李延琪,徐永清,苗 宇,蔡振學(xué),周 晶,董佳敏,姚樹寬,趙巧芩,李鳳蘭,*,胡寶忠,2,*

(1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,黑龍江哈爾濱 150030;2.哈爾濱學(xué)院,黑龍江哈爾濱 150086)

魯梅克斯葉蛋白的抗氧化肽活性及功能性質(zhì)研究

李延琪1,徐永清1,苗 宇1,蔡振學(xué)1,周 晶1,董佳敏1,姚樹寬1,趙巧芩1,李鳳蘭1,*,胡寶忠1,2,*

(1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,黑龍江哈爾濱 150030;2.哈爾濱學(xué)院,黑龍江哈爾濱 150086)

魯梅克斯,葉蛋白,抗氧化肽,功能性質(zhì)

葉蛋白(leaves protein concentration,簡稱LPC)是指從植物的青嫩莖葉中提取,經(jīng)榨汁、絮凝、干燥等工藝提取的一種富含蛋白質(zhì)的濃縮物,屬“功能性蛋白質(zhì)”[1]。食用葉蛋白,可減少動物蛋白的食用量,減少因飽和脂肪酸、膽固醇攝入量過多帶來的肥胖、動脈粥樣硬化等疾病。謝正軍等研究表明,葉蛋白經(jīng)過酶解,可形成2到幾十個氨基酸殘基的肽段,這些肽段具有抗氧化的功效,可抑制生物大分子過氧化或者清除體內(nèi)的多種自由基,故被稱為抗氧化肽[2]。一般地,獲得抗氧化肽有3種途徑:從天然生物體中提取,水解蛋白產(chǎn)生或化學(xué)、酶法、重組DNA技術(shù)合成;但是受生產(chǎn)成本、技術(shù)難度、化學(xué)殘留等多種因素影響,以酶法水解獲得抗氧化肽的較多[3]。目前研究中,從動物膠原蛋白[4]、小麥胚[5]、花生[6]、大豆[7]、松仁[8]、螺旋藻[9]、苜蓿[1-2]中獲取抗氧化肽的研究已有報道,但是從魯梅克斯獲取抗氧化肽的研究較少。

魯梅克斯為蓼科(Polygonaceae)酸模屬(RumexL.),屬多年生宿根草本植物,營養(yǎng)豐富,蛋白質(zhì)含量較高,同時還含有豐富的胡蘿卜素和維生素及多種礦物質(zhì),既可作為牧草,又可作為蔬菜或食品加工原料[10]。本文研究對象為俄羅斯引種魯梅克斯(Щавель Чемпион,冠軍酸模),經(jīng)本課題組研究證明,該品種魯梅克斯干物質(zhì)中蛋白質(zhì)含量為18%～20%,相比以往國內(nèi)品種K-1雜交酸模,其蛋白質(zhì)含量高、植株矮化,耐寒耐鹽堿性強(qiáng);單寧含量低,僅為0.01%左右;一年可刈割3～4次,是一種極具開發(fā)價值的植物蛋白資源[11]。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

魯梅克斯 俄羅斯引種,東北農(nóng)業(yè)大學(xué)實(shí)驗(yàn)基地提供;Protein Marker 北京全式金生物技術(shù)有限公司;胰蛋白酶(3000u/mg)、胃蛋白酶(500u/mg) 北京博奧拓達(dá)科技有限公司;3500 ku透析袋 北京索萊寶科技有限公司;金龍魚大豆油 益海嘉里哈爾濱糧油食品工業(yè)有限公司;其他試劑 均為國產(chǎn)分析純。

DYY-8C 型垂直電泳儀 北京六一儀器廠;TS-A型脫色搖床 江蘇金城國勝實(shí)驗(yàn)儀器廠;HWS28型電熱恒溫水浴鍋、DHG-9053A型電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱 上海一恒科學(xué)儀器有限公司;UVmini-1240紫外可見分光光度計 島津制作所;精密pH計 上海般特儀器有限公司;JYL-C012九陽料理機(jī) 九陽股份有限公司;sartorius分析天平 北京賽多利斯天平有限公司;飛鴿牌TDL-5臺式離心機(jī) 上海安亭科學(xué)儀器廠;超聲波清洗器 寧波新芝生物科技股份有限公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 葉蛋白提取及分子量確定 依據(jù)王峰所提供的堿熱法提取葉蛋白的相關(guān)工藝,并在此基礎(chǔ)上進(jìn)行優(yōu)化,確定魯梅克斯葉蛋白的提取工藝如下[12]:稱取葉簇期新鮮魯梅克斯葉片100 g,洗凈切段,按1∶5的比例加入0.4% NaCl溶液攪碎制成勻漿;將勻漿以40 KHz的超聲波處理30 min,促進(jìn)葉蛋白的溶解,再用4層200目濾布過濾除去殘渣;將濾液pH調(diào)為10,60 ℃恒溫水浴30 min,使得葉蛋白充分絮凝沉淀;5000 r/min離心10 min,棄上清,將沉淀置于60 ℃恒溫干燥箱中烘干至恒重。

根據(jù)王忠英所提供的葉蛋白分子量確定方法[13],進(jìn)行SDS-PAGE電泳。根據(jù)電泳圖,將蛋白Marker分子量的對數(shù)(lgMr)與相對遷移率(mR)進(jìn)行線性回歸;再以樣品蛋白的mR計算其分子量。其中,相對遷移率(mR)=蛋白質(zhì)樣品遷移距離(cm)/染料遷移距離(cm)。

1.2.2 葉蛋白抗氧化肽活性分析

1.2.2.1 抗氧化肽的制備 配制0.6 mg/mL的葉蛋白50 mL 2份,將其90 ℃水浴處理10 min,25 ℃ 40 KHz超聲30 min,促進(jìn)葉蛋白的溶解,透析袋透析脫鹽24 h,將葉蛋白按酶/底物為5000 u/g的比例分別加入胰蛋白酶和胃蛋白酶,37 ℃水浴加熱處理2 h。胰蛋白酶處理的葉蛋白溶液pH為8.0,胃蛋白酶處理的葉蛋白溶液pH為1.8。2 h后,3000 r/min離心5 min,取上清液,將其在60 ℃烘干,制成粉末[3-4,8]。

1.2.3 葉蛋白功能性質(zhì)分析 溶解性、持水性、持油性、乳化性及發(fā)泡性常被用作衡量蛋白功能性質(zhì)的指標(biāo)。實(shí)驗(yàn)中,分別配制2%、2%、2%、0.4%、5%的葉蛋白溶液,用于探究外界條件對魯梅克斯葉蛋白的溶解性、持水性、持油性、乳化性及發(fā)泡性的影響。探究條件分別是:溫度為4、20、40、60、80 ℃,pH為2、4、6、8、10,NaCl離子濃度為0%、1%、2%、3%、4%、5%。但由于持油性受pH和NaCl濃度的影響較小,在此只探究溫度對其影響。其中,溶解性、持水性、乳化性依據(jù)姜傳京所提供的方法進(jìn)行測定[18],持油性、發(fā)泡性根據(jù)呂巧枝所提供的方法進(jìn)行測定[19]。

1.2.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析方法 葉蛋白酶解物的抗氧化性與葉蛋白的功能性質(zhì)相關(guān)數(shù)據(jù)運(yùn)用SPSS軟件進(jìn)行方差分析和獨(dú)立樣本T-test。

2 結(jié)果與分析

2.1 葉蛋白提取及分子量確定

本研究采用改良丙酮提取法從魯梅克斯葉片中提取了葉蛋白,對其進(jìn)行SDS-PAGE電泳,結(jié)果如圖1所示,由結(jié)果看出可以獲得3個不同分子量的蛋白質(zhì)條帶。

圖1 葉蛋白SDS-PAGEFig.1 SDS-PAGE of leaf protein注:圖1中從左至右,第1泳道為蛋白Marker(≤120 ku),第2、3泳道為樣品蛋白。

根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)蛋白lgMr-MR進(jìn)行線性回歸,如圖2所示,可確定樣品蛋白3條條帶對應(yīng)的蛋白分子量分別為36.47、40.54、54.10 ku。謝正軍關(guān)于苜蓿葉蛋白SDS-PAGE已證明,核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶的大亞基為苜蓿葉蛋白組分,其分子量為50～55 ku,占葉蛋白的27.31%[2]。因此,推測魯梅克斯葉蛋白中分子量為54.10 ku蛋白分子為核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶大亞基,而分子量為36.47、40.54 ku的蛋白組分應(yīng)為葉綠體內(nèi)基質(zhì)蛋白或細(xì)胞質(zhì)蛋白的混合物。

圖2 標(biāo)準(zhǔn)蛋白lgMr-MR線性回歸Fig.2 lgMr-MR linear regression of standard protein

2.2 葉蛋白抗氧化肽活性分析

2.2.1 葉蛋白抗氧化肽的還原力 還原力是衡量抗氧化物質(zhì)提供電子能力的重要指標(biāo),抗氧化物質(zhì)可通過提供電子使自由基變?yōu)榉€(wěn)定的物質(zhì),用以中斷自由基的連鎖反應(yīng)。如圖3所示,胰蛋白酶酶解肽的還原力顯著高于胃蛋白酶酶解肽的還原力;且自肽濃度為0.5 mg/mL起,胰蛋白酶酶解肽還原力顯著高于胃蛋白酶酶解肽的還原力(p<0.01),并且胰蛋白酶酶解肽呈持續(xù)顯著增長趨勢(p<0.01);但在肽濃度為1.5 mg/mL到2.0 mg/mL時,胃蛋白酶酶解肽還原力的增長幅度不顯著(p>0.05),而胰蛋白酶酶解肽的還原力依然顯著增長(p<0.01)。當(dāng)肽濃度達(dá)到2.5 mg/mL時,胰蛋白酶酶解肽的還原力已達(dá)到胃蛋白酶酶解肽的4.5倍左右。

圖3 葉蛋白酶解物的還原力Fig.3 The reducing power of leaf protein hydrolysates注:同一樣品、不同濃度下的不同大、小寫字母表示差異極顯著(p<0.01)、顯著(p<0.05);不同樣品、相同濃度下的“**”表示差異極顯著(p<0.01)，“*”表示差異顯著(p<0.05);圖4～圖7同。

2.2.2 葉蛋白抗氧化肽對DPPH·的清除能力 DPPH·(1,1-二苯-苦肼基),是為數(shù)不多的即使在室溫條件下也能保持穩(wěn)定的自由基,被廣泛應(yīng)用于天然有機(jī)化合物和植物提取物的抗氧化活性的考察與評價[20]。如圖4所示,2種葉蛋白酶解肽自肽濃度從2 mg/mL起,隨著肽濃度的升高,其對DPPH·的清除能力都呈顯著增強(qiáng)的趨勢(p<0.01)。在肽濃度為1～8 mg/mL的范圍內(nèi),胰蛋白酶酶解肽對DPPH·的清除能力要顯著高于胃蛋白酶酶解肽(p<0.05);當(dāng)肽濃度升至15 mg/mL時,胃蛋白酶酶解肽對DPPH·的抑制率則超過了胰蛋白酶酶解肽,此時兩種肽對DPPH·的抑制率均能達(dá)到80%,但二者差異不顯著(p>0.05)。兩種肽對DPPH·的半抑制濃度,胰蛋白酶酶解肽為4 mg/mL左右,而胃蛋白酶酶解肽則需8 mg/mL左右。

圖4 葉蛋白酶解物對DPPH·的清除能力Fig.4 The scavenging ability of leafprotein hydrolysates for DPPH·

圖5 葉蛋白酶解物對的清除能力Fig.5 The scavenging ability of

2.2.4 葉蛋白抗氧化肽對·OH的清除能力 ·OH是生命活動的代謝過程所產(chǎn)生的最活潑、氧化能力最強(qiáng)的自由基,幾乎可與所有的生物大分子發(fā)生反應(yīng),其進(jìn)攻性極強(qiáng),速率常數(shù)極高,對機(jī)體造成的危害也極大。如圖6所示,兩種葉蛋白酶酶解肽隨著肽濃度的升高,對·OH的清除率都呈逐漸增強(qiáng)的趨勢,體現(xiàn)出一定的量效關(guān)系。當(dāng)肽濃度為4 mg/mL以下時,兩種肽對·OH的清除效果差異不顯著(p<0.05);而當(dāng)肽濃度升至8 mg/mL時,胰蛋白酶酶解肽的清除能力則顯著高于胃蛋白酶酶解肽(p<0.01)。肽濃度為15 mg/mL時,胃蛋白酶酶解肽對·OH的清除率只有29.68%,而胰蛋白酶酶解肽則為46.34%,約是前者的1.5倍多。

圖6 葉蛋白酶解物對·OH的清除能力Fig.6 The scavenging ability of leaf protein hydrolysates for ·OH

圖7 葉蛋白酶解物對Fe2+的螯合能力Fig.7 The chelating ability of leaf protein hydrolysates for Fe2+

2.3 葉蛋白功能性質(zhì)分析

2.3.1 葉蛋白的溶解性 溫度、pH、氯化鈉濃度對魯梅克斯葉蛋白的溶解性會產(chǎn)生一定影響。溫度對葉蛋白溶解性的影響如圖8a所示,當(dāng)溫度在4～80 ℃的范圍內(nèi),葉蛋白的溶解性隨著溫度的升高呈緩慢上升的趨勢,這是由于結(jié)構(gòu)十分緊密的蛋白質(zhì)在加熱處理時因發(fā)生解離和伸展,導(dǎo)致原來掩蔽在內(nèi)部的膚鏈和極性側(cè)鍵轉(zhuǎn)向表面外露,從而改進(jìn)了蛋白質(zhì)的水化能力。在80 ℃時溶解性達(dá)到最大,為46.30%。

圖8 溫度、pH和NaCl濃度對葉蛋白溶解性的影響Fig.8 Effect of temperature,pH and NaCl concentration on the solubility of leaf protein 注:a.溫度對葉蛋白溶解性的影響;b.pH對葉蛋白溶解性的影響;c.NaCl濃度對葉蛋白溶解性的影響。不同大寫字母表示差異極顯著(p<0.01),不同小寫字母表示差異顯著(p<0.05)，圖9～圖12同。

如圖8b所示,pH對葉蛋白的溶解度呈先降低后升高的趨勢。當(dāng)pH為6.0時,處于葉蛋白的等電點(diǎn)附近,蛋白質(zhì)呈兼性離子狀態(tài),缺乏靜電排斥作用,疏水相互作用導(dǎo)致蛋白質(zhì)的聚集和沉淀,溶解性最小。當(dāng)pH從6.0到10.0和從6.0到2.0,葉蛋白的溶解性明顯增加,說明在遠(yuǎn)離等電點(diǎn)的偏堿性和偏酸性環(huán)境中具有較大的溶解性。

如圖8c所示,在氯化鈉濃度為0～5%的范圍內(nèi),葉蛋白溶解性隨氯化鈉濃度的增大呈逐漸減小的趨勢,因?yàn)樵诟啕}濃度時,水鹽間相互作用大于水與蛋白質(zhì)間的作用,蛋白質(zhì)脫水產(chǎn)生“鹽析”,從而導(dǎo)致蛋白的溶解性降低。

2.3.2 葉蛋白的持水性 溫度、pH、氯化鈉濃度對魯梅克斯葉蛋白的持水性會產(chǎn)生一定影響,其結(jié)果如圖9所示。其中溫度的影響如圖9a所示,可見在溫度為4～40 ℃范圍內(nèi),葉蛋白的持水能力顯著增加,特別是溫度從20 ℃升至40 ℃過程中,持水性增長幅度顯著(p<0.05),40 ℃時達(dá)到最高值,為5.23 g/g;之后,隨溫度持續(xù)升高,持水能力又逐漸下降,但其趨勢平緩,差異不顯著(p>0.05)。此現(xiàn)象是由于適當(dāng)?shù)奶嵘郎囟瓤墒菇Y(jié)構(gòu)致密的蛋白質(zhì)因加熱而發(fā)生解離、伸展,使原來隱蔽的肽鍵和極性側(cè)鏈暴露到表面上來,因而提高了持水能力;而隨溫度的持續(xù)升高持水性呈現(xiàn)下降的趨勢,則因?yàn)檫^高的溫度致使蛋白質(zhì)的氫鍵作用和離子基團(tuán)水合作用減弱,導(dǎo)致蛋白質(zhì)結(jié)合水的能力隨之下降。

圖9 溫度、pH和NaCl濃度對葉蛋白持水性的影響Fig.9 Effect of temperature,pH and NaCl concentration on the water binding capacity of leaf protein注a.溫度對葉蛋白持水性的影響;b.pH對葉蛋白持水性的影響;c.NaCl濃度對葉蛋白持水性的影響。

如圖9b所示,在pH為6.0附近,葉蛋白的持水能力最低,遠(yuǎn)離等電點(diǎn)的偏酸性和偏堿性環(huán)境中持水能力逐漸變大,這是由于等電點(diǎn)pH時蛋白質(zhì)與蛋白質(zhì)間的相互作用增強(qiáng),致使蛋白質(zhì)與水的相互作用弱化,因此蛋白質(zhì)呈現(xiàn)出最低的水合作用。當(dāng)pH高于或低于等電點(diǎn)時,由于凈電荷和排斥力的增加,導(dǎo)致蛋白質(zhì)膨脹、結(jié)合水增多。

如圖9c所示,NaCl 濃度在0～2%范圍內(nèi),蛋白質(zhì)的持水力隨鹽濃度增加呈上升趨勢,當(dāng) NaCl 濃度大于2%之后,蛋白質(zhì)的持水性趨于平穩(wěn)。因?yàn)樗?、鹽和蛋白質(zhì)側(cè)鏈基團(tuán)之間產(chǎn)生競爭性結(jié)合,低鹽濃度時,蛋白質(zhì)水化作用較強(qiáng),高鹽濃度時,水鹽的相互作用大于水與蛋白質(zhì)的相互作用;魯梅克斯葉蛋白在NaCl濃度大于2%時,水與蛋白質(zhì)的相互作用弱于水與鹽的相互作用葉蛋白形成高度聚合的微觀結(jié)構(gòu),持水性達(dá)到最大水平。

2.3.3 葉蛋白的持油性 葉蛋白的持油性主要受溫度影響,其結(jié)果如圖10所示。從4 ℃到80 ℃的升溫過程中,葉蛋白的持油性逐漸升高。其原因在于隨溫度的升高,葉蛋白發(fā)生變性,蛋白質(zhì)分子逐漸解離、伸展,肽鏈伸展后與加熱處理的油中小分子結(jié)合,從而增強(qiáng)了葉蛋白的持油性。

圖10 溫度對葉蛋白持油性的影響Fig.10 Effect of temperature on the oil binding of leaf protein

2.3.4 葉蛋白的乳化性 魯梅克斯葉蛋白的乳化性可受溫度、pH、氯化鈉濃度的影響。溫度對葉蛋白溶解性的影響如圖11a所示,可見4～40 ℃之間,葉蛋白的乳化性基本維持不變;但在40 ℃ 升至 60 ℃時,隨著溫度的升高,葉蛋白的乳化性升高;在60～80 ℃之間,乳化性又隨之減小。這是由于在 40～80 ℃之間,隨著溫度的升高,蛋白質(zhì)的溶解度和伸展程度增加,蛋白質(zhì)之間的排斥力減小,油滴容易吸附在蛋白質(zhì)界面上,從而提高了蛋白質(zhì)的乳化能力。而持續(xù)加熱能降低吸附在界面上的蛋白質(zhì)膜的粘度和硬度,因而乳化性及其穩(wěn)定性降低,而40 ℃以下溫度對油滴與蛋白質(zhì)界面的吸附力影響不大。

圖11 溫度、pH和NaCl濃度對葉蛋白乳化性的影響Fig.11 Effect of temperature,pH and NaCl concentration on the emulsifying properties of leaf protein注a.溫度對葉蛋白乳化性的影響;b.pH對葉蛋白乳化性的影響;c.NaCl濃度對葉蛋白乳化性的影響。

如圖11b所示,在pH為2～10的范圍內(nèi),葉蛋白的乳化性大致呈逐漸升高的趨勢。在pH為6降至2時,隨著pH的降低,蛋白質(zhì)發(fā)生變性、聚集,使蛋白質(zhì)分子疏水性/親水性比值降低,與油表面的結(jié)合減少,影響了蛋白質(zhì)的乳化性。同時蛋白質(zhì)分子的柔韌性降低,不能在界面迅速展開,影響了葉蛋白的乳化性。在pH為6～10的范圍內(nèi),隨pH升高,葉蛋白發(fā)生羧基去質(zhì)子化,電荷排布改變,有利于乳化性的提高。

如圖11c所示,NaCl濃度在0～5%范圍內(nèi),葉蛋白的乳化性先增大后減小,NaCl濃度為2%時乳化性最大。其原因是由于低鹽濃度時蛋白質(zhì)發(fā)生了“鹽溶”現(xiàn)象,在鹽溶過程中,葉蛋白分子所帶的靜電荷增加,蛋白質(zhì)之間的排斥力減小,充分發(fā)揮了它的表面活性作用,油滴更容易吸附在蛋白質(zhì)界面上;而高鹽濃度時則相反。

2.3.5 葉蛋白的發(fā)泡性 溫度、pH、氯化鈉濃度可對葉蛋白的發(fā)泡性造成影響,其結(jié)果如圖12所示。其中,溫度對葉蛋白發(fā)泡性的影響如圖12a所示,可見在溫度為4～80 ℃的范圍內(nèi),發(fā)泡性大致呈逐漸下降的趨勢，這是因?yàn)槌掷m(xù)的高溫加熱,會導(dǎo)致空氣膨脹,薄膜黏度降低,氣泡破裂、泡沫解體,降低發(fā)泡能力。

圖12 溫度、pH和NaCl濃度對葉蛋白發(fā)泡性的影響Fig.12 Effect of temperature,pH and NaCl concentration on foaminess of the leaf protein注:a.溫度對葉蛋白發(fā)泡性的影響;b.pH對葉蛋白發(fā)泡性的影響;c.NaCl濃度對葉蛋白發(fā)泡性的影響。

如圖12b所示,葉蛋白發(fā)泡性與溶解性密切相關(guān),在pH2～6時,隨著pH的升高,葉蛋白質(zhì)溶解性下降,發(fā)泡力也下降;pH為6時,在魯梅克斯葉蛋白的等電點(diǎn)附近,溶解度最低,發(fā)泡力也就最低。當(dāng)pH在6～10范圍內(nèi)變化時,隨著pH升高,溶解度增加,發(fā)泡力也明顯提高。

如圖12c所示,NaCl濃度在0～2.0%范圍內(nèi)時,葉蛋白發(fā)泡能力持續(xù)增強(qiáng),濃度為2.0%時,發(fā)泡能力最強(qiáng);NaCl濃度高于2.0%時,發(fā)泡力略下降,之后濃度在3.0～5.0%水平時,發(fā)泡能力基本處于穩(wěn)定狀態(tài)。這是因?yàn)楫?dāng)NaCl濃度較低時,溶解的蛋白質(zhì)較少,仍有部分蛋白質(zhì)以固體狀態(tài)存在,這時液體經(jīng)過高速攪拌,生成固、液、氣三相泡沫,而固體和液膜的接觸面適中,則可吸附在界面上,阻止氣泡粗化,故發(fā)泡力有增加趨勢;當(dāng)NaCl濃度逐漸增加,發(fā)泡力隨之增加,但NaCl濃度超過一定值后,溶解的蛋白質(zhì)增加而使溶液中以固體形式存在的蛋白質(zhì)減少,不能形成三相泡沫,故發(fā)泡力降低,直至一個相對平衡的狀態(tài)。

3 結(jié)論

3.1 魯梅克斯葉蛋白含有3種不同分子量的蛋白質(zhì),其中分子量為54.10 ku的蛋白應(yīng)為核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶大亞基,而分子量為36.47、40.54 ku的蛋白應(yīng)為葉綠體基質(zhì)蛋白或細(xì)胞質(zhì)中的蛋白混合物。

3.3 葉蛋白的功能性質(zhì)研究表明,魯梅克斯葉蛋白具有較高的持水性(不同條件下均大于4 g/g)和發(fā)泡性(最高可達(dá)45%),二者受溫度、pH和NaCl濃度的影響較小;而溶解性、持油性和乳化性受溫度、pH和NaCl濃度影響,表現(xiàn)出規(guī)律性差異,存在一定幅度上的波動。

因此,以上研究證明,魯梅克斯葉蛋白酶解物具有一定的抗氧化效果,食用魯梅克斯葉蛋白經(jīng)體內(nèi)消化酶解后可有效清除體內(nèi)的自由基,減少自由基帶來的氧化損傷。依據(jù)魯梅克斯葉蛋白的功能性質(zhì),可將葉蛋白進(jìn)一步加工,使其在食品和醫(yī)藥保健領(lǐng)域得到更為充分的利用。

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Study on antioxidant peptide activity and functional properties ofRumexleaf protein

LI Yan-qi1,XU Yong-qing1,MIAO Yu1,CAI Zhen-xue1,ZHOU Jing1,DONG Jia-min1,YAO Shu-kuan1,ZHAO Qiao-qin1,LI Feng-lan1,*,HU Bao-zhong1,2,*

(1.Northeast Agricultural University,College of Life Sciences,Harbin 150030,China;2.Harbin University,Harbin 150086,China)

Rumex;leaf protein;antioxidant peptides;functional properties

2016-06-28

李延琪(1991-)，男，碩士研究生，研究方向：生物工程，E-mail:ptfwyf@163.com。

*通訊作者:李鳳蘭(1973-)，女，副教授，研究方向：植物學(xué)，E-mail:lifenglan@neau.edu.cn。 胡寶忠(1962-)，男，教授，研究方向：植物學(xué)，E-mail:bzhu@neau.edu.cn。

國家國際科技合作項(xiàng)目(2013DFR30270);國家基礎(chǔ)科學(xué)人才培養(yǎng)基金資助項(xiàng)目(J1210069)。

TS255.1

A

1002-0306(2017)02-0104-07

10.13386/j.issn1002-0306.2017.02.011