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        RP-HPLC法同時(shí)測定石榴皮和石榴汁中鞣花酸的含量

        2016-12-19 01:37:34范高福付恩桃劉修樹

        范高福,付恩桃,湯 潔,劉修樹,王 瑋

        (1.合肥職業(yè)技術(shù)學(xué)院 生物應(yīng)用技術(shù)系,安徽 合肥 238000;2.合肥市食品藥品監(jiān)督檢驗(yàn)所,安徽 合肥 238000)

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        RP-HPLC法同時(shí)測定石榴皮和石榴汁中鞣花酸的含量

        范高福1,付恩桃1,湯 潔1,劉修樹1,王 瑋2

        (1.合肥職業(yè)技術(shù)學(xué)院 生物應(yīng)用技術(shù)系,安徽 合肥 238000;2.合肥市食品藥品監(jiān)督檢驗(yàn)所,安徽 合肥 238000)

        目的:建立同時(shí)檢測石榴皮、汁中鞣花酸的含量測定方法。方法:采用反相高效液相色譜法,Hypersil C18 (250 mm×4.6 mm,5μm)色譜柱,以乙腈-0.3% TFA(20 ∶80)為流動相,梯度洗脫,流速1.0 mL/min,柱溫30 ℃,檢測波長254 nm。結(jié)果:鞣花酸0.1048~20.96 μg/mL之間線性關(guān)系良好(r=0.9999),平均加樣回收率為99.55%(RSD=1.44%,n=9)。結(jié)論:此方法靈敏快速、準(zhǔn)確易行,可用于石榴皮、汁中鞣花酸含量的同時(shí)檢測。

        鞣花酸;石榴皮;石榴汁;反相高效液相色譜法;含量測定

        石榴(PunicagranatumL.),別名安石榴,為石榴科石榴屬落葉灌木或小喬木,具有藥食同源價(jià)值,可以離體種植培養(yǎng)[1],主要分布于安徽懷遠(yuǎn)、山東棗莊、陜西臨潼、四川會理、云南蒙自、新疆葉城等地區(qū)。石榴皮和石榴汁分別為石榴的干燥果皮和新鮮果汁,均含有豐富的多酚類、類黃酮、花色素等生物活性物質(zhì)[2],其中多酚類鞣花酸(ellagic acid, EA)成分研究較多,呈多酚二內(nèi)酯結(jié)構(gòu)特征,是沒食子酸的二聚衍生物,具有抗氧化、抗腫瘤、抗炎及抗菌等多種藥理作用[3]。據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道以石榴皮提取物測定鞣花酸含量方法較多,而以石榴汁為原料測定少見,未見對安徽地區(qū)石榴皮、汁中鞣花酸含量同時(shí)測定方法具體報(bào)道,本實(shí)驗(yàn)采用反相高效液相色譜法(RP-HPLC),建立石榴皮、汁提取物中鞣花酸含量同時(shí)測定方法,為安徽本地石榴提取物的深加工研究與開發(fā)提供參考。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        石榴:安徽懷遠(yuǎn)(購自蚌埠市石榴水果批發(fā)市場,經(jīng)安徽中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院彭華勝教授鑒定為石榴科石榴屬石榴);甲醇、乙腈為色譜純;鞣花酸對照品:純度≥95%(美國Sigma,批號:2075083);Milli-Q超純水,其他試劑均為分析純;石榴汁、皮提取物,本實(shí)驗(yàn)室自制。

        1.2 儀器與設(shè)備

        Thermo-U3000 UHPLC系統(tǒng):配有TCC-3000RS紫外檢測器及DAD-3000二極管陣列檢測器,美國賽默飛公司;Milli-Q Biocel超純水系統(tǒng);KQ-2200E型超聲波清洗器(昆山舒美超聲儀器有限公司);RE-52AA型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海楚柏實(shí)驗(yàn)室設(shè)備有限公司);FA1004型電子天平(天津天馬),HWS24型電熱恒溫水浴鍋(上海一恒科技有限公司),SHB-III型循環(huán)水式多用真空泵(鄭州長城科教儀器有限公司)。

        1.3 方法

        1.3.1 色譜條件 色譜柱:Hypersil C18(250 mm×4.6 mm,5 μm) ;流動相:乙腈:0.3%三氟乙酸(Trifluoroacetic acid ,TFA)(20 ∶80);柱溫30 ℃;流速1.0 mL/min;進(jìn)樣量10 μL;檢測波長254 nm。在此色譜條件下,鞣花酸特征峰峰型良好,其色譜圖如圖1所示。

        圖1 HPLC色譜圖

        1.3.2 對照品溶液的制備 精密稱定鞣花酸對照品10.48 mg,置于100 mL容量瓶中,用甲醇溶解并定容至刻度,制成濃度為0.1048 mg/mL的對照品儲備液[4]。

        1.3.3 供試品石榴汁溶液的制備[5]稱取新鮮石榴,剝皮去籽榨汁,4000 r/min離心除去懸浮物,用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀濃縮體積約至原來1/10,取10 g濃縮物,再用酸化甲醇(含鹽酸1.2 mol/L和0.2 g維生素C)50 mL超聲1 h,溶解后10000 r/min離心5 min后再取上清液,備用。酸化甲醇加入量=W/2*10(W為濃縮物質(zhì)量)。

        1.3.4 供試品石榴皮溶液的制備 將石榴皮在30 ℃晾干,用粉碎機(jī)打成粉末,精密稱取1.005 g,加80%(φ)丙酮100 mL浸漬約6 h,超聲(功率500 W,頻率40kHz)處理1 h,濾過,殘?jiān)?0%(φ)丙酮30 mL洗脫,合并濾液和洗滌液,用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀濃縮至干燥物,加50%酸化甲醇溶液100 mL(含1. 2 mol /L的鹽酸和0. 2 g維生素C),90 ℃回流,再用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀濃縮至干燥物,用甲醇溶解,定容100 mL 容量瓶中[6-7]。精密吸取10 mL于50 mL容量瓶中,用甲醇定容,0.45 μm的微孔濾膜濾過,濾液作為供試品溶液。

        1.3.5 檢測波長的選擇 對照品溶液采用二極管陣列檢測器進(jìn)行掃描,吸收圖譜見圖2。結(jié)果表明在254 nm處鞣花酸有最大吸收,無干擾峰出現(xiàn),且分離度較好。最終確定254 nm作為檢測波長[8-9]。

        圖2 鞣花酸對照品溶液二極管陣列掃描圖

        2 結(jié)果與分析

        2.1 線性關(guān)系考察

        精密吸取鞣花酸對照品溶液適量,稀釋后得濃度為0.1048、0.524、1.048、2.096、5.240、10.48、20.96 μg/mL的系列標(biāo)準(zhǔn)溶液,照“1.3.1”項(xiàng)下色譜條件注入高效液相色譜儀,記錄色譜圖,以峰面積為橫坐標(biāo)(X),系列標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度為縱坐標(biāo)(Y),繪制鞣花酸的標(biāo)準(zhǔn)曲線,鞣花酸的回歸方程為:Y=0.6285X+0.0468,r=0.9999(n=7),線性范圍為0.1048~20.96 μg/mL。

        2.2 精密度試驗(yàn)

        取濃度為1.048 μg/mL的對照品溶液,連續(xù)進(jìn)樣6次,每次進(jìn)樣量為10 μL,得鞣花酸的峰面積的RSD 0.28%,說明儀器精密度良好。

        2.3 穩(wěn)定性試驗(yàn)

        取石榴汁樣品溶液按上述色譜條件分別在0、1、2、4、6、8、12、24 h進(jìn)樣,進(jìn)樣量為10 μL,計(jì)算得鞣花酸的峰面積的RSD 0.41%,說明樣品在24 h內(nèi)穩(wěn)定。

        2.4 重復(fù)性試驗(yàn)

        取石榴汁樣品平行制取供試品溶液6份并分別進(jìn)樣,進(jìn)樣量為10 μL,鞣花酸峰面積的RSD 1.02%,重復(fù)性良好。

        2.5 加樣回收率試驗(yàn)

        取已知質(zhì)量濃度(1.048 μg/mL)的石榴汁10 mL,共9份,按照低、中、高三個濃度分別加入適量鞣花酸對照品溶液,按1.3.3項(xiàng)下方法制備。并進(jìn)樣分析,計(jì)算鞣花酸的平均回收率為99.55%(見表1),RSD 1.44%。

        表1 鞣花酸加樣回收率(n=9)

        2.6 樣品含量測定

        取安徽懷遠(yuǎn)產(chǎn)地石榴2種,分別為白石榴(A品種)和紅石榴(B品種),按照“1.3.3和1.3.4”項(xiàng)下制備供試品石榴汁、皮溶液,按外標(biāo)法測定鞣花酸的含量,結(jié)果見表2。

        表2 石榴汁、皮中鞣花酸的含量(n=3)

        3 結(jié)論與討論

        采用RP-HPLC法同時(shí)測定安徽石榴皮、汁中鞣花酸含量時(shí),考察了樣品提取過程及樣品不同部位對提取物含量的影響。通過酸化提取液可加速提取物石榴鞣花酸的浸出,因提取物石榴鞣花酸具有多酚結(jié)構(gòu),易氧化,加入維生素C可阻礙提取過程中石榴鞣花酸的氧化變質(zhì)。通過對石榴汁、皮的相同處理方法,結(jié)果表明石榴皮部位鞣花酸含量是石榴汁部位約3.5~6倍,白石榴品種鞣花酸含量是紅石榴品種約1倍。另外,在乙醇、丙酮、甲醇不同溶劑對石榴皮、汁中石榴鞣花酸提取物溶解度對比,結(jié)果發(fā)現(xiàn)甲醇中的溶解度較好,且干擾峰較少,可以滿足樣品制備的需要,因此選擇甲醇作為樣品制備的溶劑。

        預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明該樣品以乙腈-0.2%TFA作為流動相有可能實(shí)現(xiàn)預(yù)期的色譜峰分離,并在此流動相系統(tǒng)基礎(chǔ)上進(jìn)一步進(jìn)行比例篩選,最終確定以乙腈-0.3%TFA(20 ∶80)為流動相體系時(shí),樣品峰和雜質(zhì)峰能夠?qū)崿F(xiàn)較好的分離,且分離度大于1.5。此外,考察了流動相的不同pH對峰形的影響,分別選擇加入0.1%、0.2%、0.3%及0.4%的TFA的出峰情況,結(jié)合峰的分離和峰形,最終選擇加入0.3%的TFA作為流動相。

        本實(shí)驗(yàn)建立了同時(shí)測定石榴皮、汁中鞣花酸含量的反相高效液相色譜(RP-HPLC)方法,經(jīng)方法學(xué)考察,該方法符合《中國藥典(2015年版)》中有關(guān)質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)建立的要求[10],具有靈敏快速、準(zhǔn)確易行、重現(xiàn)性好等優(yōu)點(diǎn),可用于準(zhǔn)確測定石榴皮、汁中鞣花酸的含量。

        本課題組收集了安徽地區(qū)主產(chǎn)地懷遠(yuǎn)的石榴樣品,并對其石榴皮、汁中鞣花酸含量進(jìn)行了測定,結(jié)果表明石榴皮所含鞣花酸含量較石榴汁中明顯高,白石榴品種所含鞣花酸含量較紅石榴品種高,提示以石榴皮為藥材有一定的合理性,并可作為石榴中鞣花酸質(zhì)量控制提供參考。此外,目前石榴主要作為水果食用,加工主要是取石榴瓤榨汁為主,其石榴皮多作為廢物處理,為石榴皮變廢為寶,回收再利用提供依據(jù)。

        [1]彭麗萍,郜海蓮.防止軟籽石榴外植體褐變的研究[J].安徽科技學(xué)院學(xué)報(bào),2011,25(2):28-31.

        [2]李海霞,王釗,劉延澤.石榴科植物化學(xué)成分及藥理活性研究進(jìn)展[J].中草藥,2002,33(8):765-766.

        [3]馮立娟,陶吉寒,尹燕雷,等.石榴功能物質(zhì)鞣花酸研究進(jìn)展[J].食品科學(xué),2014,35(23):325-330.[4]唐婧,鄭勝彪,張雪梅,等.超聲提取-高效液相色譜測定滁菊中的木犀草素[J].安徽科技學(xué)院學(xué)報(bào),2010,24(6):48-51.

        [5]彭海燕,陳祥貴,劉振平,等.RP-HPLC法測定石榴汁中鞣花酸的含量[J].食品科技,2012,37(4):283-285.

        [6]丁楠,高曉黎.HPLC法測定石榴皮提取物中鞣花酸的含量[J].新疆醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2012,35(6):770-772.

        [7]周本宏,吳振華,劉春,等.高效液相色譜法測定石榴皮中鞣花酸的含量[J].廣東藥學(xué)院學(xué)報(bào),2005,21(6):693-694.

        [8]劉振平,陳祥貴,彭海燕,等.RP-HPLC法同時(shí)測定石榴皮中4種多酚類成分的含量[J].中國藥房,2013,24(3):238-240.

        [9]陳孝娟,顧政一,徐芳,等.不同產(chǎn)地的石榴皮總多酚的含量測定[J].時(shí)珍國醫(yī)國藥,2011,22(3):541-543.

        [10]國家藥典委員會編.中華人民共和國藥典(四部)[S].2015年版,北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2015:59-61.

        Content Simultaneous Determination of Ellagic Acid in Pomegranate Peel and Juice by RP-HPLC

        FAN Gao-fu1, FU En-tao1, TANG Jie1, LIU Xiu-shu1,WANG Wei2

        (1.Department of Biotechnology Applications, Hefei Vocational and Technical College, Hefei 238000, China;2. Hefei Institute for Food and Drug Control, Hefei 238000, China)

        Objective: To estabish a method for the content determination of ellagic acid in pomegranate peel and juice. Methods: RP-HPLC method was used. The determination was carried out on Hypersil C18(250 mm×4.6 mm, 5 μm)with mobile phase consisted of acetonitrile-0.3%TFA(20 ∶80)with gradient elution at a flow rate of 1.0 mL/min. The column temperature was 30 ℃. The detection wave length of ellagic acid was at 254 nm. Results: The line range was 0.1048~20.96 μg/mL for ellagic acid(r=0.9999). The average recoveries were 99.55%(RSD=1.44%, n=9). Conclusion: The method is sensitive and rapid, accurate and feasible for the content determination of ellagic acid in pomegranate peel and juice.

        Ellagic acid;Pomegranate peel; Pomegranate juice; RP-HPLC; Content determination

        (責(zé)任編輯:馬世堂)

        2016-02-20

        安徽省高校自然基金研究重點(diǎn)項(xiàng)目(KJ2015A440, KJ2016A616); 安徽省教育廳重點(diǎn)質(zhì)量工程項(xiàng)目(2014sxzx047)。

        范高福(1982-), 男, 安徽省全椒縣人,碩士, 講師, 主要從事藥物制劑研究。

        S132

        A

        1673-8772(2016)05-0067-04

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