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        青蒿不同部位總RNA提取方法比較

        2017-05-02 11:29:29周敏付金娥韋樹(shù)根潘麗梅
        江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2017年3期
        關(guān)鍵詞:青蒿蛋白質(zhì)

        周敏 付金娥 韋樹(shù)根 潘麗梅

        摘要:為從青蒿中提取高質(zhì)量的RNA,以青蒿葉片、莖、根和花為材料,采用TRIzol法、改良TRIzol法、十六烷基三甲基溴化銨-LiCl(CTAB-LiCl)法、CTAB-異丙醇法4種方法,比較不同材料不同方法分離RNA的效果。結(jié)果表明,4種方法所提RNA純度均較高,其中改良TriZol法所提RNA質(zhì)量最好。

        關(guān)鍵詞:青蒿;RNA提??;改良TRIzol法;蛋白質(zhì)

        中圖分類號(hào): Q522文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A

        文章編號(hào):1002-1302(2017)03-0031-02

        收稿日期:2015-09-29

        基金項(xiàng)目:國(guó)家自然科學(xué)基金(編號(hào):81560623);廣西自然科學(xué)基金(編號(hào):2013GXNSFAA019221、2013GXNSFBA019180)。

        作者簡(jiǎn)介:周敏(1991—),女,江西贛州人,碩士研究生,主要從事藥用植物資源育種方面研究。E-mail:zmlww1020@163.com。

        通信作者:韋樹(shù)根,碩士,副研究員,主要從事藥用植物資源、繁殖、育種等方面的研究。E-mail:weishugen2@163.com。

        2015版《中華人民共和國(guó)藥典》規(guī)定,青蒿為菊科植物黃花蒿(Artemisia annua L.)的干燥地上部分[1]。青蒿苦、辛、寒,具有清虛熱、除骨蒸、解暑熱、截瘧、退黃的功效,多用于治療溫邪傷陰、夜熱早涼、陰虛發(fā)熱、骨蒸勞熱、暑邪發(fā)熱、瘧疾寒熱、濕熱黃疸等疾病。隨著青蒿素被發(fā)現(xiàn)是治療瘧疾的首選藥物,挽救了全球特別是發(fā)展中國(guó)家數(shù)百萬(wàn)人的生命,使得青蒿一直以來(lái)是研究的熱點(diǎn)。目前青蒿的研究不僅從資源、栽培、育種等傳統(tǒng)技術(shù)方面進(jìn)行,還從分子生物學(xué)的角度闡明青蒿生長(zhǎng)和發(fā)育機(jī)制及其有效成分青蒿素合成和累積機(jī)制等方面進(jìn)行。因此,提取高質(zhì)量、高純度、完整性好的RNA是分子生物學(xué)研究的重要基礎(chǔ),對(duì)于進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄PCR(RT-PCR),cDNA合成、RNA序列分析、Northern印跡雜交等具有重要意義。由于植物組織中化學(xué)成分復(fù)雜,并沒(méi)有一種RNA提取方法適用于所有的植物[2]。青蒿的化學(xué)成分主要有揮發(fā)油類、香豆素類、萜類、黃酮類、苯丙酸類及其他類成分[3],復(fù)雜的化學(xué)成分增加了青蒿RNA提取的難度,且前人也未系統(tǒng)地對(duì)青蒿不同部位RNA提取進(jìn)行研究。本研究通過(guò)比較TRIzol法、改良TRIzol法、十六烷基三甲基溴化銨-LiCl(CTAB-LiCl)法和CTAB-異丙醇4種方法提取青蒿不同部位的RNA,不僅進(jìn)一步地為青蒿進(jìn)行RT-PCR、cDNA合成、RNA序列分析、Northern印跡雜交等分子生物學(xué)試驗(yàn)提供基礎(chǔ),還為近緣種植物RNA的提取提供參考。

        1材料與方法

        1.1試驗(yàn)材料

        2015年8月,采集廣西藥用植物園栽培基地的青蒿葉片、莖、花、根等作為試驗(yàn)材料,立即用液氮速凍后置于 -80 ℃ 冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.2試驗(yàn)試劑

        TRIzol試劑盒、三氯甲烷、異丙醇、三氯甲烷+異戊醇(24 ∶[KG-*3]1)、苯酚、75%乙醇、焦碳酸二乙酯(DEPC)水、CTAB、8 mol/L LiCl、1%瓊脂糖凝膠,1×TAE緩沖液。

        1.3試驗(yàn)儀器

        主要儀器:Eppendorf移液槍,Sigma Sartorius臺(tái)式冷凍離心機(jī),渦旋振蕩儀器,Bio-Rad電泳儀,ChemiDoc XRS凝膠成像系統(tǒng),MILIPORE超純水機(jī),制冰機(jī)(北京長(zhǎng)流科學(xué)儀器公司),恒溫干燥箱(上海天恒醫(yī)療器械有限公司),微量分光光度計(jì),水浴鍋。

        1.4操作方法

        1.4.1TRIzol試劑盒法

        取0.2 g植物組織,在液氮中研磨成細(xì)粉,轉(zhuǎn)移至裝有1 mL TRIzol的1.5 mL離心管中,再加入0.2 mL三氯甲烷顛倒混勻15 s,室溫靜置3 min,4 ℃、12 000 r/min 離心15 min;取上清液轉(zhuǎn)移至新的離心管中,加入等體積異丙醇,渦旋混勻,室溫靜置10 min,4 ℃、12 000 r/min 離心10 min,棄上清液,沿試管壁加入1 mL 75%乙醇溶液,4 ℃、8 190 r/min離心5 min,棄上清液,室溫干燥5 min,加50 μL DEPC水溶解。

        1.4.2改良TRIzol法

        取0.2 g植物組織,在液氮中研磨成細(xì)粉,轉(zhuǎn)移至裝有1 mL TRIzol的1.5 mL離心管中,渦旋振蕩1 min,4 ℃、2 000 r/min離心15 min;取上清液轉(zhuǎn)移至新的離心管中,加入等體積苯酚+三氯甲烷+異戊醇(25 ∶[KG-*3]24 ∶[KG-*3]1)溶液,渦旋振蕩1 min,室溫靜置3~5 min,4 ℃、12 000 r/min離心15 min;取上清液轉(zhuǎn)移至新的離心管中,加入等體積的三氯甲烷+異戊醇,室溫靜置3~5 min,4 ℃、12 000 r/min離心 15 min,加入等體積三氯甲烷,室溫靜置3~5 min,4 ℃、12 000 r/min 離心15 min;取上清液200 μL轉(zhuǎn)移至新的離心管中,加入 0.5 mL 預(yù)冷的異丙醇,顛倒混勻8~10次,室溫靜置8~10 min,4 ℃、12 000 r/min離心10 min,棄上清液,試管壁加入1 mL 75%乙醇溶液,4 ℃、8 190 r/min離心5 min,棄上清液,室溫干燥5 min,加50 μL DEPC水溶解。

        1.4.3CTAB-LiCl法

        取0.2 g液氮研磨的樣品迅速轉(zhuǎn)移至60 ℃預(yù)熱的含有600 μL CTAB的離心管中,渦旋振蕩 30 s,于60 ℃水浴2 min,其間顛倒混勻2~3次,室溫冷卻 1 min 后加入等體積三氯甲烷+異戊醇溶液,渦旋振蕩1 min后,4 ℃、12 000 r/min離心15 min;取上清液,加入等體積的三氯甲烷+異戊醇溶液,渦旋振蕩1 min,4 ℃、12 000 r/min離心 15 min;將上清液轉(zhuǎn)移至新的離心管中,加入1/3體積的 8 mol/L LiCl,4 ℃過(guò)夜沉淀,4 ℃、12 000 r/min離心15 min,棄上清液,加1 mL 75%乙醇溶液,4 ℃、8 190 r/min離心 5 min,棄上清液,室溫干燥5 min,加50 μL DEPC水溶解。

        1.4.4CTAB-異丙醇法

        步驟同CTAB-LiCl法,用等體積的異丙醇沉淀。

        1.5RNA的質(zhì)量檢測(cè)

        用1%瓊脂糖凝膠檢測(cè)RNA的純度和完整性,用微量分光光度計(jì)檢測(cè)RNA的濃度和純度。D260 nm/D280 nm為1.8~20、D260 nm/D230 nm為2.0~2.3,表明RNA樣品純度高。

        2結(jié)果與分析

        2.1TRIzol法提取RNA效果

        由圖1、表1可見(jiàn),電泳結(jié)果顯示有3條條帶,且條帶清晰;葉片和根的D260 nm/D280 nm值<1.80,圖1中18S條帶有拖尾,說(shuō)明RNA已有部分降解。結(jié)果表明,用此方法提取的RNA濃度較低。

        2.2改良TRIzol法提取RNA效果

        由圖2、表2可見(jiàn),改良TRIzol法電泳可見(jiàn)3條清晰條帶,無(wú)拖尾,帶與帶之間無(wú)明顯彌散現(xiàn)象;D260 nm/D280 nm值均在1.8~2.1間,說(shuō)明RNA在整個(gè)提取過(guò)程中結(jié)構(gòu)完整,未發(fā)生明顯降解;D260 nm/D230 nm值均在2.0~2.3間,說(shuō)明去DNA和蛋白質(zhì)效果很好。改良后樣品濃度較高,可用于進(jìn)一步的分子試驗(yàn)。

        2.3CTAB-LiCl法提取RNA效果

        由圖3、表3可見(jiàn),電泳結(jié)果有18S、28S條帶,5S條帶模糊,不清晰,不適合用于小RNA的分析,此方法沉淀RNA時(shí),沉淀有顏色,可能是有些物質(zhì)未去除干凈;其中葉片提取的RNA D260 nm/D280 nm值<1.8,RNA有所降解,說(shuō)明此方法不適合葉的提取。

        2.4CTAB-異丙醇法提取RNA效果

        由圖4、表4可見(jiàn),電泳結(jié)果與CTAB-LiCl法相同,5S條帶模糊,不清晰;但用此方法提取的RNA濃度比CTAB-LiCl高,其中花的D260 nm/D230 nm值<2.0,可能有蛋白質(zhì)殘留或者次生代謝物沒(méi)有抽提完全。

        3討論

        [JP2]組織的破碎程度、RNase的活性、多糖和蛋白質(zhì)等大分子物質(zhì)的存在[4]都會(huì)影響RNA提取的質(zhì)量。TRIzol試劑盒法比較簡(jiǎn)單方便,耗時(shí)也較短,但是可能由于步驟比較簡(jiǎn)單,對(duì)雜質(zhì)的去除不夠徹底[5-6]。改良后的TRIzol,加了苯酚,能更好去除蛋白質(zhì)、多酚、多糖等物質(zhì),通過(guò)電泳圖、D260 nm/D280 nm值可知,濃度和純度也較高,符合轉(zhuǎn)錄組、基因克隆等高通量試驗(yàn)的要求。5S條帶缺失或不清晰是CTAB法提取RNA的不足之處,此方法提取的RNA不能用于小RNA的分析。

        LiCl本身沉淀大片段RNA效果好的特點(diǎn)使得到的RNA大片段損失很少,更適于進(jìn)行后續(xù)的分子生物學(xué)試驗(yàn);而異丙醇沉淀獲得的沉淀體積大,導(dǎo)致多糖和酚類物質(zhì)的共沉淀作用,因而CTAB-LiCl比CTAB-異丙醇更適合青蒿RNA的提取。因此,青蒿不同部位RNA用TRIzol法提取的比用CTAB法質(zhì)量更好,條帶清晰、完整,且TRIzol法比CTAB法用時(shí)更短,效率更高。[JP]

        [HS2*3]參考文獻(xiàn):

        [1]國(guó)家藥典委員會(huì). 中華人民共和國(guó)藥典:一部[M]. 北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2010.

        [2]Loomis W D. Overcoming problems of phenolics and quinones in the isolation of plant enzymes and organelles[J]. Meth Enzymol,1974,31(A):528-545.

        [3]張秋紅,朱子徽,李晉,等. 中藥青蒿化學(xué)成分與種植研究現(xiàn)狀[J]. 中國(guó)醫(yī)藥導(dǎo)報(bào),2011,8(19):10-12.

        [4]Sambrool,J,F(xiàn)ritscli E F,et al. Molecular cloning:a laboratory manuals[M]. 2nd ed. New York:Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989:343-361.

        [5]賴茜,余迪求. 4種榕樹(shù)總RNA提取方法的比較[J]. 云南大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2008,30(6):636-640.

        [6]印華,周兆德,吳志祥. 2種荔枝RNA提取方法的比較[J]. 熱帶農(nóng)業(yè)工程,2009,33(2):1-4.

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