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        考馬斯亮藍(lán)G—250染色法測定苜蓿中可溶性蛋白含量

        2017-03-05 19:41:36焦?jié)?/span>

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        摘要:蛋白質(zhì)的存在,會影響到酸堿測定中所用的某些指示劑的顏色變化,從而會改變?nèi)玖系墓馕?。因此在此基礎(chǔ)上發(fā)展了蛋白質(zhì)的染色測定方法,所涉及的指示劑目前最為廣泛使用的染料就是考馬斯亮藍(lán)。該文分析了考馬斯亮藍(lán)G-250染色法,測定苜蓿中的可溶性蛋白含量。

        關(guān)鍵詞:考馬斯亮藍(lán);苜蓿;蛋白含量

        可溶性蛋白是屬于蛋白質(zhì)的一種,由于生物體內(nèi)主要吸收利用的是可溶性蛋白,即可溶性蛋白含量高的植物開發(fā)價值高。苜蓿是一種葉蛋白含量較高的植物,但是,其中可溶性蛋白與總蛋白含量不一定成正比例關(guān)系。目前也沒有相關(guān)苜蓿中可溶性蛋白含量的報道,因此我們在苜蓿葉蛋白含量測定基礎(chǔ)上對其可溶性蛋白進(jìn)行了測定。通過對蛋白質(zhì)含量分析、了解為苜蓿資源評價提供參考依據(jù)。鑒于一般植物體內(nèi)可溶性蛋白含量較低的特點,我們采用具有消耗蛋白質(zhì)量小、靈敏度高、受外界因素影響小等特點的考馬斯亮藍(lán)G-250染色法(CBB)來測定[1,2]。

        考馬斯亮藍(lán)G-250在游離狀態(tài)下呈紅色,與蛋白質(zhì)結(jié)合則呈現(xiàn)藍(lán)色。染料的最大吸收從465 nm變?yōu)?95 nm,蛋白質(zhì)-染料復(fù)合物具有很高的消光系數(shù),因此蛋白質(zhì)測定的靈敏度較高,最低檢出量為1 ug蛋白質(zhì)。染料與蛋白質(zhì)的結(jié)合,大約只需2 min,結(jié)合物的顏色在1 h內(nèi)是穩(wěn)定的(測定須在1 h內(nèi)完成)。一定范圍內(nèi),溶液在595 nm波長下的吸光度與蛋白質(zhì)含量成正比,可用比色法測定。本法試劑配制簡單,操作簡便快捷,靈敏度高,測定范圍1-1000 ug 。

        1 儀器、材料及試劑

        Cary50紫外分光光度計;牛血清蛋白進(jìn)口分裝;考馬斯亮藍(lán)G-250進(jìn)口分裝(上海新型化工試劑研究所);其他藥品試劑均為國產(chǎn)分析純。新鮮苜蓿

        2 標(biāo)準(zhǔn)溶液及樣品浸體液制備

        蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液的制備:稱取牛血清蛋白25 mg,加水溶解并定容至100 mL(250 μg/mL),再吸取上述溶液40 mL,用蒸餾水稀釋至100 mL即可(100 μg/mL),所配置標(biāo)準(zhǔn)儲備液須在冰箱中保存。

        考馬斯亮藍(lán)G-250溶液制備:準(zhǔn)確稱取100.00 mg考馬斯亮藍(lán)G-250溶于50 mL90%乙醇中,再加入85%(W/V)磷酸100 mL,最后用蒸餾水定容至1000 mL。此溶液在常溫下可放置一個月。

        樣品浸體液制備 :稱取苜蓿干樣0.07 g(其他植物樣品按蛋白質(zhì)含量而定大約干樣0.05-0.07 g,新鮮樣0.5 g左右),加少量石英砂用蒸餾水研磨成勻漿定容至100 mL,靜置10-30 min(期間搖動數(shù)次)過濾(含色素可用活性炭脫色),過濾定容至10 mL。

        3 檢測結(jié)果及討論

        3.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制

        取6支試管,按表1,數(shù)據(jù)配制0-100 μg/mL血清白蛋白液各1.0 mL。準(zhǔn)確吸取所配各管溶液0.1 mL,分別放入10 mL具塞試管中,加入5 mL考馬斯亮藍(lán)G-250試劑,蓋塞,反轉(zhuǎn)混合數(shù)次,放置2 min后,在595 nm下比色,所測數(shù)據(jù)以蛋白含量(X)為橫坐標(biāo)以吸光度(A)為縱坐標(biāo)進(jìn)行線性回歸分析,回歸方程為:A=1.13265×C=4.3743,R=0.9927。

        3.2 重現(xiàn)性試驗

        準(zhǔn)確稱取同一種樣品5份(1號樣),按“樣品浸體液制備”和“標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制”項下操作,測定吸光度,RSD%=1.6,具體測定值如表2。

        3.3 加標(biāo)回收率試驗

        準(zhǔn)確稱取一支含量的樣品(2號樣),分別加入一定量的牛血清蛋白,按"樣品浸提液制備"和“標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制”項下操作,測定吸光度,平均回收率為97%,RSD%=3.7。具體結(jié)果見表3。

        3.4 前處理方法改進(jìn)試驗

        我們根據(jù)實驗室儀器設(shè)備以及樣品條件在浸提方法上與傳統(tǒng)提取方法進(jìn)行對比改進(jìn),進(jìn)行了一定的改進(jìn),使得浸提樣品方便快捷,并能達(dá)到浸提完全。 具體處理方法及數(shù)據(jù)見表4。

        由表4結(jié)果可見,方法②、③前處理效果比④、⑤、⑥方案浸提更完全,測定樣品可溶性蛋白濃度值根接近經(jīng)典方法,而與①比較方法②是樣品浸提方案中最簡便、快捷、測定準(zhǔn)確的前處理方案。

        3.5 顯色穩(wěn)定性試驗

        準(zhǔn)確稱?。?號)樣品0.7 g,按“樣品浸提夜制備”及“標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制”項下操作,每隔一定的時間測定一次吸收度,結(jié)果表明,再顯色3 h內(nèi)吸收無變化。

        4 討論

        本研究通過考馬斯亮藍(lán)G-250染色法對苜蓿中較低濃度的可溶性蛋白含量進(jìn)行測定以了解苜蓿中可溶性蛋白含量的情況,并進(jìn)行處理方法篩選,確定測定低濃度蛋白質(zhì)的最佳條件。結(jié)果表明:

        考馬斯亮藍(lán)G-250染色法測定蛋白質(zhì)含量,在一定蛋白質(zhì)濃度范圍內(nèi)(1-1000 μg)蛋白質(zhì)與考馬斯亮藍(lán)G-250結(jié)合物在595 nm波長下的吸光度于蛋白質(zhì)含量成正比符合朗貝比爾定律,故可用于蛋白質(zhì)含量的測定。

        CBB染色法是定量測定低濃度蛋白質(zhì)溶液的快速、靈敏的方法,但在應(yīng)用中我們發(fā)現(xiàn)CBB染色法測定的吸收度值與蛋白質(zhì)濃度的線性關(guān)系明顯,但平行測定的相同濃度的吸收度變化較大,影響測定結(jié)果的準(zhǔn)確性。

        為了驗證考馬斯亮藍(lán)G-250染色法的準(zhǔn)確性,我們進(jìn)行了重復(fù)性試驗對每個樣品測定3次,求得樣品的平均值,其可溶性蛋白18.45-14.42 g/kg的范圍,由RSD=1.6%可知結(jié)果是較穩(wěn)定的,該方法對苜蓿中可溶性蛋白測定結(jié)果較準(zhǔn)確。

        參考文獻(xiàn)

        [1] 王愛軍,王鳳山,王友聯(lián),等. 低濃度蛋白質(zhì)含量測定方法的比較[J]. 中國生化藥物雜志,2003.24(2):78-80.

        [2] 王衛(wèi)國,吳強,胡寶坤,等. 幾種測定灰樹花多糖中蛋白質(zhì)含量方法的比較研究[J]. 2003,22(1):27-30.

        [3] 李建武,余瑞元,等. 生物化學(xué)實驗原理和方法[M]. 北京:北京大學(xué)出版社,1994.160-176.

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