(chǎng)的管理，對(duì)活禽進(jìn)行“集中屠宰、冷鏈供應(yīng)、冰鮮上市”將是必然趨勢(shì)。浙江、廣東、上海等多個(gè)省份共關(guān)閉2 000余個(gè)活禽市場(chǎng)。根據(jù)《浙江省人民政府辦公廳關(guān)于進(jìn)一步加強(qiáng)人感染H7N9禽流感防控工作的通知》要求，自2014年7月1日起浙江省縣市區(qū)主城區(qū)永久性關(guān)閉活禽交易市場(chǎng)。這意味著，冷鮮雞將成為雞肉的主要供應(yīng)方式。消費(fèi)習(xí)慣和模式的轉(zhuǎn)變，對(duì)上市冷鮮禽的安全提出了更高的要求。

據(jù)國(guó)家衛(wèi)計(jì)委關(guān)于2015年全國(guó)食物中毒事件情況的通報(bào)顯示，微生物性食物中毒事件報(bào)告的中毒人數(shù)最多，共計(jì)3 181人，占總中毒人數(shù)的53.7%，可見(jiàn)食源性致病微生物是導(dǎo)致食品安全問(wèn)題的最主要危險(xiǎn)因素之一。而雞肉是人們膳食中蛋白質(zhì)的重要來(lái)源，有統(tǒng)計(jì)顯示，禽肉在肉類消費(fèi)結(jié)構(gòu)中的比重自1982年起持續(xù)攀升，至2012年我國(guó)的禽肉產(chǎn)量達(dá)1 823萬(wàn)t[1]。研究表明[2-4]，我國(guó)肉雞市場(chǎng)均有不同程度及不同種類的微生物污染，存在很大的安全隱患。滿膛和凈膛冷鮮雞是目前市場(chǎng)上供應(yīng)冷鮮雞的兩種重要的產(chǎn)品，盡管滿膛冷鮮雞供應(yīng)已被命令禁止，但由于我國(guó)傳統(tǒng)的消費(fèi)習(xí)慣使然，市民更傾向于選擇價(jià)格較低、胴體完整的滿膛雞[5]。凈膛雞與滿膛雞的微生物污染情況、貨架期對(duì)其微生物分布特征的影響等研究甚少。

本研究旨在探明凈膛與未凈膛冷鮮雞經(jīng)屠宰加工工序以及貨架期的微生物污染情況，以期為冷鮮雞的屠宰場(chǎng)加工工藝的優(yōu)化以及微生物控制技術(shù)開(kāi)發(fā)提供依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 主要試劑

平板計(jì)數(shù)瓊脂、結(jié)晶紫中性紅膽鹽瓊脂(VRBA)、煌綠乳糖膽鹽肉湯(BGLB)、布氏肉湯、改良skirrow培養(yǎng)基、哥倫比亞瓊脂培養(yǎng)基均購(gòu)自北京路橋生物有限公司，無(wú)菌PBS緩沖液(pH值7.2 10 μmol·L-1)、瓊脂糖凝膠、細(xì)菌基因組DNA抽提試劑盒購(gòu)自北京天根生物工程公司，16S rDNA擴(kuò)增產(chǎn)物測(cè)序由博尚公司完成，Vazyme AceQTM Qpcr Probe Master Mix試劑盒購(gòu)自南京諾唯贊生物科技有限公司。16S rDNA的PCR擴(kuò)增采用通用引物，針對(duì)C.jejuni中單拷貝基因mapA設(shè)計(jì)一對(duì)引物和一條探針，由上海捷瑞生物工程有限公司合成，序列見(jiàn)表1。

表1 靶基因名稱及引物序列

目的基因引物名稱引物序列產(chǎn)物大小/bp16SrDNA16S?F5′?ATCTAATGGCTTAACCATTAAAC?3′150016S?R5′?GGACGGTAACTAGTTTAGTATT?3′mapART?F5′?TGTCAAGCACAACTATTCCTC?3′126RT?R5′?TAAAAGAAGGGCAAAAGGT?3′TaqmanFAM?ACCGCATTAAAATTCACATCGACA?TAMRA

1.2 材料與儀器

手術(shù)刀、鑷子、超凈工作臺(tái)、一次性無(wú)菌平皿、無(wú)菌袋、電子秤、均質(zhì)器、恒溫培養(yǎng)箱、酶聯(lián)免疫檢測(cè)儀、搖床、高溫高壓滅菌鍋、烘箱、漩渦振蕩器、離心機(jī)、恒溫水浴鍋、沸水浴鍋、PCR儀、電泳儀、熒光定量PCR儀(Bio-RAD)、4 ℃冰箱、-20 ℃冰箱、厭氧培養(yǎng)罐、超純水系統(tǒng)。

1.3 方法

1.3.1 樣品采集與分組

選取杭州市3個(gè)禽類定點(diǎn)屠宰場(chǎng)，分別購(gòu)買(mǎi)同一屠宰場(chǎng)、同一生產(chǎn)批次的10只凈膛雞和10只滿膛雞。冷鮮雞購(gòu)買(mǎi)后均單獨(dú)置于無(wú)菌袋中送至實(shí)驗(yàn)室。取回后，每個(gè)屠宰場(chǎng)立即分別取5只凈膛雞和5只滿膛雞進(jìn)行樣品預(yù)處理，其余樣品于4 ℃保存48 h后進(jìn)行模擬貨架期微生物生長(zhǎng)、失活情況分析。

1.3.2 樣品預(yù)處理

超凈臺(tái)內(nèi)用無(wú)菌剪分別剪取開(kāi)膛處的肉樣，放在無(wú)菌平板內(nèi)準(zhǔn)確稱量10 g(雞胸肉5 g，最后一排肋骨下兩側(cè)5 g)，剪碎肉樣放入盛有90 mL PBS緩沖液的無(wú)菌均質(zhì)袋中，用拍擊式均質(zhì)器拍打2 min，制成1∶10的樣品勻液。每只雞作為1個(gè)樣本。

1.3.3 總菌數(shù)檢測(cè)

菌落總數(shù)按照GB 4789.2—2010測(cè)定[6]。取1∶10的樣品勻液1 mL作10倍連續(xù)稀釋至10-5，不同稀釋度的樣品勻液于平板計(jì)數(shù)瓊脂上進(jìn)行涂板計(jì)數(shù)，每個(gè)稀釋度做4個(gè)平行，每個(gè)平行取10 μL涂板。37 ℃恒溫培養(yǎng)16 h，選取菌落數(shù)為15～150的無(wú)蔓延菌落生長(zhǎng)的平板進(jìn)行總菌落計(jì)數(shù)。

1.3.4 細(xì)菌種類檢測(cè)

隨機(jī)挑選37 ℃恒溫培養(yǎng)16 h后的凈膛雞和滿膛雞樣品對(duì)應(yīng)平板各2個(gè)，每板挑取3個(gè)大小不一的菌落，接種于1 mL BHI中，37 ℃于120 r·min-1搖床培養(yǎng)24 h，水煮法提取DNA，16S rDNA PCR擴(kuò)增后，送測(cè)序公司對(duì)產(chǎn)物雙向測(cè)序。16S rDNA擴(kuò)增反應(yīng)條件95 ℃ 5 min，1 cycle；95 ℃ 30 s，50 ℃ 30 s，72 ℃ 90 s，35 cycles；72 ℃延伸10 min。

1.3.5 大腸菌群計(jì)數(shù)

大腸菌群數(shù)按照GB 4789.3—2010測(cè)定[7]。取上述合適稀釋度的樣品勻液于VRBA平板上涂板計(jì)數(shù)，每個(gè)稀釋度4個(gè)平行，每個(gè)平行10 μL，37 ℃恒溫18 h。選取菌落在15～150的無(wú)蔓延菌落生長(zhǎng)的平板計(jì)數(shù)，并挑選10個(gè)典型及可疑菌落于裝有倒立杜氏試管的BGLB肉湯中37 ℃恒溫24 h，觀察產(chǎn)氣情況。凡BGLB肉湯管產(chǎn)氣，即可報(bào)告為大腸菌群陽(yáng)性。平板計(jì)數(shù)結(jié)果乘以BGLB肉湯陽(yáng)性管比例即實(shí)際大腸菌群菌落數(shù)。

1.3.6 空腸彎曲菌計(jì)數(shù)

Real-time PCR檢測(cè)C.jejuni的方法由本實(shí)驗(yàn)室建立，簡(jiǎn)述如下。首先制備標(biāo)準(zhǔn)曲線。將凍存的C.jejuni劃線至skirrow平板，待菌落長(zhǎng)出后挑取單菌落于布氏肉湯中微需氧條件下42 ℃培養(yǎng)36 h，6 000 r·min-1離心10 min，棄上清，PBS洗滌一次，重懸沉淀調(diào)整D620至0.15 (菌液濃度約為109mL-1)，10倍梯度稀釋。選取合適濃度的菌液于哥倫比亞瓊脂培養(yǎng)基上點(diǎn)板計(jì)數(shù)，并與原菌液試劑盒法一起提取DNA，原菌液提取得到的DNA用雙蒸水10倍稀釋8個(gè)梯度，采用Vazyme AceQTM qPCR Probe Master Mix試劑盒與已點(diǎn)板計(jì)數(shù)的菌液DNA(參照DNA)一同進(jìn)行熒光定量反應(yīng)，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。反應(yīng)條件為95 ℃ 5 min，1 cycle；95 ℃ 10 s，56 ℃ 30 s，68 ℃ 15 s，40 cycles。其次進(jìn)行待測(cè)樣品熒光定量檢測(cè)。取1∶10稀釋的樣品勻液2 mL(可簡(jiǎn)短離心以去除較大肉沫)，利用細(xì)菌基因組DNA試劑盒法抽提DNA，并與8個(gè)濃度梯度的標(biāo)準(zhǔn)空腸彎曲菌DNA同步熒光定量擴(kuò)增。標(biāo)準(zhǔn)品2個(gè)重復(fù)，待測(cè)樣3個(gè)重復(fù)。計(jì)算空腸彎曲菌數(shù)。

1.3.7 模擬貨架期微生物生長(zhǎng)/失活情況

分別對(duì)4 ℃保存48 h的5只凈膛雞和5只滿膛雞樣品預(yù)處理，檢測(cè)總菌數(shù)、大腸菌群數(shù)、空腸彎曲菌數(shù)及細(xì)菌種類，并記錄結(jié)果。

1.3.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

先對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行格拉布斯(Grubbs)檢驗(yàn)，剔除異常值，然后采用單因素方差分析檢驗(yàn)，比較滿膛雞與凈膛雞開(kāi)膛處肌肉中3種微生物的總體平均數(shù)以及貨架期內(nèi)冷鮮雞肌肉中微生物在4 ℃冷藏保存的生長(zhǎng)/失活情況。

2 結(jié)果與分析

2.1 滿膛雞與凈膛雞合格率

根據(jù)GB 16868—2005鮮、凍禽產(chǎn)品標(biāo)準(zhǔn)[8]，鮮雞肉菌落總數(shù)不得超過(guò)106g-1，大腸菌群數(shù)不得超過(guò)104(100 g)-1，空腸彎曲菌不得檢出。菌落總數(shù)檢測(cè)結(jié)果顯示，滿膛雞合格率為6.7%，凈膛雞為0；大腸菌群數(shù)檢測(cè)結(jié)果顯示，滿膛雞合格率為66.7%，凈膛雞合格率為26.7%；空腸彎曲菌檢測(cè)結(jié)果顯示，滿膛雞合格率為26.7%，凈膛雞合格率為13.3%。凈膛雞針對(duì)3個(gè)指標(biāo)檢測(cè)的合格率均低于滿膛雞。

2.2 滿膛與凈膛雞微生物污染情況比較

滿膛雞與凈膛雞幾種微生物污染情況比較見(jiàn)表2。凈膛雞的總菌數(shù)和大腸菌群數(shù)顯著高于滿膛雞；兩者空腸彎曲菌數(shù)經(jīng)方差分析無(wú)顯著差異。

表2 滿膛雞與凈膛雞微生物污染情況 lg g-1

注：同列數(shù)據(jù)后無(wú)相同小寫(xiě)字母表示在0.05水平差異顯著。

2.3 不同屠宰場(chǎng)滿膛雞與凈膛雞微生物污染情況差異比較

來(lái)自杭州市不同定點(diǎn)禽類屠宰場(chǎng)的滿膛雞與凈膛雞微生物污染情況見(jiàn)圖l。結(jié)果表明，屠宰場(chǎng)A、B、C三地滿膛雞總菌數(shù)分別為7.29、6.64和7.28 lg g-1，差異顯著；大腸菌群數(shù)分別為5.15、5.13和6.69 lg g-1，差異極顯著。凈膛雞總菌數(shù)分別為7.65、7.24和7.32 lg g-1，差異不顯著；大腸菌群數(shù)依次為5.98、6.48和6.46 lg g-1，差異不顯著。三地滿膛雞和凈膛雞空腸彎曲菌數(shù)差異均不顯著。

圖1 滿膛雞(a)、凈膛雞(b)在不同屠宰場(chǎng)中微生物污染情況差異

2.4 滿膛雞與凈膛雞低溫冷藏下微生物污染變化

貨架期對(duì)滿膛雞和凈膛雞微生物生長(zhǎng)影響見(jiàn)圖2。結(jié)果顯示，4 ℃冷藏48 h后，肉雞的總菌數(shù)與大腸菌群數(shù)均有顯著增長(zhǎng)。滿膛雞總菌數(shù)增長(zhǎng)0.79 lg g-1，凈膛雞增長(zhǎng)0.69 lg g-1；滿膛雞大腸菌群增長(zhǎng)0.75 lg g-1，凈膛雞增長(zhǎng)0.44 lg g-1?？漳c彎曲菌數(shù)均顯著減少，滿膛雞減少0.45 lg g-1，凈膛雞減少0.48 lg g-1。試驗(yàn)結(jié)果表明，4 ℃冷藏條件下不能有效抑制大部分微生物的增長(zhǎng)，而空腸彎曲菌對(duì)低溫不耐受，故能被有效抑制并減少。方差分析結(jié)果顯示，滿膛雞與凈膛雞低溫冷藏48 h時(shí)的總菌數(shù)、大腸菌群數(shù)和空腸彎曲菌數(shù)的變化差異不顯著，但從變化趨勢(shì)來(lái)看，凈膛雞相較于滿膛雞，其總菌數(shù)、大腸菌群數(shù)的增長(zhǎng)速度較緩慢，空腸彎曲菌的減少速度較快。

圖2 4 ℃貯藏48 h后滿膛雞與凈膛雞微生物污染變化情況

2.5 細(xì)菌種類

凈膛雞、滿膛雞中均攜帶的菌群具有高度種屬多樣性，每個(gè)屠宰場(chǎng)凈膛雞、滿膛雞攜帶的菌落有一定的共性，也存在一定的差異。其中滿膛凈膛雞均攜帶的菌群主要包括不動(dòng)桿菌屬、氣單胞菌屬、腸桿菌屬、檸檬酸桿菌屬、克雷伯菌屬，其中氣單胞菌屬為優(yōu)勢(shì)菌群；僅在滿膛雞中檢測(cè)到的菌群有嗜泉?dú)鈫伟?、溶酪大球菌、霍氏腸桿菌、Comamonasjiangduensis。僅凈膛雞中檢測(cè)到的菌群有蜂房哈弗尼菌、Acinetobacterparvus、鮑氏不動(dòng)桿菌、陰溝腸桿菌、產(chǎn)氣腸桿菌、阿氏腸桿菌、泡囊假單胞菌。

3 討論

本研究顯示，凈膛雞的總菌數(shù)、大腸菌群數(shù)及空腸彎曲菌數(shù)的合格率均低于滿膛雞，并且凈膛雞的以上3種微生物的計(jì)數(shù)平均值均高于滿膛雞，此外在凈膛雞中檢測(cè)到滿膛雞中未檢出的陰溝腸桿菌等7種微生物。這表明屠宰加工后凈膛雞的微生物污染情況比滿膛雞嚴(yán)重，且可能存在二次污染。屠宰加工雖對(duì)雞胴體進(jìn)行清洗消毒，但效果不理想，反而加重微生物污染情況，此結(jié)果與夏小龍[9]等與張秀麗[10]等對(duì)肉雞屠宰加工過(guò)程污染微生物分析結(jié)果相符。

從屠宰加工工序來(lái)看，滿膛雞與凈膛雞的區(qū)別在于掏膛操作以及之后的預(yù)冷池消毒。規(guī)范的凈膛工藝能夠有效降低微生物數(shù)量，而國(guó)內(nèi)的凈膛工藝尚未優(yōu)化成熟。在理想狀態(tài)下，凈膛操作可有效降低肉雞自體攜帶的各種微生物。Irena等[11]對(duì)捷克某一屠宰場(chǎng)檢測(cè)結(jié)果顯示，隨著去毛、凈膛、沖洗、冷凍工序進(jìn)行，總菌數(shù)與大腸桿菌數(shù)是逐級(jí)減少的。Keener等[12]研究表明，凈膛能減少雞胴體彎曲菌的數(shù)量。但是，去內(nèi)臟過(guò)程中腸道易破損，腸道內(nèi)攜帶的很多天然菌落會(huì)污染肉雞胴體表面，使去內(nèi)臟后胴體污染菌的種類和數(shù)量增加。同時(shí)，凈膛后雖去除了自體微生物，但卻也為加工過(guò)程中的細(xì)菌提供了新的表面皮膚供殖源。孫彥雨等[13]對(duì)凈膛前后雞胴體微生物進(jìn)行了檢測(cè)，發(fā)現(xiàn)去內(nèi)臟后微生物多樣性增加。李虹敏等[14]的研究成果中也有提到，凈膛間工人手的微生物污染程度最高，在凈膛后雞胴體的微生物數(shù)量顯著上升。掏膛造成的污染很大程度上是因?yàn)槟c道破裂導(dǎo)致自體微生物溢出，繼而污染設(shè)備及工人手，引發(fā)交叉污染。本試驗(yàn)檢測(cè)的空腸彎曲菌作為致病菌，一旦進(jìn)入人的食物鏈很容易導(dǎo)致感染或食物中毒現(xiàn)象的發(fā)生，而其源頭很多時(shí)候是家禽屠宰過(guò)程中糞便的溢出使加工中的禽肉受到了彎曲菌的污染[15]。因此在屠宰過(guò)程中減少腸溶現(xiàn)象對(duì)減少肉雞胴體微生物污染及保證雞肉安全具有重要作用。

預(yù)冷過(guò)程對(duì)消除胴體微生物污染起著重要的作用，閔紅等研究表明[16]，在預(yù)冷水中可檢出大量微生物污染，這樣非但對(duì)禽類胴體沒(méi)起到消毒作用反而具有一定的污染。理想情況下，通過(guò)水的沖洗作用能沖洗掉胴體表面粘附的大部分細(xì)菌，并且4 ℃以下的水溫和水中一定濃度的消毒劑能抑制絕大多數(shù)嗜溫細(xì)菌的生長(zhǎng)繁殖[14]，但由于嗜冷腐敗菌經(jīng)常定居在預(yù)冷水槽中及冷卻用冰上，預(yù)冷過(guò)程也會(huì)導(dǎo)致交叉污染的發(fā)生[17-18]。預(yù)冷池中雖然加入了一定濃度的消毒劑，但仍樊靜等[19]研究發(fā)現(xiàn)在加工過(guò)程中某些工序會(huì)產(chǎn)生交叉污染，后期的預(yù)冷過(guò)程會(huì)導(dǎo)致嗜冷菌的污染。預(yù)冷過(guò)程作為屠宰加工工序的關(guān)鍵減菌節(jié)點(diǎn)，應(yīng)選擇合適的減菌劑類別及濃度，合理控制預(yù)冷水的置換時(shí)間，定期清洗預(yù)冷池，以避免預(yù)冷池對(duì)禽肉胴體造成的二次污染。

在本次試驗(yàn)中不同屠宰場(chǎng)之間的滿膛雞總菌數(shù)與大腸菌群數(shù)差異顯著，而凈膛雞不顯著，這說(shuō)明掏膛和預(yù)冷對(duì)于改變凈膛雞的微生物數(shù)量是有效的。分析差異原因，不同屠宰場(chǎng)的肉雞來(lái)源不同，養(yǎng)殖環(huán)境與方式也不相同，故肉雞體內(nèi)的菌落種類與數(shù)量也不相同；屠宰加工僅對(duì)滿膛雞肉的皮膚進(jìn)行沖洗消毒等操作，對(duì)改變其體內(nèi)的微生物污染情況影響不大。因此滿膛雞的總菌數(shù)與大腸菌群數(shù)在不同屠宰場(chǎng)之間有顯著的差異。而凈膛雞由于掏膛操作，去除了內(nèi)臟，因此排除了來(lái)自不同屠宰場(chǎng)的肉雞之間的差異；同時(shí)肉雞的體內(nèi)環(huán)境暴露在外，經(jīng)過(guò)相似的屠宰加工環(huán)節(jié)，胴體的菌群生長(zhǎng)狀況趨于相同。因此凈膛雞的總菌數(shù)與大腸菌群數(shù)在不同屠宰場(chǎng)之間無(wú)顯著差異。這些現(xiàn)象表明，凈膛操作對(duì)于改變雞胴體的微生物數(shù)量是必要的。

在48 h低溫儲(chǔ)存的貨架期內(nèi)，凈膛雞保鮮效果與滿膛雞未產(chǎn)生顯著差異，但表現(xiàn)出總菌數(shù)、大腸菌群數(shù)的增長(zhǎng)相對(duì)緩慢的趨勢(shì)，這說(shuō)明隨著貨架期的延長(zhǎng)，凈膛雞的微生物數(shù)量控制相對(duì)滿膛雞具有優(yōu)勢(shì)。生鮮雞肉的化學(xué)與物理減菌保鮮技術(shù)研究目前較為活躍[20]，在屠宰加工階段有效控制微生物數(shù)量，肉雞的貨架期就能得以延長(zhǎng)。

在當(dāng)前各地紛紛出臺(tái)關(guān)閉活禽市場(chǎng)的政策下，凈膛雞的屠宰包裝和冰鮮上市是產(chǎn)品發(fā)展的必然結(jié)果。而凈膛雞微生物污染的現(xiàn)狀表明，當(dāng)前屠宰過(guò)程的污染情況仍然非常嚴(yán)峻，冷鮮雞的微生物控制技術(shù)亟待開(kāi)發(fā)與優(yōu)化。

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(責(zé)任編輯：萬(wàn) 晶)

2017-01-21

浙江省科技廳重大科技專項(xiàng)重大農(nóng)業(yè)項(xiàng)目(2014C02001)

廖夏旖(1994—)，女，碩士研究生，研究方向?yàn)槭称肺⑸飳W(xué)，E-mail：xyliao@zju.edu.cn。

李肖梁，研究員，E-mail：xlli@zju.edu.cn。

10.16178/j.issn.0528-9017.20170545

TS251.1

A

0528-9017(2017)05-0864-05

文獻(xiàn)著錄格式：廖夏旖，潘航，Narayan Paudyal，等. 滿膛與凈膛冷鮮雞微生物污染特征分析[J].浙江農(nóng)業(yè)科學(xué)，2017，58(5)：864-869.