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        黑靈芝多糖對(duì)丙烯酰胺誘導(dǎo)小腸上皮細(xì)胞氧化損傷的保護(hù)作用

        2017-03-03 03:29:52張路路朱夢(mèng)婷
        食品科學(xué) 2017年3期
        關(guān)鍵詞:培養(yǎng)箱靈芝小腸

        張路路,石 婷,朱夢(mèng)婷,陳 奕?

        (南昌大學(xué) 食品科學(xué)與技術(shù)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江西 南昌 330047)

        黑靈芝多糖對(duì)丙烯酰胺誘導(dǎo)小腸上皮細(xì)胞氧化損傷的保護(hù)作用

        張路路,石 婷,朱夢(mèng)婷,陳 奕?

        (南昌大學(xué) 食品科學(xué)與技術(shù)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江西 南昌 330047)

        目的:研究黑靈芝多糖對(duì)丙烯酰胺(acrylamide,AA)所致的小腸上皮細(xì)胞氧化損傷的保護(hù)作用。方法:構(gòu)建AA誘導(dǎo)小腸上皮細(xì)胞(intestinal epithelial cells,IEC)-6氧化損傷型,采用噻唑藍(lán)比色法檢測(cè)黑靈芝多糖對(duì)IEC-6氧化損傷的保護(hù)作用;同時(shí)測(cè)定細(xì)胞培養(yǎng)液中乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)的漏出量,以及測(cè)定細(xì)胞中超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)及丙二醛(malondialdelyde,MDA)水平。結(jié)果:與正常對(duì)照組相比,不同質(zhì)量濃度的黑靈芝多糖對(duì)細(xì)胞增殖影響無(wú)顯著性差異。與模型(AA)組相比,不同質(zhì)量濃度的黑靈芝多糖溶液能夠明顯減輕AA對(duì)細(xì)胞的毒害作用,提高細(xì)胞生存率,降低細(xì)胞培養(yǎng)液中LDH的釋放;降低MDA含量,提高細(xì)胞SOD和GSH-Px活性。結(jié)論:黑靈芝多糖可以通過(guò)提高細(xì)胞內(nèi)抗氧化酶系的活性和抗氧化物質(zhì)GSH-Px活性從而有效地減弱AA誘導(dǎo)的小腸上皮細(xì)胞氧化損傷。

        黑靈芝多糖;丙烯酰胺;IEC-6;氧化損傷

        丙烯酰胺(acrylamide,AA)是人們廣泛接觸的一種重要工業(yè)化合物,最初作為合成聚AA的化學(xué)單體,廣泛應(yīng)用于污水處理、造紙工業(yè)、醫(yī)藥、農(nóng)藥和染料等多種行業(yè)[1],是環(huán)境中潛在的有毒污染物。在2002年 4月,由瑞典國(guó)家食品管理局與斯德哥爾摩大學(xué)的研究人員首次在多種油炸、高溫烘烤食品中發(fā)現(xiàn)了AA,引起世界衛(wèi)生組織、世界糧農(nóng)組織、科學(xué)界和大眾的廣泛關(guān)注[2]。同時(shí)研究結(jié)果表明AA具有多種毒性,其中包括神經(jīng)毒性、遺傳毒性、發(fā)育毒性、雄性生殖毒性等[3]。由于AA屬于一種水溶性的神經(jīng)毒性物質(zhì),滲透性較強(qiáng),人體可通過(guò)消化道、呼吸道、皮膚黏膜等多種途徑接觸并吸收AA。AA在經(jīng)口途徑隨食物進(jìn)入人體后,在消化過(guò)程中可以快速到達(dá)腸道[4],腸上皮是實(shí)現(xiàn)腸道消化、免疫、內(nèi)分泌等功能的主要組織細(xì)胞,也是構(gòu)筑腸道黏膜屏障的主要成分,由此可見(jiàn)腸上皮是AA毒性的主要靶目標(biāo)[5]。然而目前AA對(duì)小腸細(xì)胞毒性的研究報(bào)道很少,且研究并不深入。已有的體內(nèi)體外研究已證實(shí)AA可快速進(jìn)入小腸細(xì)胞,可導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)還原型谷胱甘肽(reduced glutathione,GSH)濃度顯著下降,促進(jìn)活性氧(reactive oxygen species,ROS)自由基的大量生成,使細(xì)胞內(nèi)的氧化壓力急劇上升,從而抑制細(xì)胞的正常功能,導(dǎo)致細(xì)胞死亡或凋亡[5]。同時(shí)AA還能夠?qū)е滦∈笮∧c細(xì)胞凋亡、肌層損傷、小腸壁和黏膜結(jié)構(gòu)改變、消化吸收面積減少、吸收能力下降[6]。由此可知,AA可通過(guò)氧化應(yīng)激產(chǎn)生大量ROS自由基并且能夠抑制機(jī)體內(nèi)抗氧化酶的活性[7],造成組織損傷[8],引起細(xì)胞死亡[9-10]。

        因此,探求能夠有效地抑制ROS自由基大量生成的天然產(chǎn)物,作為一種改善氧化應(yīng)激的干預(yù)措施,有望成為預(yù)防和抑制AA導(dǎo)致的腸道氧化損傷的一種切實(shí)可行的方法。黑靈芝是我國(guó)重要的藥食兼用真菌資源,也是江西省的特色資源,具有較好的營(yíng)養(yǎng)、保健、醫(yī)療價(jià)值。本實(shí)驗(yàn)以黑靈芝為研究對(duì)象,分離純化得到黑靈芝多糖組分。通過(guò)體內(nèi)體外研究表明黑靈芝多糖具有抗氧化防御能力[11-12],能夠改善過(guò)氧化氫所誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激,具有增強(qiáng)免疫抗腫瘤的作用[13]。本實(shí)驗(yàn)利用AA誘導(dǎo)小腸上皮細(xì)胞(intestinal epithelial cells,IEC)-6細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷模型,探討黑靈芝多糖對(duì)IEC-6的保護(hù)作用,以期為黑靈芝多糖的充分應(yīng)用與深度開(kāi)發(fā)提供一定的理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        黑靈芝采自江西贛州贛南靈芝基地;黑靈芝多糖(Ganoderma atrum polysaccharides,GAP)由南昌大學(xué)食品科學(xué)與技術(shù)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室制備:采用水提醇沉提取粗多糖,然后采用不同濃度的NaCl溶液進(jìn)行洗脫得到5 個(gè)級(jí)份,分別為GAP-FW、GAP-F0.1、GAP-F0.2、GAP-F0.5、GAP-F2,經(jīng)高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)法檢測(cè),其中GAP-F2純度>98%[14],用于后續(xù)實(shí)驗(yàn);大鼠IEC-6 上海酶研生物科技有限公司(來(lái)源于美國(guó)ATCC細(xì)胞庫(kù))。

        杜爾伯科改良伊格爾培養(yǎng)基(Dulbecco’s modified Eagle’s medium,DMEM) 美國(guó)HyClone公司;胎牛血清 美國(guó)BI公司;噻唑藍(lán)(methyl thiazol tetrazolium bromide,MTT)細(xì)胞增殖及細(xì)胞毒性檢測(cè)試劑盒、乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)、超氧化物歧化酶(superoxidedismutase,SOD)、谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)、丙二醛(malondialdelyde,MDA)及BCA(bicinchonininc acid)蛋白濃度測(cè)定試劑盒 上海碧云天生物技術(shù)有限公司;其余試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。

        1.2 儀器與設(shè)備

        二氧化碳培養(yǎng)箱 日本Toshiba公司;倒置顯微鏡日本Olympus公司;超凈工作臺(tái) 蘇州凈化設(shè)備廠;TGL216G高速臺(tái)式離心機(jī) 上海安亭科學(xué)儀器廠;全波長(zhǎng)掃描式多功能讀數(shù)儀 美國(guó)Thermo公司。

        1.3 方法

        1.3.1 細(xì)胞培養(yǎng)

        細(xì)胞培養(yǎng)在含體積分?jǐn)?shù)10%胎牛血清的DMEM高糖培養(yǎng)液,于37 ℃、體積分?jǐn)?shù)5% CO2、飽和濕度條件下靜置培養(yǎng),細(xì)胞鋪滿瓶底80%以上,取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期增殖活躍的細(xì)胞進(jìn)行分組。

        1.3.2 IEC-6氧化損傷模型的構(gòu)建

        [15],采用MTT比色法檢測(cè)存活率。取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的IEC-6,以1×104個(gè)/mL的細(xì)胞密度接種于96 孔板中,每孔100 μL,置于37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。倒掉培養(yǎng)基,加入不含血清的完全培養(yǎng)基。每孔按濃度梯度(終濃度分別為1.0、2.5、5.0、10.0、20.0 mmol/ L)加入AA。同時(shí)設(shè)置空白對(duì)照組(0.0 mmol/L),置于37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。離心(室溫條件下1 500 r/ min)5 min,磷酸鹽緩沖溶液(phosphate buffer saline,PBS)清洗一次,每孔加入100 μL完全培養(yǎng)基,使MTT終質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL,置于培養(yǎng)箱中孵育4 h,3 000 r/min離心5 min。棄上清液,每孔加入150 μL的二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO)溶液。迅速用平板搖床振蕩10 min,待孔內(nèi)藍(lán)紫色結(jié)晶完全溶解后,使用酶標(biāo)儀檢測(cè)490 nm波長(zhǎng)處的光密度(OD)值。計(jì)算公式如式(1)所示。

        1.3.3 MTT法檢測(cè)黑靈芝多糖對(duì)IEC-6增殖的影響

        參考文獻(xiàn)[16],將對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的IEC-6,用胰蛋白酶消化成單層細(xì)胞,用新鮮DMEM培養(yǎng)基配制成單個(gè)細(xì)胞懸液,以1×104個(gè)/mL的細(xì)胞密度接種于96 孔板中,每孔100 μL。置于37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。倒掉培養(yǎng)基,加入不含血清的完全培養(yǎng)基。每孔按質(zhì)量濃度梯度(1.0、2.5、5.0、10.0、20.0、40.0、80.0、160.0 μg/mL)加入GAP-F2,同時(shí)設(shè)置空白對(duì)照組。置于37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)20 h。離心(室溫條件下,1 500 r/min)5 min,PBS清洗一次,每孔加入100 μL完全培養(yǎng)基,使MTT終質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL,置于培養(yǎng)箱中孵育4 h,3 000 r/min離心5 min。棄上清液,每孔加入150 μL的DMSO溶液。迅速用平板搖床振蕩10 min,待孔內(nèi)藍(lán)紫色結(jié)晶完全溶解后,使用酶標(biāo)儀檢測(cè)490 nm波長(zhǎng)處的OD值。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次。另設(shè)空白孔,排除干擾。計(jì)算公式與式(1)相同。

        1.3.4 黑靈芝多糖對(duì)氧化損傷IEC-6存活率的影響

        取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的IEC-6,置于37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。倒掉培養(yǎng)基,加入不含血清的完全培養(yǎng)基。將細(xì)胞分為7 個(gè)處理組,分別為空白對(duì)照組、 AA組、陽(yáng)性對(duì)照組(N-乙酰半胱氨酸(N-acetyl-L-cysteine,NAC)終濃度為10 mmol/L)、多糖氧化抑制組(使GAP-F2終質(zhì)量濃度為20、40、80、160 μg/mL),每組10 個(gè)復(fù)孔;置于37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)20 h后,1 500 r/min離心5 min,吸去培養(yǎng)基,更換不含血清的AA終濃度為5 mmol/L的完全培養(yǎng)基,其中空白對(duì)照組AA終濃度為0 mmol/L。置于37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4、8、16、24 h。離心(37 ℃、1 500 r/min)5 min,PBS清洗一次,每孔加入100 μL完全培養(yǎng)基,使MTT終質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL,置于培養(yǎng)箱中孵育4 h,3 000 r/min離心5 min。棄上清,每孔加入150 μL的DMSO溶液。迅速用平板搖床振蕩10 min,待孔內(nèi)藍(lán)紫色結(jié)晶完全溶解后,使用酶標(biāo)儀檢測(cè)490 nm波長(zhǎng)處的OD值。計(jì)算公式與式(1)相同。

        1.3.5 氧化損傷細(xì)胞培養(yǎng)液中LDH漏出量的測(cè)定

        取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的IEC-6按1.3.4節(jié)方法分組,用AA損傷細(xì)胞16 h。1 500 r/min離心5 min,收集上清液,按試劑盒說(shuō)明書(shū)步驟測(cè)定上清液中LDH的漏出量。

        1.3.6 氧化損傷細(xì)胞內(nèi)SOD、GSH-Px活性、MDA水平的測(cè)定

        參考文獻(xiàn)[17]細(xì)胞處理在6 孔板內(nèi)進(jìn)行,取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的IEC-6按1.3.4節(jié)方法分組,用AA損傷細(xì)胞16 h后,用2.5 g/L胰蛋白酶消化,1 500 r/min離心5 min,收集細(xì)胞用冷PBS清洗,然后1 500 r/min離心5 min,收集細(xì)胞,加入細(xì)胞裂解液150 μL,混勻4 ℃孵育5 min。離心取上清液,按試劑盒說(shuō)明書(shū)步驟測(cè)定細(xì)胞內(nèi)SOD、GSH-Px活性以及過(guò)氧化物產(chǎn)物MDA水平

        1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

        2 結(jié)果與分析

        2.1 不同濃度AA對(duì)IEC-6存活率的影響

        采用濃度為0.0(空白對(duì)照組)、1.0、2.5、5.0、10.0、20.0 mmol/L AA處理IEC-6 24 h,構(gòu)建氧化損傷模型,結(jié)果如圖1所示。

        圖1 AA對(duì)IEC-6的氧化損傷Fig.1 Oxidative damage induced by AA of IEC-6

        由圖1可知,采用1~20 mmol/L AA處理24 h,均能對(duì)IEC-6造成顯著損傷,考慮到AA造成的細(xì)胞存活率的半數(shù)致死量,以及損傷程度過(guò)于嚴(yán)重可能導(dǎo)致無(wú)法進(jìn)行修復(fù)作用研究,因此本實(shí)驗(yàn)選取5 mmol/L AA作為最佳誘導(dǎo)濃度,構(gòu)建IEC-6氧化損傷模型,此時(shí)細(xì)胞存活率為46%。

        2.2 不同質(zhì)量濃度黑靈芝多糖對(duì)IEC-6增殖的影響

        MTT實(shí)驗(yàn)是檢測(cè)活細(xì)胞數(shù)量的常用方法。采用不同質(zhì)量濃度(1.0、2.5、5.0、10.0、20.0、40.0、80.0、160.0 μg/mL)GAP-F2處理IEC-6 20 h,測(cè)定不同質(zhì)量濃度GAP-F2處理IEC-6的毒性,篩選安全劑量范圍,結(jié)果如圖2所示。

        圖2 黑靈芝多糖對(duì)IEC-6生長(zhǎng)的影響Fig.2 Effect of Ganoderma atrum polysaccharides on the growth of IEC-6

        由圖2可知,在1~160 μg/mL劑量范圍內(nèi),GAP-F2均未對(duì)IEC-6造成顯著毒性,屬于安全范圍內(nèi)。說(shuō)明GAP-F2對(duì)IEC-6增殖沒(méi)有影響,不具有細(xì)胞毒性,因此在后續(xù)研究中,選擇不同質(zhì)量濃度(20.0、40.0、80.0、160.0 μg/mL)GAP-F2研究其對(duì)IEC-6氧化損傷的保護(hù)作用。

        2.3 不同質(zhì)量濃度黑靈芝多糖對(duì)氧化損傷IEC-6存活率的影響

        表1 黑靈芝多糖對(duì)AA誘導(dǎo)的IEC-6氧化損傷的預(yù)防作用Table1 Preventive effect ofGanoderma attrruumm polysaccharides against AA-induced oxidative damage in IEC-6

        由表1可知,AA處理不同時(shí)間后,與空白對(duì)照組相比,IEC-6存活率明顯下降(P<0.01)。相反,不同質(zhì)量濃度GAP-F2預(yù)處理20 h后,細(xì)胞存活率相對(duì)于AA組明顯增加,且黑靈芝多糖的保護(hù)效果一定程度上隨著質(zhì)量濃度的增加而增強(qiáng),呈現(xiàn)出一定的劑量-效應(yīng)關(guān)系。由表1中結(jié)果可以發(fā)現(xiàn)80、160 μg/mL GAP-F2均能顯著地緩解AA造成的細(xì)胞存活率的降低(P<0.01),與陽(yáng)性對(duì)照組相比細(xì)胞存活率無(wú)顯著性差異。而20 μg/mL GAP-F2組在AA處理4、8、16 h后,黑靈芝多糖無(wú)顯著保護(hù)作用。由此可知40、80、160 μg/mL GAP-F2預(yù)處理可有效地抑制AA造成的IEC-6死亡。

        2.4 不同質(zhì)量濃度黑靈芝多糖對(duì)氧化損傷IEC-6釋放LDH的影響

        圖3 黑靈芝多糖對(duì)氧化損傷IEC-6釋放LDH的影響Fig.3 Effect of Ganoderma atrum polysaccharides on the release of LDH in IEC-6 with AA-induced oxidative damage

        細(xì)胞在凋亡或者壞死過(guò)程中細(xì)胞膜的結(jié)構(gòu)會(huì)遭到破壞,致使細(xì)胞漿內(nèi)的酶釋放到培養(yǎng)液中。LDH水平在一定程度上能反映出細(xì)胞受損程度,因而常常作為判斷細(xì)胞氧化損傷程度的重要參數(shù)。通過(guò)檢測(cè)培養(yǎng)上清中LDH水平可以實(shí)現(xiàn)對(duì)細(xì)胞毒性的定量分析,從而反映出細(xì)胞的損傷程度。

        不同處理組檢測(cè)出LDH漏出量如圖3所示,結(jié)果發(fā)現(xiàn),與空白對(duì)照組相比,AA組中的LDH漏出量極顯著上升,表明AA可導(dǎo)致上皮細(xì)胞氧化損傷。與AA組相比,黑靈芝多糖組中LDH漏出量極顯著降低,而且160 μg/mL GAP-F2組與陽(yáng)性對(duì)照組相比,細(xì)胞中LDH漏出量相當(dāng),這表明高劑量GAP-F2能顯著降低LDH漏出量。這些結(jié)果表明黑靈芝多糖可有效降低AA對(duì)IEC-6造成的氧化損傷,具有很強(qiáng)的保護(hù)作用,且呈劑量-效應(yīng)關(guān)系。

        2.5 不同質(zhì)量濃度黑靈芝多糖對(duì)氧化損傷IEC-6中SOD活力、GSH-Px活力、MDA含量的影響

        在正常生理?xiàng)l件下,機(jī)體內(nèi)ROS的生成和清除處于一種動(dòng)態(tài)平衡,在內(nèi)源性或外源性的有害刺激下,這種平衡將會(huì)遭到破壞,導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)ROS的大量生成,超過(guò)機(jī)體抗氧化防御體系的清除能力,從而造成機(jī)體氧化應(yīng)激損傷[18]。在機(jī)體受到氧化損傷的情況下,細(xì)胞中常見(jiàn)的內(nèi)源性抗氧化物質(zhì)主要包括:SOD、GSH-Px[19]。同時(shí)細(xì)胞在發(fā)生氧化應(yīng)激時(shí),細(xì)胞會(huì)發(fā)生脂質(zhì)氧化。而MDA則是脂質(zhì)過(guò)氧化的產(chǎn)物之一,可用作與檢測(cè)細(xì)胞中脂質(zhì)氧化的水平[20-21]。

        表2 黑靈芝多糖對(duì)氧化損傷IEC-6 SOD、GSH-Px活力、MDA水平的影響Table2 Effect off Ganoderma attrruumm polysaccharides on SOD and GSH activities and MDA content in IEC-6 with AA-induced oxidative damage

        由表2可知,與空白對(duì)照組相比,AA組中的SOD活力顯著降低,而不同質(zhì)量濃度的多糖均能有效緩解細(xì)胞中抗氧化酶含量的降低。GSH-Px在保護(hù)細(xì)胞免受自由基損傷的過(guò)程中起著關(guān)鍵作用,是細(xì)胞內(nèi)主要的抗氧化酶,能夠反映出細(xì)胞內(nèi)的抗氧化水平。與AA組相比,細(xì)胞內(nèi)GSH-Px活性呈劑量依賴性顯著增加,結(jié)果表明黑靈芝多糖能夠抑制AA造成的細(xì)胞氧化損傷,提高細(xì)胞內(nèi)抗氧化酶的活性。與空白對(duì)照組相比,AA組中MDA含量顯著增加;與AA組相比,黑靈芝多糖組中MDA含量顯著降低,且與陽(yáng)性對(duì)照組相比效果相當(dāng),表明黑靈芝多糖可減輕AA引起的氧化應(yīng)激。

        3 討 論

        氧化應(yīng)激作為AA誘導(dǎo)細(xì)胞損傷的關(guān)鍵機(jī)制之一[22]??纱碳ぜ?xì)胞產(chǎn)生過(guò)量的ROS自由基,破壞細(xì)胞膜的完整性,影響細(xì)胞的正常的功能,并降低細(xì)胞內(nèi)抗氧化酶的活性,造成細(xì)胞內(nèi)氧化壓力的上升,最終可導(dǎo)致細(xì)胞損傷,甚至細(xì)胞凋亡或死亡。而大鼠小腸隱窩IEC-6是腸道內(nèi)外環(huán)境的界面,是實(shí)現(xiàn)腸道消化、吸收、免疫、內(nèi)分泌等功能的主要組織細(xì)胞,也是構(gòu)筑腸道黏膜屏障的主要成分。AA可通過(guò)多種途徑迅速到達(dá)腸道,由此可見(jiàn),腸上皮是AA誘導(dǎo)細(xì)胞毒性的主要靶器官。有研究表明[23],在腸道細(xì)胞氧化應(yīng)激狀態(tài)下,小腸細(xì)胞會(huì)產(chǎn)生過(guò)量的有毒ROS代謝物,與此同時(shí)氧化應(yīng)激還可抑制細(xì)胞內(nèi)抗氧化酶活性,破壞細(xì)胞內(nèi)抗氧化防御體系,造成小腸黏膜損傷。AA作為一種高溫食品加工過(guò)程中產(chǎn)生的一種潛在致癌物,許多研究者都致力于尋找可用于拮抗膳食中AA對(duì)機(jī)體損傷的天然活性成分,期望通過(guò)多種天然活性成分構(gòu)建AA體內(nèi)防護(hù)的第二道障,以膳食補(bǔ)充劑的形式緩解AA對(duì)人體的潛在危害,并從細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路層面著手,闡明其具體保護(hù)機(jī)制。研究結(jié)果已表明,大量天然活性成分應(yīng)用于AA對(duì)機(jī)體毒性的保護(hù)上,如葡萄果渣提取物[24]、藍(lán)莓及其提取物[25]、矢車菊素-3-葡萄糖苷[26]、橄欖油提取物[27]等均表明能夠在一定程度上緩解AA對(duì)機(jī)體造成的損傷。近年來(lái)研究發(fā)現(xiàn),很多植物、真菌來(lái)源的多糖對(duì)生物來(lái)源的ROS具有顯著的清除和抑制作用,如黃芪多糖可清除過(guò)多的自由基,抑制炎癥因子釋放,發(fā)揮其腸道免疫保護(hù)作用[24,28];枸杞多糖可提高機(jī)體抗氧化酶活力及清除過(guò)多自由基,對(duì)大鼠小腸缺血再灌注氧化損傷有明顯的保護(hù)作用[29]。而黑靈芝多糖則被證實(shí)在清除自由基功能方面尤其突出[30]。本研究就以黑靈芝多糖為研究對(duì)象,來(lái)確定其是否能夠提高機(jī)體的內(nèi)源性抗氧酶活性,抑制脂質(zhì)過(guò)氧化的發(fā)生,從而減緩或預(yù)防AA誘導(dǎo)的應(yīng)激性氧化損傷發(fā)生,以期為后續(xù)研究提供理論基礎(chǔ)。

        本實(shí)驗(yàn)采用AA誘導(dǎo)IEC-6氧化損傷,構(gòu)建氧化應(yīng)激損傷模型。實(shí)驗(yàn)中選用了5 mmol/L濃度的AA誘導(dǎo)IEC-6損傷24 h能夠顯著造成細(xì)胞氧化損傷,證實(shí)了實(shí)驗(yàn)的可行性。實(shí)驗(yàn)研究結(jié)果表明,AA組與空白對(duì)照組相比,細(xì)胞存活率以及LDH漏出量均顯著增加,說(shuō)明腸上皮細(xì)胞受到顯著損傷,因此氧化應(yīng)激損傷模型建立成功。與此同時(shí),細(xì)胞在經(jīng)過(guò)AA處理后,細(xì)胞中的抗氧化酶活性SOD、GSH-Px的活性顯著降低,用于評(píng)價(jià)細(xì)胞的脂質(zhì)過(guò)氧化水平的指標(biāo)MDA含量與空白對(duì)照組相比,AA組顯著增高。而不同質(zhì)量濃度黑靈芝多糖的氧化抑制組能夠顯著提高細(xì)胞存活率、減少細(xì)胞培養(yǎng)液中LDH的釋放、降低細(xì)胞的MDA的水平、提高細(xì)胞中SOD和GSH-Px活性。

        綜上所述,黑靈芝多糖對(duì)AA誘導(dǎo)的細(xì)胞氧化損傷具有保護(hù)作用,此作用可能與提高細(xì)胞內(nèi)抗氧化酶活性有關(guān)。此研究能為緩解或抑制AA誘導(dǎo)的細(xì)胞氧化應(yīng)激損失提供一定的理論依據(jù),但本實(shí)驗(yàn)結(jié)果僅限于細(xì)胞水平的體外實(shí)驗(yàn),對(duì)黑靈芝多糖在氧化應(yīng)激損傷下對(duì)細(xì)胞保護(hù)的具體分子生物學(xué)機(jī)制及其在體內(nèi)的抗氧化保護(hù)機(jī)制還有待進(jìn)一步的深入研究。

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        Protective Effect of Ganoderma atrum Polysaccharides on Oxidative Damage Induced by Acrylamide in IEC-6 Cells

        ZHANG Lulu, SHI Ting, ZHU Mengting, CHEN Yi?
        (State Key Laboratory of Food Science and Technology, Nanchang University, Nanchang 330047, China)

        Objective: To investigate the protective effect of Ganoderma atrum polysaccharides (GAP) against oxidative injury induced by acrylamide (AA) in intestinal epithelial cells (IEC)-6. Methods: The MTT assay was used to evaluate the proliferation of IEC-6. After cultivation, the cells and culture medium were collected for determining the activities of lactate dehydrogenase (LDH), malondialdelyde (MDA), superoxide dismutase (SOD) and reduced glutathione peroxidase (GSH-Px). Results: GAP had no toxic effect on the cultured IEC-6 at the tested concentrations. Compared with the AA-treated group, GAP significantly attenuated AA-induced oxidative damage and increased cell viability by decreasing LDH activity and MDA content, and increasing SOD and GSH-Px activities in IEC-6 line. Conclusion: These results suggested that GAP showed a protective effect against AA-induced oxidative damage in IEC-6 through inhibiting lipid peroxidation, and increasing antioxidant system activity.

        Ganoderma atrum polysaccharides; acrylamide; IEC-6; oxidative damage

        10.7506/spkx1002-6630-201703028

        TS201.4

        A

        1002-6630(2017)03-0170-06

        張路路, 石婷, 朱夢(mèng)婷, 等. 黑靈芝多糖對(duì)丙烯酰胺誘導(dǎo)小腸上皮細(xì)胞氧化損傷的保護(hù)作用[J]. 食品科學(xué), 2017, 38(3):170-175. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201703028. http://www.spkx.net.cn

        ZHANG Lulu, SHI Ting, ZHU Mengting, et al. Protective effect of Ganoderma atrum polysaccharides on oxidative damage induced by acrylamide in IEC-6 cells[J]. Food Science, 2017, 38(3): 170-175. (in Chinese with English abstract)

        10.7506/spkx1002-6630-201703028. http://www.spkx.net.cn

        2016-06-25

        國(guó)家自然科學(xué)基金地區(qū)科學(xué)基金項(xiàng)目(21467016);全國(guó)優(yōu)秀博士學(xué)位論文作者專項(xiàng)資金項(xiàng)目(201357);江西省青年科學(xué)家培養(yǎng)對(duì)象計(jì)劃項(xiàng)目(20142BCB23005)

        張路路(1992—),男,碩士研究生,研究方向?yàn)槭称窢I(yíng)養(yǎng)與安全。E-mail:1126304817@qq.com

        ?通信作者:陳奕(1982—),女,教授,博士,研究方向?yàn)槭称坊瘜W(xué)與分析、食品營(yíng)養(yǎng)與安全、食品質(zhì)量與安全。E-mail:chenyi-417@163.com

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