薛　山

(閩南師范大學(xué)生物科學(xué)與技術(shù)學(xué)院，福建 漳州　363000)

?

柑橘皮渣中非水溶性抗氧化膳食纖維提取工藝優(yōu)化

薛山

(閩南師范大學(xué)生物科學(xué)與技術(shù)學(xué)院，福建 漳州363000)

用酶法提取榨汁后剩余柑橘皮渣中的非水溶性抗氧化膳食纖維(IADF)，并以提取物對(duì)DPPH自由基的清除能力作為抗氧化指標(biāo)進(jìn)行單因素和響應(yīng)曲面優(yōu)化試驗(yàn)。結(jié)果表明：在料液比33.58∶1(mL/g)，蛋白酶用量0.21 mL/g·皮渣，淀粉酶作用溫度67 ℃，糖化酶作用溫度64 ℃條件下，所提取的IADF抗氧化效果最顯著，為3.520 mmol Trolox /100 g IADF。

柑橘；皮渣；非水溶性膳食纖維；抗氧化

柑橘是世界第一大、中國(guó)第二大水果。在柑橘加工過(guò)程會(huì)生成40%～50%的皮渣副產(chǎn)物，其中橘皮(黃皮層和白皮層)幾乎為全果的25%[1]。膳食纖維(dietary fiber，DF)憑借其特殊的結(jié)構(gòu)組成和生理功效得到了學(xué)術(shù)界的廣泛關(guān)注。作為人體必不可少的“第七營(yíng)養(yǎng)素”，膳食纖維因其豐富而獨(dú)特的性質(zhì)備受關(guān)注[2]。然而，盡管諸多學(xué)者有研究果蔬(柑橘)[3-4]以及糧食谷物[5-6]中的膳食纖維提取，但是均以提取率為最終的指標(biāo)，而忽略了膳食纖維中多酚物質(zhì)所賦予其的抗氧化性。據(jù)報(bào)道[7-8]，柑橘果皮中的膳食纖維中含有豐富的生物活性物質(zhì)，主要包括酚酸和黃酮類化合物等自然抗氧化物質(zhì)。

1998年，Saura-Calixto[9]基于此提出了一個(gè)新概念——抗氧化膳食纖維(antioxidant dietary fiber，ADF)，即大量天然抗氧化劑結(jié)合到DF基質(zhì)中的產(chǎn)物。ADF按水中溶解性的不同分為水溶性膳食纖維(soluble antioxidant dietary fiber，SADF)和非水溶性膳食纖維(insoluble antioxidant dietary fiber，IADF)，其中IADF中富含黃酮類(花色素苷、黃烷、黃酮、黃酮醇、黃烷醇)、酚酸(沒(méi)食子酸、阿魏酸)以及縮合單寧(聚合的原花色素和高分子量水解鞣質(zhì))等天然抗氧化成分[10-12]。目前，植物性膳食纖維已被證實(shí)具有顯著的抗氧化活性[13]，并且已廣泛應(yīng)用于食品保鮮與功能食品研發(fā)等領(lǐng)域[14-15]。國(guó)外對(duì)于抗氧化膳食纖維的研究多集中于葡萄皮渣[10]和芒果皮渣[16]的應(yīng)用研究，而有關(guān)柑橘皮渣中ADF的報(bào)道較少。從國(guó)內(nèi)的研究情況來(lái)看，已有學(xué)者探討了植物性食品中膳食纖維的抗氧化活性[14]，但ADF這一概念僅在諶小立等[13]綜述中有提出，而針對(duì)柑橘皮渣中IADF的研究暫未查閱到。此外，關(guān)于IADF的提取，國(guó)內(nèi)外學(xué)者多以提取率為指標(biāo)，而本試驗(yàn)以IADF的抗氧化性為基準(zhǔn)，對(duì)IADF的提取方法進(jìn)行優(yōu)化，具有一定的創(chuàng)新性。本研究擬從ADF角度出發(fā)，以DPPH清除率為指標(biāo)初步確定IADF的提取工藝，并通過(guò)單因素試驗(yàn)和響應(yīng)曲面試驗(yàn)優(yōu)化提取工藝，以期為日后柑橘皮渣中IADF的成分測(cè)定、提取利用及功能研究提供依據(jù)和參考。

1　材料與方法

1.1材料與儀器

1.1.1材料與試劑

柑橘皮渣：重慶市柑橘研究所；

α-淀粉酶(中溫)：酶活1 500 U/g，北京奧博生物技術(shù)有限公司；

酸性蛋白酶和糖化酶：酶活分別為3萬(wàn)U/g和10萬(wàn)U/g，上海博蘊(yùn)生物科技有限公司；

1, 1-二苯基苦基苯肼(DPPH)：分析純，美國(guó)Sigma公司；

甲醇、HCl、丙酮、無(wú)水乙醇、Na2CO3、NaOH、Na2HPO4和NaH2PO4：分析純，成都市科龍化工試劑廠。

1.1.2主要儀器設(shè)備

數(shù)顯恒溫磁力攪拌器：85-2型，金壇市易晨?jī)x器制造有限公司；

臺(tái)式離心機(jī)：TGL-16G型，上海安亭科學(xué)儀器廠；

循環(huán)水式多用真空泵：SHB-III型，鄭州長(zhǎng)城科工貿(mào)有限公司；

鼓風(fēng)烘箱：DHG-9240A型，上海一恒科技有限公司；

可見(jiàn)分光光度計(jì)：722型，上海現(xiàn)科分光儀器有限公司；

電熱恒溫水浴鍋：HWS-26型，上海齊欣科學(xué)儀器有限公司；

旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器：RE-5298型，上海亞榮生化儀器廠。

1.2試驗(yàn)方法

1.2.1柑橘皮渣預(yù)處理將柑橘皮渣切碎(1 cm×1 cm)，80 ℃燙漂30 s，離心脫水后，于65 ℃鼓風(fēng)烘箱內(nèi)干燥48 h。干燥后的皮渣用粉碎機(jī)粉碎，過(guò)60目篩，密封于塑料袋中，置于陰涼干燥處備用。

1.2.2柑橘皮渣化學(xué)組成的測(cè)定

(1) 水分：參照文獻(xiàn)[17]。

(2) 總灰分：參照文獻(xiàn)[18]1-2。

(3) 脂類：參照文獻(xiàn)[18]43-46。

(4) 粗蛋白：參照文獻(xiàn)[18]34-42。

(5) 可溶性糖：參照文獻(xiàn)[19]。

(6) 可提多酚：根據(jù)Sánchez-Alonso等[10]方法，修改如下：樣品液的制備：稱取1.000 0 g柑橘皮渣粉(干重)，加入40 mL甲醇/水(體積比1∶1)，用HCl(3 mol/L)調(diào)pH至2.0。將混合體系在室溫?cái)嚢? h，之后以2 500×g離心10 min，收集上清液。向所得殘?jiān)屑尤?0 mL丙酮/水(體積比7∶3)，在室溫下振蕩1 h，再以2 500×g離心10 min，重復(fù)兩次操作。將所得上清液合并，于50 ℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)，冷凍干燥后溶解于10 mL無(wú)水乙醇。

多酚的測(cè)定：取樣品液0.1 mL，加入2 mL蒸餾水和1 mL Folin-Ciocalteu試劑(稀釋10倍)，室溫靜置6 min后，向混合體系中加入0.9 mL 75 mg/mL的Na2CO3溶液，定容至10 mL?；旌象w系靜置2 h后，于波長(zhǎng)750 nm處測(cè)定吸光值，用蒸餾水作為空白對(duì)照?？偠喾拥牧坑脹](méi)食子酸當(dāng)量(GAE，mg/g·干重)來(lái)表示。

(7) 水溶性膳食纖維：參照AOAC法[20]。

(8) 非水溶性抗氧化膳食纖維的制備：參照Hassan等[20]方法，修改如下：稱取脫脂的干燥樣1.000 0 g，溶于50 mL pH 6.0(0.2 mol/L)的PBS中，加入0.2 mL的α-淀粉酶溶液(50 mgα-淀粉酶溶解于1 mL pH 6.0的PBS中)，蓋上鋁箔，于60 ℃磁力攪拌15 min，然后從水浴中移出，冷卻到室溫。用0.325 mol/L的鹽酸調(diào)節(jié)混合體系pH至2.0～3.0，加入0.2 mL的蛋白酶溶液(50 mg蛋白酶溶解于1 mL pH 6.0的PBS中)，蓋上鋁箔，于38 ℃磁力攪拌0.5 h，去除樣品中的蛋白質(zhì)。待樣品冷卻至室溫，用0.275 mol/L的NaOH(約10 mL)將上述溶液pH調(diào)節(jié)至4.0～4.5，加入0.3 mL/g糖化酶溶液1 mL，60 ℃水浴30 min，將所得的混合體系過(guò)濾，過(guò)濾后所得的殘?jiān)謩e用蒸餾水、丙酮洗滌，于105 ℃烘至恒重即可(最終的結(jié)果應(yīng)當(dāng)用樣品中殘留的不能消化的蛋白質(zhì)的含量和灰分的含量進(jìn)行校正，總膳食纖維是消化后的殘留物的質(zhì)量減去不能消化的蛋白質(zhì)和灰分質(zhì)量的差值)。

1.2.3單因素試驗(yàn)

(1)α-淀粉酶作用時(shí)間：考察α-淀粉酶作用時(shí)間分別為5，10，15，20，25 min時(shí)，對(duì)IADF抗氧化性的影響。其他反應(yīng)條件為：料液比50∶1(mL/g)，α-淀粉酶溶液用量0.1 mL/g·皮渣，α-淀粉酶作用溫度60 ℃，用HCl調(diào)節(jié)pH至2.0～3.0，蛋白酶溶液用量0.1 mL/g·皮渣，38 ℃水浴30 min，NaOH調(diào)節(jié)溶液pH至4.2～4.6，糖化酶溶液0.3 mL/g，60 ℃水浴30 min。

(2) 蛋白酶作用時(shí)間：考察38 ℃蛋白酶作用時(shí)間分別為5，10，15，20，25 min時(shí)，對(duì)IADF抗氧化性的影響。α-淀粉酶作用時(shí)間為15 min，其他反應(yīng)條件同1.2.3(1)。

(3) 糖化酶作用時(shí)間：考察60 ℃糖化酶作用時(shí)間分別5，10，15，20，25 min時(shí)，對(duì)IADF抗氧化性的影響。蛋白酶用作用時(shí)間為10 min，其他反應(yīng)條件同1.2.3(2)。

(4)α-淀粉酶溶液用量：考察α-淀粉酶溶液用量分別為0.05，0.10，0.15，0.20，0.25 mL/g·皮渣時(shí)，對(duì)IADF抗氧化性的影響。糖化酶作用時(shí)間為10 min，其他反應(yīng)條件同1.2.3(3)。

(5) 酸性蛋白酶溶液用量：考察蛋白酶溶液用量分別為0.05，0.10，0.15，0.20，0.25 mL/g·皮渣時(shí)，對(duì)IADF抗氧化性的影響。α-淀粉酶溶液用量為0.1 mL/g·皮渣，其他反應(yīng)條件同1.2.3(4)。

(6) 糖化酶用量：考察糖化酶溶液用量分別為0.05，0.10，0.15，0.20，0.25 mL/g·皮渣時(shí)，對(duì)IADF抗氧化性的影響。酸性蛋白酶溶液用量為0.20 mL/g·皮渣，其他反應(yīng)條件同1.2.3(5)。

(7) 料液比：考察料液比分別為30∶1，35∶1，40∶1，45∶1，50∶1(mL/g)時(shí)，對(duì)IADF抗氧化性的影響。糖化酶溶液用量為0.15 mL/g·皮渣，其他反應(yīng)條件同1.2.3(6)。

(8)α-淀粉酶作用溫度：考察α-淀粉酶作用溫度分別為50，55，60，65，70 ℃時(shí)，對(duì)IADF抗氧化性的影響。其他反應(yīng)條件同1.2.3(7)，料液比為35∶1(mL/g)。

(9) 糖化酶作用溫度：考察糖化酶作用溫度分別為50，55，60，65，70 ℃時(shí)，對(duì)IADF抗氧化性的影響。α-淀粉酶作用溫度為65 ℃，其他反應(yīng)條件同1.2.3(8)。

1.2.4試驗(yàn)優(yōu)化設(shè)計(jì)采用中心組合試驗(yàn)設(shè)計(jì)(central composite design，CCD)原理，結(jié)合單因素試驗(yàn)結(jié)果，以抗氧化性為響應(yīng)值，對(duì)α-淀粉酶溶液用量、α-淀粉酶作用時(shí)間、蛋白酶作用時(shí)間、糖化酶溶液用量和糖化酶作用時(shí)間進(jìn)行優(yōu)化。在α-淀粉酶用量(0.1 mL/g·皮渣)與作用時(shí)間(15 min)、蛋白酶作用時(shí)間(10 min)、糖化酶用量(0.15 mL/g·皮渣)與作用時(shí)間(10 min)固定條件下，考察料液比、酸性蛋白酶用量、淀粉酶作用溫度、糖化酶作用溫度對(duì)DPPH自由基清除率的影響。

1.2.5非水溶性抗氧化膳食纖維對(duì)DPPH·的清除能力

采用以下基于固體粉末抗氧化測(cè)定的方法對(duì)IADF中結(jié)合態(tài)多酚的抗氧化性進(jìn)行評(píng)價(jià)。試驗(yàn)均以溶于乙醇的Trolox溶液作為標(biāo)準(zhǔn)物繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。樣品抗氧化能力用Trolox等價(jià)抗氧化能力(Trolox equivalent antioxidant capacity，TEAC)表示，即Trolox μmol/g IADF(干重)，乙醇作為空白對(duì)照。

測(cè)定方法根據(jù)Serpen等[21]報(bào)道，修改如下：取10 mg IADF，加入1.7 mL DPPH·試劑以進(jìn)行反應(yīng)[0.024 mg/mL的DPPH乙醇(95%)溶液]。測(cè)定操作以DPPH·的加入為起始，待混合物反應(yīng)0，15，25 min時(shí)分別振蕩3 min，使得樣品與DPPH試劑充分反應(yīng)。將該混合物以9 200×g離心2 min，收集上清液于734 nm處比色，測(cè)定吸光值。測(cè)定總時(shí)間準(zhǔn)確控制為30 min。

1.2.6數(shù)據(jù)處理用SPSS16.0和Design Expert 7.1 進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。方差分析(P<0.05為顯著差異)，用Turkey’s HSD進(jìn)行分析，數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差表示。

2　結(jié)果與討論

2.1柑橘皮渣中的化學(xué)成分

由表1可知，柑橘皮渣中總可提取酚含量有(2.56±0.03)%，可溶性糖含量約占35%，基本與前人結(jié)果一致。膳食纖維含量近80%，其中可溶性膳食纖維略高于王菁等[22]的研究結(jié)果，可能是此次試驗(yàn)材料不是純的柑橘皮，還包括榨汁后的瓤肉。

表1　柑橘皮渣中的化學(xué)成分

2.2優(yōu)化試驗(yàn)結(jié)果

根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果，按照中心組合試驗(yàn)設(shè)計(jì)，設(shè)定不同料液比、蛋白酶加入量、淀粉酶作用溫度以及糖化酶作用溫度(見(jiàn)表2)，進(jìn)行四因素五水平的優(yōu)化試驗(yàn)，結(jié)果見(jiàn)表3。對(duì)表3數(shù)據(jù)進(jìn)行多元回歸擬合，獲得抗氧化性(Y)的二次多項(xiàng)回歸方程為：

(1)

表2　中心組合設(shè)計(jì)因素水平表

表3　抗氧化性的中心組合試驗(yàn)方案與結(jié)果

由圖1(a)可知，在料液比小于35.7∶1(mL/g)時(shí)，隨著料液比的增加，產(chǎn)品抗氧化性IADF的抗氧化性增加。當(dāng)料液比大于35.7∶1(mL/g)以后，抗氧化性隨著其用量增加有降低的趨勢(shì)。同時(shí)，隨著蛋白酶量的增加，更有利于IADF的提取，但當(dāng)酶加入過(guò)多時(shí)(>0.21 mL/g·皮渣)，抗氧化性出現(xiàn)下降的趨勢(shì)。

由圖1(b)可知，當(dāng)料液比一定時(shí)，淀粉酶作用溫度的升高能夠促進(jìn)所提IADF的抗氧化性；當(dāng)?shù)矸勖缸饔脺囟纫欢〞r(shí)，隨著料液比的增加，所提IADF的抗氧化性明顯增高。在料液比34.68∶1(mL/g)，淀粉酶作用溫度達(dá)66.6 ℃時(shí)，IADF的DPPH·清除率出現(xiàn)最大值。

由圖1(c)可知，當(dāng)料液比一定時(shí)，隨著糖化酶作用溫度的升高，所提IADF的抗氧化性呈上升趨勢(shì)；但溫度過(guò)高后，可能會(huì)導(dǎo)致DF中的抗氧化物質(zhì)如酚類被溶出，或者所提IADF中的結(jié)合酚被破壞。

圖1　料液比、蛋白酶用量、淀粉酶作用溫度、糖化酶作用溫度交互響應(yīng)面圖

方差來(lái)源平方和自由度均方F值P值模型23.81141.707.700.0002**X11.2011.205.410.0345*X21.3611.366.150.0255*X32.7812.7812.580.0029**X40.09110.0910.410.5299X1X20.3310.331.500.2400X1X32.2812.2810.340.0058**X1X40.6010.602.720.1198X2X30.09610.0960.430.5200X2X40.2110.210.930.3494X3X43.6713.6716.620.0010**X211.6711.677.560.0149*X222.0312.039.210.0084**X231.7211.727.770.0138*X249.1419.1441.38<0.0001**殘差3.31150.22失擬2.97100.303.610.0596純誤差0.3450.069總變異27.1229

?**為差異極顯著(P<0.01)；*為差異顯著(P<0.05)。

由圖1(d)可知，當(dāng)?shù)矸勖缸饔脺囟瓤刂圃?6.5 ℃以下時(shí)，提高蛋白酶加入量，IADF的抗氧化性有上升的趨勢(shì)，當(dāng)?shù)鞍酌赣昧窟^(guò)高，會(huì)阻礙所提IADF抗氧化性的發(fā)揮。

由圖1(e)可知，當(dāng)?shù)鞍酌讣尤肓恳欢〞r(shí)，隨著糖化酶作用溫度的增加，能夠有效地提取IADF，并且很可能對(duì)其結(jié)合的酚類等抗氧化物質(zhì)起到活化作用。

由圖1(f)可知，淀粉酶作用溫度一定時(shí)，隨著糖化酶作用溫度的升高，IADF的抗氧化性上升。當(dāng)?shù)矸勖傅淖饔脺囟燃s在67 ℃，糖化酶作用溫度約在64 ℃時(shí)，IADF的DPPH清除率出現(xiàn)最大值。

利用Design Expert 7.0軟件進(jìn)行工藝參數(shù)的優(yōu)化，得優(yōu)化條件為：料液比33.58∶1(mL/g)，蛋白酶用量0.21 mL/g·皮渣，淀粉酶作用溫度67 ℃，糖化酶作用溫度64 ℃。對(duì)此優(yōu)化結(jié)果進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)，測(cè)得產(chǎn)品抗氧化性為3.520 mmol Trolox/100 g IADF，與預(yù)測(cè)值(3.556 mmol Trolox/100 g IADF)基本一致，再次驗(yàn)證了回歸方程的正確性(相對(duì)誤差1%)。

ADF的抗氧化性主要依賴于其中所含的多酚類物質(zhì)，這些多酚物質(zhì)分為可提取多酚(EPP)和不可提取多酚(NEPP)，其中EPP較易提取，且具有很強(qiáng)的抗氧化活性[10]，而NEPP一般與膳食纖維、細(xì)胞壁、蛋白質(zhì)結(jié)合緊密，難溶于有機(jī)溶劑和水。多數(shù)學(xué)者[7,23]將抗氧化膳食纖維的抗氧化功能歸結(jié)于其中的EPP，但也有學(xué)者[12]通過(guò)研究其中的NEPP發(fā)現(xiàn)，NEPP 猝滅過(guò)氧化自由基方面比單體酚有效15～30倍。目前來(lái)講，文獻(xiàn)對(duì)EPP和NEPP活性的報(bào)道不完全一致，推測(cè)其原因可能是與其中所含酚類的種類和含量有關(guān)。

3　結(jié)論

酶法能夠有效提取柑橘皮渣中的IADF。優(yōu)化試驗(yàn)表明料液比33.58∶1(mL/g)，蛋白酶用量0.21 mL/g·皮渣，淀粉酶作用溫度67 ℃，糖化酶作用溫度64 ℃條件下，所提取的IADF抗氧化效果最顯著，為3.520 mmol Trolox /100 g IADF。該研究從“ADF”這一概念出發(fā)，以IADF的抗氧化性為指標(biāo)進(jìn)行工藝優(yōu)化，此內(nèi)容尚未見(jiàn)有報(bào)道。因此，本課題的研究將為包括柑橘皮渣在內(nèi)的植物性食品中IADF及其產(chǎn)品的研發(fā)、應(yīng)用與推廣提供理論參考和創(chuàng)新依據(jù)。除此之外，由于柑橘皮渣中IADF抗氧化活性可能與其中所含的酚類以及吸附螯合有機(jī)物的理化特性相關(guān)，具體的作用機(jī)理也將是日后進(jìn)一步研究的方向。

[1] 付復(fù)華, 李忠海, 單楊, 等. 柑橘皮渣綜合利用技術(shù)研究進(jìn)展[J]. 食品與機(jī)械, 2009, 25(5): 178-184.

[2] 趙二勞, 王璐. 膳食纖維的保健功能及其制備研究進(jìn)展[J]. 食品與機(jī)械, 2011, 27(3): 165-168.

[3] 曾祥燕, 趙良忠. 桔子皮渣水溶性膳食纖維提取工藝的優(yōu)化[J]. 食品與機(jī)械, 2012, 28(1): 193-196.

[4] 彭婭, 彭榮, 殷鐘意, 等. 柑橘皮渣水溶性膳食纖維的檸檬酸提取工藝優(yōu)化[J]. 食品工業(yè)科技, 2015, 36(2): 243-247.

[5] 杜振亞, 陳復(fù)生, 布冠好. 小麥麩皮及其保健功能研究進(jìn)展[J]. 食品與機(jī)械, 2015, 31(1): 253-256.

[6] 張根生, 葛英亮, 聶志強(qiáng), 等. 馬鈴薯渣不溶性膳食纖維超微粉碎改性工藝優(yōu)化[J]. 食品與機(jī)械, 2015, 31(6): 186-189.

[7] CHAU C, HUANG Y. Comparison of the chemical composition and physicochemical properties of different fibre prepared from de peel of Citrus sinensis L. cv. Liucheng[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry,2003, 51(9): 2 615-2 618.

[8] FIGUEROLA F, HURTADO M, ESTEVEZ A, et al. Fiber concentrates from apple pomace and citrus peel as potential fibre sources for food enrichment[J]. Food Chemistry, 2005, 91(3): 395-401.[9] 薛菲, 陳燕. 膳食纖維與人類健康的研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)食品添加劑, 2014(2): 208-213.

[11] SANCHEZ-ALONSO I, BORDERIAS A J, LARSSON K, et al. Inhibition of hemoglobin-mediated oxidation of regular and lipid-forti-fied washed cod mince by a white grape dietary fiber[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2007, 55(13): 5 299-5 305.

[13] 諶小立, 趙國(guó)華. 抗氧化膳食纖維研究進(jìn)展[J]. 食品科學(xué), 2009, 30(5): 291-294.

[14] 周小理, 錢韻芳, 周一鳴. 植物性膳食纖維抗氧化活性的研究與應(yīng)用[J]. 食品與機(jī)械, 2010, 26(3): 158-160.

[15] 王思遠(yuǎn), 劉學(xué)銘, 陳智毅, 等. 富含膳食纖維的柚皮粉制備及其特性研究[J]. 現(xiàn)代食品科技, 2014, 30(11): 170-174.

[16] VERGARA V N, GRANADOS P E, AGAMA A E, et al.fibre concentrate from mango fruit: characterization, associated antioxidant capacity and application as a bakery product ingredient[J]. LWT-Food Science and Technology, 2007, 40(4): 722-729.[17] Association of Official Analytical Chemists. AOAC, Official Methods of Analysis, 18th ed[S]. USA, Gaithersburg: [s. n.], 2005.[18] 全國(guó)文獻(xiàn)工作標(biāo)準(zhǔn)化委員會(huì)第七分委會(huì). GB/T 5009—2010食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)匯編[S]. 北京: 中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)出版社, 2010.

[19] LIOBERA A, CANELLAS J. Dietary fibre content and antioxidant activity of manto negro red grape (vitis vinifera ): pomace and stem[J]. Food Chemistry, 2007, 101(2): 659-666.

[20] HASSAN F A, ISMAIL A, HAMID A A, et al. Characterisation of fibre-rich powder and antioxidant capacity of Mangifera pajang K. fruit peels[J]. Food Chemistry, 2011, 126(1): 283-288.[21] SERPEN A, CAPUANO E, FOGLIANO V, et al. A new procedure to measure the antioxidant activity of insoluble food components[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2007, 55(19): 7 676-7 681.

[22] 王菁, 蒲彪, 伍紅梅. 柑橘果皮中主要功能性成分含量測(cè)定[J]. 食品工業(yè)科技, 2010, 31(3): 367-369.

[23] PéREZ-JIMéNEZ J, SERRANO J, TABERNEROM, et a1. Effects of grape antioxidant dietary fiber in cardiovascular disease risk factors[J]. Nutrition, 2008, 24(7/8): 646-653.

The optimization of extraction process of insoluble antioxidant dietary fiber from orange pomace

XUE Shan

(College of Biological Science and Technology, Minnan normal university, Zhangzhou, Fujian 363000, China)

The enzymes-chemical method was used to extract the insoluble antioxidant dietary fiber (IADF) from the remaining orange pomace after oppressing juice. The single factor experiment and response surface optimization have carried out considering the clearance rate of DPPH free radical as the indicator. The results of response surface showed that the clearance rate of free radicals was best in the condition of liquid ratio 33.58 mL/g, protease dosage of 0.21 mL/g, amylase temperature of 67 ℃ and glucoamylase temperature of 64 ℃, and highest value was up to 3.520 mmol Trolox/100 g IADF.Key words: orange; pomace; insoluble dietary fiber; antioxidant

2015年福建省科協(xié)科技思想庫(kù)研究項(xiàng)目(決策咨詢類)重點(diǎn)項(xiàng)目(編號(hào)：FJKX-A1520)；閩南師范大學(xué)博士科研啟動(dòng)基金(編號(hào)：2006L21513)

薛山(1988—)，女，閩南師范大學(xué)講師，博士。

E-mail: yixunchenglion@sina.com

2015—12—30

10.13652/j.issn.1003-5788.2016.08.037