亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        兩種擬南芥CBF2基因突變體的鑒定與分析

        2016-09-23 01:09:31劉曉東焦彬彬代培紅蘇秀娟
        華北農(nóng)學(xué)報(bào) 2016年4期
        關(guān)鍵詞:抗凍突變體擬南芥

        劉曉東,劉 超,焦彬彬,代培紅,蘇秀娟,李 月

        (1.新疆農(nóng)業(yè)大學(xué) 農(nóng)學(xué)院,新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)業(yè)生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,新疆 烏魯木齊 830052;2.上海出入境檢驗(yàn)檢疫局,上?!?00135)

        ?

        兩種擬南芥CBF2基因突變體的鑒定與分析

        劉曉東1,劉超1,焦彬彬2,代培紅1,蘇秀娟1,李月1

        (1.新疆農(nóng)業(yè)大學(xué) 農(nóng)學(xué)院,新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)業(yè)生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,新疆 烏魯木齊830052;2.上海出入境檢驗(yàn)檢疫局,上海200135)

        低溫是主要的逆境脅迫之一,限制了作物的地理分布和產(chǎn)量。篩選理想的抗凍靶基因用于分子育種對(duì)于穩(wěn)定農(nóng)業(yè)生產(chǎn)具有重要意義。CBF調(diào)節(jié)子在植物抗凍反應(yīng)中扮演主要的角色,CBF2是CBF調(diào)節(jié)子的組成成分之一,在抗凍反應(yīng)中扮演負(fù)調(diào)控的作用。采用qRT-PCR和常規(guī)農(nóng)藝性狀測(cè)定法對(duì)2種CBF2基因突變體cbf2-1和cbf2-2進(jìn)行了多項(xiàng)指標(biāo)的鑒定,結(jié)果發(fā)現(xiàn)在這2種突變體中CBF2基因的表達(dá)存在不同程度的缺陷,cbf2-1中CBF2基因受低溫誘導(dǎo)表達(dá),但表達(dá)量與對(duì)照相比,明顯下降;而cbf2-2中CBF2基因誘導(dǎo)表達(dá)的效應(yīng)完全喪失??箖鲂詸z測(cè)結(jié)果顯示CBF2基因的表達(dá)量越低,其突變體植株的抗凍性越強(qiáng),同時(shí)冷脅迫后冷響應(yīng)的下游基因表達(dá)量也越高,更重要的是,雖然這2種CBF2基因突變體抗凍性明顯增強(qiáng),但與野生型植株相比,其開花時(shí)間和單株種子產(chǎn)量并沒有明顯變化。以上結(jié)果表明CBF2是一種可以利用基因組編輯技術(shù)進(jìn)行作物抗凍育種的理想候選靶基因,可以利用最新的基因組編輯技術(shù)進(jìn)行作物抗凍育種研究。

        擬南芥;CBF2;抗凍;負(fù)調(diào)控

        低溫顯著地限制了植物的地理分布和生長季節(jié),對(duì)作物的產(chǎn)量和品質(zhì)產(chǎn)生不利影響。植物為了生存,在長期進(jìn)化過程中產(chǎn)生了一套復(fù)雜的基于低溫響應(yīng)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑的調(diào)控機(jī)制,以增強(qiáng)自身的抗凍性。轉(zhuǎn)錄因子在逆境信號(hào)傳導(dǎo)中起重要作用。其通過特定功能結(jié)構(gòu)域結(jié)合下游抗逆基因的啟動(dòng)子,誘導(dǎo)或抑制目的基因表達(dá),使植物在生理生化方面對(duì)逆境做出適應(yīng)性調(diào)整,最終通過代謝調(diào)控,阻止細(xì)胞發(fā)生損傷,增強(qiáng)植物的抗逆性,包括抗凍性[1]。

        DREB/CBF(Dehydration-responsive-element-binding protein/C-repeat binding factors )蛋白,屬于APETALA2(AP2)轉(zhuǎn)錄因子家族,可識(shí)別下游調(diào)控基因啟動(dòng)子上的CRT/DRE(C-repeat/dehydration-responsive element)元件,進(jìn)而調(diào)控靶基因的表達(dá)[2-3]。CBF通路是擬南芥抗凍調(diào)控機(jī)制中了解最清楚的一個(gè)途徑[4-5],在抗凍反應(yīng)中扮演主要的角色,也稱CBF調(diào)節(jié)子[3]。該調(diào)節(jié)子包括3個(gè)轉(zhuǎn)錄因子基因,分別是CBF1、CBF2和CBF3[6],也分別稱為DREB1b、DREB1c和DREB1a[3],這3個(gè)基因中任何一個(gè)過量表達(dá)都能改變上百個(gè)低溫響應(yīng)基因的表達(dá),提高植物的抗凍性[7-9]。這3個(gè)基因在擬南芥基因組上以串聯(lián)的方式連接在一起,在低溫處理幾分鐘后就能被誘導(dǎo)表達(dá)[10-11]。然而他們自身的啟動(dòng)子上并不包含低溫誘導(dǎo)的CRT/DRE元件[12]。到目前為止,CBF調(diào)節(jié)子提高抗凍性的分子機(jī)制并不完全清楚,已研究發(fā)現(xiàn)涉及抗凍蛋白基因的表達(dá)[13-14]和一系列低分子量冷凍保護(hù)劑的合成[15-17]。

        擬南芥CBF1、CBF2和CBF3之間氨基酸序列相似性高達(dá)85%,而且這3個(gè)基因超表達(dá)后都能提高擬南芥的抗凍性[16],然而進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),他們的功能并不相同。首先CBF1和CBF3受低溫誘導(dǎo)表達(dá)的時(shí)間早于CBF2,而且發(fā)現(xiàn)CBF2負(fù)調(diào)控了CBF1和CBF3基因的表達(dá)[18],但CBF1或CBF3并沒有負(fù)調(diào)控其他2個(gè)CBF基因;其次CBF1和CBF3功能缺陷突變體的抗凍性明顯減弱,這與它們超表達(dá)后抗凍性增強(qiáng)的結(jié)果相呼應(yīng)[12]。然而CBF2功能缺陷突變體cbf2的抗凍性卻顯著提高,并且發(fā)現(xiàn)可能是通過同時(shí)提高CBF1和CBF3基因的表達(dá)量增強(qiáng)了植物的抗凍性[17]。與CBF1或CBF3組成型過量表達(dá)結(jié)果不同的是,CBF1或CBF3過量表達(dá)后,植株的抗凍性明顯提高但生長發(fā)育受到嚴(yán)重抑制[16,19-20],而cbf2突變體的抗凍性也顯著提高,但植株正常的生長發(fā)育并沒有受到任何明顯影響[18]。上述研究結(jié)果揭示出CBF2在植物抗凍反應(yīng)中的負(fù)調(diào)控功能。本試驗(yàn)鑒定了2種CBF2功能不同缺陷程度的突變體,進(jìn)一步研究CBF2與植物抗凍性之間的關(guān)系以及在作物抗凍育種中的潛在價(jià)值。結(jié)果發(fā)現(xiàn)CBF2功能缺陷程度較高的突變體,植株的抗凍性更強(qiáng),而且生長發(fā)育以及單株種子產(chǎn)量并沒有受到明顯影響。試驗(yàn)結(jié)果表明,CBF2可以作為作物抗凍育種的候選靶基因。

        1 材料和方法

        1.1試驗(yàn)材料

        1.1.1植物材料野生型擬南芥(Arabidopsisthaliana,Columbia ecotype)為新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)業(yè)生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室保存。CBF2(At4G25470)基因的T-DNA插入突變體Salk_009689和Salk_073208購自擬南芥資源中心(ArabidopsisBiological Resource Center)。

        1.1.2生化試劑Easy Pure Plant Genomic DNA Kit、Easy Pure RNA Kit、TransScript First-Strand cDNA Synthesis SuperMix、TransStart Top Green qPCR SuperMix、EasyTaqDNA Polymerase、dNTP、DNA標(biāo)準(zhǔn)分子量均購自北京全式金生物技術(shù)有限公司,其他生化試劑均為國產(chǎn)分析純。引物合成由上海杰李生物技術(shù)有限公司完成。

        1.2試驗(yàn)方法

        1.2.1植物培養(yǎng)將野生型Col-0和突變體擬南芥種子用6%次氯酸鈉消毒5 min后,用無菌水清洗5次,播種到1/2MS 培養(yǎng)基中,于4 ℃黑暗處理3 d,然后轉(zhuǎn)到22 ℃,14 h光照/10 h黑暗,光照強(qiáng)度6 000~8 000 lx的環(huán)境中培養(yǎng)7 d。將其移栽到蛭石∶泥炭土∶珍珠巖=6∶3∶1比例混合的培養(yǎng)土中繼續(xù)培養(yǎng)。

        1.2.2擬南芥AtCBF2突變純合體的鑒定將擬南芥新鮮幼苗葉片置于液氮中研磨,按照Easy Pure Plant Genomic DNA Kit操作步驟提取葉片基因組DNA。根據(jù)http://signal.salk.edu/網(wǎng)站上查到Salk_009689和Salk_073208的T-DNA插入位點(diǎn)信息,設(shè)計(jì)基因特異引物L(fēng)P和RP與T-DNA的LBal,引物序列見表1。以基因組DNA為模板,分別以LP1/RP1和LBal/RP為組合引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,以野生型Col-0和突變體擬南芥基因組DNA為模板,采用EasyTaqDNA聚合酶擴(kuò)增,擴(kuò)增為20 μL體系:ddH2O 14 μL、10×Easy Taq Buffer 2 μL、2.5 mmol/L dNTP 2 μL、10 μmol/L正反向引物各0.5 μL、模板0.5 μL、EasyTaqDNA聚合酶 0.5 μL。PCR反應(yīng)條件為:94 ℃預(yù)變性3 min;94 ℃ 30 s,60 ℃ 30 s,72 ℃ 1 min,35個(gè)循環(huán)后72 ℃延伸10 min,PCR產(chǎn)物在1%的瓊脂糖凝膠電泳上檢測(cè)有無目的條帶。

        1.2.3野生型擬南芥和CBF2突變純合體低溫脅迫后基因轉(zhuǎn)錄水平分析將在上述培養(yǎng)條件下生長20 d的野生型Col-0和突變體擬南芥幼苗,進(jìn)行冷脅迫處理。處理方法為:擬南芥苗置于盛有水(4 ℃低溫預(yù)冷)的大燒杯中,放置于4 ℃培養(yǎng)箱,持續(xù)光照。于上述處理的0,1,3,6,12,24 h采集葉片樣品,迅速置于液氮冷凍,按照Easy Pure RNA Kit操作步驟提取RNA,按照TransScript First-Strand cDNA Synthesis SuperMix進(jìn)行cDNA合成。利用http://www.idtdna.com/Scitools/Applications/Primerquest/在線引物設(shè)計(jì)軟件進(jìn)行基因qRT-PCR引物的設(shè)計(jì),以擬南芥ACT2為內(nèi)參基因(表1)。根據(jù)TransStart Top Green qPCR SuperMix 說明書操作,反應(yīng)體系為cDNA 1 μL、10 μmol/L正反向引物各0.5 μL、Top Green qPCR Mix 10 μL、Passive Reference Dye 0.4 μL,超純水補(bǔ)至20 μL。利用ABI7500實(shí)時(shí)定量PCR儀進(jìn)行PCR擴(kuò)增,反應(yīng)條件為95 ℃ 30 s;95 ℃ 5 s,58 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,40個(gè)循環(huán);72 ℃ 30 s。數(shù)據(jù)采用2-ΔΔCT法分析。以看家基因ACT2為內(nèi)參進(jìn)行校正比較,檢測(cè)CBF2基因在低溫處理0,4 h 2個(gè)時(shí)間點(diǎn)的表達(dá)水平,同時(shí)檢測(cè)下游基因在0 ,1,3,6,12,24 h 6個(gè)時(shí)間節(jié)點(diǎn)的表達(dá)水平。

        1.2.4擬南芥植株冷凍脅迫后苗期表型分析將在上述培養(yǎng)條件生長20 d的野生型Col-0和突變體擬南芥幼苗,置于可控低溫培養(yǎng)箱中,參照文獻(xiàn)[18]方法進(jìn)行低溫脅迫處理,然后植株轉(zhuǎn)移到上述正常的生長條件,恢復(fù)生長7 d,統(tǒng)計(jì)成活率。

        1.2.5擬南芥開花時(shí)間和單株種子量測(cè)定將同批種植的野生型和cbf2突變體植株移栽至土壤中繼續(xù)生長,生長條件為22 ℃,14 h光照/10 h黑暗,記錄各單株第1朵花開放的時(shí)間。另外種子開始成熟后1個(gè)月,以3株苗為1個(gè)樣本,收集所有種子,然后在干燥箱中室溫干燥7 d后,采用稱重法測(cè)定單株種子量,設(shè)置3個(gè)重復(fù),分析突變體種子量是否與野生型種子量存在差異。

        1.2.6數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)所有試驗(yàn)結(jié)果均為3次重復(fù)的平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤差。采用Microsoft Excel 2007軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行整理和方差分析;采用SPSS v19.0軟件進(jìn)行差異顯著性檢驗(yàn)。

        表1 引物序列

        2 結(jié)果與分析

        2.1T-DNA插入純合突變體的鑒定

        根據(jù)TAIR(http://www.arabidopsis.org/)提供的信息,SALK_009689和SALK_073208突變體T-DNA的插入位點(diǎn)分別為CBF2基因轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)上游180,30 bp的啟動(dòng)子區(qū)內(nèi)(圖1)。

        圖1 擬南芥CBF2基因結(jié)構(gòu)及其突變體示意圖

        使用http://signal.salk.edu/tdnaprimers.2.html提供的SALK_009689和SALK_073208 T-DNA插入位點(diǎn)兩側(cè)的正向引物SALK_009689-LP和SALK_073208-LP及反向引物SALK_009689-RP和SALK_073208-RP,以候選植株的基因組DNA為模板,進(jìn)行PCR鑒定。若植株無T-DNA插入即野生型,突變體LP/RP引物可擴(kuò)增出約1 000 bp的特異條帶,若植株為插入純合體,由于插入較大片段的T-DNA,超出了PCR的擴(kuò)增能力,則無擴(kuò)增條帶,若植株為雜合體,LP/RP引物可以擴(kuò)增出1 000 bp的DNA片段,同時(shí)用T-DNA邊界引物L(fēng)Ba1和RP引物組合,會(huì)擴(kuò)增出535~835 bp大小的DNA片段。

        圖2 SALK_073208和SALK_009689純合突變體PCR鑒定

        如圖2所示為SALK_073208突變體的PCR鑒定結(jié)果是1號(hào)植株和野生型(WT)植株結(jié)果一致,即用LP/RP引物有擴(kuò)增條帶,而T-DNA邊界引物L(fēng)Ba1/RP未擴(kuò)增出條帶,表明沒有T-DNA插入。2,3,4,5,6號(hào)植株用LP/RP引物未擴(kuò)增出目的條帶,同時(shí)用T-DNA邊界引物L(fēng)Ba1/RP擴(kuò)增出目的片段,表明這5個(gè)植株為T-DNA插入純合突變體。SALK_009689突變體PCR鑒定結(jié)果為5株苗均為T-DNA插入純合突變體。SALK_009689和SALK_073208的純合突變體分別命名為cbf2-1和cbf2-2。

        2.2純合突變體中CBF2基因的表達(dá)

        在基因啟動(dòng)子區(qū)域中插入一段T-DNA會(huì)影響基因表達(dá)水平下調(diào)或者不表達(dá)。為了檢測(cè)CBF2基因在野生型擬南芥和純合突變體中的表達(dá)情況,對(duì)這些植株進(jìn)行了4 ℃低溫脅迫處理,分別于0,4 h 2個(gè)時(shí)間點(diǎn)檢測(cè)基因的表達(dá)。如圖3所示,在正常生長條件下,CBF2基因在2種突變體與野生型擬南芥植株中均有低水平表達(dá)。在低溫處理4 h時(shí),野生型植株CBF2基因大量誘導(dǎo)表達(dá),但在cbf2-1和cbf2-2突變體中CBF2基因的誘導(dǎo)表達(dá)水平顯著降低,且在cbf2-2突變體中表達(dá)量下降最顯著,與0 h基本一致。以上結(jié)果表明,啟動(dòng)子區(qū)T-DNA的插入抑制了CBF2基因的誘導(dǎo)表達(dá),而cbf2-2突變體中CBF2基因的低溫誘導(dǎo)表達(dá)效應(yīng)基本喪失。

        2.3擬南芥植株冷凍脅迫后苗期表型分析

        Novillo等[18]發(fā)現(xiàn)CBF2基因突變后,植株的抗凍性顯著增強(qiáng)。試驗(yàn)鑒定了2種CBF2基因T-DNA插入突變體,結(jié)果表明,這2種突變體導(dǎo)致CBF2基因的表達(dá)存在不同程度的缺陷。因此,與野生型一起,將CBF2基因3種不同表達(dá)量的遺傳材料進(jìn)行了進(jìn)一步的抗凍表型分析。結(jié)果發(fā)現(xiàn)植株的抗凍性與CBF2基因的表達(dá)量呈現(xiàn)明顯的負(fù)相關(guān)。隨著基因表達(dá)量的逐漸減弱,抗凍性也顯著增強(qiáng)(圖4)。成活率的統(tǒng)計(jì)也進(jìn)一步驗(yàn)證了表型的觀察結(jié)果,野生型Col-0的成活率為50%,cbf2-1突變體成活率為70%,cbf2-2突變體成活率為91%,2種突變體的成活率均顯著性高于野生型,而cbf2-2突變體的抗凍性顯著高于cbf2-1(圖4)。以上結(jié)果進(jìn)一步證明了CBF2基因是一個(gè)抗凍負(fù)調(diào)控基因。

        柱狀圖上的不同字母表示差異達(dá)到顯著水平(P<0.05)。圖4同。

        2.4下游耐逆基因的表達(dá)分析

        Novillo等[18]的研究結(jié)果還發(fā)現(xiàn),CBF2基因突變后提高了下游一系列耐逆相關(guān)基因的表達(dá)。因此,cbf2-2突變體中這些耐逆基因的表達(dá)是否也顯著高于cbf2-1。為此本試驗(yàn)挑選了4個(gè)耐逆基因COR15A、KIN1、DREB2A、LTI78進(jìn)行了表達(dá)驗(yàn)證分析。將野生型和2種突變體材料于4 ℃處理,分別于0,1,3,6,12,24 h 6個(gè)時(shí)間節(jié)點(diǎn)采集葉片,提取RNA,進(jìn)行qRT-PCR分析。結(jié)果如圖5所示,這4個(gè)基因的表達(dá)趨勢(shì)基本一致,即在0 ,1 ,3 h的表達(dá)量很低,在6 h后基因的表達(dá)量開始明顯增加。2種突變體中上述4個(gè)耐逆基因的表達(dá)量都顯著高于野生型,同時(shí)cbf2-2突變體中這些耐逆基因的表達(dá)高于cbf2-1。以上結(jié)果呈現(xiàn)出植株抗凍性與CBF2基因的表達(dá)量存在明顯的負(fù)相關(guān)性。

        圖4 cbf2突變體植株抗凍性和成活率分析

        *.差異顯著(P<0.05);**.差異極顯著(P<0.01)。

        2.5cbf2突變體開花時(shí)間和單株種子量測(cè)定

        抗逆性的增加往往會(huì)抑制植株的各種生產(chǎn)性狀[16-17],進(jìn)而阻礙抗逆育種的推廣應(yīng)用。開花時(shí)間和單株種子產(chǎn)量是評(píng)價(jià)植株生產(chǎn)性狀的2個(gè)重要指標(biāo),因此對(duì)這2個(gè)指標(biāo)進(jìn)行測(cè)定。結(jié)果顯示,無論是開花時(shí)間還是單株種子量,cbf2突變體植株與野生型之間并沒有明顯差異。表明擬南芥cbf2基因突變后,開花時(shí)間和種子產(chǎn)量這2個(gè)重要性狀都沒有受到明顯影響(圖6)。

        圖6 cbf2突變體開花時(shí)間(A)和單株種子量(B)分析

        3 討論

        DREB1/CBF轉(zhuǎn)錄因子廣泛存在于各種植物中,除了擬南芥外,還包括具有冷適應(yīng)能力的植物,如油菜和大麥;不具有冷適應(yīng)能力的植物,如番茄和水稻,以及大豆、葡萄等[21]。在擬南芥基因組中有6個(gè)DREB1/CBF基因,分別命名為DREB1A/CBF3、DREB1B/CBF1、DREB1C/CBF2、DREB1D/CBF4、DDF1/DREB1F和DDF2/DREB1E。其中只有CBF1、CBF2和CBF3 這3個(gè)基因受低溫脅迫高水平誘導(dǎo)表達(dá)[3,10],它們組成一個(gè)CBF調(diào)節(jié)子,開啟了一系列與低溫適應(yīng)有關(guān)基因的表達(dá),這些基因的啟動(dòng)子包含有CRT/DRE元件。其中CBF1和CBF3基因的過量表達(dá)都能增強(qiáng)植物的抗凍性,同時(shí)其對(duì)應(yīng)的功能缺陷突變體都表現(xiàn)出抗凍性減弱。不僅如此組成型表達(dá)CBF1或CBF3的轉(zhuǎn)基因植株還表現(xiàn)出對(duì)干旱和高鹽脅迫的耐受性[22]。由于CBF1和CBF3對(duì)多種逆境抗性的功能表現(xiàn),因此DREB1/CBF基因在各種植物中被廣泛克隆,同時(shí)也被廣泛地用于各種作物抗逆性的遺傳改良[21]。然而組成型表達(dá)CBF1和CBF3基因,卻常常導(dǎo)致植株發(fā)育遲緩,生長不正常,并嚴(yán)重地影響了DREB1/CBF基因在育種中的應(yīng)用。隨后的研究發(fā)現(xiàn)使用誘導(dǎo)型啟動(dòng)子,可以有效減弱組成型表達(dá)所帶來的負(fù)面效應(yīng)[22]。但是由于轉(zhuǎn)基因所產(chǎn)生的生物安全性問題引起社會(huì)極大的爭(zhēng)議,嚴(yán)重地阻礙了轉(zhuǎn)基因作物,尤其是轉(zhuǎn)基因糧食作物的市場(chǎng)推廣。

        在植物體內(nèi)有許多調(diào)控抗逆性的基因,除目前普遍使用的正調(diào)控基因外,還存在一些負(fù)調(diào)控基因,這些基因突變,功能喪失后,植物的抗逆性也明顯增強(qiáng),如ERA1[23]、ASG2[24]、SAD1[25]、GGB[26]和DST[27]等,而且一些突變體的生長發(fā)育與野生型相比并沒有明顯改變,其中CBF2就屬于這類基因。研究發(fā)現(xiàn)CBF2基因的突變,顯著提高了CBF1和CBF3基因的表達(dá),并且被定時(shí)定量地控制,且沒有一直持續(xù)地高水平表達(dá),這樣低溫來襲時(shí),既提高了抗凍相關(guān)基因的表達(dá),又有效地避免了由此帶來的副作用,植物的生長發(fā)育沒有受到明顯抑制[18]。本研究鑒定了2種在CBF2基因啟動(dòng)子區(qū)存在T-DNA插入的純合突變體。T-DNA在啟動(dòng)子區(qū)的插入顯著抑制了CBF2基因的誘導(dǎo)表達(dá),其中在cbf2-2突變體中,CBF2基因的誘導(dǎo)表達(dá)效應(yīng)幾乎完全喪失。通過對(duì)這2種CBF2功能不同缺陷程度的突變體研究發(fā)現(xiàn),植株的抗凍性與CBF2基因表達(dá)量呈明顯的負(fù)相關(guān),CBF2基因表達(dá)量越弱,其植株的抗凍性越強(qiáng),而且下游相關(guān)抗凍功能基因的表達(dá)也越高。更重要的是,這2種突變體抗凍性增強(qiáng)但植株開花時(shí)間和單株種子產(chǎn)量并沒有受到明顯改變,即使是cbf2-2突變體也是如此。開花時(shí)間和單株種子產(chǎn)量是農(nóng)作物的2個(gè)重要農(nóng)藝性狀,因此以上結(jié)果暗示著CBF2可以作為作物抗凍育種的候選理想靶基因。

        在大多數(shù)作物中都存在CBF的同源基因[21],其中是否也擁有CBF調(diào)控子結(jié)構(gòu),是否也存在這種抗凍負(fù)調(diào)控基因。因此,有必要進(jìn)一步開展相關(guān)的研究工作,克隆作物中可能存在CBF2類的抗凍負(fù)調(diào)控基因,然后通過基因功能互補(bǔ)分析,驗(yàn)證篩選出對(duì)應(yīng)的抗凍負(fù)調(diào)控基因,最后采用基因組編輯技術(shù)[28]敲除該基因并驗(yàn)證其抗逆功能,創(chuàng)制出具有更高抗凍能力且其他農(nóng)藝性狀正常的植株,為作物抗凍育種提供優(yōu)良的親本材料。同時(shí)可以有效避免轉(zhuǎn)基因育種面臨的生物安全性評(píng)價(jià)和生產(chǎn)監(jiān)管問題[29]。

        [1]Pagter M,Arora R.Winter survival and deacclimation of perennials under warming climate:physiological perspectives[J].Physiologia Plantarum,2013,147(1):75-87.

        [2]Zhao C,Lang Z,Zhu J K.Cold responsive gene transcription becomes more complex[J].Trends in Plant Science,2015,20(8):466-468.

        [3]Park S,Lee C M,Doherty C J,et al.Regulation of the arabidopsis CBF regulon by a complex low-temperature regulatory network[J].The Plant Journal:for Cell and Molecular Biology,2015,82(2):193-207.

        [4]Thomashow M F.Molecular basis of plant cold acclimation:insights gained from studying the CBF cold response pathway[J].Plant Physiology,2010,154(2):571-577.

        [5]Knight M R,Knight H.Low-temperature perception leading to gene expression and cold tolerance in higher plants[J].The New Phytologist,2012,195(4):737-751.

        [6]Mckhann H I,Gery C,Berard A,et al.Natural variation in CBF gene sequence,gene expression and freezing tolerance in the Versailles core collection ofArabidopsisthaliana[J].BMC Plant Biology,2008,8:105.

        [7]Fowler S,Thomashow M F.Arabidopsis transcriptome profiling indicates that multiple regulatory pathways are activated during cold acclimation in addition to the CBF cold response pathway[J].The Plant Cell,2002,14(8):1675-1690.

        [8]Maruyama K,Sakuma Y,Kasuga M,et al.Identification of cold-inducible downstream genes of the Arabidopsis DREB1A/CBF3 transcriptional factor using two microarray systems[J].Plant Journal,2004,38(6):982-993.

        [9]Vogel J T,Zarka D G,Van buskirk H A,et al.Roles of the CBF2 and ZAT12 transcription factors in configuring the low temperature transcriptome of Arabidopsis[J].The Plant Journal:for Cell and Molecular Biology,2005,41(2):195-211.

        [10]Gilmour S J,Zarka D G,Stockinger E J,et al.Low temperature regulation of the Arabidopsis CBF family of AP2 transcriptional activators as an early step in cold-induced COR gene expression[J].Plant Journal,1998,16(4):433-442.

        [11]Medina J,Bargues M,Terol J,et al.The arabidopsis CBF gene family is composed of three genes encoding AP2 domain-containing proteins whose expression is regulated by low temperature but not by abscisic acid or dehydration[J].Plant Physiology,1999,119(2):463-470.

        [12]Novillo F,Medina J,Salinas J.Arabidopsis CBF1 and CBF3 have a different function than CBF2 in cold acclimation and define different gene classes in the CBF regulon[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2007,104(52):21002-21007.

        [13]Steponkus P L,Uemura M,Joseph R A,et al.Mode of action of the COR15a gene on the freezing tolerance of Arabidopsis thaliana[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,1998,95(24):14570-14575.

        [14]Hughes S L,Schart V,Malcolmson J A,et al.The importance of size and disorder in the cryoprotective effects of dehydrins[J].Plant Physiology,2013,163(3):1376-1386.

        [15]Cook D,Fowler S,Fiehn O,et al.A prominent role for the CBF cold response pathway in configuring the low-temperature metabolome of Arabidopsis[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2004,101(42):15243-15248.

        [16]Gilmour S J,Fowler S G,Thomashow M F.Arabidopsis transcriptional activators CBF1,CBF2,and CBF3 have matching functional activities[J].Plant Molecular Biology,2004,54(5):767-781.

        [17]Kaplan F,Kopka J,Sung D Y,et al.Transcript and metabolite profiling during cold acclimation of Arabidopsis reveals an intricate relationship of cold-regulated gene expression with modifications in metabolite content[J].The Plant Journal:for Cell and Molecular Biology,2007,50(6):967-981.

        [18]Novillo F,Alonso J M,Ecker J R,et al.CBF2/DREB1C is a negative regulator of CBF1/DREB1B and CBF3/DREB1A expression and plays a central role in stress tolerance in Arabidopsis[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2004,101(11):3985-3990.

        [19]Gilmour S J,Sebolt A M,Salazar M P,et al.Overexpression of the arabidopsis CBF3 transcriptional activator mimics multiple biochemical changes associated with cold acclimation[J].Plant Physiology,2000,124(4):1854-1865.

        [20]Jaglo-ottosen K R,Gilmour S J,Zarka D G,et al.Arabidopsis CBF1 overexpression induces COR genes and enhances freezing tolerance[J].Science,1998,280(5360):104-106.

        [21]Akhtar M,Jaiswal A,Taj G,et al.DREB1/CBF transcription factors:their structure,function and role in abiotic stress tolerance in plants[J].Journal of Genetics,2012,91(3):385-395.

        [22]Li Feng,Han Yangyang,Feng Yanan,et al.Expression of wheat expansin driven by the RD29 promoter in tobacco confers water-stress tolerance without impacting growth and development[J].Journal of Biotechnology,2013,163(3):281-291.

        [23]Manmathan H,Shaner D,Snelling J,et al.Virus-induced gene silencing of Arabidopsis thaliana gene homologues in wheat identifies genes conferring improved drought tolerance[J].Journal of Experimental Botany,2013,64(5):1381-1392.

        [24]Dutilleul C,Ribeiro I,Blanc N,et al.ASG2 is a farnesylated DWD protein that acts as ABA negative regulator in Arabidopsis[J].Plant,Cell & Environment,2016,39(1):185-198.

        [25]Daszkowska-golec A,Wojnar W,Rosikiewicz M,et al.Jarmolowski a.arabidopsis suppressor mutant of abh1 shows a new face of the already known players:ABH1(CBP80)and ABI4-in response to ABA and abiotic stresses during seed germination[J].Plant Molecular Biology,2013,81(1/2):189-209.

        [26]Johnson C D,Chary S N,Chernoff E A,et al.Protein geranylgeranyltransferase I is involved in specific aspects of abscisic acid and auxin signaling in Arabidopsis[J].Plant Physiology,2005,139(2):722-733.

        [27]Cui Longgang,Shan Junxiang,Shi Min,et al.DCA1 Acts as a transcriptional co-activator of DST and contributes to drought and salt tolerance in rice[J].PLOS Genetics,2015,11(10):e1005617.

        [28]Chen Kunling,Gao Caixia.Targeted genome modification technologies and their applications in crop improvements[J].Plant Cell Reports,2014,33(4,SI):575-583.

        [29]Huang Sanwen,Weigel D,Beachy R N,et al.A proposed regulatory framework for genome-edited crops[J].Nature Genetics,2016,48(2):109-111.

        Analysis and Identification of Two CBF2 Gene Mutants in Arabidopsis

        LIU Xiaodong1,LIU Chao1,JIAO Binbin2,DAI Peihong1,SU Xiujuan1,LI Yue1

        (1.College of Agronomy,Xinjiang Agricultural University,Key Laboratory of Agricultural Biological Technology,Urumqi830052,China;2.Shanghai Entry-Exit Inspection and Quarantine Bureau,Shanghai200135,China)

        Cold stress is one of the major abiotic stress,which limits the geographical distribution and yield of crops.CBF regulon plays a major role in freezing tolerance.CBF2,one of the components of the CBF regulon,has a negative role in freezing tolerance.In this study,two SALK mutants whose T-DNA insertion are both within the promoter ofCBF2 gene,cbf2-1 andcbf2-2 were identified by qRT-PCR method.Results showed that the level ofCBF2 gene expression in the two mutants reduced.CBF2 gene expression was induced by low temperature incbf2-1 mutnat.However,the degree of induction was lower incbf2-1compared with the control.The effect of induction by low temperature was lost incbf2-2.Analysis of freezing tolerance showed that the less degree of induction,the stronger freezing tolerance of plants and the higher the expression of downstream cold-responsive genes.More important thing was that although freezing resistance of the twoCBF2 gene mutants were improved,their flowering time and seed yield per plant did not change significantly compared with the wild type plants.All the results indicate thatCBF2 may be an ideal candidate target gene for crop breeding of freezing tolerance by genome editing technology.

        Arabidopsis;CBF2;Freezing tolerance;Negative regulation

        2016-03-20

        國家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(31470289)

        劉曉東(1975-),男,新疆烏魯木齊人,副教授,博士,主要從事植物抗逆分子生物學(xué)研究。

        李月(1984-),女,河南許昌人,講師,博士,主要從事棉花分子生物學(xué)研究。

        Q78

        A

        1000-7091(2016)04-0019-07

        10.7668/hbnxb.2016.04.004

        猜你喜歡
        抗凍突變體擬南芥
        擬南芥:活得粗糙,才讓我有了上太空的資格
        果上豐:神奇的抗凍衛(wèi)士
        畜禽防寒抗凍及凍后應(yīng)急管理
        人體六部位最不抗凍
        海峽姐妹(2020年1期)2020-03-03 13:36:02
        尿黑酸對(duì)擬南芥酪氨酸降解缺陷突變體sscd1的影響
        淺淡引氣劑在抗凍混凝土中的應(yīng)用
        兩種LED光源作為擬南芥生長光源的應(yīng)用探究
        CLIC1及其點(diǎn)突變體與Sedlin蛋白的共定位研究
        擬南芥干旱敏感突變體篩選及其干旱脅迫響應(yīng)機(jī)制探究
        Survivin D53A突變體對(duì)宮頸癌細(xì)胞增殖和凋亡的影響
        成人黄色片久久久大全| 色窝窝在线无码中文| 日本口爆吞精在线视频| 亚洲精品中文字幕乱码三区99| 国产情侣自拍一区视频| 极品少妇一区二区三区四区| 99福利在线| 亚洲欧洲日产国码高潮αv| 国产精品美女黄色av| 免费视频一区二区三区美女| 国产亚洲欧洲aⅴ综合一区| 无套内射蜜桃小视频| 在线高清精品第一区二区三区| 日韩亚洲国产av自拍| 国产毛片一区二区三区| 国产精品专区第一页天堂2019| 国精品人妻无码一区二区三区性色| 2021久久精品国产99国产精品 | 九九久久精品一区二区三区av | 日本一区二区三区免费| 女人张开腿让男人桶爽| 午夜福利电影| 亚洲AⅤ乱码一区二区三区| 久久夜色精品亚洲天堂| 粗大猛烈进出高潮视频大全| 人妻少妇乱子伦精品| 国产男女猛烈无遮挡免费视频| 国产一区二区三区av香蕉| 中文字幕亚洲精品久久| 国产av人人夜夜澡人人爽麻豆| 尤物视频一区二区| 熟女乱乱熟女乱乱亚洲| 亚洲国产精品成人久久久 | 人人妻人人爽人人做夜欢视频九色 | a级毛片免费完整视频| 国产片AV在线永久免费观看| 青青草视频在线观看9| (无码视频)在线观看| 骚小妹影院| 亚洲成Av人片不卡无码观看| 亚洲综合在线一区二区三区|