亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        花粉介導法獲得耐草甘膦玉米植株及其耐性研究

        2016-12-21 02:54:20楊慧珍任志強肖建紅卜華虎劉惠民
        生物技術通報 2016年11期
        關鍵詞:耐性草甘膦株系

        楊慧珍任志強肖建紅卜華虎劉惠民

        (1. 山西省農業(yè)科學院作物科學研究所,太原 030031;2. 農業(yè)部黃土高原作物基因資源與種質創(chuàng)制重點實驗室,太原 030031)

        花粉介導法獲得耐草甘膦玉米植株及其耐性研究

        楊慧珍1,2任志強2肖建紅2卜華虎2劉惠民2

        (1. 山西省農業(yè)科學院作物科學研究所,太原 030031;2. 農業(yè)部黃土高原作物基因資源與種質創(chuàng)制重點實驗室,太原 030031)

        為獲得耐草甘膦轉基因玉米植株,進而研究其除草劑耐性及外源基因的遺傳特性,以質粒pBI101-aroA-M12為外源基因供體,以玉米自交系昌‘7-2’為受體,采用花粉介導法將外源基因導入玉米自交系中。PCR擴增、Southern雜交分析的結果證明獲得了54個轉基因植株;對其后代株系的分子檢測及田間生物學鑒定,結果證明目的基因可以穩(wěn)定遺傳給后代植株,且賦予和提高了轉基因植株的除草劑耐性。目的基因在轉化體中的遺傳規(guī)律研究,結果顯示導入的目的基因在F2受體植株中以3∶1的比例發(fā)生遺傳分離,符合孟德爾單因子顯性遺傳分離規(guī)律。ELISA分析和蛋白質濃度測定的結果證實目的基因在轉化植株中得到表達,表達量介于40.5-112.6 ng/g 葉片鮮重之間,目的基因表達量與該植株的除草劑耐性性狀間呈極顯著相關,r=0.942 3(P<0.01)。最終研究獲得了4個高草甘膦耐性的轉基因純合株系。

        玉米;aroA-M12基因;草甘膦耐性;花粉介導;遺傳分析

        中國是世界上位居第二的玉米(Zea mays L.)生產大國,年玉米種植面積3 000多萬hm2,玉米產量達億余噸,占世界上玉米總產量的20%。即便如此,從2009年開始,我國還是成為玉米的凈進口國。2013年我國玉米產量雖高達2.13億t,但玉米進口量也提高到500萬t,足見我國玉米市場的潛力以及這種潛力所形成的對玉米生產的壓力。誠然我國玉米生產能力和水平都有大幅度提高,但影響和制約玉米生產的諸多因素依然存在,其中,雜草清除無疑是最令人困擾的環(huán)節(jié)之一。玉米田雜草種類多、數(shù)量大,在整個玉米生產期都存在與玉米競爭環(huán)境資源、進而影響玉米產量的現(xiàn)象。在我國廣大農村,每年都要花費很大的財力和人力來處理田間雜草,造成了資源的極大浪費。隨著我國農村深化改革步伐的加快,集約化、規(guī)?;纳a方式日趨可待,人工噴霧除草劑清理雜草的時代也將很快過去,因此培育適合農田大規(guī)模、機械化噴施除草劑的玉米品種更顯得非常重要和十分迫切。

        草甘膦是一種廣譜性除草劑,它的靶酶是位于質體上5-烯醇丙酮莽草酸-3-磷酸合酶(5-enolpyruvylshikimate-3-phosphate synthase,EPSPS),其作用是阻斷氨基酸的合成,最終因營養(yǎng)缺乏而導致雜草等死亡[1]。研究證明,草甘膦價格低廉,土壤吸附性強,對動物無毒性,也無致畸、致癌及遺傳毒性,對雙子葉和單子葉,草本、木本灌木及喬木均有一定的防除效果[2]。將編碼EPSPS的aroA基因突變并導入生物體,可使植物或細菌獲得對草甘膦的耐性[3-7]。

        目前應用較多的CP4-ESPSPS抗草甘膦基因來源于土壤農桿菌CP4株系[8],自1996年成功培育出了第一批耐草甘膦的耐除草劑作物后[9],相關研究有了很大發(fā)展。國外Sidhu 等[10]利用對草甘膦不敏感的CP4 基因轉化玉米,獲得了耐草甘膦轉基因玉米并投入商業(yè)化生產;接著耐草甘膦基因在玉米[11]、大豆[12]、苜蓿[13]、油菜[14]、甜菜[15]、煙草[16]、小麥[17]、棉花[18]等作物上也轉化成功。國內,謝龍旭等[19]構建了含草甘膦耐性突變基因(aroA-M12)的植物表達載體pCM12-s1m,通過農桿菌介導轉化到煙草中,經篩選獲得了轉基因煙草,對草甘膦有較強的耐性;Tong等[20]通過在體外培養(yǎng)基中逐漸增加草甘膦濃度的離體篩選到耐草甘膦幼苗;余桂榮等[21]利用玉米胚型愈傷組織獲得了對草甘膦具有一定耐性的突變體植株;赫福霞等[22]通過基因槍轟擊,將構建的pMAGUHM 載體(其上攜帶有耐草甘膦基因2mG2-epsps 基因)轉化到玉米愈傷組織,利用草甘膦篩選得到耐草甘膦植株80 株,其中PCR檢測陽性植株為36 株,轉基因陽性率為45%。綜上所述,轉耐草甘膦作物研究在國內起步早,且取得了較大進展。但轉化過程多采用國內外通用的基因槍法、農桿菌介導法等,應用具有國內自主知識產權的轉化方法和耐草甘膦基因的報道還較少。

        基于以上原因,本研究采用的轉化方法和轉化用目的基因均具有我國自主知識產權,即利用花粉介導法[23]將耐草甘膦基因aroA-M12導入玉米自交系‘昌7-2’,期望得到耐草甘膦除草劑的轉基因玉米植株,并能篩選到目的基因高效表達、草甘膦耐性提高的轉基因純合株系。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 植物材料 試驗植物材料為改良玉米自交系‘昌7-2’(本實驗室保存)。該材料具有配合力強、抗病抗蟲等特點,適合作為玉米制種親本廣泛應用。

        1.1.2 質粒 供試質粒為帶有耐草甘膦基因的植物表達載體pBI101-aroA-M12,CaMV35S啟動子和nosT終止子調控目的基因aroA-M12(由中山大學生物工程中心提供)的表達,宿主菌為大腸桿菌(E. coli)菌株DH5α。圖1是質粒pBI101-aroA-M12的物理圖譜。

        1.2 方法

        1.2.1 轉化方法

        1.2.1.1 質粒DNA的提取 質粒DNA按《分子克隆》中堿解法提取[24]。

        1.2.1.2 花粉介導法轉化 轉化步驟參見文獻[23]并略有改進。稱取一定重量的新鮮取回的花粉立刻置于預先加入預冷的15%蔗糖溶液的平底試管中,做第一次超聲波處理,此處理的目的使花粉表面的核酸酶失活,并使花粉處于感受態(tài)。按1∶50 000的比例加入質粒DNA,并在溶液中加入少量的硼酸(50 mg/L)、GA3(40 mg/L)以促進花粉在授粉后的萌發(fā)。進行第二次超聲波處理;最后,將處理好的花粉快速授粉于預先套袋并已剪去大部分花絲的雌穗花絲上,套袋,秋后收獲種子(T0種子)。

        圖1 質粒pBI101-aroA-M12的物理圖譜

        1.2.1.3 田間播種 2009年,T0代種子263粒全部播種,4葉期全部取樣進行PCR檢測,并對PCR檢測陽性結果材料做Southern雜交分析,Southern雜交陽性結果植株自交授粉收獲T1代種子54穗,依次標記為T1-1、T1-2 … T1-54;2010年,T1代收獲的54穗種子各播種5行得T2植株,每5行為一個株系,分別標記為T2-1、T2-2 … T2-54,花期選擇分子檢測結果陽性、生長健壯、且其它農藝性狀優(yōu)良的10個株系(T2-2、T2-8、T2-9、T2-16、T2-21、T2-24、T2-33、T2-37、T2-43、T2-49)套袋自交收獲T2種子;2011年,所選T2代10個株系按各播種5個株系得到T3代植株,每株系5行,按T2代標號從小到大順序分別標記為T3-1-1、T3-1-2 T3-1-3 T3-1-4 T3-1-5 T3-2-1… T3-10-5,得T3代植株并收獲T3種子;

        2012年,播種來自T3代種子(T3-3-1、T3-3-2、T3-3-3、T3-3-4、T3-3-5均來自T1-9)各2個株系,每株系5行,以得到的T4植株做父本,以非轉化‘昌7-2’植株做母本,雜交得到F1雜種;2013年F1雜種播種250行。

        1.2.2 轉化植株的分子檢測

        1.2.2.1 植物DNA提取 所有樣品按CTAB方法[25]提取植物DNA。

        1.2.2.2 PCR擴增 PCR擴增引物,上游引物:ATGCCATGGAATCCCTGACGTTACAA,下游引物:GCGGATCCTTAGCAGGCTACTCATTC,擴增產物片段大小為1 000 bp。引物由上海生工生物工程股份有限公司合成。擴增體系20 μL,擴增反應:95℃預變性5 min;95℃變性45 s,55℃退火90 s,72℃延伸45 s,35個循環(huán);72℃延伸10 min。擴增產物電泳分離并照相。

        1.2.2.3 Southern雜交分析 Southern blot雜交基本參照文獻[24]的方法,每個樣品25 μg 總DNA 分別用EcoRⅠ單酶切或Hind Ⅲ和SalⅠ雙酶切,完全酶切后,酶切產物分別在0.8%瓊脂糖凝膠上電泳過夜,然后毛細管法轉移到尼龍膜上。雜交探針用Roch公司生產的地高辛標記,按PCR擴增方法制備,雜交產物用CSPD顯影照相。

        1.2.2.4 ELISA檢測 試驗用試劑盒為Quantiplate ELISA kit for CP4 EPSPS。樣品按試劑盒使用說明進行逐步操作,并在酶標儀上讀取各反應液的吸光值,最后計算出每克樣品鮮重中目的基因的表達量。試驗設兩次重復。

        1.2.3 田間生物學鑒定 T3代植株5葉期,用0.25%的除草劑Roundup 噴灑轉基因植株和對照植株,7 d 后同濃度重復噴霧一次。再過7 d進行田間調查。調查指標包括:受害植株數(shù)、受害程度,調查對象:T3代 材 料T3-1-1、T3-2-1、T3-3-1、T3-4-1、T3-5-1、T3-6-1、T3-7-1、T3-8-1、T3-9-1、T3-10-1共10個 株系以及1個對照株系(除草劑傷害嚴重但尚未死亡株),同時對這些材料做ELISA雜交分析并測定各植株中目的基因表達量。

        植株受害程度的指標,1級:無傷害或個別葉片有輕度傷害(傷害面積占該葉片的30%以下);2級:下部葉片有中度傷害(傷害面積占這些葉片面積的50%-80%),且在2周后傷害程度有所減緩;3級:下部葉片有中度傷害(傷害面積占這些葉片面積的50%-80%)或整株受傷害,隨后死亡。

        株系耐除草劑等級標準為:高耐:除草劑耐性0-5%;耐:5.1%-40%;低耐:40.1%-70%;敏感:>70.1%。

        根據各個株系植株除草劑耐性標準分為敏感、低耐、耐性、高耐4個區(qū)間,計算各個區(qū)間所有植株的除草劑耐性平均值,由于植株除草劑耐性越高,其受害程度越低,其除草劑耐性值也越低,為了使除草劑抗性性狀與蛋白表達量呈正相關,可用100%-該區(qū)間除草劑耐性值,所得數(shù)值用作該區(qū)間數(shù)據進行相關分析,計算公式如下:

        利用2007版Excel統(tǒng)計分析工具進行數(shù)據分析。

        1.2.4 目的基因遺傳規(guī)律分析 (1)目的基因遺傳分離分析:在T2代試驗田,如1.2.1.3取10個株系的全部樣品,進行PCR檢測;每個株系隨機取樣6份,進行ELISA雜交分析,根據檢測結果做目的基因分離分析。(2)目的基因世代遺傳和表達分析:根據PCR檢測、Southern雜交分析、ELISA雜交分析結果以及田間生物學鑒定結果,分析和評估目的基因在轉化植株后代中的世代遺傳現(xiàn)象和表達規(guī)律。

        圖2 T3代部分轉基因植株的PCR檢測結果

        2 結果

        2.1 轉化植株的獲得及各代分子檢測結果

        共轉化雌穗349個,收獲T0種子263粒(轉化雌穗空穗率較多,結實雌穗的結實率也僅為1-3粒/穗)。來年播種,出苗239株(T1),PCR檢測得到陽性植株97株,進一步Southern雜交分析,得到轉化植株54株,轉化率為22.6%。T2代54個株系的PCR檢測的陽性結果率為72.4%,T3代10個株系中PCR陽性結果植株數(shù)達到98.5%,T2代270份材料和T3代250份材料的Sothern雜交結果均為陽性,F(xiàn)1代植株的PCR擴增和Southern雜交結果均為陽性。結果顯示目的基因已導入‘昌7-2’植株并整合到受體基因組中,而且目的基因可以隨材料穩(wěn)定遺傳且轉基因材料的穩(wěn)定性也在逐代提高。

        圖2是部分T3轉基因植株的PCR擴增檢測結果,陰性對照未出現(xiàn)特異條帶,轉基因植株均擴增出與陽性對照預期大小一致的特異條帶。圖3是部分T1和T3代植株的Southern雜交分析結果。圖3-A中2、4、5、6泳道(對應T1代材料T5、T6、T8、T9)顯示一條雜交帶,1、3泳道出現(xiàn)2條或以上個雜交條帶(被淘汰),7泳道未發(fā)現(xiàn)雜交條帶(淘汰);圖3-B中除陽性對照和陰性對照外,其余材料均來自T9轉化事件,且其DNA均經受雙酶酶切,所以雜交條帶的大小均與陽性對照(質粒DNA)一致,其中陽性對照上樣量為2 μL,根據雜交條帶的大小和豐度分析,證明目的基因絕大部分是以單拷貝數(shù)、單位點整合進轉化植株的染色體基因組中的。

        圖3 轉基因植株的Southern雜交結果

        2.2 T3代轉基因植株ELISA分析及蛋白質測定結果

        60份T3代植株材料的ELISA檢測結果均為陽性,證明目的基因能夠穩(wěn)定表達。同時其蛋白質濃度測定結果也表明,所有被測定的轉基因植株中,aroA-M12基因都得到表達。部分材料的蛋白質測定結果見表1,表中蛋白含量數(shù)據均為2次重復的平均值。從表1中可以看出,不同植株間目的基因表達量存在差異,變化幅度介于40.5-112.6 ng/g葉片鮮重之間;不同轉化事件間目的基因表達量也有較大變化,T1-37轉化事件的目的蛋白濃度的平均值最高,達到87 ng/g 葉片鮮重以上。

        表1 部分T3植株的aroA-M12蛋白測定結果

        2.3 目的基因的遺傳分離及世代遺傳和表達規(guī)律

        2.3.1 目的基因遺傳分離規(guī)律 轉化材料中目的基因在T2代發(fā)生了遺傳分離,在對如表2所示的10個株系進行的遺傳分離研究中,PCR檢測陽性結果率為72.4%,分離比為2.63∶1(χ2=2.000);ELISA檢測結果陽性率為71.7%(43/60),分離比2.53∶1(χ2=0.356),與PCR檢測結果一致。χ2測驗結果證明目的基因的遺傳分離符合3∶1 的孟德爾單因子遺傳規(guī)律,達到顯著水平,即在玉米遺傳背景下目的基因表現(xiàn)為單因子顯性遺傳方式。同一轉化事件或不同轉化事件間的后代植株,其遺傳分離現(xiàn)象基本一致。

        2.3.2 目的基因世代遺傳規(guī)律和表達分析 轉化材料的多代連續(xù)分子檢測結果證明目的基因能夠隨轉化材料的世代遺傳而穩(wěn)定遺傳給下一代植株并在轉化植株中得到表達。此外,各代材料的PCR檢測、Southern雜交分析以及ELISA分析結果均顯示隨著世代交替,檢測結果的陽性率逐代提高,如PCR檢測T2代陽性結果率為72.4%,T3代達到98.5%(表2);ELISA分析T2代陽性結果率為71.7%(表3),T3代ELISA檢測結果均為陽性;Southern雜交分析T2、T3代的樣品結果均為陽性。檢測結果陽性率的提高有利于轉基因純合株系的篩選,本研究在T3代獲得轉基因純合株系。T3代10個轉基因株系中,來自T2-9的株系的aroA-M12基因表達量最低,平均值僅為61 ng/g,來自T2-49的株系的aroA-M12基因表達量最高,平均值為88 ng/g,而來自T2-8、T2-23和T2-37的3個株系的蛋白表達量平均值分別82.6、80.4和85.2 ng/g,單株轉化材料中目的基因表達量介于40.5-112.6 ng/g 葉片鮮重之間,存在顯著差異,這可能與植株個體差異有關。

        表2 T2代轉基因植株中目的基因遺傳分離分析和χ2檢驗結果

        結合田間除草劑耐性調查結果,各個轉化株系的除草劑耐性與該株系中目的基因表達水平有關,如T2-8、T2-23、T2-37和T2-49四個株系的除草劑耐性值均為高耐水平,其目的基因表達水平也最高,而除草劑耐性較低的T2-9株系,其蛋白表達水平也最低。田間噴霧除草劑(連續(xù)兩次)試驗結果(圖4)顯示,轉化株系的除草劑耐受性可達0.25%-0.5%左右。此外,根據aroA-M12基因的分子檢測及其田間除草劑耐性鑒定結果,證實已檢測轉化植株及其后代株系中不存在基因沉默現(xiàn)象,但存在為數(shù)較少的基因丟失現(xiàn)象,如在對T3代株系的檢測中,偶爾會發(fā)現(xiàn)某個株系的一些植株丟失了目的基因,在后續(xù)的研究中將對基因丟失現(xiàn)象和原因作進一步探討。

        表3 T2代、T3代轉基因植株PCR檢測結果

        圖4 噴霧除草劑后田間轉基因植株的部分照片

        F1代植株取樣進行PCR擴增、Southern雜交和ELISA分析,所有檢測結果均為陽性,證明F1代植株含有aroA-M12基因,進而證明目的基因可以通過雜交形式(本研究中轉基因植株作為父本)傳遞給下一代植株。

        2.4 轉化植株的草甘膦耐性

        T3代轉基因植株和對照植株噴霧除草劑的調查顯示,10個轉基因株系中,高耐株系4個,耐性株系5個,低耐株系1個,不耐株系0個(表4)。所有對照植株在噴霧20 d后全部死亡。證明aroA-M12基因的導入和表達提高了轉基因植株的除草劑耐性。

        通過對來自同一轉化事件后代不同植株對草甘膦的耐性及其該植株中目的基因表達量的相關分析,結果顯示除草劑耐性性狀與目的基因表達量間的相關性達極顯著水平,相關系數(shù)為r = 0.942 3(P<0.01),即aroA-M12基因表達量與轉基因植株的除草劑耐性呈極顯著相關。此外對于來自不同轉化事件的轉基因材料做相同的分析,結果顯示各事件后代植株的草甘膦耐性平均值與其株系中目的基因表達量的平均值間的相關系數(shù)r 介于0.841 6-0.961 4(P<0.05),也呈顯著相關。

        通過分析檢測和田間調查篩選,最終得到4個轉基因純合株系,T2-8、T2-23、T2-37和T2-49,其除草劑耐性平均值高于80 ng/g葉片鮮重,但得到的這4個T3代轉基因純合株系中,我們發(fā)現(xiàn)仍有一些植株中目的基因的表達量在50 ng/g葉片鮮重或以下,這些植株對草甘膦除草劑的耐受性也偏低,植株有不同程度的除草劑損傷,全面接受這些材料會在今后的生產中引發(fā)因除草劑的傷害而影響作物產量,因此在轉基因純合株系中篩選目的基因表達量較高的植株并進一步研究其后代中目的基因表達水平至關重要,以期得到目的基因表達量較高的轉基因純合株系。本研究證明,當目的基因表達量高于70 ng/g鮮重時,噴灑0.25%的除草劑Roundup(噴灑兩次)對植株不造成傷害。

        3 討論

        本實驗利用耐草甘膦基因轉化玉米自交系獲得轉基因植株,對轉基因植株進行PCR 擴增、Southern blot雜交分析的結果證明,目的基因確已導入到玉米自交系昌7-2中。對轉基因植株進行ELISA分析的結果表明,目的基因在轉基因植株中得到了表達。田間噴霧草甘膦鑒定結果表明,轉基因植株對草甘膦具有明顯的耐性;不同轉化單株之間耐性的強弱有所不同。轉基因植株生物耐性鑒定結果說明,由aroA-M12基因編碼的EPSPS蛋白在植物中的表達,確實能使轉基因植物具有耐草甘膦功能。最終獲得了4個高耐草甘膦的轉基因株系。為進一步選育具有耐除草劑功能的玉米新品種奠定了良好的基礎。

        有關目的基因在轉化植物中的遺傳規(guī)律,Peng等[26]將gusA和neo基因導入水稻,其R1代中這兩個基因的表型分離系數(shù)為3∶1,同孟德爾的單個顯性基因的分離規(guī)律一致;Cheng等[27]研究認為外源基因在轉基因小麥中呈現(xiàn)3:1分離;本研究結果也證明,外源基因在F2代轉基因玉米中表現(xiàn)出3∶1的遺傳分離規(guī)律。不過也有研究認為,外源基因在轉化植物中表現(xiàn)出背離3∶1的分離現(xiàn)象[28],證明外源基因在轉化體中的整合方式和整合位點是很復雜的,多拷貝、多位點整合的轉化體是很難存在和應用的,因此植物轉基因研究除了研究轉化技術和基因外,提高目的基因以單拷貝、單位點整合到植物染色體組的轉化方法的研究也是十分必要的。幸運的是,目前轉基因研究證明大部分轉化植物的遺傳分離是符合孟德爾的遺傳分離規(guī)律的。關于外源基因的世代遺傳,本研究和其它研究[29-31]已證明目的基因是可以穩(wěn)定遺傳給下一代的,目的基因多以單拷貝、單位點形式插入受體基因組中;本研究與其它研究[32]還證明轉化體中的外源基因可以通過雜交傳遞給下一代。

        表4 T3代植株除草劑耐性性狀與目的基因表達量相關性分析

        不過,在隨后的分析中發(fā)現(xiàn),同一轉化事件內不同株系間目的基因表達量以及對除草劑耐性的差異主要起因于植株個體的差異;不同轉化事件間相關系數(shù)值、目的基因表達量以及其植株的除草劑耐性值的差異,除不同轉化事件的差異外,也與植株個體的差異有關,而植株個體的差異又多表現(xiàn)在轉化過程中,目的基因插入的拷貝數(shù)和位點的差異,顯然目的基因拷貝數(shù)的多少、插入位點的效應,都影響著目的基因在轉化體中的表達水平,特別是目的基因插入的拷貝數(shù)影響較大。本研究雖然通過Southern分析淘汰了部分多拷貝、多位點插入的轉化事件,但仍無法精準地了解目的基因的插入拷貝數(shù),其結果是對這些轉化事件的分析的準確性以及轉化材料的遺傳穩(wěn)定性均會產生影響,所以需進一步對目的基因插入的拷貝數(shù)作較精準的分析。對目的基因表達量與目標性狀間的相關性分析方法,尤其是有關轉基因植株中耐草甘膦基因的表達量與植株的草甘膦耐性性狀間的相關分析報道的還很少,如何將基因表達量與目標性轉相互對應作更科學合理的分析還值得深思。此處需要注意的是,雖然對照植株最后全部死亡,但在調查期間仍有受除草劑傷害的存活植株,表中所列數(shù)據為尚存活植株的數(shù)據??傊瑢Σ煌D化事件材料應分別對待,并非轉化成功的事件就一定是實用的轉化事件;雖然T2代后,各轉化事件的后代株系的陽性結果率、除草劑耐性、目的基因表達量等雖存在一定差異,但總趨勢是一致的,不影響對結果的分析。

        花粉介導法[23]、農桿菌介導法與基因槍轟擊法結合[33]等在植物遺傳轉化中的作用,在我國已有一定的研究基礎,前者操作簡單、轉化率高,具有我國自主知識產權,缺點重復性差,后者是以農桿菌介導的遺傳轉化為基礎,外源基因在植物細胞中的拷貝數(shù)較低,遺傳穩(wěn)定性好,同時該方法吸收了基因槍轟擊法受體類型廣泛、可控性好等優(yōu)點。在具有廣闊領域和美好前景的植物基因工程研究中,探討簡潔、快速、高效的轉化方法仍是決定植物基因工程研究進展快慢的關鍵所在。

        本研究中所調查的轉基因株系(植株)草甘膦耐性是在噴霧除草劑條件下進行的,今后的研究中應將除草劑濃度設計成一個梯度,對同一株系材料分別噴霧不同濃度的除草劑,得出轉基因玉米對草甘膦除草劑的最高耐受值或各株系轉基因材料的除草劑耐受范圍;同時對研究過程中的基因丟失現(xiàn)象、目的基因表達量的高低都應做進一步分析,以確保目的基因在轉化材料中的遺傳穩(wěn)定性并減少因重復篩選而增大的工作量;另外對于轉基因作物中目的基因的安全性評價試驗、轉基因對轉化個體或群體農藝性狀的影響等需做更深入的探討,為轉基因玉米產業(yè)化提供安全、可靠的育種資源。

        4 結論

        利用花粉介導法將耐草甘膦基因aroA-M12導入玉米,可以獲得轉基因植株,并且提高了轉化植株的除草劑耐性;轉化植株后代可以耐受0.25%-0.5%濃度的草甘膦除草劑,目的基因表達量達到70 ng/g葉片鮮重時,噴施除草劑的植株不受損傷,除草劑耐性性狀與目的基因表達量間的相關性達極顯著水平,相關系數(shù)為r=0.942 3(P<0.01)。通過篩選最終獲得T2-8、T2-23、T2-37和T2-49四個轉基因純合株系。

        [1]張林生, 俞嘉寧, 曹讓, 等. 轉基因植物在農業(yè)上的應用[J].西北植物學報, 2002, 22(4):1011-1017.

        [2]Gianessi LP. Economic and herbicide use impacts of glyphosateresistant crops[J]. Pest Manag Sci, 2005, 61(3):241-245.

        [3]Comai L, Sen LC, Stalker DM. An alter aroA gene product confer resistance to the herbicide glyphosate[J]. Science, 1983, 221(4608):370-371.

        [4]Comai L, Facciotti D, Hiatt WR, et al. Expression in plant of a mutant aroA gene from Salmonella typhimurium confer tolerance to glyphosate[J]. Nature, 1985, 317(6039):741-744.

        [5]Duncan K, Lewendon A, Coggins JR. Mutant EPSP synthase genes from tomato, Arabidopsis thaliana, Brassica napus, Glycine max, E. coli K-12 confer tolerance to glyphosate[J]. FEBS Lett, 1984, 170:59-63.

        [6]Padgette SR, Kolacz KH, Dekanny X, et al. Development, identification, and characterization of a glyphosate-tolerant soybean line[J]. Crop Sci, 1995, 35(5):1451-1461.

        [7]Nida DL, Kolacz KH, Buehler RE, et al. Glyphosate-tolerant cotton:Gentic characterization and protein expression[J]. J Agr Food Chem, 1996, 44(7):1960-1966.

        [8]敬凌霞. 抗CP4EPSPS單克隆抗體的制備和生物學特性的研究[D]. 重慶:重慶醫(yī)科大學, 2007.

        [9]陳海偉, 張魯華, 陳德富, 等. 除草劑及抗除草劑作物的應用現(xiàn)狀與展望[J]. 生物技術通報, 2012(10):35-40.

        [10]Sidhu RS, Hammond BG, Fuchs RL, et al. Glyphosate tolerant corn:the composition and feeding value of grain from glyphosatetolerant corn is equivalent to that of conventional corn(Zea mays)[J]. J Agric Food Chem, 2000, 48(6):2305-2312.

        [11]Howe AR, Gasser CS, Brown SM, et al. Glyphosate as a selective agent for the production of fertile transgenic maize(Zea mays L. )plant[J]. Mol Breeding, 2002, 10(3):153-164.

        [12]Bonny S. Genetically modified glyphosate-tolerant soybean in the USA:adoption factors, impacts and prospects. A review[J]. Agronomy for Sustainable Development, 2008, 28(1):21-32.

        [13]Joseph TD, Edward CL, David AM. Effects of landscape composition on spread of an herbicide-resistant weed[J]. Landscape Ecology, 2009, 24(6):735-747.

        [14]Nicola S, Luigi D. Surveying the occurrence of subspontaneous glyphosate-tolerant genetically engineered Brassica napus L.(Brassicaceae)along Swiss railways[J]. Environmental Sciences Europe, 2012, 24:23

        [15] Nehl SR, Kraus J, Matzk A, et al. Transgenic varieties:sugarbeet[J]. Sugar Tech, 2010, 12(3-4):194-200 .

        [16]Jones JD, Golds Brough PB, Weller SC. Stability and expression of amplified EPSPS genes in glyphosate resistant tobacco cells and plantlets[J]. Plant Cell Reports, 1996, 15(6):431-436.

        [17] Zhou H, Arroe Smith JW, Fromm ME, et al. Glyphosate -tolerant CP4 and GOX genes as a selectable marker in wheat transformation[J]. Plant Cell Rep, 1995, 15(3-4):159-163.

        [18] Bair DR, Batson W, Watson C, et al. Evaluation of transgenic cotton varieties and a glyphosate application on seedling disease incidence[J]. Mycopathologia, 2004, 158(3):363-368.

        [19]謝龍旭, 徐培林, 聶燕芳, 等. 抗草甘膦抗蟲植物表達載體的構建及其轉基因煙草的分析[J]. 生物工程學報, 2003, 19(5):545-550.

        [20]Tong XH, Daud MK, Sun YQ, et al. Physiological and molecular mechanisms of glyphosate tolerance in vitro selected cotton mutant[J]. Pesticide Biochemistry and Physiology, 2009, 94(2 /3):100-106

        [21]余桂榮, 杜文平, 宋軍, 等. 玉米胚性愈傷組織的遺傳轉化及耐草甘膦植株再生[J]. 中國農業(yè)科技導報, 2010, 12(4):108-113.

        [22]赫福霞, 郎志宏, 陸偉, 等. 以耐草甘膦2mG2-epsps基因為選擇標記的玉米轉化體系的建立[J]. 生物技術通報, 2008(5):93-97.

        [23]孫毅, 崔貴梅, 郝曜山, 等. 超聲波輔助花粉介導植物轉基因方法:中國ZL 201110041484. 0[P]. 2011-2-18.

        [24] Sambroo KJ, Fritsch EF, Maniatis T. Molecular Cloning:ALaboratory Manual[M]. 2nd ed. New York:Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989.

        [25] 王關林, 方宏筠. 植物基因工程[M]. 第2版. 北京:科學出版社, 2005.

        [26]Peng JY, Lister RL, Hodges TK, et al. Inheritance of gusA and neo genes in transgenic rice[J]. Plant Mol Biol, 1995, 27(1):91-104.

        [27]Cheng M, Joyce EF, Pang SZ, et al. Genetic transformation of wheat mediated by Agrobacterium tumefaciens[J]. Plant Physiol, 1997, 115(3):971-980.

        [28]Gao SQ, Xu HJ, Cheng XG, et al. Improvement of wheat drought and salt tolerance by expression of a stress-inducible transcription factor GmDREB of soybean(Glycine max)[J]. Chin Sci Bull, 2005, 50(23):2714-2723.

        [29]Sangtong V, Moran DL, Chik Wamba R, et al. Expression and inheritance of the wheat Glu-1DX5 gene in transgenic maize[J]. Theor Appl Genet, 2002, 105(6/7):937-945.

        [30]Eva S, Sarah W, Duncan K, et al. Molecular characteristics of transgenic wheat and the effect on transgene expression[J]. Transgenic Research, 1998, 7(6):463-471.

        [31] Barro F, Martin A, CabrerAA. Transgene integration and chromosome alterations in two transgenic lines of tritordeum[J]. Chromosome Research, 2003, 11(6):565-572.

        [32]施利利, 王松文, 張欣, 等. 抗除草劑基因atzA在轉基因水稻中的遺傳[J]. 南開大學學報:自然科學版, 2008, 41(6):99-102.

        [33]耿立召, 劉傳亮, 李付廣. 農桿菌介導法與基因槍轟擊法結合在植物遺傳轉化上的應用[J]. 西北植物學報, 2005, 25(1):205-210.

        (責任編輯 李楠)

        Development of Transgenic Maize Plants Tolerant to Glyphosate via Pollen-mediated Transformation and Their Glyphosate Tolerance

        YANG Hui-zhen1,2REN Zhi-qiang2XIAO Jian-hong2BU Hua-hu2LIU Hui-min2
        (1. Crop Science Institute,Shanxi Academy of Agricultural Science,Taiyuan 030031;2. Key Laboratory of Crop Gene Resources and Germplasm Enhancement on the Loess Plateau of Ministry of Agriculture,Taiyuan 030031)

        In order to develop transgenic maize plants tolerant to glyphosate and further study their herbicide tolerance and the genetic characteristics of exogenous gene in transgenic plants,plasmid pBI101-aroA-M12 harboring aroA-M12 gene was transformed into maize inbred Chang ‘7-2’ plants by pollen-mediated transformation method. Fifty-four transgenic plants were obtained by PCR detection and Southern blot analysis. The detection results of molecular analysis and bioassay in the field showed that target aroA-M12 gene was integrated into the genome of transgenic plants and could stably inherit to next generation. Moreover,the aroA-M12 gene conferred the glyphosate-tolerance to transgenic plants. The result of genetic rule of target gene in transgenic plants suggested that the target gene was segregated according to the ratio of 3∶1 in T2generation transgenic plants(lines)and it was consistent with the Mendel law of single-factor heredity. The results of ELISA analysis and protein concentration determination of transgenic plants confirmed that the target gene was expressed in transgenic plants,and the protein amount of gene expression were 40.5-112.6 ng/g leaf fresh weight,there was a significant correlation between protein amount of expression of each transgenic plant and corresponding glyphosate-tolerance of that plant,correlation coefficients r = 0.942 3(P<0.01). Ultimately,4 pure lines of transgene with high glyphosate-tolerance were obtained from this experiment.

        maize;aroA-M12 gene;glyphosate-tolerance;pollen-mediated transformation;genetic analysis

        10.13560/j.cnki.biotech.bull.1985.2016.11.018

        2016-06-01

        國家轉基因生物新品種培育重大專項(2014ZX08003001-002-003,2016ZX08003001-002-003),山西省科技攻關項目(201603D221002-3)

        楊慧珍,女,學士,副研究員,研究方向 :玉米遺傳育種 ;E-mail :18636626922@163.com

        猜你喜歡
        耐性草甘膦株系
        過表達NtMYB4a基因增強煙草抗旱能力
        沒耐性的小猴
        快樂語文(2020年26期)2020-10-16 03:37:00
        法國擬2020年廢除草甘膦的使用
        嫦娥5號返回式試驗衛(wèi)星小麥育種材料研究進展情況
        衢州椪柑變異株系—黃皮椪柑相關特性研究
        浙江柑橘(2016年1期)2016-03-11 20:12:31
        草甘膦生產廢水治理技術探討
        草甘膦 三季度有望吹響反攻號角
        營銷界(2015年23期)2015-02-28 22:06:12
        農桿菌介導快速、高效獲得轉基因煙草純合株系
        水稻苗期不同階段與低氮耐性相關的QTL分析
        亚洲色在线v中文字幕| 亚洲精品字幕在线观看| 亚洲国产精品久久久久秋霞影院 | 国产自拍成人在线免费视频| 亚洲国产线茬精品成av| 国产韩国一区二区三区| 国产在线av一区二区| 精品熟人妻一区二区三区四区不卡| 亚洲色成人网站www永久| 色吊丝中文字幕| 国产亚洲精品第一综合麻豆| 国产高清国内精品福利99久久| 国产一区二区三区白浆在线观看| 成人全部免费的a毛片在线看 | 少妇又紧又爽丰满在线视频| 精品国产午夜肉伦伦影院| 老熟妇乱子伦牲交视频| 成年女人a毛片免费视频| 欧美日韩一卡2卡三卡4卡 乱码欧美孕交| 久久久精品2019中文字幕之3| 亚洲一区二区三区偷拍自拍| 日韩美腿丝袜三区四区| 少妇高潮惨叫久久久久电影69| 少妇人妻陈艳和黑人教练| 免费毛片视频网站| 日本精品国产1区2区3区| 中文国产乱码在线人妻一区二区 | 中文字幕乱码熟女人妻水蜜桃| 国产精品乱码在线观看| 亚洲国产cao| 日韩一二三四区免费观看| av网站大全免费在线观看| 亚洲国产精品一区二区毛片| 免费看又色又爽又黄的国产软件| 天下第二社区在线视频| 免费av片在线观看网站| 国产一级r片内射免费视频| 免费在线亚洲视频观看| 久久综合香蕉国产蜜臀av| 久久av高潮av无码av喷吹| 91久久国产综合精品|