馬超++鄭德斌++賈磊++張博++肖廣俠
摘 要:天津半滑舌鰨工廠化水產(chǎn)養(yǎng)殖已經(jīng)實(shí)現(xiàn)了快速的發(fā)展,本文對(duì)A1(漢沽地區(qū)養(yǎng)殖所用水源)、A2(漢沽區(qū)域流水式養(yǎng)殖水體)、B1(漢沽區(qū)域循環(huán)水系統(tǒng)處理水體)、B2(漢沽區(qū)域循環(huán)水系統(tǒng)養(yǎng)殖水體1)、Bb(漢沽區(qū)域循環(huán)水系統(tǒng)病魚專養(yǎng)池養(yǎng)殖水體)、C1(大港區(qū)域循環(huán)水系統(tǒng)處理水體)、C2(大港區(qū)域循環(huán)水系統(tǒng)養(yǎng)殖水體1)、Cb(大港區(qū)域循環(huán)水系統(tǒng)病魚專養(yǎng)池養(yǎng)殖水體)8個(gè)養(yǎng)殖區(qū)域的微生物,利用宏基因組技術(shù)對(duì)微生物多樣性進(jìn)行研究,初步獲取微生物遺傳信息。分析方法主要為對(duì)16S rRNA的高變區(qū)V3區(qū)序列進(jìn)行PCR擴(kuò)增,并對(duì)拼接后的序列進(jìn)行分析,包括OTUs(Operational Taxonomic Uints)的提取、alpha多樣性分析、beta多樣性分析等。通過分析可知8個(gè)養(yǎng)殖區(qū)域的微生物多樣性之間存在著一定的差異。
關(guān)鍵詞:半滑舌鰨養(yǎng)殖;水體微生物;多樣性分析
中圖分類號(hào): S966 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A DOI:10.11974/nyyjs.20160832010
目前野生半滑舌鰨數(shù)量驟減,大部分都為養(yǎng)殖品種。半滑舌鰨工廠化養(yǎng)殖是天津水產(chǎn)養(yǎng)殖的支柱產(chǎn)業(yè)之一。其經(jīng)濟(jì)價(jià)值高,適合工廠化養(yǎng)殖,在我國(guó)已形成了較大的養(yǎng)殖規(guī)模。半滑舌鰨的養(yǎng)殖環(huán)境與半滑舌鰨的生長(zhǎng)及病害發(fā)生息息相關(guān),因此分析工廠化養(yǎng)殖半滑舌鰨水環(huán)境中微生物的多樣性,對(duì)于研究半滑舌鰨的生長(zhǎng)和病害發(fā)生有著重要意義。
本文利用宏基因組技術(shù)對(duì)天津市工廠化養(yǎng)殖半滑舌鰨的水環(huán)境中的微生物多樣性進(jìn)行研究,初步獲取微生物遺傳信息,解讀半滑舌鰨養(yǎng)殖水環(huán)境中細(xì)菌優(yōu)勢(shì)類群及其豐度,揭示半滑舌鰨工廠化養(yǎng)殖水環(huán)境中的菌群特征,分析其菌群的組成和功能。探討?zhàn)B殖水環(huán)境微生物群落同魚病之間的關(guān)系,探求微生物群落對(duì)魚體健康的影響,以期從養(yǎng)殖池原位環(huán)境鑒定并篩選具有潛在益生作用的功能微生物。
1 實(shí)驗(yàn)方法
1.1 從樣品中提取總DNA后,針對(duì)16S rRNA的高變區(qū)V3區(qū)序列設(shè)計(jì)特異性引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增
對(duì)擴(kuò)增后的產(chǎn)物進(jìn)行提純,末端修復(fù),連上接頭、測(cè)序引物后,采用IlluminaMiSeq進(jìn)行測(cè)序。
1.2 分析流程
對(duì)于測(cè)序所得到的序列,通過去除低質(zhì)量、接頭污染等過程完成數(shù)據(jù)過濾,得到可信的目標(biāo)序列,用于后續(xù)分析。過濾后的序列,稱為Clean data或Clean Reads,將雙端測(cè)序相應(yīng)的read1與read2(read1與read2是指分別從5和3端2個(gè)方向測(cè)序所得到的序列片段)進(jìn)行拼接;利用軟件QIIME 1.8.0版本對(duì)拼接后的序列進(jìn)行分析,包括OTUs(Operational Taxonomic Uints)的提取、alpha多樣性分析、beta多樣性分析等。
2 結(jié)果分析
2.1 數(shù)據(jù)過濾統(tǒng)計(jì)
某些原始序列帶有adapter序列,或含有少量低質(zhì)量序列。經(jīng)過一系列數(shù)據(jù)過濾處理以去除雜質(zhì)數(shù)據(jù),得到Clean Reads。Raw Reads包含低質(zhì)量的序列、接頭污染的序列、含N比例大于5%的序列,以及Clean Reads。Clean Reads所占的比例越高,數(shù)據(jù)質(zhì)量越好,根據(jù)每種序列所占的比例繪制如下柱狀圖,可以直觀地反映數(shù)據(jù)過濾情況。
2.2 數(shù)據(jù)量統(tǒng)計(jì)
數(shù)據(jù)經(jīng)過過濾得到Clean Data,下圖為本項(xiàng)目全部樣本的Clean Data數(shù)據(jù)量統(tǒng)計(jì)圖,可以很直觀看出Clean Data數(shù)據(jù)量已滿足要求。
2.3 測(cè)序數(shù)據(jù)質(zhì)量值分布
為了反映Clean Data的質(zhì)量,以保證分析的準(zhǔn)確性,以Q30/Q20堿基百分比作為指標(biāo)進(jìn)行統(tǒng)計(jì),Q30/Q20堿基百分比越大說明測(cè)序錯(cuò)誤率小于0.1%/1%的堿基在總堿基中的比例越大。下圖以所有樣本為橫軸,以Q30百分比作為對(duì)應(yīng)的縱軸直觀地反映了最終過濾后的數(shù)據(jù)質(zhì)量,同時(shí)也反映了過濾后各個(gè)樣本的質(zhì)量的均一性(每個(gè)樣本的Q30堿基百分比相近)。
為了粗略反映測(cè)序過程中測(cè)序質(zhì)量的穩(wěn)定性,以Clean Reads的堿基位置作為橫坐標(biāo),每個(gè)位置的平均測(cè)序質(zhì)量值作為縱坐標(biāo),得到每個(gè)樣本測(cè)序質(zhì)量分布圖:
2.4 物種比較分析
在了解每個(gè)OTUs對(duì)應(yīng)的物種后,由于存在同一個(gè)物種具有多個(gè)不同的OTUs的情況。把具有相同物種分類的OTUs合并到一起,統(tǒng)計(jì)不同樣品間的物種成分變化,可以了解不同樣品之間的菌群多樣性。如下柱狀圖展示的是Phylum level下的各個(gè)樣品中的物種分布:
2.5 Alpha多樣性分析
Alpha多樣性展示的是樣品內(nèi)的菌群的多樣性情況,包括菌種的類別豐富度以及菌種數(shù)目的均勻度。Alpha多樣性越高即細(xì)菌種類越豐富,細(xì)菌數(shù)目越均勻則表示此群落愈加穩(wěn)定。根據(jù)4種不同的計(jì)算指標(biāo)在不同的取樣深度下求得了alpha多樣性chao1度量指標(biāo)的值,如下圖所示:
區(qū)域Bb的物種多樣性最強(qiáng),其次為C2和B1,區(qū)域Cb和A1的物種多樣性最差。
2.6 Beta多樣性分析
Beta多樣性展示的是樣品間的菌群的差異情況,根據(jù)樣品的物種分布,計(jì)算了unweightedUniFrac距離(只考慮各樣品中的物種類別差異)和weighted UniFrac距離(考慮了樣品之間物種類別差異以及各類別物種的豐度的差異)。
然后,對(duì)樣品間的距離矩陣進(jìn)行主成分分析,做出如下的三維PCA圖。
3 小結(jié)
對(duì)A1、A2、B1、B2、Bb、C1、C2、Cb8個(gè)養(yǎng)殖區(qū)域的微生物,利用宏基因組技術(shù)對(duì)微生物多樣性進(jìn)行研究,并對(duì)拼接后的序列進(jìn)行分析(OTUs(Operational Taxonomic Uints)的提取、alpha多樣性分析、beta多樣性分析等),各個(gè)區(qū)域的物種多樣性之間存在著一定的差異,其中區(qū)域Bb的物種多樣性最強(qiáng),C2和B1次之,區(qū)域Cb和A1的物種多樣性最差。
參考文獻(xiàn)
[1]Pei,A. Y.et al.Diversity of 16S rRNA genes within individual prokaryotic genomes[J].Applied and Environmental Microbiology,2010(76):3886-3897 .
[2]Vasileiadis,S.et al.Soil bacterial diversity screening using single 16S rRNA gene v regions coupled with Multi-Million read generating sequencing technologies[J].PLoS ONE,2012(7):e42671.
[3]Caporaso,J. G. et al.QIIME allows analysis of high-throughput community sequencing data[J]. Nat Meth,2010(7):335-336.
[4]Ahn,J.et al.Human gut microbiome and risk for colorectal cancer[J].Journal of the National Cancer Institute,2013(105):1907-1911.
[5]Adler,C.J.et al.Sequencing ancient calcified dental plaque shows changes in oral microbiota with dietary shifts of the neolithic and industrial revolutions[J].Nat Genet,2013(45):450-455.
[6]Zhang,J.Kobert,K.Flouri,T.&Stamatakis,A. PEAR:a fast and accurate illumina Paired-End reAdmergeR[J].Bioinformatics,2013(30):btt593-620.