康壯麗,李 想,李 斌,王虎虎,馬漢軍,宋照軍,余小領(lǐng),潘潤(rùn)淑

(1.河南科技學(xué)院食品學(xué)院,河南新鄉(xiāng) 453003;2.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)國(guó)家肉品質(zhì)量安全控制工程技術(shù)研究中心,江蘇南京 210095)

?

谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶對(duì)低鹽雞肉糜保水性和蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)的影響

康壯麗,李 想,李 斌,王虎虎,馬漢軍,宋照軍,余小領(lǐng),潘潤(rùn)淑

(1.河南科技學(xué)院食品學(xué)院,河南新鄉(xiāng) 453003;2.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)國(guó)家肉品質(zhì)量安全控制工程技術(shù)研究中心,江蘇南京 210095)

本文利用拉曼光譜技術(shù)研究谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶對(duì)雞肉糜保水性、質(zhì)構(gòu)和蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)等的影響。結(jié)果表明:低鹽雞肉糜的乳化穩(wěn)定性和蒸煮得率隨著谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶添加量的增加而顯著提高(p<0.05),但0.67%和1.0%谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶處理組間差異不顯著(p>0.05);雞肉糜的硬度、彈性、內(nèi)聚性和咀嚼性隨著谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶的增加而顯著提高(p<0.05);添加谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶,酰胺I帶的波峰從1659 cm-1移動(dòng)到1661、1662和1662 cm-1,β-折疊和β-轉(zhuǎn)角含量顯著增加(p<0.05),α-螺旋含量顯著(p<0.05)降低,無(wú)規(guī)則卷曲差異不顯著。由此可見(jiàn),谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶添加量為0.33%～1.0%時(shí),能夠改變蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu),提高低鹽雞肉糜的質(zhì)構(gòu)和保水性,且添加量為0.67%時(shí),質(zhì)構(gòu)和保水性最好。

保水性,拉曼光譜,雞肉,二級(jí)結(jié)構(gòu),質(zhì)構(gòu),谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶

雞肉糜類肉制品是廣受消費(fèi)者歡迎的一類乳化肉制品,保水性和質(zhì)構(gòu)決定著產(chǎn)品的品質(zhì)和接受度。生肉糜中包含鹽溶性蛋白和水分等液體連續(xù)相、分散液相、脂肪顆粒、不溶性肌肉纖維顆粒、結(jié)締組織、香辛料等分散固相,其中鹽溶性蛋白決定著乳化肉制品的凝膠形成能力、保水保油能力和質(zhì)構(gòu)[1-2]。減少食鹽影響鹽溶性蛋白的溶解和溶出,在加工過(guò)程中易引起蒸煮損失大,結(jié)構(gòu)松散等問(wèn)題。

谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶(Transglutaminase,TG酶)是一種能催化蛋白質(zhì)谷氨酰胺殘基的γ-羧酰和賴氨酸殘基的ζ-氨基發(fā)生轉(zhuǎn)酰胺基反應(yīng),形成ζ-(γ-Glu)Lys共價(jià)鍵,或肽鏈中谷氨酰胺殘基的羧酰胺和伯胺之間的酰胺基轉(zhuǎn)移反應(yīng)并使蛋白質(zhì)分子之間交聯(lián)聚合的球狀單體蛋白酶[3]。通過(guò)添加TG酶誘導(dǎo)肌肉蛋白質(zhì)內(nèi)部、蛋白質(zhì)分子之間產(chǎn)生共價(jià)交聯(lián),以及氨基酸和蛋白質(zhì)之間產(chǎn)生交聯(lián),改善乳化肉制品的質(zhì)構(gòu),提高蒸煮得率已被報(bào)道[4-5]。水分是肉糜凝膠的主要成分,水分子結(jié)構(gòu)的變化涉及到氫鍵的斷裂和重組,影響水分與蛋白質(zhì),水分與肽鏈之間的交聯(lián),蛋白質(zhì)構(gòu)象的變化以及凝膠的保水性[6-7]。

拉曼光譜是一種無(wú)損、快速的檢測(cè)技術(shù),能夠得到肽鏈上不同氨基酸殘基信息,了解蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)等變化的信息,且水對(duì)散射光譜影響較小,能夠直接用于水相系統(tǒng),已經(jīng)廣泛應(yīng)用于研究肉糜及凝膠形成過(guò)程中蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)的變化[7-9]。因此,本實(shí)驗(yàn)利用拉曼光譜技術(shù)分析TG酶對(duì)雞肉糜蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)結(jié)構(gòu)的變化,研究TG酶對(duì)雞肉糜質(zhì)構(gòu)和保水性等的影響機(jī)理,為提高雞低鹽肉糜類肉制品的品質(zhì)提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

冷凍雞胸肉(70.85%水分,20.56%蛋白質(zhì),7.02%脂肪,pH5.79)、豬背膘(8.50%水分,1.75%蛋白質(zhì),90.12%脂肪)眾品集團(tuán)提供;豬背膘 要求使用新鮮的;膠原蛋白腸衣 中國(guó)神冠控股有限公司;TG酶 100 U/g,1% TG酶,99%麥芽糊精,泰興市東圣食品科技有限公司。

絞肉機(jī)山東嘉信食品機(jī)械有限公司;Stephan UMC-5C斬拌機(jī) 德國(guó)Stephan公司;灌裝機(jī) 德國(guó)VF608;JY Labram HR 800顯微激光拉曼光譜儀 法國(guó)Jobin-Yvon公司;HH-42水浴鍋 常州國(guó)華電器有限公司;CR-40色差計(jì) 日本美能達(dá)公司;Shimadzu AUY120電子天平 日本島津;質(zhì)構(gòu)儀英國(guó)StableMicrosystem公司;離心機(jī)美國(guó)Beckman L-80-XP Ultracentrifuge;T1900 El619煙熏爐 德國(guó)Stephan公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 雞肉糜的制備 基本配方如下,雞胸肉1000 g,豬背膘300 g,冰水280 g,三聚磷酸鈉4 g,食鹽15 g,香辛料10.6 g,TG酶添加量分別為:T1:0 g(0%);T2:5.33 g(0.33%);T3:10.67 g(0.67%);T4:16 g(1.0%)。剔除雞胸肉中結(jié)締組織和可見(jiàn)脂肪,使用絞肉機(jī)分別絞碎(孔板直徑6 mm),用雙層真空包裝袋(尼龍/PE)進(jìn)行分裝,每袋1000 g,真空包裝,儲(chǔ)存于-20 ℃直到加工,不得超過(guò)2周。凍雞胸肉使用前在0～4 ℃冷庫(kù)中解凍至中心溫度為0 ℃左右。

加工方法參考Kang等[8]的方法:將解凍好的雞胸肉、食鹽、三聚磷酸鈉、TG酶放入真空斬拌機(jī),1500 r/min斬拌30 s,并緩慢的加入1/3的冰水,停3 min;加入豬背膘和香辛料,1500 r/min斬拌30 s,并緩慢加入1/3冰水,停3 min;3000 r/min斬拌60 s,并緩慢加入1/3冰水(中心溫度低于10 ℃)。加工好的雞肉糜使用真空灌裝機(jī)灌裝到24 mm的膠原蛋白腸衣,將灌裝好的雞肉糜分為18 cm的段并稱重,然后在2 ℃的環(huán)境中靜置6 h。在煙熏爐中進(jìn)行烘干和蒸煮操作,步驟如下:50 ℃,烘干15 min,濕度60%;80 ℃,蒸煮25 min,濕度100%(中心溫度72 ℃);冷水噴淋5 min;30 ℃,烘干10 min,濕度60%,2 ℃過(guò)夜冷卻。

1.2.2 乳化穩(wěn)定性 根據(jù)Fernándz-Martín等[10]的方法對(duì)雞肉糜乳化穩(wěn)定性進(jìn)行測(cè)定。取25 g雞肉糜放入50 mL離心管中,4 ℃,500×g離心5 min去除肉糜中的氣泡。封閉離心管,放入80 ℃水浴加熱20 min。取出后使用紙巾擦干外面的水分,立即打開(kāi)試管蓋,在室溫下放置50 min,以利于汁液的吸收和釋放。

滲出液量,即釋放的總液體的重量和樣品初始重量的百分比,滲出液越多,乳化穩(wěn)定性就越低。水分滲出量,即為釋放水分的重量和樣品初始重量的百分比。脂肪滲出量,即釋放的脂肪的重量和樣品初始重量的百分比,脂肪含量采用將滲出液在105 ℃烘干16 h的方法進(jìn)行測(cè)定,滲出液中含有少量的食鹽和蛋白質(zhì),可以忽略不計(jì),因此,烘干后剩余的物質(zhì)為脂肪滲出物。

1.2.3 蒸煮得率 4 ℃過(guò)夜冷卻后,分別對(duì)每份雞肉糜的重量進(jìn)行測(cè)定,蒸煮得率按照以下公式計(jì)算:蒸煮得率(%)=蒸煮后雞肉糜重量/蒸煮前雞肉糜重量×100,每組測(cè)定4次。

1.2.4 質(zhì)構(gòu)分析 測(cè)試前將過(guò)夜冷卻后的蒸煮雞肉糜,放置在20 ℃環(huán)境中,回溫2 h,使雞肉糜內(nèi)外溫度一致。在20 ℃室溫下,使用質(zhì)構(gòu)儀對(duì)雞肉糜的質(zhì)構(gòu)進(jìn)行測(cè)定。采用直徑20 mm,高度20 mm的肉柱進(jìn)行質(zhì)構(gòu)測(cè)定,參數(shù)如下:測(cè)試前速度5.0 mm/s,測(cè)試速度2.0 mm/s,測(cè)試后速度2.0 mm/s;壓縮比50%;時(shí)間5 s。使用P/50測(cè)試探頭進(jìn)行測(cè)定,得到的相關(guān)質(zhì)構(gòu)參數(shù)為硬度、彈性、內(nèi)聚性和咀嚼性[11]。每組樣品測(cè)定5次。

1.2.5 拉曼光譜分析 取適量蒸煮雞肉糜均勻的涂抹在載玻片中央,使用顯微拉曼光譜儀進(jìn)行測(cè)定,使用單晶硅對(duì)拉曼光譜儀進(jìn)行頻率校正,再用50倍長(zhǎng)焦距鏡頭將激光聚焦到樣品上,功率100 mW左右,獲取的拉曼光譜波段在1600～1800 cm-1。每個(gè)樣品測(cè)定3次。具體測(cè)定條件如下:600 g·mm-1光柵,狹縫200 μm,3次掃描數(shù)據(jù),獲取速度為120 cm-1·min-1,分辨率為2 cm-1,積分時(shí)間為60 s。因?yàn)楸奖彼岘h(huán)在1003 cm-1伸縮振動(dòng)強(qiáng)度不隨蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)變化而變化,可以將其作為內(nèi)標(biāo)對(duì)拉曼光譜數(shù)據(jù)進(jìn)行歸一化[12]。根據(jù)文獻(xiàn)已報(bào)道的蛋白質(zhì)和多肽拉曼光譜,對(duì)氨基酸側(cè)鏈和肽鍵骨架振動(dòng)光譜條帶進(jìn)行指認(rèn)和分析[12-13]。蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)(α-螺旋,β-折疊,β-轉(zhuǎn)角,無(wú)規(guī)則卷曲)的含量使用Alix的方法計(jì)算得到[13]。

1.2.6 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì) 本實(shí)驗(yàn)所有處理重復(fù)4次。應(yīng)用軟件SPSS v.18.0(SPSS Inc.,USA)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,使用單因素方差分析(ANOVA)的方法對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析。各個(gè)組平均值差異采用Duncan’s多重極差檢驗(yàn)進(jìn)行多重比較,當(dāng)p<0.05時(shí)為組間存在顯著差異。

2 結(jié)果與分析

2.1 乳化穩(wěn)定性

乳化穩(wěn)定性是決定乳化肉糜品質(zhì)的重要指標(biāo)。由表1可知,TG酶添加量能夠顯著影響雞肉糜乳化穩(wěn)定性(p<0.05)。雞肉糜的滲出液量隨著TG酶添加量(0～0.67%)的增加而降低,T1最多,T3最少。TG酶添加量增加到1%(T4)時(shí),滲出液量與T3差異不顯著(p>0.05)。水分滲出量和脂肪滲出量也有相同的趨勢(shì)。吳立根等[4]也報(bào)道了添加適量TG酶能夠顯著增加肉糜的保水性。這可能是由于添加適量TG酶能夠增加蛋白質(zhì)間交聯(lián)和聚合,改善蛋白乳化功能特性的緣故。

表2 TG酶對(duì)雞肉糜質(zhì)構(gòu)的影響

表1 TG酶對(duì)雞肉糜乳化穩(wěn)定性的影響

注:同列不同字母表示存顯著差異(p<0.05),表2、表3同。

2.2 蒸煮得率

由圖1可知,TG酶添加量對(duì)雞肉糜蒸煮得率有顯著的影響(p<0.05)。當(dāng)TG酶添加量從0增加到0.67%,雞肉糜蒸煮得率隨著酶添加量增加而提高,超過(guò)0.67%后,蒸煮得率變化不顯著(p>0.05)。雞肉糜蒸煮得率變化特點(diǎn)與前面乳化穩(wěn)定性變化趨勢(shì)相一致,表明肉糜乳化穩(wěn)定性越好,其蒸煮得率越高。這可能是由于谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶能夠催化蛋白質(zhì)分子中?；D(zhuǎn)移反應(yīng)形成共價(jià)鍵,增強(qiáng)蛋白質(zhì)之間的交聯(lián),改善凝膠的品質(zhì)和保水性,從而提高肉糜蒸煮得率的緣故。

圖1 TG酶對(duì)雞肉糜蒸煮得率的影響Fig.1 Effect of transglutaminase supplementation oncooking yield of chicken batters 注:不同字母表示存在顯著差異(p<0.05)。

2.3 質(zhì)構(gòu)

由表2可知,隨著TG酶添加量的增加,雞肉糜的硬度、彈性、內(nèi)聚性和咀嚼性都顯著提高(p<0.05)。Herrero等[5]報(bào)道添加TG酶顯著提高肉糜的硬度、彈性、內(nèi)聚性和咀嚼性。扶慶權(quán)等[14]研究了添加TG酶對(duì)乳化型雞肉糜質(zhì)構(gòu)特性的影響,發(fā)現(xiàn)添加TG酶顯著提高乳化型雞肉糜的硬度、脆性、彈性、凝聚性和咀嚼性。這可能是由于TG酶添加量越高,誘導(dǎo)更多肌肉蛋白質(zhì)發(fā)生交聯(lián)和聚集,有利于凝膠結(jié)構(gòu)的形成,從而改善凝膠質(zhì)構(gòu)的緣故。

2.4 二級(jí)結(jié)構(gòu)分析

圖2給出了不同處理組在1660～1800 cm-1波段的拉曼光譜圖。在1665 cm-1附近的拉曼光譜條帶被指認(rèn)為酰胺I帶的伸縮振動(dòng)[7,15],主要包括肽鍵C=O的伸縮振動(dòng),Cα-C-N的彎曲振動(dòng),C-N的伸縮振動(dòng),N-H的面內(nèi)彎曲振動(dòng),能夠提供二級(jí)結(jié)構(gòu)變化的信息[5]。由于酰胺I帶對(duì)氫鍵的變化比較敏感,通過(guò)1650～1660、1665～1680、1680和1660～1665 cm-1條帶上的信息能夠分別反應(yīng)α-螺旋、β-折疊、β-轉(zhuǎn)角和無(wú)規(guī)則卷曲含量的變化。許多學(xué)者已經(jīng)報(bào)道了酰胺I帶提供的信息變化能夠很好的反映蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)的變化[13,16]。

圖2 TG酶對(duì)雞肉糜蛋白拉曼光譜的影響Fig.2 Effect of transglutaminase supplementation on raman spectra of chicken batters in the region

如圖2可知,不同TG酶添加量雞肉糜中酰胺I帶的峰值分別位于1659、1661、1662、1662 cm-1,表明蒸煮雞肉糜蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)的主要成分是α-螺旋[13,15]。波峰向高波方向移動(dòng),主要原因是隨著TG酶添加量的增加,蛋白質(zhì)之間的交聯(lián)程度增強(qiáng),誘導(dǎo)蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)發(fā)生變化。Herrero等[5]也報(bào)道了增加豬肉糜中TG酶的添加量,酰胺I帶的波峰向高波方向移動(dòng)。

表3 TG酶對(duì)雞肉糜蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)(α-螺旋、β-折疊、β-轉(zhuǎn)角、無(wú)規(guī)則卷曲)百分含量的變化

酰胺I帶的變化可以提供蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)的定量信息[13]。由表3可知,添加TG酶雞肉糜的α-螺旋含量顯著的(p<0.05)降低,而β-折疊和β-轉(zhuǎn)角的含量顯著(p<0.05)升高,無(wú)規(guī)則卷曲含量變化不顯著(p>0.05)。α-螺旋結(jié)構(gòu)主要依靠氫鍵維持,添加TG酶,蛋白質(zhì)之間的交聯(lián)增強(qiáng),造成α-螺旋內(nèi)部氫鍵斷開(kāi),解螺旋并展開(kāi),形成β-折疊和β-轉(zhuǎn)角結(jié)構(gòu),即α-螺旋結(jié)構(gòu)向β-折疊和β-轉(zhuǎn)角結(jié)構(gòu)轉(zhuǎn)變[17-18]。β-折疊和β-轉(zhuǎn)角結(jié)構(gòu)是凝膠形成的基礎(chǔ),兩者含量的提高有利于良好凝膠結(jié)構(gòu)的形成,增加凝膠的硬度(表2)[8,19]。Herrero等報(bào)道了蒸煮肉糜的硬度與β-折疊含量(r=0.962)和β-轉(zhuǎn)角含量(r=0.934)都成正相關(guān)[5]。TG酶添加量從0.67%增加到1.0%時(shí),α-螺旋含量有降低的趨勢(shì),而β-折疊、β-轉(zhuǎn)角和無(wú)規(guī)則卷曲含量差異不顯著(p>0.05)。由此可見(jiàn),適量的添加TG酶能夠誘導(dǎo)蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)發(fā)生變化,即α-螺旋減少,β-折疊和β-轉(zhuǎn)角增加。

3 結(jié)論

添加TG酶(0～1.0%)能夠提高低鹽雞肉糜乳化穩(wěn)定性和蒸煮得率,改善雞肉糜的質(zhì)構(gòu),硬度、彈性、內(nèi)聚性和咀嚼性。在添加TG酶雞肉糜中,酰胺I帶的波峰向高波方向移動(dòng),誘導(dǎo)蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)變化,β-折疊和β-轉(zhuǎn)角含量顯著增加(p<0.05),α-螺旋含量降低。因此,TG酶添加量為0.33%～1%時(shí)能夠提高低鹽雞肉糜的保水性和質(zhì)構(gòu),添加量為0.67%時(shí)效果最好。

[1]Tintchev F,Bindrich U,Toepfl S,et al. High hydrostatic pressure/temperature modeling of frankfurter batters[J]. Meat Science,2013,94:376-387.

[2]Whiting R C. Ingredients and processing factors that control muscle protein functionality[J]. Food Technology,1988,42:104-114,220.

[3]張靜潔,周爭(zhēng)艷,陳軍安,等. 谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶對(duì)大豆蛋白游離伯胺含量的影響[J]. 現(xiàn)代食品科技,2013,29(5):998-1003.

[4]吳立根,王岸娜,翟耀昆. 谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶對(duì)豬肉糜失水率和硬度影響的研究[J].食品研究與開(kāi)發(fā),2007,28(1):184-187.

[5]Herrero AM,Cambero MI,Ordonez JA,et al. Raman spectroscopy study of the structural effect of microbial transglutaminase on meat systems and its relationship with textural characteristics[J]. Food Chemistry,2008,109:25-32.

[6]Maeda Y,Kitano H. The structure of water in polymer systems asrevealed by Raman spectroscopy[J]. Spectrochimica Acta,1995,51:2433-2446.

[7]HerreroAM,Carmona P,CofradesS,et al. Raman spectroscopic determination of structural changes in meat batters uponsoy protein addition and heat treatment[J]. Food Research International,2008,41:765-772.

[8]KangZL,WangP,XuXL,et al. Effect of beating processing,as a means of reducing salt content in frankfurters:a physico-chemical and Raman spectroscopic study[J]. Meat Science,2014:171-177.

[9]Yada R Y,Jackman R L,SmithJ L. Protein structure-function relationships in foods[M]. New York:Chapman and Hall Inc,1994:163-197.

[10]Fernándz-Martín F,López-lópez I,Cofrades S,et al. Influence of adding sea spaghetti seaweed and replacing the animal fat with olive oil or a konjac gel on pork meat batter gelation. Potential protein/alginate association[J]. Meat Science,2009,83:209-217.

[11]Bourne M C. Texture profile analysis[J]. Food Technology,1978,32:62-66.

[12]Li-Chan E C Y. The applications of Raman spectroscopy in food science[J]. Trends in Food Science and Technology,1996,7:361-370.

[13]Alix A J P,Pedanou G,Berjot M. Fast determination of the quantitative secondary structure of proteins by using some parameters of the Raman amide I band[J]. Journal of Molecular Structure,1988,174:159-164.

[14]扶慶權(quán),周紅霞,曾華. 谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶對(duì)乳化型香腸質(zhì)構(gòu)特性的影響[J]. 肉類工業(yè),2010,8:28-31.

[15]Krimm S,Bandekar J. Vibrational spectroscopy and conformation of peptides,polypeptides,and proteins[J]. Advances in Protein Chemistry,1986,38:181-364.

[16]Ngarize S,Herman H,Adams A,et al. Comparison of changes in the secondary structure of unheated,heated and high-pressure treated blactoglobulin and ovalbumin proteins using Fourier Transform Raman spectroscopy and self deconvolution[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry,2004,52:6470-6477.

[17]Perisic N,Afseth N K,Ofstad R,et al. Characterising protein,salt and water interactions with combined vibrational spectroscopic techniques[J]. Food Chemistry,2013,138:679-686.

[18]Liu R,Zhao S M,Xiong S B,et al. Role of secondary structures in the gelation of porcine myosin at different pH values[J]. Meat Science,2008,80:632-639.

[19]Wang C,Damodaran S. Thermal gelation of globular proteins:influence of protein conformation on gel strength[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry,1991,39:433-438.

Effect of transglutaminaseon water holding capacity and protein secondary structure of low-salt chicken batters

KANG Zhuang-li1,LI Xiang1,LI Bin1,WANG Hu-hu2,MA Han-jun1,SONG Zhao-jun1,YU Xiao-ling1,PAN Run-shu1

(1. School of Food Science,Henan Institute of Science and Technology,Xinxiang 453003,China;2.National Center of Meat Quality and Safety Control,Nanjing Agricultural University,Nanjing 210095,China)

In this paper,the effect of transglutaminase content on water holding capacity,texture and protein secondary structure was studied by using Raman spectroscopy. The results showed that emulsion stability and cooking yieldwere significantly(p<0.05)improved with transglutaminase content increased.But when the contents were 0.67% and 1.0%,the emulsion stability and cooking yield had no significant difference(p>0.05). The hardness,springiness,cohesiveness and chewiness also were significantly(p<0.05)improved with transglutaminase content increased. The result of Raman spectroscopy found that the wave peak of amide I shifted from 1659 cm-1to 1661 cm-1,1662 cm-1and 1662 cm-1when added various amounts of transglutaminase,β-sheet andβ-turn content was significantly(p<0.05)increased withα-helix content decreased,and random coil was no significant difference(p>0.05). A conclusion was drawn that adding 0.33%～1.0%transglutaminase could change the protein secondary structure,and improved thetexture and water holding capacityof low salt chicken batters. When adding 0.67%,the batter had the best texture and water holding capacity.

water holding capacity;Raman spectroscopy;chicken meat;secondary structure;texture;transglutaminase

2016-04-14

康壯麗(1980-)，男，博士，研究方向:肉制品加工與質(zhì)量控制，E-mail：kzlnj1988@163.com。

國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(31501508);河南省博士后啟動(dòng)經(jīng)費(fèi)(103020215007/003);河南科技學(xué)院博士科研啟動(dòng)費(fèi)(205010615001)。

TS251

B

1002-0306(2016)20-0000-00

10.13386/j.issn1002-0306.2016.20.000