劉國麗，龔 娜，陳 珣，王 娜

(1.遼寧省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 微生物工程中心，遼寧 沈陽 110161； 2.遼寧省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 植物營養(yǎng)與環(huán)境資源研究所，遼寧 沈陽 110161)

一株真菌的發(fā)酵液對番茄抗鹽的促進作用及菌株初步鑒定

劉國麗1，龔 娜1，陳 珣1，王 娜2，*

(1.遼寧省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 微生物工程中心，遼寧 沈陽 110161； 2.遼寧省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 植物營養(yǎng)與環(huán)境資源研究所，遼寧 沈陽 110161)

為篩選獲得能提高番茄耐鹽性的真菌發(fā)酵液，試驗采用真菌的發(fā)酵液處理75 mmol·L-1Ca(NO3)2脅迫下的番茄種子，通過測定種子發(fā)芽率、發(fā)芽勢，選擇對種子發(fā)芽有促進作用的菌株發(fā)酵液，研究其對Ca(NO3)2處理下番茄幼苗根干質(zhì)量、苗干質(zhì)量等農(nóng)藝性狀指標及植株內(nèi)源激素等的影響，結(jié)果顯示，其中部分菌株發(fā)酵液能不同程度地提高番茄種子發(fā)芽率和發(fā)芽勢，并能提高根干質(zhì)量、苗干質(zhì)量；結(jié)合種子發(fā)芽指標及幼苗干質(zhì)量和內(nèi)源激素含量來看，其中菌株DL12發(fā)酵液處理綜合效果最好，種子發(fā)芽率、發(fā)芽勢、株高、根干質(zhì)量、苗干質(zhì)量較對照分別提升了29%、200%、17.6%、26.8%、18.9%。DL12處理后葉片中IAA含量是對照組的49.6倍。采用真菌通用引物ITS1和ITS2擴增菌株DL12 18S rDNA序列，并與GenBank已知序列比對后，結(jié)果顯示，菌株DL12與Schizophyllumcommune相似度達到99%，推測菌株DL12是Schizophyllum屬真菌。

番茄；抗鹽；真菌；發(fā)酵液

近年來，我國設(shè)施番茄栽培發(fā)展迅速，已成為農(nóng)民增收的重要途徑之一。然而，由于設(shè)施栽培是封閉栽培方式，缺少自然雨水淋洗，高溫、高濕且通氣不良，設(shè)施農(nóng)田土壤又長期處于高集約化、高復(fù)種指數(shù)、高肥料施用量的生產(chǎn)狀態(tài)，生態(tài)環(huán)境和生產(chǎn)狀態(tài)綜合導(dǎo)致了土壤次生鹽漬化、養(yǎng)分失調(diào)、土壤酸化等諸多問題，其中以土壤次生鹽漬化問題最為突出[1]。并且隨著種植年限的增加，設(shè)施土壤次生鹽漬化現(xiàn)象非常普遍，在連續(xù)栽培蔬菜 3 年以上的日光溫室和塑料大棚中，土壤可溶性鹽表積現(xiàn)象比較明顯，土壤可溶性鹽積累嚴重[2]。鹽漬化導(dǎo)致的鹽害通常表現(xiàn)為生理干旱，引起蔬菜生長發(fā)育不良，植株抗病性下降，病蟲害加重等后果，此外鹽漬化導(dǎo)致的鹽脅迫影響作物對養(yǎng)分的吸收，引起植物根細胞吸收土壤水分困難或是脫水[3]，嚴重影響蔬菜的產(chǎn)量和品質(zhì)，造成蔬菜生長受阻，產(chǎn)量降低，因此土壤鹽漬化是蔬菜栽培的重要限制因子，嚴重制約著設(shè)施蔬菜栽培的進一步發(fā)展。

番茄是我國主要的設(shè)施蔬菜作物之一，在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中有重要經(jīng)濟價值，易受土壤鹽漬化影響。因此探索研究解決土壤鹽漬化，緩解番茄鹽害的方法，對于提高設(shè)施園藝生產(chǎn)效率具有重要的理論意義和實踐價值。而通過生物途徑使植物充分適應(yīng)鹽漬環(huán)境，以提高植物在鹽漬土壤上的生產(chǎn)力極具發(fā)展?jié)摿4-5]。

本試驗以番茄品種L402為材料，分析比較了不同外源真菌發(fā)酵液對鹽脅迫下番茄種子發(fā)芽情況、幼苗生長的影響，探討不同外源真菌發(fā)酵液對番茄鹽脅迫的緩解作用，篩選獲得緩解番茄鹽害的菌種，以期找到提高番茄耐鹽性的有效途徑，為提高番茄在鹽漬化上的生產(chǎn)力提供科學(xué)依據(jù)和理論基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

1.1.1 番茄品種

供試番茄品種為L402。

1.1.2 供試菌株及發(fā)酵液的配制

從遼寧不同鹽堿環(huán)境區(qū)的土壤和植株中自行分離出真菌菌株27株。無菌操作條件下將供試菌株分別接種于PDA培養(yǎng)基中，28 ℃，200 r·min-1培養(yǎng)5 d，離心取上清，并調(diào)節(jié)發(fā)酵液濃度為干質(zhì)量1 mg·mL-1，備用。

1.2 試驗方法

1.2.1 試驗設(shè)計

發(fā)芽試驗：選取大小一致、飽滿的番茄種子在2% (m/V)次氯酸鈉溶液中浸泡15 min，進行消毒，然后用去離子水將種子清洗干凈，進行發(fā)酵液拌種處理，對照用同等體積水替代處理，晾干后，置于9 cm直徑培養(yǎng)皿中，里面鋪兩層濾紙，加入10 mL 75 mmol·L-1Ca(NO3)2，然后在25 ℃的恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)催芽，每個平皿20粒番茄種子，定期補充水分，每天觀察統(tǒng)計種子發(fā)芽數(shù)，共統(tǒng)計14 d。

盆栽試驗：盆栽試驗于塑料花盆中進行，每盆種一穴，每穴單株種植。當長至3葉1心時，用不同的發(fā)酵液噴淋番茄幼苗的葉片并至根部，共噴 30 mL 1 mg·mL-1發(fā)酵液，開始進行發(fā)酵液處理，對照組噴淋同等體積水。7 d后，每3 d每穴澆30 mL 75 mmol·L-1Ca(NO3)2，開始鹽脅迫處理，共澆10次，每個處理3個平行。鹽處理結(jié)束后取樣，測定番茄植株生物量、內(nèi)源激素等指標。

1.2.2 指標測定方法

發(fā)芽勢及發(fā)芽率按下列公式：發(fā)芽率=總發(fā)芽的種子數(shù)/種子總數(shù)×100%；發(fā)芽勢=前3 d發(fā)芽的種子數(shù)/種子總數(shù)×100%。

植株生物量的測定：首先，將番茄植株從花盆中連根取出，用去離子水小心沖洗，并保持根系的完整。按地上部和地下部分開，置于鼓風(fēng)干燥箱中105 ℃下殺青 30 min，于80 ℃下烘干至恒質(zhì)量，稱得干質(zhì)量。

內(nèi)源激素提取與檢測[6-7]：采集盆栽試驗后的番茄幼苗葉片，提取內(nèi)源激素樣品，并用0.22 μm孔徑的有機濾膜過濾，棄去初濾液，續(xù)濾液作為樣品溶液。檢測條件：運行緩沖液75 mmol·L-1硼砂緩沖液(pH 9.0)；檢測波長205 nm；分離電壓20 kV。

1.2.3 菌株ITS序列擴增與測序

將篩選到的菌株接種至PDA液體培養(yǎng)基中，28 ℃搖床150 r·min-1培養(yǎng)36 h，采用真菌DNA 試劑盒提取菌株總DNA，菌株DNA提取后，經(jīng)0.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測DNA的完整性，并通過微量核酸定量儀檢測其濃度。采用真菌通用引物ITS1和ITS2擴增18S rDNA 的ITS區(qū)域，PCR擴增產(chǎn)物送至上海生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司測序。將測得的序列與GenBank已知序列進行BLAST比對(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)，并利用MEGA 4.1進行系統(tǒng)發(fā)育樹構(gòu)建。

1.3 數(shù)據(jù)處理

試驗數(shù)據(jù)采用Microsoft Excel軟件系統(tǒng)分析。

2 結(jié)果與分析

2. 1 真菌發(fā)酵液對番茄種子發(fā)芽率及發(fā)芽勢的影響

由表1可以看出，75 mmol·L-1Ca(NO3)2脅迫下，L402種子發(fā)芽率受到了明顯的抑制，發(fā)芽速度很慢。不同真菌發(fā)酵液處理后番茄種子發(fā)芽率和發(fā)芽勢表現(xiàn)差異很大，相對于對照組，部分菌株抑制了種子的發(fā)芽率和發(fā)芽勢，而DWJ2、DL2、DL12等顯著促進了種子的萌發(fā)。其中DL12處理組番茄種子發(fā)芽率和發(fā)芽勢分別比對照組高29%和200%。

2.2 真菌發(fā)酵液對番茄植株株高和生物量影響

綜合考慮真菌發(fā)酵液對發(fā)芽率和發(fā)芽勢的影響，以發(fā)芽勢或發(fā)芽率不小于對照作為篩選標準，挑選效果好的DL2、DL3等13種真菌發(fā)酵液進行盆栽試驗。

從表2中可以看出，采用各真菌發(fā)酵液進行噴淋處理后，對植株株高、干質(zhì)量影響各不相同，部分對種子發(fā)芽有促進作用的菌株也能促進幼苗的生長，說明在一定程度上緩解了Ca(NO3)2對番茄幼苗的傷害。其中DL2、DL12、DL15、DWJ2、DWR3對番茄植株的株高和生物量積累作用較大，顯著高于對照。

2.3 DL12發(fā)酵液處理對番茄幼苗內(nèi)源激素的影響

表1 真菌發(fā)酵液對番茄種子發(fā)芽率及發(fā)芽勢的影響

Table 1 Effects of fungus fermentation liquid on germination rate and germination potential of tomato seeds

菌株編號No.發(fā)芽率Germinationrate/%發(fā)芽勢Germinationpotential/%DL143.31.7DL250.08.3DL365.013.3DL433.31.7DL536.711.7DL731.710.0DL951.75.0DL1153.36.7DL1266.715.0DL1323.30.0DL1541.76.7DWJ263.311.7DWR141.70DWR251.76.7DWR356.713.3DWR446.73.3XN118.30XN443.30XN536.71.7XN631.70XN740.03.3XN845.05.0XN1050.06.7XN1156.78.3XN1225.00XN1345.00XN1938.33.3CK51.75.0

表2 真菌發(fā)酵液噴淋對番茄植株株高和生物量的影響

Table 2 Effects of fungus fermentation liquid on plant height， root dry weight and seedling dry weight of tomato

菌株編號No.株高Plantheight/cm根干質(zhì)量Rootdryweight/g苗干質(zhì)量Seedlingdryweight/gDL217.17cd0.457bc2.097cdDL314.40a0.359a1.627aDL515.83abc0.383a1.857abcDL714.43a0.390a1.700abDL914.57ab0.413ab1.697abDL1116.07bc0.407ab1.833abcDL1218.23d0.511cd2.197dDL1518.03d0.483cd2.260dDWJ218.06d0.541d2.220dDWR216.16bc0.390a1.807abcDWR318.13d0.490cd1.973bcdXN1016.00bc0.420ab1.767abXN1115.57ab0.392a1.880abcCK15.50ab0.403ab1.847abc

表中同列數(shù)據(jù)后無相同小寫字母的表示差異顯著(P<0.05)。

Values within a column followed by different lowercase letters indicate the significant difference (P<0.05).

植物激素通常作用于植物激素受體，通過信號轉(zhuǎn)導(dǎo)引發(fā)下游基因表達和相應(yīng)的生理生化反應(yīng)，進而影響根、莖、葉、花、果實等器官的形態(tài)建成[8]。生長素(IAA)和脫落酸(ABA)是植物的內(nèi)源激素，可促進或抑制與種子萌發(fā)有關(guān)酶類的活性從而調(diào)節(jié)代謝進程，進而促進或抑制種子的萌發(fā)和早期生長。通過檢測DL2、DL12、DL15、DWJ2、DWR3發(fā)酵液對番茄植株內(nèi)源激素含量的影響，結(jié)果見表3和圖1，DL12、DL15、DWJ2均檢測到IAA，同等條件下未檢測到ABA。只有DL2檢測到ABA含量0.431 μg·mL-1。DWR3未檢測到ABA和IAA。DL12發(fā)酵液處理后有效提高了葉片中IAA的濃度，為14.473 μg·mL-1，而對照組檢測結(jié)果僅為0.290 μg·mL-1，DL12發(fā)酵液處理番茄葉片IAA含量是對照組的49.9倍。

表3 真菌發(fā)酵液對番茄葉片內(nèi)源激素含量的影響

Table 3 Effect of fermentation liquid on endogenous hormones content in tomato leaves

樣品編號No.吲哚乙酸含量IAA/(μg·mL-1)脫落酸含量ABA/(μg·mL-1)DL2—0.431DL1214.473—DL150.075—DWJ20.220—DWR3——CK0.290—

“—”表示未檢測到。

“—”stands for no detection.

a、b、c依次為標準品、DL12處理、CK組葉片圖譜a， Standard sample; b， HPCE chromatograms of IAA in tomato leaves treated by fermentation liquid of DL12; c， CK圖1 番茄葉片中IAA毛細管電泳圖譜Fig.1 The HPCE chromatograms of IAA in tomato leaves

2.4 菌株ITS rDNA序列分析

利用ITS1和ITS2 rDNA特異引物對菌株進行PCR擴增得到的目的DNA片段，利用Blast軟件與GenBank的序列進行同源性比較(圖2)，結(jié)果顯示菌株DL12與Schizophyllumcommune相似度達到99%，初步推測DL12為Schizophyllum屬真菌。

圖2 菌株DL12基于ITS rDNA 序列同源性構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.2 Phylogenetic tree of strain DL12 and other reference species

3 結(jié)論與討論

通過比較篩選不同來源的真菌發(fā)酵液對番茄發(fā)芽及生物量等指標的作用，獲得一株對Ca(NO3)2脅迫下番茄發(fā)芽和生長有促進作用的菌株DL12，DL12發(fā)酵液處理后能提高Ca(NO3)2脅迫下番茄種子發(fā)芽率、發(fā)芽勢，較對照分別提升了29%、200%；株高、根干質(zhì)量、苗干質(zhì)量較對照分別提升了17.6%、26.8%、18.9%。內(nèi)源激素檢測表明，DL12能明顯提高幼苗的內(nèi)源激素IAA含量。

目前我國耕地面積不斷減少，土地鹽堿化不斷惡化，通過生物途徑使植物充分適應(yīng)鹽漬環(huán)境，增強植株對鹽堿的耐受范圍，以提高植物在鹽漬土壤上的生產(chǎn)力極具發(fā)展?jié)摿Γ蔀辂}漬化土地的利用提供新的途徑。近年來，關(guān)于鹽脅迫下促生菌的報道越來越多，涉及很多屬種，包括細菌、真菌等[9-15]。但關(guān)于Schizophyllum屬菌株與植物促生抗逆的報道較少，僅李莎[16]報道了分離得到的一株Schizophyllum屬TTS-5菌株，不僅對立枯絲核菌有拮抗作用，接種至油松幼苗后，油松苗成活率、生長狀況及根系活力均高于對照。本試驗結(jié)果表明，DL12發(fā)酵液處理可以提高番茄種子在Ca(NO3)2脅迫下的萌發(fā)，噴淋處理后，可以促進幼苗的生長，顯著影響番茄植株的內(nèi)源激素含量，緩解鹽脅迫對番茄幼苗的毒害作用，從而增強番茄對鹽脅迫的抗性。本試驗為提高設(shè)施蔬菜在鹽漬化土地上的抗性提供了新的思路和方法。

[1] 顧京晏，顧衛(wèi)，張化，等.我國設(shè)施農(nóng)業(yè)土壤次生鹽漬化生物改良措施研究進展[J].北京師范大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版)，2016，52(1):70-75. GU J Y， GU W， ZHANG H， et al. Biological measures for soil improvement of facility agriculture in China[J].JournalofBeijingNormalUniversity(NatureScience)， 2016，52(1):70-75.(in Chinese with English abstract)

[2] 王學(xué)征.設(shè)施環(huán)境鹽脅迫對番茄生長發(fā)育及膜系統(tǒng)影響的研究[D].哈爾濱：東北農(nóng)業(yè)大學(xué)，2004. WANG X Z. Studies on effects of salt stress on growth and development and membranes system of tomato in protected farm[D].Harbin: Northeast Agricultural University. 2004. (in Chinese with English abstract)

[3] PARIDA A K， DAS A B. Salt tolerance and salinity effects on plants: a review.[J].EcotoxicologyandEnvironmentalSafety， 2005， 60(3):324.

[4] 顧金鳳.微生物菌肥對鹽漬化土壤的改良研究[D].揚州：揚州大學(xué)，2013. GU J F. Effects of microbiological fertilizer on salinized soil [D].Yangzhou: Yangzhou University， 2013. (in Chinese with English abstract)

[5] 黃紅艷.次生鹽漬化土壤的微生物多樣性及微生物改良效應(yīng)研究[D].上海：上海交通大學(xué)，2012. HUANG H Y. Soil microbial diversity in secondary salinization soils and it’s microbial remidation [D]. Shanghai: Shanghai Jiao Tong University， 2012. (in Chinese with English abstract)

[6] 馬曉穎， 賈東貝， 李冰宇，等. 利用高效毛細管電泳測定真菌代謝產(chǎn)物吲哚乙酸含量[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué)， 2011， 39(3):439-441. MA X Y， JIA D B， LI B Y， et al. Content determination of IAA in metabolic of fungi using high-performance capillary electrophoresis [J].JiangsuAgriculturalSciences， 2011， 39(3):439-441. (in Chinese with English abstract)

[7] 陶龍興.內(nèi)源IAA對亞種間雜交稻籽粒灌漿的信息效應(yīng)[D].北京：中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院，2003. TAO L X. Signaling effects of endogenous IAA on grain filling of subspecies hybrid rice[D]. Beijing: Chinese Academy of Agricultural Sciences， 2003. (in Chinese with English abstract)

[8] 尹培培， 包日雙， 戴佳錕，等. 植物激素對植物器官發(fā)生影響的研究進展[J].江西農(nóng)業(yè)學(xué)報，2012，24(6):37-41. YIN P P， BAO R S， DAI J K， et al. Research advance in impact of phytohormone on plant organogenesis[J].ActaAgriculturaeJiangxi， 2012， 24(6):37-41. (in Chinese with English abstract)

[9] 辛樹權(quán)，王貴，高揚.植物生長促生菌對鹽脅迫下水稻種子萌發(fā)及幼苗生長的影響[J]. 湖北農(nóng)業(yè)科學(xué)，2012，51(3):490-496. XIN S Q， WANG G， GAO Y. Effects of plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR) on the rice germination and seedling development under salt stress [J].HubeiAgriculturalSciences， 2012， 51(3):490-496. (in Chinese with English abstract)

[10] 鄭元元， 岳海濤， 石在強， 等.鹽脅迫下解鹽促生細菌Rs-5和Rs-198促進棉花種子發(fā)芽的機理探討[J].中國農(nóng)業(yè)科學(xué)，2008，41(5):1326-1332. ZHENG Y Y，YUE H T， SHI Z Q， et al. Physiochemical characters and ability to promote cotton germination of bacteria strains Rs-5 and Rs-198 under salt stress [J].ScientiaAgriculturaSinica， 2008， 41(5):1326-1332. (in Chinese with English abstract)

[11] 羅歡. 芽孢桿菌對植物的促生和耐鹽作用及其相關(guān)機制的研究[D]. 南京：南京農(nóng)業(yè)大學(xué)， 2013. LUO H. Study of growth promoting and salt tolerance ofBacillusspp. on plant and the research of underlying mechanisms[D].Nanjing: Nanjing Agricultural University，2013. (in Chinese with English abstract)

[12] 吉云秀，黃曉東.植物促生菌對燕麥初生苗鹽分脅迫下的促生效應(yīng)[J].大連海事大學(xué)學(xué)報， 2007，33(2):86-89. JI Y X， HUANG X D. Effects of plant growth-promoting rhizobacteria on the growth of oat seedlings under salt stress[J].JournalofDalianMaritimeUniversity， 2007， 33(2):86-89. (in Chinese with English abstract)

[13] 馬曉敏，張紅娟，顧沐宇，等. 促生菌的分離鑒定及其對柳枝稷種子在鹽脅迫下的萌發(fā)促進作用[J].家畜生態(tài)學(xué)報，2015， 36(6):46-52. MA X M， ZHANG H J， GU M Y， et al. Isolation and identification of plant growth-promoting Rhizobacteria(PGPR) and its promoting effect on switchgrass seed under NaCl salt stress[J].ActaEcologiaeAnimalisDomastici， 2015， 36(6):46-52. (in Chinese with English abstract)

[14] 王斌. 叢枝菌根真菌提高加工番茄抗鹽和抗旱效能及其機理研究[D].石河子：石河子大學(xué)，2013. WANG B. Arbuscular mycorrhizal fungi improve salt and drought resistance to processing tomato and study of their mechanisms [D]. Shihezi: Shihezi University， 2013. (in Chinese with English abstract)

[15] 李嬌. 堿蓬內(nèi)生菌對Na2CO3脅迫下水稻幼苗生長的緩解作用[D].沈陽：沈陽師范大學(xué)，2014. LI J. Effect of endophyte infection alleviate growth damage of rice seedlings under Na2CO3stress [D]. Shenyang: Shenyang Normal University， 2014. (in Chinese with English abstract)

[16] 李莎.外生菌根真菌和熒光假單胞菌對油松生長和抗病性的影響[D].楊凌：西北農(nóng)林科技大學(xué)，2011. LI S. Effects of ectomycorrhiza fungi andPseudomonasfluorescenstoPinustabulaeformisgrowth and disease resistance[D]. Yangling: Northwest A&F University， 2011. (in Chinese with English abstract)

(責(zé)任編輯 張 韻)

Promotion effect of fungus DL12 fermentation liquid on salt-resistance ability of tomato and primary identification of strain

LIU Guoli1， GONG Na1， CHEN Xun1， WANG Na2，*

(1.CenterofMicrobialEngineering，LiaoningAcademyofAgriculturalSciences，Shenyang110161，China；2.InstituteofPlantNutrientsandEnvironmentalResources，LiaoningAcademyofAgriculturalSciences，Shenyang110161，China)

In order to screen fungi that could improve the salt-resistance ability ofLycopersiconesculentum， firstly， the fermentation liquid of different fungi were used to treat the seeds ofLycopersiconesculentumunder 75 mmol·L-1Ca(NO3)2stress. Then the seedlings were sprayed by fermentation liquid of different fungi which had good effects on germination of seeds through evaluation of germination rate and germination potential. The plant height and biomass of seedlings after treatment were recorded. Effect of fermentation liquid from strains DL2， DL12， DL15， DWJ2， DWR3 on endogenous hormones content of seedlings were also measured through HPCE chromatograms. Results showed that several fungi strains could partially improve germination rate and germination potential of seeds， and increase the dry weight. DL12 had the best effects among all the fungi. The germination rate， germination potential of seeds， plant height， root dry weight， and seedling dry weight were increased by 29%， 200%， 17.6%， 26.8%， 18.9%， respectively， compared with the control group. The IAA content was 49.6 times of the control group. The fungus general primers ITS1 and ITS2 were used to amplify 18S rDNA sequences of strain DL12， and alignment with the known sequences from GenBank was carried out， results showed that the similarity between strain DL12 andSchizophyllumcommunewas 99%. It was concluded that DL12 may belong toSchizophyllumsp.

tomato; salt-resistance; fungus; fermentation liquid

http://www.zjnyxb.cn

10.3969/j.issn.1004-1524.2017.04.13

2016-12-21

遼寧省自然科學(xué)基金項目(2014027026)；遼寧省科學(xué)事業(yè)公益研究基金項目(2015002006)

劉國麗(1986—)，女，山東菏澤人，碩士，助理實習(xí)員，從事植物內(nèi)生菌方向研究。E-mail: liugl12@163.com

*通信作者，王娜，E-mail: wnsxh1999@126.com

S182

A

1004-1524(2017)04-0605-06

浙江農(nóng)業(yè)學(xué)報ActaAgriculturaeZhejiangensis， 2017，29(4): 605-610

劉國麗，龔娜，陳珣，等. 一株真菌的發(fā)酵液對番茄抗鹽的促進作用及菌株初步鑒定[J].浙江農(nóng)業(yè)學(xué)報，2017，29(4)： 605-610.