尚朝施楊李文娟周子睿施志儀
(1. 上海海洋大學(xué)水產(chǎn)與生命學(xué)院 農(nóng)業(yè)部淡水水產(chǎn)種質(zhì)資源重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海 201306;2. 上海市食品研究所,上海 200235)
不同Ca2+濃度養(yǎng)殖環(huán)境下三角帆蚌外套膜和內(nèi)臟團(tuán)組織鈣調(diào)蛋白基因的表達(dá)
尚朝1施楊2李文娟1周子睿1施志儀1
(1. 上海海洋大學(xué)水產(chǎn)與生命學(xué)院 農(nóng)業(yè)部淡水水產(chǎn)種質(zhì)資源重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海 201306;2. 上海市食品研究所,上海 200235)
為了探索鈣調(diào)蛋白基因(CaM)在淡水貝類珍珠形成中的作用,研究0、0.5、1.25、2和3 mmol/L 5個(gè)不同Ca2+濃度水環(huán)境下養(yǎng)殖三角帆蚌,并在插核后的0、20、50、90和120 d對(duì)外套膜和內(nèi)臟團(tuán)組織采樣,采用熒光定量方法檢測(cè)組織CaM表達(dá)量。結(jié)果表明:(1)在不同Ca2+濃度中,CaM基因外套膜和內(nèi)臟團(tuán)組織在0 mmol/L Ca2+濃度下始終處于過(guò)低表達(dá)水平;0.5 mmol/L濃度下先降低后升高并維持穩(wěn)定;1.25 mmol/L濃度下在20 d內(nèi)臟團(tuán)出現(xiàn)降低,之后升高至0 d水平并保持穩(wěn)定;在2 mmol/L濃度下表達(dá)量在20 d時(shí)顯著上升達(dá)到各濃度中最高后保持高表達(dá)量狀態(tài);3 mmol/L濃度下在插核后20 d表達(dá)量升高,之后時(shí)期表達(dá)量開始不斷降低(P<0.05)。(2)在插核后不同天數(shù)中,0 d各濃度表達(dá)差異不明顯;之后各天數(shù)的表達(dá)出現(xiàn)明顯差異。(3)相同條件養(yǎng)殖下,內(nèi)臟團(tuán)CaM基因表達(dá)量高于外套膜。研究發(fā)現(xiàn),0.5 mmol/L和2 mmol/L Ca2+濃度會(huì)促進(jìn)CaM基因的表達(dá),但0 mmol/L和3 mmol/L的濃度則會(huì)抑制CaM基因的表達(dá)。內(nèi)臟團(tuán)部位更有利于珍珠的形成。
三角帆蚌;鈣調(diào)蛋白;鈣濃度;內(nèi)臟團(tuán);外套膜
鈣調(diào)蛋白(Calmodulin protein,CaM)是生物體中的多功能調(diào)節(jié)蛋白,廣泛存在于所有的真核細(xì)胞中,是生物體最豐富的Ca2+結(jié)合蛋白,參與調(diào)節(jié)離子轉(zhuǎn)運(yùn)、細(xì)胞鈣代謝、防御反應(yīng)等重要的生理過(guò)程[1]。珍珠由CaCO3和基質(zhì)蛋白等有機(jī)質(zhì)組成,其中絕大多數(shù)成分為CaCO3。珍珠的形成是貝類Ca2+吸收、轉(zhuǎn)運(yùn)、貯存和分泌等代謝活動(dòng)的過(guò)程[2,3],受到CaM等多個(gè)調(diào)節(jié)因子調(diào)控[4,5]。CaM被廣泛認(rèn)為是涉及到珍珠形成的關(guān)鍵蛋白。在合浦珠母貝(Pinctada fucata)中,CaM可以通過(guò)和16 kD珍珠層基質(zhì)蛋白的結(jié)合誘導(dǎo)CaM文石晶體的成核,又可以調(diào)節(jié)棱柱層方解石晶體的的生長(zhǎng),參與貝殼損傷的修復(fù)[6,7]。
三角帆蚌(Hyriopsis cumingii)作為我國(guó)重要的淡水育珠蚌,具有生長(zhǎng)速度快,育珠質(zhì)量好的特點(diǎn)[8]。研究表明,三角帆蚌的外套膜和內(nèi)臟團(tuán)均可作為插核手術(shù)部位進(jìn)行珍珠培育[9]。兩個(gè)部位各具優(yōu)勢(shì),外套膜培育出的珍珠光澤度和圓潤(rùn)度好,而內(nèi)臟團(tuán)分布空間大,更適宜培育大顆粒的珍珠[10]。但是,珍珠形成過(guò)程中重要的鈣代謝相關(guān)基因在育珠部位的表達(dá)差異鮮有報(bào)道。有研究表明,在淡水貝類中,適當(dāng)增加鈣的供應(yīng)能夠提高貝類CaCO3的沉積[11],然而其調(diào)節(jié)機(jī)制仍不清楚。本研究對(duì)三角帆蚌外套膜和內(nèi)臟團(tuán)部位分別進(jìn)行插核手術(shù)后,飼養(yǎng)于不同鈣離子濃度水環(huán)境下,在不同養(yǎng)殖時(shí)期進(jìn)行采樣,探究CaM基因在不同插核部位及不同鈣離子濃度下的表達(dá)變化,旨在探索CaM在淡水貝類珍珠形成中的作用。
1.1 材料
三角帆蚌取自上海海洋大學(xué)濱海養(yǎng)殖基地,選取體長(zhǎng)均一,個(gè)體差異較小的2齡三角帆蚌75只。在實(shí)驗(yàn)室中暫養(yǎng)兩周后,對(duì)三角帆蚌外套膜和內(nèi)臟團(tuán)部位進(jìn)行插核手術(shù)。
插核手術(shù)使用的珠核經(jīng)貝殼打磨而成,手術(shù)之前將珠核進(jìn)行高壓滅菌干燥。清洗實(shí)驗(yàn)蚌外殼泥土和藻類,插核前將其離水放置30-60 min,減弱實(shí)驗(yàn)蚌的活力,降低應(yīng)激反應(yīng)。手術(shù)器械經(jīng)75%酒精消毒后,將蚌置于手術(shù)架上,腹緣朝上。在蚌的偏后端腹緣部位,用開殼器將蚌開口,并用U型架支撐。在每只實(shí)驗(yàn)蚌的外套膜和內(nèi)臟團(tuán)靠近性腺前端部位分別插入直徑為2.5 mm的珠核,并將制作好的外套膜小片貼在珠核上。取下U型架,插核手術(shù)完成。
將插核后的75只實(shí)驗(yàn)組三角帆蚌隨機(jī)分成5組,每組15只。本校公共實(shí)驗(yàn)樓取的去離子水作為水源,使用CaCl2·2H2O作為外源鈣源,采用EDTA滴定法分別將5個(gè)水缸中的Ca2+濃度調(diào)節(jié)至0、0.5、1.25、2和3 mmol/L,其余實(shí)驗(yàn)條件相同。將5組三角帆蚌養(yǎng)于5個(gè)不同濃度的水缸中。每周定期用豆?jié){進(jìn)行投喂,定期調(diào)節(jié)水缸中Ca2+濃度。
三角帆蚌插核后養(yǎng)殖5 h,從每個(gè)濃度中取出3只三角帆蚌,對(duì)其進(jìn)行外套膜和內(nèi)臟團(tuán)插核部位采樣,作為插核后0 d樣品組織。之后在插核后第20、50、90和120天分別取出3只三角帆蚌進(jìn)行外套膜和內(nèi)臟團(tuán)采樣。采樣前將實(shí)驗(yàn)所需器材進(jìn)行滅菌除酶。首先切斷其閉殼肌,快速取出三角帆蚌插核位點(diǎn)處的外套膜和內(nèi)臟團(tuán)組織置于裝有Trizol(Invitrogen,美國(guó))的除酶離心管中,供后續(xù)繼續(xù)進(jìn)行總RNA提取實(shí)驗(yàn)。
1.2 方法
1.2.1 RNA提取、檢測(cè)與反轉(zhuǎn) 將Trizol(Invitrogen,美國(guó))中的各個(gè)時(shí)期不同Ca2+濃度的外套膜和內(nèi)臟團(tuán)組織,按照試劑說(shuō)明書的方法進(jìn)行總RNA提取。提取完畢后,用Nanodrop 2000C(Thermo Fisher Scientific,美國(guó))分光光度儀檢測(cè)其純度和濃度,用 1% 瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)其完整性。
按照M-MLV Reverse Transcriptase(Promega,北京)的操作要求進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄實(shí)驗(yàn)實(shí)驗(yàn),反轉(zhuǎn)錄成cDNA。
1.2.2 基因mRNA水平測(cè)定 根據(jù)NCBI上公布的三角帆蚌β-actin基因(HM045420)序列設(shè)計(jì)定量引物:β-actin F(TCAACCCTAAAGCCAACA)β-actin R(TCTCTACCTGCCAAGTCAA)。CaM基因(HM-483521.1)定量引物:CaM F(TTCAAGGAGGCATTCAGC)和CaM R(TTACCATCGGCATCCACT)。
熒光定量采用CFX96 TouchTMReal-Time PCR Detection System(Bio-Rad,美國(guó))平臺(tái)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。首先進(jìn)行目的基因和內(nèi)參基因(β-actin)的標(biāo)準(zhǔn)曲線實(shí)驗(yàn),然后進(jìn)行目的基因的定量實(shí)驗(yàn)。反應(yīng)
體系為20 μL,包括10 μL 的 2×iQTMSYBR Green Supermix(Bio-Rad,美國(guó))、1.0 μL cDNA、上下游引物各0.5 μL和8.0 μL dH2O。反應(yīng)條件為 95℃預(yù)變性 1 min;95℃ 10 s,60℃ 15 s和72℃ 20 s,采集熒光40次,72℃ 7 min,反應(yīng)終止,添加溶解曲線生成程序:95℃ 到 60℃ 每降 0.5℃(5 s)采集一次熒光。實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,用溶解曲線分析產(chǎn)物專一性,結(jié)果用2-ΔΔCt法進(jìn)行初步數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析。實(shí)驗(yàn)結(jié)果中R值均大于0.9,相應(yīng)的擴(kuò)增效率(E)均在 95%-100%之間。
然后數(shù)據(jù)采用 SPSS 16.0軟件中的One-Way 方差分析(ANOVA),使用Dunnett's T multiple comparisons 進(jìn)行相對(duì)表達(dá)分析,P<0.05 表示存在顯著性差異。
2.1 不同Ca2+濃度養(yǎng)殖下外套膜和內(nèi)臟團(tuán)組織CaM基因的表達(dá)
觀察插核后0、20、50、90和120 d在不同Ca2+濃度養(yǎng)殖下CaM基因表達(dá)的變化,結(jié)果如圖1、圖2和圖3所示。
由圖1可以看出,插核0 d在外套膜中CaM基因表達(dá)量沒(méi)有顯著差異,內(nèi)臟團(tuán)中CaM基因表達(dá)量也沒(méi)有顯著差異(P>0.05)。而內(nèi)臟團(tuán)表達(dá)量明顯高于外套膜表達(dá)量(P<0.05)。插核后20 d,各濃度培養(yǎng)下的表達(dá)量差異明顯。0 mmol/L Ca2+濃度在外套膜和內(nèi)臟團(tuán)中CaM基因表達(dá)量明顯低于其他濃度(P<0.05)。外套膜中,0.5 mmol/L Ca2+濃度與0 mmol/L濃度情況下表達(dá)量無(wú)顯著差異(P>0.05);濃度升高后,在1.25 mmol/L Ca2+濃度時(shí)表達(dá)量明顯高于0.5 mmol/L;2 mmol/L、3 mmol/L Ca2+濃度時(shí)表達(dá)量都高于1.25 mmol/L(P<0.05),但2 mmol/L和3 mmol/L并無(wú)差異(P>0.05)。內(nèi)臟團(tuán)中,0.5 mmol/L Ca2+濃度相比0 mmol/L表達(dá)量已經(jīng)表現(xiàn)出顯著升高;2 mmol/L Ca2+濃度時(shí)CaM基因表達(dá)量高于1.25 mmol/L濃度;而3 mmol/L Ca2+濃度表達(dá)量較2 mmol/L出現(xiàn)明顯下降的情況(P<0.05)。
圖1 插核后0 d(A圖)、20 d(B圖)不同Ca2+濃度對(duì)三角帆蚌外套膜和內(nèi)臟團(tuán)中CaM基因表達(dá)的影響
圖2中,在插核后50 d,0 mmol/L Ca2+濃度時(shí)相較其他濃度CaM基因表達(dá)量明顯最低;而2 mmol/L Ca2+濃度時(shí)相較其他濃度CaM基因表達(dá)量明顯最高(P<0.05)。在外套膜中,0.5 mmol/L、1.25 mmol/L和3 mmol/L Ca2+濃度表達(dá)量互相之間沒(méi)有明顯變化(P>0.05)。而內(nèi)臟團(tuán)中,0.5 mmol/L和3 mmol/L Ca2+濃度時(shí)表達(dá)明顯相差不大,但是明顯低于1.25 mmol/L時(shí)的表達(dá)量(P<0.05)。插核后90 d,在外套膜中表達(dá)趨勢(shì)和插核后50 d相似。在內(nèi)臟團(tuán)中,0.5 mmol/L Ca2+濃度明顯高于0 mmol/L、1.25 mmol/L和3 mmol/L時(shí)的表達(dá)量;而2 mmol/L時(shí)表達(dá)量還是明顯高于其他濃度表達(dá)量(P<0.05)。
圖2 插核后50 d(A)、90 d(B)不同Ca2+濃度對(duì)三角帆蚌外套膜和內(nèi)臟團(tuán)中CaM基因表達(dá)的影響
在圖3中,插核后120 d在外套膜和內(nèi)臟團(tuán)中,0 mmol/L和3 mmol/L Ca2+濃度較1.25 mmol/L CaM基因顯著降低;而2 mmol/L Ca2+濃度表達(dá)量較1.25 mmol/L時(shí)表達(dá)量顯著升高(P<0.05)。在外套膜中,0.5 mmol/L Ca2+濃度表達(dá)量明顯升高(P<0.05),而內(nèi)臟團(tuán)中,0.5 mmol/L Ca2+濃度時(shí)表達(dá)沒(méi)有顯著變化(P>0.05)。
圖3 插核后120 d不同Ca2+濃度對(duì)三角帆蚌外套膜和內(nèi)臟團(tuán)中CaM基因表達(dá)的影響
2.2 不同插核天數(shù)外套膜和內(nèi)臟團(tuán)組織CaM基因的表達(dá)
分析三角帆蚌0、0.5、1.25、2和3 mmol/L Ca2+濃度下培養(yǎng)下,每個(gè)濃度中不同插核后天數(shù)的CaM基因表達(dá)變化,結(jié)果如圖4、圖5和圖6所示。
圖4 0 mmol/L Ca2+濃度(A)、0.5 mmol/L Ca2+濃度(B)在不同插核天數(shù)后三角帆蚌外套膜和內(nèi)臟團(tuán)中CaM基因表達(dá)
如圖4所示,在0 mmol/L Ca2+濃度下培養(yǎng),外套膜和內(nèi)臟團(tuán)中CaM基因表達(dá)量在插核后20 d出現(xiàn)顯著降低,50 d時(shí)相較于20 d表達(dá)量明顯升高,但仍低于0 d時(shí)表達(dá)量(P<0.05);90 d時(shí)相比于50 d有顯著降低,120 d時(shí)繼續(xù)降低,出現(xiàn)最低表達(dá)量。在0.5 mmol/L Ca2+濃度下培養(yǎng),外套膜中CaM基因表達(dá)量在插核后20 d出現(xiàn)顯著降低,50 d時(shí)相較于20 d表達(dá)量明顯升高,但仍低于0 d時(shí)期表達(dá)量,在之后時(shí)間繼續(xù)升高,90 d時(shí)明顯高于0 d表達(dá)量(P<0.05),120 d時(shí)相比90 d無(wú)顯著變化(P>0.05)。在內(nèi)臟團(tuán)中,CaM基因表達(dá)量在插核后20 d時(shí)并無(wú)顯著變化(P>0.05),在第50 d時(shí)相比之前時(shí)期顯著降低,在插核后90 d較0 d時(shí)期顯著升高(P<0.05),
120 d時(shí)與90 d表達(dá)量無(wú)顯著差異(P>0.05)。
圖5 1.25 mmol/L Ca2+濃度(A)、2 mmol/L Ca2+濃度(B)在不同插核天數(shù)后三角帆蚌外套膜和內(nèi)臟團(tuán)中CaM基因表達(dá)
圖6 3 mmol/L Ca2+濃度在不同插核天數(shù)后三角帆蚌外套膜和內(nèi)臟團(tuán)中CaM基因表達(dá)
從圖5中可以看出,在1.25 mmol/L Ca2+濃度下培養(yǎng),外套膜中CaM基因表達(dá)量在各時(shí)期無(wú)顯著變化(P>0.05)。內(nèi)臟團(tuán)在插核后20 d表達(dá)量出現(xiàn)降低情況(P<0.05),之后時(shí)期又上升至與0 d無(wú)顯著差異(P>0.05)。在2 mmol/L Ca2+濃度下培養(yǎng),外套膜和內(nèi)臟團(tuán)都在插核后20 d時(shí)CaM基因表達(dá)量顯著增加(P<0.05),之后各時(shí)期保持高表達(dá)量并且無(wú)顯著差異(P>0.05)。
根據(jù)圖6可以看出,在外套膜中CaM基因表達(dá)量在插核后20 d顯著增高;在50 d時(shí)表達(dá)量下降到與0 d無(wú)顯著差異;插核后90 d,繼續(xù)下降,較50 d顯著降低(P<0.05);120 d與90 d無(wú)顯著變化(P>0.05)。在內(nèi)臟團(tuán)中CaM基因表達(dá)量在插核后20 d出現(xiàn)明顯升高,之后時(shí)間內(nèi)表達(dá)量不斷下降,50 d比20 d顯著降低,90 d比50 d顯著降低(P<0.05),直到插核120 d時(shí),表達(dá)量與90 d無(wú)顯著差異(P>0.05)。
Ca2+作為第二信使參與動(dòng)物的各種生理活動(dòng),不同濃度Ca2+對(duì)淡水貝類的生長(zhǎng)率、繁殖能力、珍珠沉積率都有影響,密切關(guān)系著貝類的生理狀態(tài)[12]。貝類體內(nèi)Ca2+的一系列生理活動(dòng),如吸收、貯存、轉(zhuǎn)運(yùn)、分泌等都受到機(jī)體復(fù)雜并嚴(yán)格的調(diào)控,參與調(diào)控的蛋白眾多并發(fā)揮著不同的作用[13]。
分析GenBank中已有的三角帆蚌CaM基因的全長(zhǎng)序列(HM483521)[14]可以得到,CaM基因中含有的4個(gè)EF-hand結(jié)構(gòu)域。EF-hand結(jié)構(gòu)域是常見(jiàn)的Ca2+結(jié)合結(jié)構(gòu)域高度保守,在生物礦化過(guò)程,如Ca的運(yùn)輸、肌肉收縮、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)等過(guò)程中起著重要的作用[15,16]。貝類的EFhand蛋白能通過(guò)調(diào)控Ca代謝,從而調(diào)節(jié)珍珠質(zhì)的形成,是CaCO3晶體形成珍珠質(zhì)的有機(jī)成分之一[17]。有研究表明該基因可能是珍珠形成過(guò)程中一個(gè)重要的調(diào)節(jié)因子[18],貝類的EFhand蛋白也具有與脊椎動(dòng)物EF-hand蛋白類似的功能[19]。
3.1 不同Ca2+濃度養(yǎng)殖下外套膜和內(nèi)臟團(tuán)組織CaM基因的表達(dá)
有研究表明,三角帆蚌育珠過(guò)程中,Ca2+的代謝具有明顯的變化波動(dòng)[20]。0 mmol/L Ca2+濃度各個(gè)時(shí)期表達(dá)量較其他Ca2+濃度都表現(xiàn)出顯著降低,CaM基因在0 mmol/L Ca2+濃度下,外套膜和內(nèi)臟團(tuán)
由于Ca2+缺乏嚴(yán)重而都表現(xiàn)出顯著下降趨勢(shì),之后時(shí)期因?yàn)殁}代謝無(wú)法正常進(jìn)行而保持著極低的表達(dá)量[21]。2 mmol/L Ca2+濃度各個(gè)時(shí)期表達(dá)量較其他Ca2+濃度都表現(xiàn)出顯著升高,在Ca2+含量適當(dāng)高于自然淡水水體(1.0 mmol/L-1.3 mmol/L)的情況下,Ca2+起到了促進(jìn)了的作用[22,23],此時(shí)CaM基因表達(dá)量最高。3 mmol/L Ca2+濃度時(shí)相較于2 mmol/L Ca2+濃度CaM基因表達(dá)量明顯降低,這說(shuō)明CaM基因表達(dá)量不會(huì)隨著Ca2+濃度不斷升高而一直升高,Ca2+濃度超過(guò)一定程度不僅不會(huì)增加表達(dá)量,反而會(huì)降低。由此可以看出,Ca2+濃度影響著CaM基因的表達(dá)。
圖1中,由于插核后在不同Ca2+濃度下養(yǎng)殖5 h就對(duì)其采樣,以作為0 d樣品與其他時(shí)期比較。此時(shí),CaM基因受Ca2+濃度影響較小,所以表達(dá)量幾乎無(wú)差異。0.5 mmol/L Ca2+濃度在低于1.25 mmol/L Ca2+濃度情況下,CaM基因表達(dá)量依然出明顯增加,推測(cè)CaM基因需要更多表達(dá)來(lái)促進(jìn)較低Ca2+濃度下Ca的吸收。
3.2 不同插核天數(shù)外套膜和內(nèi)臟團(tuán)組織CaM基因的表達(dá)
由圖4可以看出,0 mmol/L Ca2+濃度養(yǎng)殖下,整體呈明顯下降趨勢(shì)。在0.5 mmol/L Ca2+濃度培養(yǎng)下,外套膜和內(nèi)臟團(tuán)都出現(xiàn)了CaM基因表達(dá)量先降低再顯著升高的趨勢(shì),在插核后90 d和120 d表達(dá)水平明顯高于0 d時(shí)期。0.5 mmol/L Ca2+濃度低于正常淡水水體中Ca2+濃度[23],而插核后期的表達(dá)量升高,推測(cè)在長(zhǎng)期Ca2+缺乏的情況下,為了調(diào)節(jié)機(jī)體的鈣離子的平衡,以穩(wěn)定機(jī)體的正常Ca代謝,機(jī)體內(nèi)需要補(bǔ)充更多的Ca2+,此時(shí)會(huì)促進(jìn)CaM基因的表達(dá)來(lái)適應(yīng)低濃度Ca2+的生活,以穩(wěn)定機(jī)體的正常Ca代謝[24],證明了CaM基因在Ca2+的重要作用。在1.25 mmol/L Ca2+濃度培養(yǎng)下,可以看出,外套膜表現(xiàn)比較穩(wěn)定,各時(shí)期沒(méi)有顯著差異。
0 mmol/L、1.25 mmol/L Ca2+濃度下,對(duì)比插核后20 d和50 d發(fā)現(xiàn)內(nèi)臟團(tuán)都出現(xiàn)了短期內(nèi)的表達(dá)量升高情況,有研究表明,研究表明三角帆蚌進(jìn)行內(nèi)臟團(tuán)插核手術(shù)后,傷口需要20 d左右時(shí)間進(jìn)行修復(fù)愈合[25]。推測(cè)三角帆蚌在插核后20 d還處于機(jī)體修復(fù)期,三角帆蚌尚未恢復(fù)活力,且免疫活力較高,CaM基因表達(dá)受到抑制[26,27],后期機(jī)體修復(fù)完成后機(jī)體為獲取所缺失的鈣,CaM基因較平時(shí)表達(dá)量增加。但在0 mmol/L Ca2+濃度養(yǎng)殖下短期增加后由于長(zhǎng)期處于缺乏Ca而完全得不到補(bǔ)充,CaM基因無(wú)法正常表達(dá)而不斷降低。
在圖5中可以發(fā)現(xiàn),2 mmol/L Ca2+濃度培養(yǎng)下,插核后CaM基因的表達(dá)量在插核后20 d已經(jīng)顯著升高。但是,在插核20之后的各個(gè)時(shí)期表達(dá)沒(méi)有顯著變化。由此可見(jiàn),在適當(dāng)?shù)母逤a2+濃度下,會(huì)刺激鈣的代謝使CaM基因的表達(dá)量迅速升高[14],但是促進(jìn)作用到達(dá)一定程度后CaM基因會(huì)在一個(gè)高表達(dá)量狀態(tài)保持穩(wěn)定,并沒(méi)有出現(xiàn)持續(xù)性的增長(zhǎng)。
在3 mmol/L Ca2+濃度下(圖6),外套膜和內(nèi)臟團(tuán)表達(dá)量都出現(xiàn)先升高再降低的趨勢(shì),在插核后90 d和120 d,表達(dá)量甚至低于0 d??梢钥闯?,Ca2+濃度在超過(guò)一定范圍后,機(jī)體內(nèi)Ca2+濃度過(guò)飽和鈣代謝出現(xiàn)紊亂[28],出現(xiàn)抑制CaM基因表達(dá)的情況。
通過(guò)上述分析可以看出,CaM基因在一定Ca2+濃度范圍內(nèi),低濃度表達(dá)量升高,過(guò)高濃度表達(dá)量降低,通過(guò)自身基因表達(dá)水平的改變來(lái)維持體內(nèi)Ca代謝的穩(wěn)定。
3.3 外套膜和內(nèi)臟團(tuán)組織CaM基因表達(dá)分析
總結(jié)所有CaM基因表達(dá)水平變化可以看出,外套膜中CaM基因表達(dá)量都顯著低于相應(yīng)時(shí)期和濃度下內(nèi)臟團(tuán)表達(dá)量(P<0.05)。這與內(nèi)臟團(tuán)插核部位有關(guān),本實(shí)驗(yàn)內(nèi)臟團(tuán)插核所在位置為靠近性腺部前端,珠核緊貼性腺。推測(cè)因?yàn)槿欠鲂韵僦泻写罅康腃a2+[29],組織之間進(jìn)行比較,Ca含量更為豐富的內(nèi)臟團(tuán)比外套膜部位更具優(yōu)勢(shì)。此外,內(nèi)臟團(tuán)組織相比外套膜,結(jié)構(gòu)更加復(fù)雜,功能更加完善,Ca2+濃度發(fā)生改變時(shí),對(duì)內(nèi)臟團(tuán)的影響較?。?0]。
綜上所述,本研究針對(duì)三角帆蚌珍珠形成過(guò)程中的關(guān)鍵蛋白鈣調(diào)蛋白進(jìn)行不同Ca2+濃度養(yǎng)殖,檢測(cè)不同時(shí)期外套膜和內(nèi)臟團(tuán)的表達(dá)量進(jìn)行研究。研究發(fā)現(xiàn)Ca2+濃度和CaM之間相互作用,在不同Ca2+濃度下CaM基因表達(dá)會(huì)有不同的變化,適當(dāng)升高Ca2+濃度對(duì)CaM基因表達(dá)起促進(jìn)作用,濃度過(guò)高和過(guò)低都會(huì)造成表達(dá)量降低,引發(fā)機(jī)體的鈣代謝紊亂。
內(nèi)臟團(tuán)表達(dá)量整體高于外套膜,鈣代謝水平升高,更有利于珍珠沉積[31],但其在珍珠質(zhì)沉積的作用還有待進(jìn)一步深入研究。
本實(shí)驗(yàn)研究了不同Ca2+濃度養(yǎng)殖環(huán)境下,檢測(cè)了三角帆蚌CaM在外套膜和內(nèi)臟團(tuán)中的表達(dá)變化。研究發(fā)現(xiàn),適當(dāng)升高(2 mmol/L)和降低(0.5 mmol/L)Ca2+濃度都會(huì)促進(jìn)CaM基因的表達(dá),但過(guò)低(0 mmol/L)和過(guò)高(3 mmol/L)的濃度則會(huì)抑制CaM基因的表達(dá)。相同條件下,內(nèi)臟團(tuán)CaM基因表達(dá)量高于外套膜,更有利于珍珠的形成。
[1]Hoeflich KP, Mitsuhiko I. Calmodulin in action:diversity in target recognition and activation mechanisms[J]. Cell, 2002, 108(6):739-742.
[2]Machado J, Lopes-Lima M. Calcification mechanism in freshwater mussels:Potential targets for cadmium[J]. Toxicological & Environmental Chemistry, 2011, 93(9):1778-1787.
[3]Jing H, Cen Z, Ma Z, et al. A novel extracellular EF-hand protein involved in the shell formation of pearl oyster[J]. Biochimica et Biophysica Acta, 2007, 1770(7):1037-1044.
[4]Li S, Xie LZ, Zhang R. cDNA cloning and characterization of a novel calmodulin-like protein from pearl oyster Pinctada fucata[J]. Febs Journal, 2005, 272(19):4899–910.
[5]Li S, Xie L, Cen Z, et al. Cloning and expression of a pivotal calcium metabolism regulator:calmodulin involved in shell formation from pearl oyster(Pinctada fucata)[J]. Comparative Biochemistry & Physiology Part B Biochemistry & Molecular Biology, 2004, 138(3):235-243.
[6] Fang Z, Cao W, Li S, et al. Significance of the C-terminal globular domain and the extra tail of the calmodulin-like protein(Pinctada fucata)in subcellular localization and protein—protein interaction[J]. Cell Biology International, 2008, 32(8):920-927.
[7] Yan Z, Fang Z, Ma Z, et al. Biomineralization:functions of calmodulin-like protein in the shell formation of pearl oyster[J]. Biochimica et Biophysica Acta(BBA)- General Subjects, 2007, 1770(9):1338-1344.
[8]Fu LL, Bai ZY, Jin W, et al. Evaluation of laser labeling on growth and survival of the freshwater pearl mussel, Hyriopsis cumingii[J]. Aquacult Int, 2012, 20(3):431-441.
[9] 黃惟灝, 沈智華, 童建民, 王卓鋒. 三角帆蚌內(nèi)臟團(tuán)培育圓形有核珍珠的試驗(yàn)[J]. 淡水漁業(yè), 2009(4):72-74.
[10] 施志儀, 謝先中, 何秀娟. 三角帆蚌內(nèi)臟團(tuán)珍珠培育部位的生物性狀研究[J]. 生物技術(shù)通報(bào), 2008(3):178-181.
[11]Dalesman S, Lukowiak K. Effect of acute exposure to low environmental calcium on respiration and locomotion in Lymnaea stagnalis(L.)[J]. Journal of Experimental Biology, 2010, 213(Pt9):1471-1476.
[12]Zalizniak L, Kefford BJ, Nugegoda D. Effects of different ionic compositions on survival and growth of Physa acuta[J]. Aquatic Ecology, 2009, 43(1):145-156.
[13]Chamilani N, Mahanama DZ, Ilson W, et al. Characterization and expression analysis of EF hand domain-containing calciumregulatory gene from disk abalone:calcium homeostasis and its role in immunity[J]. Fish & Shellfish Immunology, 2010, 29(2):334-342.
[14]李文娟, 李倩, 祁曉翔, 等. 三角帆蚌鈣調(diào)蛋白(CaM)基因的cDNA序列克隆與表達(dá)分析[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2014(22):7310-7314.
[15]Li W, Halling D, Hall A, Aldrich R. EF hands at the N-lobe of calmodulin are required for both SK channel gating and stable SK-calmodulin interaction[J]. Journal of General Physiology, 2009, 134(4):281-293.
[16]Feinstein PG, Schrader KA, Bakalyar HA, et al. Molecular cloning and characterization of a Ca2+/calmodulin-insensitive adenylyl cyclase from rat brain[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1991, 88(22):10173-10177.
[17]Huang J, Zhang C, Ma Z, et al. A novel extracellular EF-hand protein involved in the shell formation of pearl oyster[J]. Biochimica et Biophysica Acta, 2007, 1770(7):1037-1044.
[18]祁曉翔, 李文娟, 尚朝, 等. 三角帆蚌EFCB1基因cDNA序列克隆及表達(dá)研究[J]. 水產(chǎn)學(xué)報(bào), 2015, 39(7):962-970.
[19]Ni B, Rush S, Gurd JW, Brown IR. Molecular cloning of calmodulin mRNA species which are preferentially expressed in neurons in the rat brain[J]. Brain Research Molecular Brain Research, 1992, 13(1-2):7-17.
[20]羅文, 楊受保, 丁盈, 等 . 三角帆蚌(Hyriopsis cumingii)珍珠
形成初期鈣代謝的特征分析[J]. 海洋與湖沼, 2010, 41(6):895-900.
[21] Paul JH, Sharpe JS. Studies in calcium metabolism:I. The deposition of lime salts in the integument of decapod crustacea[J]. Journal of Physiology, 1916, 50(3):183-192.
[22]Borght OVD, Puymbroeck SV. Calcium metabolism in a freshwater mollusc:quantitative importance of water and food as supply for calcium during growth[J]. Nature, 1966, 210(5038):791-793.
[23]唐敏, 石安靜. 環(huán)境鈣濃度對(duì)淡水育珠蚌外套膜及珍珠囊鈣代謝的影響[J]. 四川大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版, 2000, 37(5):741-747.
[24]Robertson JD. The function and metabolism of calcium in the invertebrata[J]. Biological Reviews, 1941, 16(2):106-133.
[25]施志儀, 楊顯祥. 三角帆蚌alpha-2巨球蛋白活性測(cè)定及不同組織的表達(dá)[J]. 生物技術(shù)通報(bào), 2006(4):115-120.
[26]何秀娟, 施志儀, 陳曉武, 程千千. 內(nèi)臟團(tuán)插核術(shù)刺激對(duì)三角帆蚌血細(xì)胞的影響[J]. 水生生物學(xué)報(bào), 2010, 34(2):410-417.
[27]何秀娟, 施志儀, 李文娟. 插核手術(shù)對(duì)三角帆蚌血淋巴中3種免疫防御因子的影響[J]. 中國(guó)水產(chǎn)科學(xué), 2009, 16(6):859-867.
[28]Li S, Xie L, Cen Z, et al. Cloning and expression of a pivotal calcium metabolism regulator:calmodulin involved in shell formation from pearl oyster(Pinctada fucata)[J]. Comparative Biochemistry & Physiology Part B Biochemistry & Molecular Biology, 2004, 138(3):235-243.
[29] 李文娟, 施志儀, 郝瑩瑩, 葉顯峰. 應(yīng)用激光共聚焦顯微技術(shù)研究Ca2+在三角帆蚌組織內(nèi)的積累與分布[J]. 水產(chǎn)學(xué)報(bào), 2011, 35(2):214-220.
[30]邵曉陽(yáng), 黃惟灝. 三角帆蚌內(nèi)臟團(tuán)與外套膜鈣鹽分布的組織化學(xué)研究[J]. 青島海洋大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版, 1999(3):483-488.
[31]錢偉平, 林國(guó)星, 許梓榮. Ca2+在三角帆蚌體內(nèi)沉積效應(yīng)的研究[J]. 水利漁業(yè), 2005, 25(1):6-8.
(責(zé)任編輯 狄艷紅)
Expressions of Calmodulin Gene in Hyriopsis cumingii Mantle and Visceral Tissues Under the Culture Environment with Different Ca2+Concentrations
SHANG Chao1SHI Yang2LI Wen-juan1ZHOU Zi-rui1SHI Zhi-yi1
(1. Key Laboratory of Freshwater Aquatic Genetic Resources of Ministry of Agriculture,College of Fisheries and Life Science,Shanghai Ocean University,Shanghai 201306;2. Shanghai Institute of Food Research,Shanghai 200235)
In order to explore the role of calmodulin(CaM)gene in the formation of freshwater mussel,Hyriopsis cumingii was cultured in water environment at 5 different Ca2+concentrations of 0 mmol/L,0.5 mmol/L,1.25 mmol/L,2 mmol/L,and 3 mmol/L. At 0 d,20 d,50 d,90 d,and 120 d after nucleus inserted,mantle and visceral were sampled,then the CaM expressions in the tissues were detected using fluorescent quantitative PCR. The results showed that:1)The expression level of CaM gene in mantle and visceral mass were always low at 0 mmol/L Ca2+concentration,decreased and then increased and remained stable at 0.5 mmol/L,decreased at the 20 d in visceral mass,then rose to level at 0 d and remain stable at 1.25 mmol/L,significantly increased at 20 d,reached the highest which was maintained at 2 mmol/L among all 5concentrations,increased at 20 d after nucleus inserted,and decreased in the later period(P < 0.05)at 3 mmol/ L. 2)There was no obvious difference among different concentrations at 0 d,and the expressions differentiated along different days after 0 d. 3)Under the same culture conditions,the expression of CaM gene in visceral mass was higher than that in mantle. It was found that the concentration of 0.5 mmol/L and 2 mmol/L promoted the expression of CaM gene,but the concentration of 0 mmol/L and 3 mmol/L inhibited the expression of CaM gene. Visceral mass was more conducive to the formation of pearl.
Hyriopsis cumingii;calmodulin;calcium concentration;visceral mass;mantle
10.13560/j.cnki.biotech.bull.1985.2016.12.024
2016-04-05
國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(31201991),教育部博士點(diǎn)基金(20123104120003),上海市優(yōu)青項(xiàng)目(ssc11004)
尚朝,男,碩士研究生,研究方向:生物學(xué);E-mail:shangchao1120@126.com
施志儀,男,教授,研究方向:生物學(xué);E-mail:zyshi@shou.edu.cn