翟玉娥,田清武,趙希芹,趙鵬,孫樹凱,岳康,翟木緒
(1青島大學(xué)附屬醫(yī)院,山東青島266555;2淄博市婦幼保健院)
·基礎(chǔ)研究·
絕經(jīng)后體脂異常分布對(duì)雌性SD大鼠內(nèi)臟脂肪組織脂肪因子及TNF-α表達(dá)的影響
翟玉娥1,田清武1,趙希芹1,趙鵬1,孫樹凱1,岳康1,翟木緒2
(1青島大學(xué)附屬醫(yī)院,山東青島266555;2淄博市婦幼保健院)
目的 探討絕經(jīng)后體脂異常分布對(duì)雌性SD大鼠內(nèi)臟脂肪組織脂肪因子(包括瘦素、脂聯(lián)素、抵抗素)及TNF-α表達(dá)的影響。方法 選擇6周齡雌性SD大鼠30只,隨機(jī)分為假手術(shù)組、去卵巢組和去卵巢高脂組(OVXH組)各10只,去卵巢組、OVXH組切除雙側(cè)卵巢制備去卵巢去勢(shì)(絕經(jīng))模型,假手術(shù)組僅摘除腹腔內(nèi)與卵巢體積相當(dāng)?shù)闹窘M織。術(shù)后1周,假手術(shù)組和去卵巢組給予普通飼料喂養(yǎng),OVXH組給予高脂飼料喂養(yǎng)。連續(xù)干預(yù)12周后,麻醉大鼠迅速剝離內(nèi)臟脂肪組織,分別采用免疫組化染色法和RT-PCR法檢測(cè)各組脂肪組織瘦素、脂聯(lián)素、抵抗素、TNF-α蛋白及mRNA表達(dá)的變化。結(jié)果 與假手術(shù)組相比,去卵巢組和OVXH組內(nèi)臟脂肪組織瘦素蛋白表達(dá)降低,脂聯(lián)素、抵抗素、TNF-α蛋白及mRNA表達(dá)均增強(qiáng)(P<0.05或0.01)。與去卵巢組相比,OVXH組內(nèi)臟脂肪組織抵抗素、TNF-α蛋白及mRNA表達(dá)均增強(qiáng)(P均<0.05)。結(jié)論 去卵巢后體脂分布異常大鼠內(nèi)臟脂肪組織脂聯(lián)素、抵抗素和TNF-α的表達(dá)顯著增強(qiáng),瘦素表達(dá)顯著減弱,可能與絕經(jīng)后代謝綜合征的發(fā)病有關(guān)。
絕經(jīng);代謝綜合征;脂肪組織;脂肪因子;胰島素抵抗;腫瘤壞死因子α
絕經(jīng)后女性存在脂肪組織再分布的現(xiàn)象,主要表現(xiàn)為體脂趨于上半身型分布。這種體脂再分布可導(dǎo)致絕經(jīng)后女性代謝綜合征和肥胖癥的發(fā)病率增高,其發(fā)生風(fēng)險(xiǎn)甚至高于同齡男性[1,2],嚴(yán)重影響絕經(jīng)后女性的身心健康。研究證實(shí),絕經(jīng)后女性雌激素的缺乏與其內(nèi)臟脂肪堆積密切相關(guān)[3,4],但其具體機(jī)制尚未完全闡明。2015年3~11月,我們對(duì)雌性SD大鼠去卵巢模擬絕經(jīng)后模型,然后給予高脂飲食模擬絕經(jīng)后體脂分布異常狀態(tài),觀察大鼠內(nèi)臟脂肪組織脂肪因子(包括脂聯(lián)素、瘦素、抵抗素)及TNF-α的表達(dá)變化,探討絕經(jīng)后體脂異常分布狀態(tài)對(duì)絕經(jīng)后女性代謝綜合征的影響機(jī)制。
1.1 材料與試劑 6周齡SD雌性大鼠30只,體質(zhì)量(200±20)g,由青島藥品研究所實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。分籠飼養(yǎng),在室溫23~25 ℃、相對(duì)濕度50%~70%的清潔環(huán)境中飼養(yǎng)。高脂飼料配方為普通飼料68%、豬油10%、蛋黃粉10%、蔗糖10%、膽固醇2%[5]。TRIzol試劑盒(美國(guó)Invitrogen公司);PCR引物(上海生工生物工程技術(shù)公司);Fast Quant cDNA第一鏈合成試劑盒、Super Real熒光定量PCR(SYBR Green)試劑盒(北京天根生物技術(shù)公司);兔抗鼠瘦素單克隆抗體、兔抗鼠脂聯(lián)素抗體、兔抗鼠TNF-α單克隆抗體(英國(guó)Abcam公司);兔抗鼠抵抗素單克隆抗體(英國(guó)Biorbyt公司);山羊抗兔二抗PV-6001、DAB顯色試劑盒(北京中杉金橋生物有限公司);葡萄糖(FBS)、TC、TG、LDL-C、HDL-C(北京利德曼公司);游離脂肪酸(NEFA,浙江東甌生物工程公司)。
1.2 模型構(gòu)建、分組及干預(yù)方法 SD大鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后,采用隨機(jī)數(shù)字表法分為假手術(shù)組10例、手術(shù)組20例。手術(shù)前大鼠禁食12 h,腹腔注射10%水合氯醛麻醉。手術(shù)組在無(wú)菌條件下經(jīng)腰背部雙側(cè)切口進(jìn)入腹腔,切除雙側(cè)卵巢后分層縫合切口,構(gòu)建去卵巢去勢(shì)(絕經(jīng))模型。假手術(shù)組打開腹腔后,摘除腹腔內(nèi)與卵巢體積相當(dāng)?shù)闹窘M織,縫合切口。術(shù)后1周美藍(lán)染色觀察陰道上皮細(xì)胞,如無(wú)動(dòng)情周期變化則確定去勢(shì)成功,術(shù)后1周開始干預(yù)。手術(shù)組大鼠隨機(jī)分為去卵巢組、去卵巢+高脂飲食組(OVXH組)各10只。假手術(shù)組、去卵巢組給予基礎(chǔ)飼料喂養(yǎng),OVXH組給予高脂飼料喂養(yǎng)模擬絕經(jīng)后體脂異常分布狀態(tài),連續(xù)12周,每周稱體質(zhì)量1次,自由進(jìn)食和飲水。12周后OVXH組體質(zhì)量、內(nèi)臟脂肪指數(shù)均明顯高于去卵巢組,血清LDL-C和NEFA水平均明顯高于假手術(shù)組,確定存在絕經(jīng)后體脂異常分布狀態(tài)。
1.3 樣品采集 12周后,采用腹腔注射10%水合氯醛溶液麻醉各組大鼠,固定于手術(shù)臺(tái),迅速剝離內(nèi)臟脂肪組織,速凍于液氮中,隔日移入-80 ℃冰箱中保存待測(cè)。
1.4 內(nèi)臟脂肪組織瘦素、脂聯(lián)素、抵抗素、TNF-α蛋白表達(dá)檢測(cè) 采用免疫組化法。取各組內(nèi)臟脂肪組織,4%多聚甲醛固定,經(jīng)乙醇梯度脫水、二甲苯透明、浸蠟、包埋制成蠟塊。常規(guī)石蠟切片,梯度脫蠟至水,抗原熱修復(fù),3%過(guò)氧化氫10 min滅活內(nèi)源性酶。山羊血清工作液封閉,分別加稀釋好的一抗瘦素(1∶300)、脂聯(lián)素(1∶300)、抵抗素(1∶200)、TNF-α(1∶300)37 ℃孵育1 h。PBS清洗后加二抗PV-6001,37 ℃30 min,PBS清洗后加DAB顯色1 min,清洗,蘇木素復(fù)染、脫水、透明、封片,顯微鏡觀察,拍照,灰度分析采用Image-Pro Plus6.0圖像分析軟件。
1.5 內(nèi)臟脂肪組織瘦素、脂聯(lián)素、抵抗素、TNF-α mRNA表達(dá)檢測(cè) 采用RT-PCR法。提取內(nèi)臟脂肪組織總RNA,紫外分光光度計(jì)檢測(cè)確定總RNA濃度及純度。嚴(yán)格按照cDNA第一鏈合成試劑盒說(shuō)明,合成cDNA第一鏈。瘦素引物序列:正義鏈5′-AGCAGCTGCAAGGTCCAAG-3′,反義鏈5′-CCGACTGCGTGTGTGAAATG-3′,產(chǎn)物長(zhǎng)度197 bp。脂聯(lián)素引物序列:正義鏈5′-ACAAGGCCGTTCTCTTCACC-3′,反義鏈5′-ACACTTGGAGCCAGACTTGG-3′,產(chǎn)物長(zhǎng)度111 bp。抵抗素引物序列:正義鏈5′-TCATGCCCAGAACCGAGTTG-3′,反義鏈5′-GGCTTCATCCATGGGACACA-3′,產(chǎn)物長(zhǎng)度148 bp。TNF-α引物序列:正義鏈5′-GCTCCCTCTCATCAGTTCCA-3′,反義鏈5′-GCTTGGTGGTTTGCTACGAC-3′,產(chǎn)物長(zhǎng)度102 bp。β-actin引物序列:正義鏈5′-CCCATCTATGAGGGTTACGC-3′,反義鏈5′-TTTAATGTCACGCACGATTTC-3′,產(chǎn)物長(zhǎng)度165 bp。取2 μL合成的cDNA產(chǎn)物及相應(yīng)的上下游引物加入SuperReal PreMix Plus實(shí)時(shí)熒光定量PCR反應(yīng)體系中,總反應(yīng)體系為20 μL ,擴(kuò)增條件為95 ℃預(yù)變性15 min,95 ℃ 10 s、60 ℃ 30 s共40個(gè)循環(huán),β-actin作為內(nèi)參。以β-actin基因的表達(dá)量作為內(nèi)參來(lái)校正目的基因的表達(dá)量,每個(gè)標(biāo)本做3個(gè)復(fù)孔,取平均值,結(jié)果以2-ΔΔCT表示。RT-PCR引物序列由上海生工生物工程技術(shù)公司設(shè)計(jì)、合成。
2.1 各組內(nèi)臟脂肪組織瘦素、脂聯(lián)素、抵抗素和TNF-α蛋白表達(dá)比較 瘦素、脂聯(lián)素、抵抗素和TNF-α均在脂肪細(xì)胞胞質(zhì)表達(dá),棕黃色顆粒散在分布,細(xì)胞核內(nèi)幾乎沒(méi)有表達(dá)。與假手術(shù)組相比,去卵巢組和OVXH組內(nèi)臟脂肪組織瘦素蛋白表達(dá)降低,脂聯(lián)素、抵抗素及TNF-α蛋白表達(dá)均增強(qiáng)(P<0.05或<0.01)。與去卵巢組相比,OVXH組內(nèi)臟脂肪組織抵抗素及TNF-α蛋白表達(dá)均增強(qiáng)(P均<0.05)。見表1。
表1 各組內(nèi)臟脂肪組織瘦素、脂聯(lián)素、抵抗素和TNF-α蛋白表達(dá)比較
注:與假手術(shù)組相比,*P<0.05,#P<0.01;與去卵巢組相比,△P<0.05。
2.2 各組內(nèi)臟脂肪組織瘦素、脂聯(lián)素、抵抗素和TNF-α mRNA表達(dá)比較 去卵巢組和OVXH組內(nèi)臟脂肪組織脂聯(lián)素、抵抗素和TNF-α mRNA表達(dá)水平高于假手術(shù)組(P<0.05或<0.01),OVXH組內(nèi)臟脂肪組織抵抗素和TNF-α的mRNA表達(dá)水平均高于去卵巢組(P均<0.05)。見表2。
表2 各組內(nèi)臟脂肪組織瘦素、脂聯(lián)素、抵抗素和TNF-α mRNA表達(dá)比較
注:與假手術(shù)組相比,*P<0.05,△P<0.01;與去卵巢組相比,#P<0.05。
絕經(jīng)后女性超重和肥胖特別是中心性肥胖的發(fā)病率顯著升高,這種絕經(jīng)后女性脂肪組織的再分布可促進(jìn)一系列代謝性疾病的發(fā)生,特別是使代謝綜合征患病率顯著增加[6],與之相對(duì)應(yīng)的心血管疾病發(fā)病風(fēng)險(xiǎn)也顯著增高。絕經(jīng)后女性雌激素缺乏與絕經(jīng)后體脂增加、體脂分布密切相關(guān)[7]。有研究顯示,雌激素缺乏可通過(guò)影響糖脂代謝關(guān)鍵酶的活性,以及調(diào)控胰島素信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路的不同環(huán)節(jié),進(jìn)而誘導(dǎo)或加重胰島素抵抗[8~10]。此外,雌激素缺乏可直接或間接作用下丘腦,進(jìn)而通過(guò)調(diào)控機(jī)體物質(zhì)和能量代謝[11],增強(qiáng)機(jī)體對(duì)肥胖和代謝綜合征的易感性。胰島素抵抗是代謝綜合征發(fā)病的中心環(huán)節(jié),與代謝有關(guān)的炎癥因子增多是代謝綜合征發(fā)生發(fā)展的關(guān)鍵。脂肪組織作為一個(gè)活躍的內(nèi)分泌器官,在胰島素抵抗、代謝綜合征的發(fā)生中發(fā)揮重要作用。肥胖可造成脂肪組織及肝臟等臟器的脂肪堆積和巨噬細(xì)胞浸潤(rùn),產(chǎn)生大量的促炎因子和脂肪因子,如瘦素、脂聯(lián)素、抵抗素、TNF-α、IL-6等,這些細(xì)胞因子可通過(guò)影響攝食中樞和調(diào)節(jié)機(jī)體胰島素敏感性,干擾包括胰島素信號(hào)傳導(dǎo)通路在內(nèi)的多種代謝通路,從而導(dǎo)致胰島素抵抗[12~16]。
瘦素主要由白色脂肪組織合成和分泌的,其最主要功能是調(diào)節(jié)機(jī)體的能量平衡。當(dāng)機(jī)體脂肪含量上升時(shí),脂肪組織可分泌大量瘦素,激活下丘腦-神經(jīng)肽通路,進(jìn)而發(fā)揮減低食欲、增加耗能、降低體質(zhì)量的作用。研究顯示,雌激素可提高大鼠血液循環(huán)中瘦素和脂肪組織中瘦素的表達(dá),從而起到抑制食欲,減少大鼠攝食量的作用[17]。本研究發(fā)現(xiàn),去卵巢組和OVXH組內(nèi)臟脂肪組織瘦素蛋白表達(dá)降低,提示去卵巢后大鼠內(nèi)臟脂肪組織瘦素蛋白表達(dá)明顯減弱,可能與去卵巢后造成的性激素水平降低有關(guān),與Fungfuang等[18]研究一致。
脂聯(lián)素是由脂肪細(xì)胞分泌的一種糖蛋白,參與了血脂、血糖代謝以及炎癥病理過(guò)程,在代謝綜合征及拮抗動(dòng)脈粥樣硬化方面有重要作用。研究發(fā)現(xiàn),絕經(jīng)后女性血清脂聯(lián)素水平顯著高于絕經(jīng)前女性,無(wú)論絕經(jīng)與否,肥胖者均具有較低的脂聯(lián)素水平,提示血清低脂聯(lián)素與代謝綜合征相關(guān)組分密切相關(guān)[19]。本研究發(fā)現(xiàn),去卵巢組、OVXH組大鼠內(nèi)臟脂肪組織脂聯(lián)素蛋白表達(dá)高于假手術(shù)組,且OVXH組內(nèi)臟脂肪組織脂聯(lián)素蛋白表達(dá)高于去卵巢組,去卵巢和高脂飲食誘導(dǎo)大鼠模型脂肪組織脂聯(lián)素呈高分泌模式,這與絕經(jīng)后女性血清低脂聯(lián)素水平不一致[19],具體機(jī)制還有待進(jìn)一步研究。
抵抗素是由白色脂肪特異分泌的一種富含半胱氨酸的蛋白質(zhì)。抵抗素可通過(guò)作用于胰島素受體和胰島素受體底物、上調(diào)細(xì)胞因子信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)等途徑降低組織對(duì)胰島素的敏感性,從而導(dǎo)致胰島素抵抗的發(fā)生[20]。絕經(jīng)后代謝綜合征女性抵抗素水平顯著增高,特別是與血脂異常和中心型肥胖密切相關(guān)[21]。本研究發(fā)現(xiàn),去卵巢組、OVXH組大鼠內(nèi)臟脂肪組織抵抗素蛋白及mRNA表達(dá)均高于假手術(shù)組,且OVXH組抵抗素蛋白及mRNA表達(dá)高于去卵巢組,提示去卵巢大鼠體脂分布異??赏ㄟ^(guò)脂肪組織抵抗素的高表達(dá),以降低組織胰島素敏感性,誘導(dǎo)胰島素抵抗,參與代謝綜合征的發(fā)生。
TNF-α是一種多功能的細(xì)胞因子,它除了激活白細(xì)胞,介導(dǎo)內(nèi)毒素性休克、調(diào)節(jié)炎癥及免疫反應(yīng)外,脂肪組織TNF-α的高表達(dá)與胰島素抵抗、BMI密切相關(guān)。研究顯示,脂肪細(xì)胞分泌的TNF-α進(jìn)入血液后可以通過(guò)胰島素受體抑制酪氨酸激酶的活性,使葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)受阻,導(dǎo)致胰島素抵抗[22]。無(wú)論男女,代謝綜合征患者血清中TNF-α的水平明顯增高[23]。本研究發(fā)現(xiàn),去卵巢組、OVXH組大鼠內(nèi)臟脂肪組織TNF-α蛋白及mRNA表達(dá)均高于假手術(shù)組,且OVXH組內(nèi)臟脂肪組織TNF-α蛋白及mRNA表達(dá)高于去卵巢組,提示去卵巢大鼠體脂分布異??赏ㄟ^(guò)脂肪組織TNF-α高表達(dá),誘導(dǎo)胰島素抵抗,參與代謝綜合征的發(fā)生。
綜上所述,去卵巢后雌性大鼠可出現(xiàn)體脂分布異常,內(nèi)臟脂肪細(xì)胞脂聯(lián)素、抵抗素和TNF-α的表達(dá)顯著增強(qiáng),瘦素表達(dá)顯著減弱,高脂飲食可進(jìn)一步增加對(duì)以上脂肪因子的影響,提示絕經(jīng)后的體脂分布異??蓪?dǎo)致內(nèi)臟脂肪組織的脂肪因子及TNF-α表達(dá)異常,可能與絕經(jīng)后代謝綜合征的發(fā)病有關(guān)。
[1] Hidalgo LA, Chedraui PA, Morocho N, et al. The metabolic syndrome among postmenopausal women in Ecuador[J].Gynecol Endocrinol, 2006,22(8):447-454.
[2] He Y, Jiang B, Wang J, et al. Prevalence of the metabolic syndrome and its relation to cardiovascular disease in an elderly Chinese population[J]. J Am Coll Cardiol, 2006,47(8):1588-1594.
[3] Panotopoulos G, Ruiz JC, Raison J, et al. A menopause, fat and lean distribution in obese women[J]. Maturitas, 1996,25(11):11-19 .
[4] Tchernof A, Poehlman A. Effects of the menopause transition on body fatness and body fat distribution[J]. Obes Res, 1998,6(3):246-254 .
[5] 陳娟,鄧軍,張宇燕,等.丹參素對(duì)高脂血癥大鼠脂代謝調(diào)節(jié)機(jī)制研究[J].中國(guó)中藥雜志,2015,40(2):313-317.
[6] Lobo RA. Metabolic syndrome after menopause and the role of hormones[J]. Maturitas, 2008,60(1):10-18.
[7] Liedtke S, Schmidt ME, Vrieling A, et al. Postmenopausal sex hormones in relation to body fat distribution[J]. Obesity (Silver Spring), 2012,20(5):1088-1095.
[8] Kim JY, Jo KJ, Kim BJ, et al. 17β-estradiol induces an interaction between adenosine monophosphate-activated protein kinase and the insulin signaling pathway in 3T3-L1 adipocytes[J]. Int J Mol Med, 2012,30(4):979-985.
[9] Handgraaf S, Riant E, Fabre A, et al. Prevention of obesity and insulin resistance by estrogens requires ERα activation function-2 (ERαAF-2), whereas ERαAF-1 is dispensable[J].Diabetes, 2013,62(12):4098-4108.
[10] Narasimhan A, Sampath S, Jayaraman S, et al. Estradiol favors glucose oxidation in gastrocnemius muscle through modulation of insulin signaling molecules in adult female rats[J]. Endocr Res, 2013,38(4):251-262.
[11] Lizcano F, Guzmán G. Estrogen deficiency and the origin of obesity during menopause[J]. Biomed Res Int, 2014,2014:757461.
[12] Asrih M, Jornayvaz FR.Inflammation as a potential link between nonalcoholic fatty liver disease and insulin resistance[J]. J Endocrinol, 2013,218(3):25-36.
[13] Kim OK, Jun W, Lee J. Mechanism of ER stress and inflammation for hepatic insulin resistance in obesity[J].Ann Nutr Metab, 2015,67(4):218-227.
[14] Stefanska A, Bergmann K, Sypniewska G. Metabolic syndrome and menopause: pathophysiology, clinical and diagnostic significance[J]. Adv Clin Chem, 2015,72:1-75.
[15] Barbarroja N, Lopez-Pedrera C, Garrido-Sanchez L, et al. Progression from high insulin resistance to type 2 diabetes does not entail additional visceral adipose tissue inflammation[J]. PLoS One, 2012,7(10):e48155.
[16] Smitka K, Mareová D.Adipose tissue as an endocrine organ: an update on pro-inflammatory and anti-inflammatory microenvironment[J].Prague Med Rep, 2015,116(2):87-111.
[17] Fungfuang W, Nakada T, Nakao N, et al. Serum leptin concentrations, leptin mRNA expression, and food intake during the estrous cycle in rats[J]. Lab Anim Res, 2013,29(1):1-6.
[18] Fungfuang W, Terada M, Komatsu N, et al. Effects of estrogen on food intake, serum leptin levels and leptin mRNA expression in adipose tissue of female rats[J]. Lab Anim Res, 2013,29(3):168-173.
[19] Ben AS, Jemaa R, Ftouhi B, et al. Relationship of plasma leptin and adiponectin concentrations with menopausal status in Tunisian women[J]. Cytokine, 2011,56(2):338-342.
[20] Iwasa T, Matsuzaki T, Matsui S, et al. The effects of ovariectomy and LPS-induced endotoxemia on resistin levels in female rats[J].Cytokine, 2015,76(2):558-560.
[21] Chedraui P, Pérez-López FR, Escobar GS, et al. Circulating leptin, resistin, adiponectin, visfatin, adipsin and ghrelin levels and insulin resistance in postmenopausal women with and without the metabolic syndrome[J]. Maturitas, 2014,79(1):86-90.
[22] Yamakawa J, Moriga J, Takahashi T, et al. A kampo medicine, boi-ogi-to, inhibits obesity in ovariectomized Rats[J]. ECAM, 2010,7(1):87-95.
[23] 洪玉,吳小川,羅蘭.脂肪細(xì)胞因子與代謝綜合征的相關(guān)性研究[J].山東醫(yī)藥,2012,52(40):31-34.
山東省青島經(jīng)濟(jì)技術(shù)開發(fā)區(qū)重點(diǎn)科技發(fā)展計(jì)劃項(xiàng)目(2013-1-83)。
翟木緒(E-mail: mxzhai@163.com)
10.3969/j.issn.1002-266X.2016.46.008
R589.2;R711.5
A
1002-266X(2016)46-0031-04
2016-03-27)