鄒貴軍,王 迪,胡遠亮,馮 奇,胡時棟,杜曉輝
結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移機制研究新進展
鄒貴軍,王 迪,胡遠亮,馮 奇,胡時棟,杜曉輝
近年來我國結(jié)直腸癌發(fā)病率呈上升趨勢,肝臟轉(zhuǎn)移是影響結(jié)直腸癌患者預(yù)后和長期生存的主要原因。結(jié)直腸癌肝臟轉(zhuǎn)移是多因素參與、多步驟的復(fù)雜生物學(xué)過程,其作用機制目前仍不清楚。作者旨在對結(jié)直腸癌肝臟轉(zhuǎn)移的機制及新進展作一綜述。
結(jié)直腸癌;藥物療法;腫瘤轉(zhuǎn)移;繼發(fā)性肝腫瘤
結(jié)直腸癌(colorectal cancer,CRC)是消化道常見的惡性腫瘤之一[1],肝臟轉(zhuǎn)移是影響CRC患者預(yù)后的主要原因。因此,對結(jié)直腸癌肝臟轉(zhuǎn)移(colorectal cancer liver metastases,CRCLM)發(fā)生機制的探索及如何早期診治原發(fā)腫瘤和肝臟轉(zhuǎn)移灶以延長患者生存期是目前的研究熱點。作者就CRCLM機制新進展作一綜述,望能為CRCLM的研究提供一些思路。
癌細胞的脫落是發(fā)生遠處轉(zhuǎn)移的第一步,是基因調(diào)控、癌細胞、細胞外微環(huán)境等多種因素共同作用的結(jié)果。
1.1 癌細胞因素 ①隨機突變學(xué)說,癌基因、抑癌基因、錯配修復(fù)基因等的改變,使正常的結(jié)直腸上皮細胞演變成具有不同侵襲、轉(zhuǎn)移能力的癌細胞[2]。正因如此腫瘤治療需個體化,惡性程度不等的腫瘤在不同體質(zhì)的患者身體內(nèi)具有不同的侵襲能力,其治療效果也不同。長鏈非編碼RNA(long non-coding RNAs,lncRNAs)是近年來被新發(fā)現(xiàn)的一種調(diào)控分子,在惡性腫瘤的進展中,可能在調(diào)節(jié)控制表觀遺傳學(xué)、基因轉(zhuǎn)錄、蛋白生成中發(fā)揮重要作用[3]。Ye等[4]采用基因芯片分析及定量聚合酶鏈反應(yīng)技術(shù),發(fā)現(xiàn)lncRNAs的高表達促進CRC細胞發(fā)生肝轉(zhuǎn)移,可作為CRC患者預(yù)后的獨立指標。最近,Li等[5]在lnc-RNA FOXP4-AS1對腫瘤進展的影響研究中發(fā)現(xiàn),F(xiàn)OXP4-AS1在CRC組織和細胞系中表達均升高,其表達水平與病理進展階段和腫瘤大小呈正相關(guān),利用小干擾RNA沉默F(xiàn)OXP4-AS1表達可抑制CRC細胞增殖并誘導(dǎo)細胞凋亡。Lu等[6]研究表明,lnc-RNA PANDAR在CRC組織和細胞系有較高的表達,且高表達lncRNA PANDAR的患者總體存活率相對較低;在體外實驗中通過抑制PANDAR的表達可抑制腫瘤細胞的增殖、遷移、侵襲和誘導(dǎo)細胞凋亡,并且PANDAR是通過抑制E-鈣黏蛋白、β-鏈蛋白的表達和增加N-鈣黏蛋白的表達來影響上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial-mesenchymal transition,EMT),進而促進腫瘤細胞遠處轉(zhuǎn)移。此外,研究還發(fā)現(xiàn)lnc-RNA ZFAS1、lncRNA AK027294、lncRNA HOXA、HOXAGHET1等基因在CRC中具有類似功能[7-10]。②腫瘤干細胞學(xué)說[11],促進惡性腫瘤不斷增殖進而發(fā)生遠處轉(zhuǎn)移是由少數(shù)具有超強增殖、多向分化能力的干細胞樣腫瘤細胞決定的。當CRC細胞表達CD133、CD44、CD26時患者發(fā)生肝轉(zhuǎn)移的概率明顯增加[12]。研究發(fā)現(xiàn),CD133+、CD133-細胞都能在小鼠體內(nèi)形成移植瘤,CD133-細胞形成腫瘤的惡性程度高于CD133+[13-15]。研究發(fā)現(xiàn)CD26+CRC干細胞與CRCLM密切相關(guān),而且CD26與腫瘤低分化和微血管浸潤也有相關(guān)性[16]。CD44是一種位于細胞膜表面的跨膜蛋白,在腫瘤轉(zhuǎn)移中起重要作用。研究證實,CD44+的細胞群體具有典型的干細胞特征,其增殖、侵襲能力顯著強于CD44-的細胞群體[17]。
1.2 細胞外基質(zhì)因素 細胞外基質(zhì)是微環(huán)境的重要組成部分,包括層黏連蛋白、透明質(zhì)酸、蛋白聚糖等。癌細胞通過黏附分子受體與細胞外基質(zhì)進行物質(zhì)交換,對癌細胞的代謝、增殖、遷移等功能產(chǎn)生重要影響。癌細胞及周圍間質(zhì)細胞分泌不同的蛋白或酶促進細胞外基質(zhì)的合成與分解。其中,基質(zhì)金屬蛋白酶(matrix metalloproteinases,MMPs)和金屬蛋白酶組織抑制因子(tissue inhabitors of metalloproteinases,TIMPs)是構(gòu)成細胞外基質(zhì)的主要蛋白分解酶。若細胞外基質(zhì)合成與分解的動態(tài)平衡出現(xiàn)失衡,就會影響腫瘤細胞的黏附,促進腫瘤細胞發(fā)生遠處轉(zhuǎn)移[18]。MMP-1是一種可降解膠原纖維酶,在正常成人組織中表達很低,但在腫瘤組織中的表達明顯增高。研究證實,MMP-1分泌與腫瘤轉(zhuǎn)移有直接相關(guān)性,MMP-2抑制轉(zhuǎn)移灶的生長,而MMP-9抑制腫瘤入侵肝臟階段[19-20]。Yan等[21]應(yīng)用定量聚合酶鏈反應(yīng)檢測236例CRC組織及癌旁組織中MMP-13信使RNA(messenger RNA,mRNA),發(fā)現(xiàn)癌組織中MMP-13 mRNA表達較癌旁組織明顯升高,與腫瘤進展階段、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移、肝轉(zhuǎn)移呈正相關(guān)。但TIMP-1除抑制腫瘤的轉(zhuǎn)移生物活性外,在腫瘤細胞到達肝臟前,通過改變肝細胞和分子特征,為腫瘤細胞創(chuàng)造適宜的定植環(huán)境。Lorenc等[22]研究發(fā)現(xiàn),TIMP-1不僅在原發(fā)癌細胞中表達水平升高,在肝臟轉(zhuǎn)移癌的表達水平升高更加明顯,并可通過誘導(dǎo)肝細胞生長因子信號途徑促進CRCLM,它的濃度決定了其促細胞增殖、轉(zhuǎn)移和抗細胞凋亡的作用。Seubert等[23]在動物實驗中發(fā)現(xiàn),小鼠肝臟中TIMP-1可通過誘導(dǎo)基質(zhì)細胞衍生因子-1(stromal cell derived factor-1,SDF-1)來招募周圍的中性粒細胞,抑制SDF-1可使中性粒細胞減少,提示中性粒細胞在TIMP-1誘導(dǎo)的CRCLM中起重要作用;結(jié)合臨床資料分析發(fā)現(xiàn),TIMP-1水平升高與CRC復(fù)發(fā)、肝轉(zhuǎn)移呈正相關(guān),提示TIMP-1促進腫瘤轉(zhuǎn)移。
1.3 血管、淋巴管因素 隨著腫瘤的不斷增大,部分腫瘤細胞會出現(xiàn)不同程度的缺氧,缺氧可激活缺氧誘導(dǎo)因子、血管內(nèi)皮生長因子等的合成,進而促進癌細胞血管、淋巴管的增殖。這些因子可與內(nèi)皮細胞相互作用,激活多種信號通路,進一步促進腫瘤細胞血管生長、遠處轉(zhuǎn)移。正因如此,抗血管內(nèi)皮生長因子的靶向藥物(如貝伐單抗)可有效阻斷腫瘤血管、淋巴管生成,緩解腫瘤進展,側(cè)面驗證了此機制。Cacchi等[24]研究發(fā)現(xiàn),CRC細胞可誘導(dǎo)癌組織內(nèi)淋巴管生成,從而增強腫瘤細胞進入淋巴循環(huán)系統(tǒng)的能力并促進轉(zhuǎn)移。
1.4 EMT因素 除腫瘤細胞、細胞外基質(zhì)、血管、淋巴管等因素外,EMT是促進腫瘤細胞脫落的又一重要因素。EMT是指各種因素促使上皮細胞轉(zhuǎn)化為具有間質(zhì)細胞表型的現(xiàn)象。其特征為細胞黏附分子(如E-鈣黏蛋白)表達減少、細胞角蛋白轉(zhuǎn)化為波形蛋白為主的細胞骨架及具有間質(zhì)細胞特征等。整個過程由3組調(diào)控因子通過抑制E-鈣黏蛋白表達來演變:第1組由SNAIl、SNAI2的Snail鋅指蛋白家族組成;第2組由ZEB1、ZEB2組成;第3組由TWIST1、TWIST2家族成員組成。
除以上3個家族外,近年又發(fā)現(xiàn)許多其他家族轉(zhuǎn)錄因子也參與了CRC的進展和EMT,如OCT4、SOX2、B7-H3等。Jiang等[25]研究發(fā)現(xiàn),共刺激分子B7-H3在CRC組織中表達升高,其通過抑制E-鈣黏蛋白、β-連環(huán)蛋白表達和上調(diào)N-鈣黏蛋白、波形蛋白表達,并通過激活磷脂酰肌醇3-激酶/蛋白激酶B通路上調(diào)Smad1表達促進EMT,進而使腫瘤細胞轉(zhuǎn)移。Qin等[26]在研究CRC遠處轉(zhuǎn)移的機制中,發(fā)現(xiàn)人端粒酶反轉(zhuǎn)錄酶和E盒結(jié)合鋅指蛋白-1形成復(fù)合物直接結(jié)合E-鈣黏蛋白啟動子,抑制E-鈣黏蛋白的表達,同時促進CRC細胞發(fā)生EMT。腫瘤細胞到達靶器官后,在多種因素(如p53基因突變、SNAI2上調(diào)、E-鈣黏蛋白啟動子甲基化等)調(diào)控下,下調(diào)并激活E-鈣黏蛋白,使其重新獲得增殖能力,這些間質(zhì)細胞恢復(fù)成上皮樣細胞,為血液中的“種子”定植“土壤”提供條件。
腫瘤細胞免疫逃逸機制主要有:①癌細胞自身免疫原性較低,并具有一定抗原調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)變能力;細胞組織相容性抗原分子表達異常,缺乏共刺激分子的表達和T細胞活化的第二信號系統(tǒng),使T細胞不能識別腫瘤抗原。②宿主的抗原呈遞細胞功能缺陷,無法呈遞腫瘤抗原,不能激活T細胞使其識別并殺傷腫瘤細胞。近年來,有學(xué)者提出新的腫瘤細胞免疫逃逸機制:①惡性腫瘤細胞通過表達巨噬細胞清道夫受體CD163或CD68獲得免疫細胞功能和表型特征;②腫瘤細胞通過與基質(zhì)細胞的相互作用激活致癌通路;③產(chǎn)生的抗炎細胞因子和免疫抑制代謝物(腺苷)最終使腫瘤微環(huán)境呈低免疫原性。在免疫逃避和腫瘤細胞抗原表觀因素的研究中,NT5E/ CD73獲得了極大關(guān)注,NT5E/CD73是胞外腺苷產(chǎn)生過程中的限速酶,是ATP轉(zhuǎn)為腺苷的免疫抑制的作用位點;腺苷通過激活腫瘤、內(nèi)皮細胞或免疫細胞上的同源受體,以旁分泌和自分泌方式發(fā)揮促腫瘤作用;NT5E/CD73水平升高與患者預(yù)后顯著相關(guān);與原發(fā)腫瘤或癌旁組織相比,肝臟轉(zhuǎn)移瘤的NT5E/ CD73的表達是升高的,與腫瘤相關(guān)巨噬細胞表達相關(guān),但與錯配修復(fù)不相關(guān);多種原癌基因通路可以協(xié)同誘導(dǎo)惡性細胞表達NT5E/CD73,以增強結(jié)腸惡性腫瘤細胞間旁分泌/自分泌作用而逃避免疫監(jiān)視、促進轉(zhuǎn)移[27]。
在CRCLM進程中,腫瘤細胞生長的微環(huán)境發(fā)生了巨大變化,包括腫瘤細胞相關(guān)炎癥反應(yīng)和腫瘤微血管的新生反應(yīng)。其中腫瘤相關(guān)巨噬細胞(tumorassociated macrophages,TAMs)在促進CRC發(fā)生侵襲、轉(zhuǎn)移中起重要作用。有研究發(fā)現(xiàn),單核髓源性抑制細胞可進一步發(fā)展為成熟的TAMs[28]。其中至少有2種TAMs表型促進腫瘤的發(fā)生和轉(zhuǎn)移:M1型TAMs促炎巨噬細胞有明顯抗腫瘤活性,但持續(xù)的炎癥反應(yīng)又可誘導(dǎo)產(chǎn)生活性氧和氮自由基使細胞及周圍微環(huán)境發(fā)生改變,進而促進腫瘤進展;M2型TAMs通過分泌免疫抑制性細胞因子促進腫瘤細胞及基質(zhì)血管生成,并抑制腫瘤免疫應(yīng)答。巨噬細胞集落刺激因子、前列腺素E2等細胞因子可誘導(dǎo)單核細胞向M2型TAMs轉(zhuǎn)化。此外,還發(fā)現(xiàn)CRC中巨噬細胞密度與患者的預(yù)后明顯相關(guān),巨噬細胞密度越大,患者的生存期越短。肝竇內(nèi)部分巨噬細胞是固定于竇壁的,稱為Kupffer細胞,能吞噬肝內(nèi)衰老、壞死細胞、細菌等,是肝臟固有屏障的重要組成部分。但在腫瘤細胞肝轉(zhuǎn)移過程中,釋放炎性因子、趨化因子等,使腫瘤細胞黏附分子表達上調(diào),破壞免疫屏障,防御機制失衡,促進腫瘤定植于“土壤”,同時改變局部“土壤”微環(huán)境使其適合“種子”生長。在肝臟定植并生長為CRCLM的最后一步,“土壤”的微環(huán)境決定“種子”能否“生根發(fā)芽”。Qiu等[29]報道的CRC伴乙型病毒性肝炎、肝硬化的患者發(fā)生肝轉(zhuǎn)移的概率較正常肝臟者低,側(cè)面證實了“土壤”對CRCLM發(fā)生的重要性。肝星狀細胞在多種細胞因子、生長因子作用下轉(zhuǎn)化為肌纖維母細胞,具有活躍的增殖和運動能力,同時經(jīng)轉(zhuǎn)化的肌纖維母細胞也可產(chǎn)生多種細胞因子、生長因子,抑制機體對腫瘤細胞的免疫反應(yīng)并促進腫瘤生長、血管形成。基于此點,通過抗血小板衍生內(nèi)皮細胞生長因子藥物抑制肝星狀細胞活性,可有效防治CRCLM。
癌癥轉(zhuǎn)移的機制不同,其調(diào)節(jié)惡性腫瘤轉(zhuǎn)移的細節(jié)可能會有所不同。研究發(fā)現(xiàn),CRC細胞來源的外泌體含有的微小RNA與癌基因、腫瘤轉(zhuǎn)移相關(guān)基因密切相關(guān)[30],暗示其可能與CRCLM相關(guān)。外泌體是細胞以出胞方式向胞外分泌的囊泡樣小體,其內(nèi)包含多種生物活性物質(zhì),可經(jīng)自分泌、旁分泌或遠分泌作用于細胞微環(huán)境及遠處靶器官,是細胞間信息傳遞及信號傳導(dǎo)的重要載體,其不僅可由正常細胞產(chǎn)生,也可由CRC細胞產(chǎn)生,其可促進正常結(jié)直腸上皮細胞的癌變、增殖、遷移并可作為遠處轉(zhuǎn)移的一種媒介,在CRCLM整個發(fā)生、發(fā)展過程中均起關(guān)鍵作用。Alix蛋白是穩(wěn)定存在于外泌體內(nèi)的蛋白。Valcz等[31]利用定量聚合酶鏈式反應(yīng)技術(shù)分別檢測Alix蛋白在正常腸上皮組織、腺瘤組織和結(jié)腸癌組織的表達,發(fā)現(xiàn)外泌體在促進結(jié)腸上皮癌變過程中起重要作用,通過Alix蛋白介導(dǎo)“上皮組織—腺瘤—癌”這一序列模式發(fā)生癌變。外泌體在誘導(dǎo)正常上皮細胞發(fā)生癌變后,可通過微小RNA-210基因促進EMT,影響CRC細胞的黏附[32]。此外,Holzner等[33]在研究中發(fā)現(xiàn),外泌體也可通過作用ZEB1、ZEB2這一調(diào)控因子來參與細胞分化、遷移并促進癌細胞進入血管循環(huán)。外泌體中的整合素在CRCLM發(fā)生過程中,可改變肝臟微環(huán)境,為癌細胞在肝臟的定植與生長創(chuàng)造條件[34]。因此,特異性阻斷外泌體整合素,可以抑制腫瘤細胞發(fā)生肝臟轉(zhuǎn)移的能力。Wang等[35]分別利用具有高度肝轉(zhuǎn)移特性的CRC HT29細胞和人克隆結(jié)腸腺癌Caco-2細胞建立CRCLM裸鼠模型,證實HT29細胞來源的外泌體更易促進CRCLM的發(fā)生,而Caco-2細胞的外泌體較少發(fā)生CRCLM;進一步研究HT29細胞來源的外泌體介導(dǎo)的CRCLM機制,發(fā)現(xiàn)HT29細胞來源的外泌體的小鼠在肝臟轉(zhuǎn)移微環(huán)境中高表達CXCR4,提示外泌體是通過招募表達CXCR4的基質(zhì)細胞來建立轉(zhuǎn)移途徑;隨后,在用HT29細胞來源的外泌體體外處理Caca-2細胞后,Caca-2細胞的遷移能力顯著增加,進一步支持了外泌體在調(diào)控CRCLM中的作用。這一研究可促進轉(zhuǎn)化醫(yī)學(xué)的進一步研究,預(yù)防和治療CRCLM。
CRCLM是一個動態(tài)、復(fù)雜的生物學(xué)過程,癌細胞是如何進入血液循環(huán),如何種植于肝臟的,其機制尚不完全一致。隨著現(xiàn)代分子生物學(xué)的進步及高端檢測技術(shù)的發(fā)展,人們將會對CRCLM分子機制有更加深入的認識,從而為CRCLM患者的早期預(yù)防、早期診斷、精準治療提供新的方向和思路。
[1]Chen W,Zheng R,Zhang S,et al.Report of incidence and mortality in China cancer registries,2009[J].Chin J Cancer Res,2013,25(1):10-21.
[2]Ogino S,Lochhead P,Giovannucci E,et al.Discovery of colorectal cancer PIK3CA mutation as potential predictive biomarker:power and promise of molecular pathological epidemiology[J].Oncogene,2014,33(23):2949-2955.
[3]Xue Y,Ma G,Gu D,et al.Genome-wide analysis of long noncoding RNA signature in human colorectal cancer[J]. Gene,2015,556(2):227-234.
[4]Ye LC,Ren L,Qiu JJ,et al.Aberrant expression of long noncoding RNAs in colorectal cancer with liver metastasis [J].Tumour Biol,2015,36(11):8747-8754.
[5]Li J,Lian Y,Yan C,et al.Long non-coding RNA FOXP4-AS1 is an unfavourable prognostic factor and regulates proliferation and apoptosis in colorectal cancer[J].Cell Prolif,2017,50(1):12312.
[6]Lu M,Liu Z,Li B,et al.The high expression of long noncoding RNA PANDAR indicates a poor prognosis for colorectal cancer and promotes metastasis by EMT pathway [J].J Cancer Res Clin Oncol,2017,143(1):71-81.
[7]Thorenoor N,F(xiàn)altejskova-Vychytilova P,Hombach S,et al. Long non-coding RNA ZFAS1 interacts with CDK1 and is involved in p53-dependent cell cycle control and apoptosis in colorectal cancer[J].Oncotarget,2016,7(1):622-637.
[8]Niu H,Hu Z,Liu H,et al.Long non-coding RNA AK027294 involves in the process of proliferation,migration,and apoptosis of colorectal cancer cells[J].Tumour Biol,2016,37 (8):10097-10105.
[9]Lian Y,Ding J,Zhang Z,et al.The long noncoding RNA HOXA transcript at the distal tip promotes colorectal cancer growth partially via silencing of p21 expression[J]. Tumour Biol,2016,37(6):7431-7440.
[10]Zhou J,Li X,Wu M,et al.Knockdown of long noncoding RNA GHET1 inhibits cell proliferation and invasion of colorectal cancer[J].Oncol Res,2016,23(6):303-309.
[11]Abetov D,Mustapova Z,Saliev T,et al.Biomarkers and signaling pathways of colorectal cancer stem cells[J]. Tumour Biol,2015,36(3):1339-1353.
[12]Neumann J,L?hrs L,Albertsmeier M,et al.Cancer stem cell markers are associated with distant hematogenous liver metastases but not with peritoneal carcinomatosis in coloreetal cancer[J].Cancer Invest,2015,33(8):354-360.
[13]Jing F,Kim HJ,Kim CH,et al.Colon cancer stem cell markers CD44 and CD133 in patients with colorectal cancer and synchronous hepatic metastases[J].Int J Oncol,2015,46(4):1582-1588.
[14]Michl M,Heinemann V,Jung A,et al.Expression of cancer stem cell markers in metastatic colorectal cancer correlates with liver metastasis,but not with metastasis to the central nervous system[J].Pathol Res Pract,2015,211(8):601-609.
[15]Yamamoto S,Tanaka K,Takeda K,et al.Patients with CD133-negative colorectal liver metastasis have a poor prognosis after hepatectomy[J].Ann Surg Oncol,2014,21 (6):1853-1861.
[16]Davies S,Beckenkamp A,Buffon A.CD26 a cancer stem cell marker and therapeutic target[J].Biomed Pharmacother,2015,71:135-138.
[17]Ribeiro KB,da Silva Zanetti J,Ribeiro-Silva A,et al. KRAS mutation associated with CD44/CD166 immunoexpression as predictors of worse outcome in metastatic colon cancer[J].Cancer Biomark,2016,16(4):513-521.
[18]Li CY,Yuan P,Lin SS,et al.Matrix metalloproteinase 9 expression and prognosis in colorectal cancer:a meta-analysis[J].Tumour Biol,2013,34(2):735-741.
[19]Banday MZ,Sameer AS,Mir AH,et al.Matrix metalloproteinase(MMP)-2,-7 and-9 promoter polymorphisms in colorectal cancer in ethnic Kashmiri population--a casecontrol study and a mini review[J].Gene,2016,589(1): 81-89.
[20]Araújo RF Jr,Lira GA,Vila?a JA,et al.Prognostic and diagnostic implications of MMP-2,MMP-9,and VEGF-α expressions in colorectal cancer[J].Pathol Res Pract,2015,211(1):71-77.
[21]Yan Q,Yuan Y,Yankui L,et al.The expression and significance of CXCR5 and MMP-13 in colorectal cancer[J]. Cell Biochem Biophys,2015,73(1):253-259.
[22]Lorenc Z,Waniczek D,Lorenc-Podgórska K,et al.Profile of expression of genes encoding matrix metallopeptidase 9 (MMP9),matrix metallopeptidase 28(MMP28)and TIMP metallopeptidase inhibitor 1(TIMP1)in colorectal cancer: assessment of the role in diagnosis and prognostication [J].Med Sci Monit,2017,23:1305-1311.
[23]Seubert B,Grünwald B,Kobuch J,et al.Tissue inhibitor of metalloproteinases(TIMP)-1 creates a premetastatic niche in the liver through SDF-1/CXCR4-dependent neutrophil recruitment in mice[J].Hepatology,2015,61(1):238-248.
[24]Cacchi C,Arnholdt HM,J?hnig H,et al.Clinical significance of lymph vessel density in T3 colorectal carcinoma [J].Int J Colorectal Dis,2012,27(6):721-726.
[25]Jiang B,Zhang T,Liu F,et al.The co-stimulatory molecule B7-H3 promotes the epithelial-mesenchymal transition in colorectal cancer[J].Oncotarget,2016,7(22):31755-31771.
[26]Qin Y,Tang B,Hu CJ,et al.An hTERT/ZEB1 complex directly regulates E-cadherin to promote epithelial-to-mesenchymal transition(EMT)in colorectal cancer[J].Oncotarget,2016,7(1):351-361.
[27]Bonnin N,Armandy E,Carras J,et al.MiR-422a promotes loco-regional recurrence by targeting NT5E/CD73 in head and neck squamous cell carcinoma[J].Oncotarget,2016,7 (28):44023-44038.
[28]Sica A,Mantovani A.Macrophage plasticity and polarization:in vivo veritas[J].J Clin Invest,2012,122(3):787-795.
[29]Qiu HB,Zhang LY,Zeng ZL,et al.HBV infection decreases risk of liver metastasis in patients with colorectal cancer:a cohort study[J].World J Gastroenterol,2011,17 (6):804-808.
[30]Reymond N,d’água BB,Ridley AJ.Crossing the endothelial barrier during metastasis[J].Nature Rev Cancer,2013,13(12):858-870.
[31]Valcz G,Galamb O,Krenács T,et al.Exosomes in colorectal carcinoma formation:ALIX under the magnifying glass [J].Mod Pathol,2016,29(8):928-938.
[32]Bigagli E,Luceri C,Guasti D,et al.Exosomes secreted from human colon cancer cells influence the adhesion of neighboring metastatic cells:role of microRNA-210[J]. Cancer Biol Ther,2016,17(10):1062-1069.
[33]Holzner S,Senfter D,Stadler S,et al.Colorectal cancer cell-derived microRNA200 modulates the resistance of adjacent blood endothelial barriers in vitro[J].Oncol Rep,2016,36(5):3065-3071.
[34]Hoshino A,Costa-Silva B,Shen TL,et al.Tumour exosome integrins determine organotropic metastasis[J].Nature,2015,527(7578):329-335.
[35]Wang X,Ding X,Nan L,et al.Investigation of the roles of exosomes in colorectal cancer liver metastasis[J].Oncol Rep,2015,33(5):2445-2453.
Advances in liver metastasis of colorectal cancer
ZOU Guijun1,2,WANG Di1,3,HU Yuanliang2,F(xiàn)ENG Qi2,HU Shidong1,DU Xiaohui1
(1.Department of General Surgery,Chinese PLA General Hospital,Beijing 100853,China;2.Department of General Surgery,Navy General Hospital,Beijing 100048,China;3.Department of Clinical Medicine,Nankai University School of Medicine,Tianjin 300071,China)
In China,the incidence of colorectal cancer(CRC)shows an increasing trend in recent years,liver metastasis is a main cause of prognosis and long-term survival for CRC.However,the biological process in the liver metastasis of CRC is extremely complicated and influenced by multiple factors,so the mechanism of liver metastasis is still unclear.In this review,the novel insight and development of liver metastasis of CRC will be illuminated.
Colorectal cancer(CRC);Drug therapy;Neoplasm metastasis;Secondary liver neoplasms
R735.3
A
2095-3097(2017)03-0185-05
10.3969/j.issn.2095-3097.2017.03.014
2017-02-09 本文編輯:徐海琴)
國家自然科學(xué)基金資助項目(61471397)
100853北京,解放軍總醫(yī)院普通外科(鄒貴軍,王 迪,胡時棟,杜曉輝);100048北京,海軍總醫(yī)院普通外科(鄒貴軍,胡遠亮,馮 奇);300071天津,南開大學(xué)醫(yī)學(xué)院臨床醫(yī)學(xué)系(王 迪)
杜曉輝,E-mail:duxiaohui301@sina.com