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        不同引物對(duì)和退火溫度對(duì)鹽生植物鹽穗木內(nèi)參基因β-actin擴(kuò)增效率的影響

        2017-04-13 06:56:58白雪芹楊瑞瑞曾幼玲
        新疆農(nóng)業(yè)科學(xué) 2017年2期
        關(guān)鍵詞:內(nèi)參定量質(zhì)粒

        白雪芹,楊瑞瑞,曾幼玲

        (新疆大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院/新疆生物資源基因工程重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,烏魯木齊 830046)

        不同引物對(duì)和退火溫度對(duì)鹽生植物鹽穗木內(nèi)參基因β-actin擴(kuò)增效率的影響

        白雪芹,楊瑞瑞,曾幼玲

        (新疆大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院/新疆生物資源基因工程重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,烏魯木齊 830046)

        【目的】以鹽生植物鹽穗木為材料,研究不同引物對(duì)和不同退火溫度對(duì)鹽穗木內(nèi)參基因β-actin擴(kuò)增效率的影響。【方法】設(shè)計(jì)擴(kuò)增β-actin基因的兩對(duì)引物,標(biāo)記為β-actin1和β-actin2,分別建立這兩對(duì)引物擴(kuò)增鹽穗木β-actin基因和特異性引物擴(kuò)增該物種的過(guò)氧化物酶基因POD(鹽響應(yīng)的代表性基因),在不同退火溫度下的標(biāo)準(zhǔn)曲線和擴(kuò)增曲線?!窘Y(jié)果】不論55還是58℃退火溫度,引物對(duì)β-actin1比引物對(duì)β-actin2有更好的擴(kuò)增效率;在55℃退火溫度下,引物對(duì)β-actin1有更高的擴(kuò)增效率。在這兩個(gè)退火溫度下,分別以β-actin1和β-actin2引物對(duì)擴(kuò)增β-actin基因作為內(nèi)參,鹽穗木POD基因的相對(duì)表達(dá)水平具有一定的差異性?!窘Y(jié)論】引物和退火溫度會(huì)影響熒光定量PCR的擴(kuò)增效率,進(jìn)而會(huì)影響靶基因的相對(duì)表達(dá)水平。

        鹽穗木;不同引物對(duì);退火溫度;β-actin;擴(kuò)增效率

        0 引 言

        【研究意義】鹽穗木 (Halostachyscaspica) 為藜科(Chenopodiaceae )多年生鹽生植物。廣泛生長(zhǎng)于新疆極端鹽堿環(huán)境中。為了適應(yīng)高度的鹽漬化,其植株葉片高度肉質(zhì)化,是鹽土荒漠主要植物之一[1]。目前主要研究了鹽穗木耐鹽的生理指標(biāo)和鹽相關(guān)基因的克隆及功能鑒定[2-5]。為準(zhǔn)確反映受鹽脅迫的鹽穗木組織中各基因的表達(dá)模式,通過(guò)實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù),利用常用的看家基因β-actin作為內(nèi)參基因,以不同的引物對(duì)和退火溫度探討鹽穗木β-actin擴(kuò)增效率的影響,進(jìn)而分析對(duì)靶基因相對(duì)表達(dá)水平的影響?!厩叭搜芯窟M(jìn)展】傳統(tǒng)的核酸序列定量分析方法包括Southern雜交、斑點(diǎn)印跡、RNA酶保護(hù)分析、原位雜交等技術(shù)[6-7],實(shí)時(shí)定量PCR技術(shù)檢測(cè)基因轉(zhuǎn)錄水平的表達(dá)狀況也是當(dāng)前科學(xué)研究的重要手段,是近些年發(fā)展起來(lái)的研究基因表達(dá)水平差異的重要方法。它是1996年由美國(guó)Applied Biosystems公司發(fā)明[8],該項(xiàng)技術(shù)的應(yīng)用使得PCR技術(shù)由定性到定量的飛躍。它具有靈敏性高,特異性強(qiáng)、快速準(zhǔn)確等特點(diǎn),但通常它也會(huì)受到一系列因素的影響,比如內(nèi)參基因的選擇,引物的擴(kuò)增效率等。實(shí)時(shí)定量PCR技術(shù)檢測(cè)基因的表達(dá)分為絕對(duì)定量和相對(duì)定量?jī)煞N方法。目前常用相對(duì)定量2-ΔΔCt法,需要引入看家基因作為參照[9]。【本研究切入點(diǎn)】β-actin是構(gòu)成細(xì)胞骨架的主要成分肌動(dòng)蛋白的一種,幾乎在所有的真核細(xì)胞中表達(dá)[10],具有基因序列高度保守和mRNA表達(dá)數(shù)量高且穩(wěn)定的特點(diǎn),所以在很多動(dòng)植物組織中開(kāi)展檢測(cè)基因表達(dá)的相關(guān)實(shí)驗(yàn)中常以β-actin作為內(nèi)參基因[11]。在進(jìn)行各基因的表達(dá)檢測(cè)前,一般都需要先建立各基因的標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒和標(biāo)準(zhǔn)曲線,以便檢測(cè)基因的擴(kuò)增效率及對(duì)模板進(jìn)行精確定量分析[12]?!緮M解決的關(guān)鍵問(wèn)題】研究不同引物對(duì)和退火溫度對(duì)鹽穗木內(nèi)參基因β-actin擴(kuò)增效率的影響,為鹽穗木實(shí)時(shí)定量PCR中內(nèi)參基因β-actin的引物設(shè)計(jì)和退火溫度的選擇具有一定的借鑒意義,為不同實(shí)驗(yàn)處理的鹽穗木候選靶基因的表達(dá)檢測(cè)提供真實(shí)而準(zhǔn)確的數(shù)據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材 料

        1.1.1 鹽穗木種子

        鹽穗木種子采自五家渠106團(tuán)鹽堿地。將種子播于花土∶蛭石∶珍珠巖(2∶1∶1)基質(zhì)的花盆中,置于自然光照下,白天(25~30)℃,夜間(21±2)℃,日照時(shí)間≥15 h,在此期間用自來(lái)水進(jìn)行澆灌,當(dāng)幼苗長(zhǎng)至約7~8 cm左右時(shí)提取鹽穗木同化枝總RNA。

        1.1.2 引物

        根據(jù)已發(fā)表的植物β-actin基因的mRNA序列,利用DNAMAN軟件設(shè)計(jì),由上海生工有限公司合成2對(duì)特異性引物,擴(kuò)增片段長(zhǎng)度為分別為230與180 bp,列出引物序列。表1

        表1 引物列表
        Table 1 Primers sequences

        引物名稱(chēng)Primername引物序列(5' 3')Primersequences5'to3'β-actin1-P1AAGATCTGGCACCACACCTTCβ-actin1-P2CACACCATCACCAGAATCGAβ-actin2-P1CCAAAGGCCAACAGAGAGAAGAβ-actin2-P2TGAGACACACCATCACCAGAPOD-P1CAGGTGCTCATACAATCGGPOD-P2AGTTGCTGGACAAATAGAC

        注:POD為鹽響應(yīng)的鹽穗木過(guò)氧化物酶基因

        Note:PODis the peroxidase gene responding to salinity

        1.2 方 法

        1.2.1 鹽穗木總RNA的提取

        使用天根植物總RNA提取試劑盒提取鹽穗木同化枝總RNA,以其為模板,按照TaKaRa公司M-mLV第一鏈cDNA合成試劑盒操作說(shuō)明進(jìn)行cDNA第一鏈的合成。

        1.2.2 標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒的構(gòu)建

        對(duì)已發(fā)表的植物β-actin基因的mRNA序列進(jìn)行比對(duì),設(shè)計(jì)兩對(duì)引物β-actin1-P1、β-actin1-P2與β-actin2-P1、β-actin2-P2用于擴(kuò)增鹽穗木β-actin基因片段。預(yù)測(cè)β-actin1引物對(duì)擴(kuò)增的片段長(zhǎng)度為230 bp,β-actin2引物對(duì)擴(kuò)增的片段長(zhǎng)度為180 bp,同時(shí)也利用POD-P1和POD-P2這一對(duì)引物分別構(gòu)建了鹽穗木β-actin和POD基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線。

        以第一鏈cDNA為模板,分別用設(shè)計(jì)好的引物進(jìn)行擴(kuò)增,PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系:20 μL體系,其中10 ×PCR Buffer 2 μL,dNTP 3.2 μL,P1和P2各0.5 μL,ExTaq酶 0.2 μL,cDNA 2 μL,最后加ddH2O 11.6 μL;反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性 5 min;94℃變性30s,56℃退火30s,72℃延伸30 s,40個(gè)循環(huán);最后72℃延伸10 min。

        將擴(kuò)增出的正確條帶進(jìn)行切膠回收(上海生工膠回收試劑盒),回收產(chǎn)物與pMD18-T在16℃下進(jìn)行過(guò)夜連接(大約12~16 h),其連接體系為:solution I 5 μL,回收產(chǎn)物4.6 μL,pMD18-T(Takara公司) 0.4 μL。

        將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化到大腸桿菌DH5α,用含有1‰氨芐青霉素的LB培養(yǎng)基進(jìn)行篩選培養(yǎng)12~16 h,挑取單克隆,在LB培養(yǎng)基中進(jìn)一步培養(yǎng)6~8 h之后,進(jìn)行菌液PCR鑒定,對(duì)于陽(yáng)性克隆提取質(zhì)粒后進(jìn)行酶切,鑒定正確后測(cè)序。將鑒定正確的質(zhì)粒進(jìn)行梯度稀釋(101、100、10-1、10-2、10-3、10-4、10-5和10-6),制作標(biāo)準(zhǔn)曲線時(shí),先將樣品質(zhì)粒稀釋到10 ng/μL,依次按10倍體積稀釋。Ct值通過(guò)ABI7500熒光定量?jī)x產(chǎn)生,將數(shù)據(jù)輸入Excel進(jìn)行計(jì)算分析。

        1.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)

        計(jì)算鹽穗木POD基因以及不同退火溫度下β-actin基因(β-actin1和β-actin2引物對(duì))的擴(kuò)增效率,基因擴(kuò)增效率的計(jì)算公式:E=10-1/a-1(E為擴(kuò)增曲線,a為質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)曲線的斜率),利用2-ΔΔCt法計(jì)算POD基因在不同β-actin引物對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物做內(nèi)參基因時(shí)的相對(duì)表達(dá)量。利用Excel和GraphPad Prism 5.0統(tǒng)計(jì)軟件分析數(shù)據(jù)。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒的構(gòu)建

        從鹽穗木中提取總RNA,其260/280比值為1.8~2.0,瓊脂糖凝膠電泳顯示28s rRNA條帶是18s rRNA的2倍,表明總RNA質(zhì)量較好(圖1)。通過(guò)反轉(zhuǎn)錄獲得第一鏈cDNA,以cDNA為模板,分別用β-actin1和β-actin2引物對(duì)擴(kuò)增β-actin基因,其擴(kuò)增產(chǎn)物大小分別為230 bp左右,和180 bp左右(圖2)。分別將這2種擴(kuò)增產(chǎn)物連接到克隆載體pMD18-T上,經(jīng)測(cè)序獲得正確的序列后,將鑒定正確的菌液二次活化,提取的質(zhì)粒濃度分別為185.3 ng/μL(β-actin1的引物擴(kuò)增)和237.7 ng/μL (β-actin2的引物擴(kuò)增),其260/280分別為1.82以及1.86,而260/230分別為2.05及2.08,都在正常范圍之內(nèi),可以后續(xù)下面實(shí)驗(yàn)。圖1,圖2

        2.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立

        對(duì)以上質(zhì)粒進(jìn)行梯度稀釋。將質(zhì)粒稀釋到10 ng/μL的濃度,然后熒光定量PCR進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)曲線的構(gòu)建,總結(jié)不同稀釋濃度下55和58℃質(zhì)粒的平均Ct值,根據(jù)表2分別建立標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖3)。首先可以看到在55℃下β-actin1和β-actin2的標(biāo)準(zhǔn)曲線的R2值分別為0.997 5與0.999 4,而在58℃下兩者標(biāo)準(zhǔn)曲線的R2值分別為0.995 4與0.998 6,說(shuō)明標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性相關(guān)性良好。為了提高PCR的可靠性和準(zhǔn)確性,必須知道PCR產(chǎn)物特異性和PCR的動(dòng)力學(xué)特性[12],擴(kuò)增曲線指數(shù)擴(kuò)增期和平臺(tái)期均十分明顯,線性范圍廣,從6~31個(gè)循環(huán)都能檢測(cè)到,并且不論是β-actin1還是β-actin2引物對(duì)在55與58℃條件下都很平滑,說(shuō)明擴(kuò)增的整個(gè)PCR過(guò)程是較好的,是較為理想的擴(kuò)增曲線(圖4);第三,引物對(duì)β-actin1在55與58℃下的熔解溫度分別為82.50、82.54℃,引物對(duì)β-actin2在55與58℃下的熔解溫度同為81.74和81.34℃,在這兩種溫度的變化下兩種引物對(duì)β-actin1與β-actin2在熔解溫度上基本沒(méi)有太大變化,并且沒(méi)有雜峰產(chǎn)生,說(shuō)明兩對(duì)引物在兩種溫度條件下的擴(kuò)增特異,沒(méi)有引物二聚體產(chǎn)生(圖5)??傮w來(lái)說(shuō),標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性關(guān)系良好,不存在非特異性擴(kuò)增,構(gòu)建的β-actin基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線是真實(shí)可靠的。表2,圖3~5

        圖1 鹽穗木總RNA提取
        Fig.1 Total RNA fromHalostachyscaspica

        M.DL2000;1.β-actin1引物對(duì)擴(kuò)增的β-actin;2.β-actin2引物對(duì)擴(kuò)增的β-actin

        M.DL2000; 1.Amplificationofβ-actinwithapairofprimersactin1; 2.Ampificationofβ-actinwithapairofprimersβ-actin2

        圖2 鹽穗木β-actin基因擴(kuò)增結(jié)果
        Fig.2 PCR amplification ofHalostachyscaspicaβ-actingene

        表2 不同引物對(duì)和退火溫度下,以質(zhì)粒為模板擴(kuò)增β-actin基因的平均Ct值
        Table 2 The averageCtvalues ofβ-actingene from plasmid templates amplified with the

        質(zhì)粒濃度Concentration(ng/μL)溫度Temperature(℃)10110010-110-210-310-410-510-6引物對(duì)β-actin1apairofβ-actin15569292212741653193423352709299358848114314771842208225452925引物對(duì)β-actin2apairofβ-actin25569586111891560193523062695581002122915421968234227713150

        A. 55℃ β-actin1引物對(duì)擴(kuò)增的β-actin基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線; B. 58℃ β-actin1引物對(duì)擴(kuò)增的β-actin基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線; C. 55℃ β-actin2引物對(duì)擴(kuò)增的β-actin的標(biāo)準(zhǔn)曲線;D. 58℃ β-actin2引物對(duì)擴(kuò)增的β-actin2標(biāo)準(zhǔn)曲線

        A. Standard curve ofβ-actinwith a pair of primers β-actin1 at the annealing temperature of 55 ℃; B. Standard curve ofβ-actinwith a pair of primers β-actin1 at the annealing temperature of 58 ℃; C. Standard curve ofβ-actinwith a pair of primers β-actin2 at the annealing temperature of 55 ℃; D. Standard curve ofβ-actinwith a pair of primers β-actin2 at the annealing temperature of 58 ℃

        圖3 在55和58℃退火溫度下,兩對(duì)引物β-actin1和β-actin2擴(kuò)增β-actin的標(biāo)準(zhǔn)曲線
        Fig.3 Standard curves ofβ-actinwith two pairs of primers β-actin1 and β-actin2 at the annealing temperature 55℃ and 58℃

        A. 55℃ β-actin1擴(kuò)增β-actin的擴(kuò)增曲線;B. 58℃下β-actin1擴(kuò)增β-actin的擴(kuò)增曲線;C. 55℃下β-actin2擴(kuò)增β-actin的擴(kuò)增曲線;D. 58℃ β-actin2擴(kuò)增β-actin的擴(kuò)增曲線

        A. The amplification curve ofβ-actinwith a pair of primers β-actin1 at the annealing temperature of 55℃; B. The amplification curve ofβ-actinwith a pair of primers β-actin1 at the annealing temperature of 58℃; C. The amplification curve ofβ-actinwith a pair of primer β-actin2 at the annealing temperature of 55℃; D. The amplification curve ofβ-actinwith a pair of primers β-actin2 at the annealing temperature of 58℃

        圖4 在55和58℃退火溫度下,2對(duì)引物β-actin1和β-actin2擴(kuò)增β-actin的擴(kuò)增曲線
        Fig.4 The amplification curve ofβ-actinwith two pairs of primers β-actin1 and β-actin2

        at the annealing temperature of 55 ℃ and 58℃

        A. 55℃ β-actin1引物對(duì)擴(kuò)增β-actin的熔解曲線;B. 58℃下β-actin1引物對(duì)擴(kuò)增β-actin的熔解曲線;C. 55℃下β-actin2引物對(duì)擴(kuò)增β-actin的熔解曲線;D. 58℃ β-actin2引物對(duì)擴(kuò)增β-actin的熔解曲線

        1.At 55℃, the melting curve ofβ-actinwith a pair of primers β-actin1; B. At 58℃, the melting curve ofβ-actinwith a pair of primers β-actin1; C. At 55℃, the melting curve ofβ-actinwith a pair of primers β-actin2; D. At 58℃, the melting curve ofβ-actinwith a pair of primers actin2

        圖5 在55和58℃退火溫度下,兩對(duì)引物β-actin1和β-actin2擴(kuò)增β-actin的熔解曲線
        Fig.5 The melting curves ofβ-actinwith two pairs of primers β-actin1 and β-actin2 under the annealing temperatures of 55℃ or 58℃

        2.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作以及引物差異性比較

        在同一退火溫度下,β-actin1引物對(duì)在55℃的擴(kuò)增效率為E=10-1/-3.392 6-1=0.972 3,58℃時(shí)為E=10-1/-3.443 2-1=0.951 7,而β-actin2 引物對(duì)在55℃的擴(kuò)增效率為E=10-1/-3.685 3-1=0.867 877,58℃時(shí)為E=10-1/-3.903 4-1=0.803 794。以上的結(jié)果可以總結(jié)為兩點(diǎn):首先在相同的退火溫度下,引物對(duì)β-actin1擴(kuò)增β-actin基因的擴(kuò)增效率高于引物對(duì)β-actin2的擴(kuò)增;第二,同一引物對(duì),在55℃退火溫度下的擴(kuò)增效率要高于58℃??傮w來(lái)講,引物對(duì)β-actin1在55℃的退火溫度下對(duì)β-actin基因的擴(kuò)增效率較好。表3

        表3β-actin基因在不同引物對(duì)及不同退火溫度條件下擴(kuò)增的標(biāo)準(zhǔn)曲線公式
        Table 3 Standard curves formula ofβ-actingene at different pair of primers and annealing temperatures

        引物名稱(chēng)Primername溫度Temperature(℃)公式FormulaR2擴(kuò)增效率E(amplificationefficiency)引物對(duì)β-actin1apairofβ-actin155Y=-33926x+33409099750972358Y=-34432x+321490995409517引物對(duì)β-actin2apairofβ-actin255Y=-36853x+30481099940867958Y=-39034x+353370998608038

        在以鹽穗木為材料,實(shí)時(shí)定量PCR過(guò)程中,引物對(duì)β-actin1擴(kuò)增的Ct值大概在23左右,而引物對(duì)β-actin2的Ct值往往要很高,一般在28左右,這也說(shuō)明β-actin1基因擴(kuò)增效率上確實(shí)要大于β-actin2的擴(kuò)增效率。

        同時(shí)分別以這2對(duì)引物擴(kuò)增β-actin作為內(nèi)參基因,檢測(cè)了一個(gè)鹽穗木鹽響應(yīng)的基因 (POD)的相對(duì)表達(dá)量,結(jié)果為是目的基因的表達(dá)呈現(xiàn)一定的差異。退火溫度為55℃時(shí)(圖6A),根據(jù)Ct值繪制的鹽穗木POD基因片段的標(biāo)準(zhǔn)曲線,R2=0.986 1,表明該基因標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性化較好,并且基因的熔解曲線單一,無(wú)雜峰,說(shuō)明設(shè)計(jì)的引物是特異的,沒(méi)有引物二聚體和非特異擴(kuò)增。該引物的擴(kuò)增效率為0.986,在接受范圍之內(nèi),該引物是可用的。

        400 mM NaCl處理不同時(shí)間的鹽穗木同化枝過(guò)氧化物酶基因(POD)的表達(dá)情況(圖6B和6C),結(jié)果為利用β-actin1引物對(duì)擴(kuò)增的β-actin作為內(nèi)參基因,鹽處理24 h時(shí)POD基因的最大表達(dá)倍數(shù)是對(duì)照的4倍,而利用β-actin2引物對(duì)擴(kuò)增的β-actin作為內(nèi)參基因,相應(yīng)地,雖然POD基因在24 h表現(xiàn)為上調(diào)趨勢(shì),但相對(duì)表達(dá)量?jī)H是1.5倍,與對(duì)照相比,基因的表達(dá)沒(méi)有顯著差異。說(shuō)明不同的引物對(duì)于基因的擴(kuò)增效率是不同的。不論是內(nèi)參基因還是目的基因,設(shè)計(jì)優(yōu)化的引物對(duì)于獲得準(zhǔn)確、可靠的實(shí)時(shí)定量PCR的結(jié)果是非常重要的。圖6

        注:小字母表示處理間顯著差異P< 0.05

        Note: The letters represent significant differences among treatment,P< 0.05

        圖6 鹽穗木POD基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線(A)和分別以不同引物β-actin1(B)和β-actin2(C)擴(kuò)增的β-actin作為內(nèi)參基因檢測(cè)鹽脅迫處理的鹽穗木同化枝POD的表達(dá)水平(小字母表示處理間顯著差異P< 0.05)
        Fig.6 The standard curve ofHalostachyscaspicaPODgene(A) and its relative expression from this species' assimilating branches under the treatment of 400 mM NaCl withβ-actingene as a reference gene amplified with different primers β-actin1(B) and β-actin2(C)(The letters presented significant differences among different treatments,P< 0.05)

        3 討 論

        實(shí)時(shí)定量PCR是在mRNA水平對(duì)基因的表達(dá)進(jìn)行監(jiān)控,可以對(duì)待測(cè)樣品的起始模板濃度進(jìn)行絕對(duì)和相對(duì)定量,實(shí)時(shí)檢測(cè)目的基因mRNA水平的表達(dá)變化,是分子診斷學(xué)、生命科學(xué)、農(nóng)學(xué)以及醫(yī)學(xué)中非常重要的技術(shù)[13-14]。

        同時(shí)在實(shí)時(shí)定量PCR過(guò)程中很多參數(shù)都會(huì)影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果的準(zhǔn)確性,如樣品初始量,RNA完整性,cDNA合成的效率,引物的設(shè)計(jì),退火溫度等等[14]。擴(kuò)增效率可以衡量實(shí)時(shí)定量PCR的過(guò)程,一般90%~107%的擴(kuò)增效率屬于正常范圍,其中擴(kuò)增效率對(duì)于引物是高度依賴(lài)的[15-16]。除了引物對(duì)擴(kuò)增效率有影響,低的擴(kuò)增效率(<90%)還有可能是由于Taq酶的活性低,抑制劑的污染,退火溫度未優(yōu)化,引物設(shè)計(jì)不合理或擴(kuò)增產(chǎn)物含二級(jí)結(jié)構(gòu)等造成的;過(guò)高擴(kuò)增效率(>107%)的原因一般是由于引物二聚體或非特異性擴(kuò)增引起的,不過(guò)因人為操作不當(dāng),移液器不準(zhǔn),離心不當(dāng)?shù)榷绊憯U(kuò)增效率的高低也是經(jīng)常發(fā)生的[13]。實(shí)驗(yàn)中盡量保持上述條件的一致,來(lái)研究引物和退火溫度對(duì)擴(kuò)增效率的影響。

        研究構(gòu)建了不同引物對(duì)擴(kuò)增的鹽穗木β-actin基因和特異性引物擴(kuò)增的POD基因的標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒,采用SYBR Green I染料法進(jìn)行qRT-PCR,通過(guò)熔解曲線分析擴(kuò)增產(chǎn)物,排除非特異擴(kuò)增,不論是內(nèi)參基因還是目的基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性化良好(R2>0.986),實(shí)驗(yàn)也明確引物和退火溫度的不同,對(duì)于實(shí)時(shí)定量PCR的擴(kuò)增效率存在很大影響,分別在55和58℃建立了β-actin基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線,發(fā)現(xiàn)二者的擴(kuò)增效率確實(shí)存在差異,高溫條件的擴(kuò)增效率要低于低溫的擴(kuò)增效率,并且雖然引物對(duì)β-actin1較高退火溫度的擴(kuò)增效率低于較低的溫度,但是也在可接受范圍之內(nèi),為以后,實(shí)時(shí)定量PCR實(shí)驗(yàn)中,β-actin基因引物退火溫度的選擇方面擴(kuò)大了范圍。

        4 結(jié) 論

        影響實(shí)時(shí)定量PCR的因素有很多,研究了引物和退火溫度對(duì)基因擴(kuò)增效率的影響,以鹽穗木的一個(gè)內(nèi)參基因β-actin為例,在設(shè)計(jì)的兩對(duì)引物中,β-actin1引物對(duì)在55℃退火溫度下其標(biāo)準(zhǔn)曲線的擴(kuò)增效率較高。并且在相同退火溫度下,分別以引物對(duì)β-actin1和β-actin2擴(kuò)增作為內(nèi)參基因的β-actin,檢測(cè)到的鹽穗木鹽響應(yīng)的POD基因的相對(duì)表達(dá)量具有差異性。在實(shí)時(shí)熒光定量PCR之前一定要對(duì)引物進(jìn)行優(yōu)化,選擇合適的退火溫度等,這些對(duì)于準(zhǔn)確檢測(cè)靶基因的相對(duì)和絕對(duì)表達(dá)量非常重要。

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        Supported by:the Natural Science Foundation of Xinjiang Uygur Autonomous Region "The correlation analysis of some candidate miRNAs and target genes in the halophyteHalostachyscaspicaunder high salt intensity"(2015211C274)

        Effects of Different Primers and Annealing Tempearatures on the Amplification Eefficiency of Real-Time PCR Reference Gene β-actin in the HalophyteHalostachysCaspica

        BAI Xue-qin, YANG Rui-rui, ZENG You-ling

        (XinjiangKeyLaboratoryofBiologicalResourcesandGeneticEngineering,CollegeofLifeScienceandTechnology,XinjiangUniversity,Urumqi830046,China)

        【Objective】 To study the effects of different primers and annealing temperatures on real quantitative PCR amplification efficiency of reference gene β-actin with the halophyteHalostachyscaspicaas research material.【Method】Standard curves of β-actin and peroxidase gene,POD(representative gene responding to salt stress)from this species were built with well-designed two pairs of primers named β-actin1 and β-actin2 for β-actin as internal reference gene, and a pair of primers forPODgene and amplification curves were obtained under different conditions for these genes.【Result】Results showed that the amplification efficiency of the primers β-actin1 was higher than that of the primers β-actin2 in theHalostachyscaspicabranches under the 55℃ or 58℃ annealing temperature, and amplification efficiency at 55℃ annealing temperature was higher than that at 58℃. On the other hand, it was found there were some differences in the relative expression levels ofHalostachyscaspicaPODgene using the internal reference gene β-actin with two pairs of primers β-actin1 and β-actin2 under the 55℃ annealing temperature.【Conclusion】The research indicates that primers and annealing temperatures can influence the fluorescence quantitative PCR amplification efficiency and then affect relative expression level of candidate genes at a certain extend.

        Halostachyscaspica; different primers and annealing temperatures; β-actin; amplification efficiency

        10.6048/j.issn.1001-4330.2017.02.019

        2016-11-21

        新疆維吾爾自治區(qū)自然科學(xué)基金"極端耐鹽植物鹽穗木高鹽脅迫下一些差異表達(dá)候選的miRNA與靶向基因的相關(guān)性分析"(2015211C274)

        白雪芹(1989-),女,甘肅人,碩士研究生,研究方向?yàn)橹参锟鼓嫔砗头肿訖C(jī)制,(E-mail)1621654925@qq.com

        曾幼玲(1971- ),女,四川人,副教授,研究方向?yàn)橹参锟鼓嫔砗头肿訖C(jī)制,(E-mail)zeng_ylxju@126.com

        Q786

        A

        1001-4330(2017)02-0352-09

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