王麗敏，陳復生，劉昆侖，殷麗君（河南工業(yè)大學糧油食品學院，河南鄭州450001）

不同條件下萃取花生蛋白前后AOT/異辛烷反膠束粒徑與萃取率相互關(guān)系變化的研究

王麗敏，陳復生*，劉昆侖，殷麗君
（河南工業(yè)大學糧油食品學院，河南鄭州450001）

研究了在不同條件下萃取花生蛋白前后丁二酸二異辛酯磺酸鈉（AOT）/異辛烷反膠束粒徑變化及前萃率和后萃率變化，考察了反膠束粒徑變化與前萃率和后萃率之間相互關(guān)系的變化規(guī)律。結(jié)果表明，KCl濃度增加，使粒徑減小，前萃率也相應降低；在0.04～0.09 g/mL范圍內(nèi)，AOT濃度越大，空膠束及實膠束粒徑越大，但是前萃率降低，而后萃率則相反；緩沖液pH對空膠束粒徑影響不顯著，但通過靜電相互作用影響實膠束粒徑和萃取率；不同的離子種類對反膠束粒徑及花生蛋白的萃取影響差異顯著，其中含MgCl2的緩沖溶液在添加量為0.03 mL/mL前萃率達到最大值98.55%±0.60%。反膠束粒徑與萃取率之間的關(guān)系會受到許多因素的影響，不同因素影響下，二者之間的關(guān)系不同；并得出反膠束前萃花生蛋白的模型符合“水殼模型”。

反膠束，花生蛋白，粒徑，前萃率，后萃率

反膠束是表面活性劑在有機溶劑中形成的自組裝聚集體，水溶解在極性核中形成納米級的“水池”。大部分橢球形的反膠束表面活性劑含量＜10%，水含量0～10%，有機溶劑含量80%～90%，因此反膠束又稱為油包水微乳液［1］。又由于反膠束是膠體溶液，因此具有熱力學穩(wěn)定性、自發(fā)形成、低界面張力、光學透明、比表面積大、粘度與純有機溶劑相當、動態(tài)平衡等特點。膠束與膠束之間不斷地碰撞與融合，在此過程中融合的表面活性劑分子和反膠束內(nèi)核的物質(zhì)偶爾會發(fā)生交換［2］。

Leser［2］探索了用丁二酸二異辛酯磺酸鈉（AOT）反膠束從富含油脂的菜籽中分離蛋白，分離的過程分為兩個步驟，即前萃和后萃。前萃通過調(diào)整實驗條件促進蛋白進入有機相，后萃則是從反膠束溶液中回收蛋白和油脂。由于花生是生產(chǎn)食用油的重要油料作物，因此反膠束同時分離蛋白和油脂是非常具有吸引力的。反膠束同時分離蛋白和油脂是一個較為復雜的過程，受到溫度、振蕩作用、萃取時間及反膠束自身性質(zhì)等［3］因素的影響。Gochman-Hecht等［4］提出了蛋白質(zhì)進入反膠束后的3種模型：A.水殼模型，該模型表示蛋白質(zhì)分子的溶解導致反膠束尺寸的增大；B.誘導契合模型，該模型表示當?shù)鞍追肿映叽绱笥诜茨z束微粒時，表面活性劑可在蛋白質(zhì)分子誘導下重新分配，形成更大聚集數(shù)的膠束，使蛋白質(zhì)溶于其中；C.固定大小模型，該模型表示蛋白質(zhì)分子等于或小于反膠束微粒尺寸時，溶解后反膠束尺寸不變。

目前，已有學者對反膠束粒徑進行研究，而反膠束粒徑及對花生蛋白溶解特性影響的研究較少，布冠好等［5］研究了反膠束體系中表面活性劑濃度和含水量對反膠束體系特性的影響，并得出含水量增加反膠束直徑也增加，且蛋白萃取率隨著反膠束直徑的增大而增加。本文以全脂花生粉為原料，考察緩沖溶液的鹽濃度、AOT濃度、pH、離子種類、緩沖溶液添加量等因素對反膠束萃取花生蛋白粒徑及萃取率的影響，研究反膠束粒徑及與花生蛋白萃取率的關(guān)系，實驗結(jié)果將對生產(chǎn)實踐提供重要的理論參考。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

全脂花生粉 河南帝鑫食品有限公司；AOT 上海海曲化工有限公司；異辛烷 分析純，天津市博迪化工有限公司；KCl、NaCl、NaOH、Na2HPO4、KH2PO4、KNO3分析純，洛陽市化學試劑廠；MgCl2、K2SO4分析純，天津市科密歐化學試劑有限公司；濃H2SO4分析純，洛陽昊華化學試劑有限公司；LiCl分析純，天津市瑞金特化學品有限公司。

BS210S型分析天平 德國Sartorius公司；KJELTEC 2300型全自動凱氏定氮儀 瑞典福斯特卡托公司；Zetasizer Nano ZS90激光粒度分析儀 英國馬爾文儀器公司；GL-20C型高速冷凍離心機 上海安亭科學儀器有限公司；pH211型pH計 意大利HANNA公司；SHZ-82型數(shù)顯水浴恒溫振蕩器 常州博遠實驗分析儀器廠。

1.2 實驗方法

1.2.1 原料成分測定 全脂花生粉中蛋白質(zhì)含量的測定采用國家標準GB/T 5009.5-2010；水分含量的測定采用國家標準GB/T 5009.3-2010；粗脂肪含量的測定采用國家標準GB/T 5009.6-2003。

1.2.2 反膠束體系的制備 稱取一定量AOT置于100 mL錐形瓶中，加入異辛烷，配制一定濃度的AOT/異辛烷反膠束溶液。用振蕩器振蕩至AOT完全溶解，加入含有一定濃度KCl的KH2PO4-Na2HPO4緩沖溶液（0.02～0.20 mL/mL），放入振蕩器中振蕩至溶液透明，靜置12 h。此體系尚未萃取蛋白，反膠束水核中不含蛋白，因此定義為空膠束。

1.2.3 指標的測定

1.2.3.1 蛋白質(zhì)前萃率的測定 在1.2.2配制的溶液中加入濃度為0.015 g/mL的全脂花生粉（過40目篩），將錐形瓶置于數(shù)顯恒溫水浴振蕩器中，控制水浴溫度為30℃，萃取30 min后，4000 r/min離心20 min，取上層清液為前萃液。此體系中的反膠團中包裹有蛋白質(zhì)，定義為實膠束。根據(jù)1.2.1測定前萃液中蛋白質(zhì)含量。

1.2.3.2 蛋白質(zhì)后萃率的測定 取20 mL前萃液加入等體積緩沖溶液，將錐形瓶置于恒溫水浴振蕩器中，控制溫度為40℃，萃取40 min后，5000 r/min離心40 min，分層后取下層水相，即得到花生蛋白后萃液。根據(jù)1.2.1測定后萃液中花生蛋白的含量。

1.2.3.3 反膠束前萃液粒徑測定方法 本實驗利用動態(tài)光散射的原理用Malvern zetasizer nano ZS-90激光粒度分析儀測定前萃液粒徑。在樣品池中加樣1 mL左右，設(shè)定分散劑為異辛烷，粘度參數(shù)為0.47 Cp，折光率為1.389，溫度25℃，之后開始進行測定，機器自動取三次平行，之后重復上述步驟一次，得到前萃液粒徑分布及平均粒徑，其中平均粒徑六次測量結(jié)果的平均值將作為最終粒徑。

1.2.4 KCl濃度的研究 當KCl濃度為變量時，控制AOT濃度為0.06 g/mL，KH2PO4-Na2HPO4緩沖溶液的pH為8.5，緩沖液的添加量為0.10 mL/mL，考察KCl的濃度分別為0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30 mol/L時空膠束粒徑、實膠束粒徑、前萃率、后萃率的變化。

1.2.5 AOT濃度的研究 當AOT濃度為變量時，控制KCl濃度為0.25 mol/L，KH2PO4-Na2HPO4緩沖溶液的pH為8.5，緩沖液的添加量為0.10 mL/mL，考察AOT的濃度分別為0.04、0.05、0.06、0.07、0.08、0.09 g/mL時空膠束粒徑、實膠束粒徑、前萃率、后萃率的變化。

1.2.6 緩沖液pH的研究 當控制緩沖溶液pH為變量時，控制AOT濃度為0.06 g/mL，KCl濃度為0.25 mol/L，緩沖液添加量為0.10 mL/mL，考察緩沖溶液pH分別為6.5、7.0、7.5、8.0、8.5、9.0時空膠束粒徑、實膠束粒徑、前萃率、后萃率的變化。

1.2.7 緩沖溶液的研究 控制離子種類為變量時，控制AOT濃度為0.06 g/mL，KCl濃度為0.25 mol/L，緩沖溶液的pH為8.5，考察緩沖溶液的添加量分別為0.03、0.07、0.11、0.15、0.19 mL/mL時空膠束粒徑、實膠束粒徑、前萃率、后萃率的變化。

1.2.8 離子種類的研究 選取陽離子（KCl、NaCl、MgCl2、LiCl）和陰離子（KCl、K2SO4、KNO3），控制AOT濃度為0.06 g/mL，KCl濃度為0.25 mol/L，緩沖溶液的pH為8.5，考察添加不同離子、不同緩沖溶液添加量（0.02、0.03、0.07、0.11、0.15、0.19 mL/mL）對空膠束粒徑、實膠束粒徑、前萃率、后萃率的影響。

1.3 數(shù)據(jù)分析

本實驗采用Microsoft Excel軟件計算、分析和繪圖，萃取花生蛋白的實驗均至少重復三次，計算平均值和標準偏差，圖中用誤差線體現(xiàn)。

2 結(jié)果與分析

2.1 原料成分測定結(jié)果

全脂花生粉的主要成分測定結(jié)果如表1。

表1 全脂花生粉的主要成分及質(zhì)量分數(shù)Table1 The main components of full-fat peanut powder

表1為全脂花生粉主要成分的測定結(jié)果，其中蛋白質(zhì)的干基含量為23.18%±0.08%，粗脂肪干基含量為45.26%±0.31%。

2.2 單因素實驗

2.2.1 KCl濃度對反膠束粒徑及萃取率的影響 KCl濃度對萃取花生蛋白前后反膠束粒徑的影響如圖1所示，隨著KCl濃度的增加，空膠束及實膠束的粒徑均呈現(xiàn)降低趨勢，且濃度在0.05～0.15 mol/L范圍內(nèi)降低最快，之后粒徑逐漸趨于平穩(wěn)，這說明KCl濃度對空膠束及實膠束粒徑影響主要集中在0.05～0.15 mol/L。KCl濃度為0.05 mol/L時，空膠束和實膠束的粒徑均達到最大，分別為（11.01±0.12）、（44.10±1.12）nm。KCl濃度對前萃率及后萃率的影響如表2所示，與前萃率的變化趨勢不同，后萃中隨著KCl濃度的增加，后萃率呈現(xiàn)先降低后顯著增加的趨勢，這說明KCl濃度不僅對前萃過程有影響，對后萃過程也產(chǎn)生了一定的影響。

圖1 KCl濃度對粒徑的影響Fig.1 Effect of molarity of KCl on reverse micelles sizes

隨著KCl濃度的增加，空膠束和實膠束的粒徑均顯著減小，一方面是由于鹽濃度通過影響膠束粒徑從而影響前萃率，鹽濃度的增加使增溶于反膠束的水減少［6］，出現(xiàn)鹽析效應，使增溶于反膠束中的蛋白質(zhì)減少；另一方面是“尺寸位阻效應”［7］的影響，增溶的蛋白減少，實膠束的粒徑及前萃率也相應地降低。而后萃中鹽濃度的增加降低了表面活性劑極性頭之間的排斥力，有利于蛋白從膠束中釋放出來，在靜電引力的作用下進入水相的蛋白含量相對較高，因此后萃率逐漸升高。圖1中實膠束粒徑大于空膠束粒徑，因此不符合固定大小模型。

表2 KCl濃度對萃取率的影響Table2 Effect of molarity of KCl on extraction rates

2.2.2 AOT濃度對反膠束粒徑及萃取率的影響 AOT濃度對空膠束及實膠束粒徑的影響如圖2所示，隨著AOT濃度的增加，空膠束及實膠束粒徑呈現(xiàn)增加的趨勢，在所測范圍內(nèi)，濃度為0.09 g/mL時，空膠束粒徑達到最大（11.05±0.44）nm，當AOT濃度為0.08 g/mL時，實膠束粒徑達到最大（44.51±1.96）nm。而表3中AOT濃度對前萃率和后萃率也有顯著性影響，隨著AOT濃度的增加，前萃率逐漸降低，后萃率先下降后上升，AOT濃度為0.04 g/mL時，前萃率最高，達到97.61%±1.72%，后萃率在AOT濃度為0.08 g/mL時，達到最高95.26%±0.86%，與AOT濃度為0.09 g/mL時的萃取率94.01%±3.11%差異不顯著。

圖2 AOT濃度對粒徑的影響Fig.2 Effect of concentration of AOT on reverse micelles sizes

表3 AOT濃度對萃取率的影響Table3 Effect of concentration of AOT on extraction rates

由圖2和表3中能看出AOT濃度增加，空膠束和實膠束的粒徑均增加，但前萃率卻降低，推測蛋白進入反膠束后，使反膠束體積變大，但是由于反膠束體系的動態(tài)平衡這一性質(zhì)，萃取振蕩過程中反膠束之間碰撞增加導致膠束結(jié)構(gòu)被打破重新形成新的膠束［8］，數(shù)目變少，總體上進入反膠束的蛋白減少，因此前萃率降低。后萃中，萃取率逐漸升高說明有更多的蛋白進入水相［9］，這可以從花生蛋白與緩沖溶液氫鍵的作用來解釋，花生蛋白與水中氫鍵增強，促進蛋白進入水相，后萃率升高。

圖2和表3可知，反膠束粒徑增大，前萃率降低，二者之間的關(guān)系受到AOT濃度的影響。從圖2中反膠束的粒徑在萃取蛋白后增大的變化趨勢可以看出，萃取不符合固定大小模型，有可能為水殼模型或者誘導契合模型。

2.2.3 緩沖液pH對反膠束粒徑及萃取率的影響 緩沖液pH對空膠束及實膠束的影響如圖3所示，pH對空膠束粒徑的影響不顯著，隨著pH從6.5增加到9.0，空膠束粒徑在（9.06±0.20）～（9.25±0.27）nm范圍內(nèi)，且差異不顯著，而對實膠束粒徑的影響顯著，實膠束粒徑隨著pH的增加呈現(xiàn)波浪線的趨勢，但在pH8.5時，粒徑最大，為（39.70±0.66）nm。表4中是緩沖液pH對前萃率及后萃率的影響。前萃率總體呈現(xiàn)先增加后減小的趨勢，后萃率呈現(xiàn)先減小后增大再減小的趨勢，pH為7.5時前萃率最大為91.80%±1.00%，pH為8.5時后萃率最大為94.16%±2.26%。

圖3 pH對粒徑的影響Fig.3 Effect of pH on reverse micelles sizes

表4 pH對萃取率的影響Table4 Effect of pH on extraction rates

pH能夠調(diào)節(jié)蛋白與反膠束之間的靜電相互作用［10］，因此調(diào)節(jié)pH就能夠使增溶于反膠束的蛋白含量發(fā)生變化。AOT是陰離子表面活性劑，表面活性劑的極性頭帶負電荷?；ㄉ鞍椎牡入婞c為pH4.5左右［11］，當體系pH高于4.5，蛋白帶負電荷，由于與反膠束之間的疏水相互作用而促進了蛋白的增溶，而當pH高于7.5，增溶于反膠束的蛋白含量降低，可以從反膠束與花生蛋白相互作用的最適pH來解釋這個現(xiàn)象。這一結(jié)果與楊趁仙等［12］得出的結(jié)果相吻合，由于花生蛋白在pH過高或者過低時，溶解性均會減小，因此與反膠束相互作用的環(huán)境需要最佳pH，而pH7.5為反膠束與花生蛋白作用的最佳pH，無論高于或者低于此值，均不利于花生蛋白的萃取，因此前萃率均會降低。在前萃的基礎(chǔ)上，后萃條件一致，但是后萃率卻發(fā)生了顯著變化，pH8.5時后萃率最高，說明pH通過前萃過程間接地影響后萃。

由圖3和表4可以得出，與其他因素的作用不同，pH不能通過影響空膠束的粒徑對前萃率產(chǎn)生影響，而是通過調(diào)節(jié)膠束內(nèi)表面的電荷從而影響蛋白與反膠束之間的靜電作用影響萃取過程。

2.3 離子種類對反膠束粒徑及萃取率的影響規(guī)律研究

離子種類和緩沖溶液添加量對空膠束和實膠束粒徑的影響如圖4、圖5所示，對萃取率的影響如表5、表6所示。從實驗結(jié)果可以看出，離子種類不僅可以影響反膠束粒徑，也直接地影響萃取率。

2.3.1 陽離子種類及緩沖溶液添加量對反膠束粒徑及萃取率的影響規(guī)律研究 圖4中隨著緩沖溶液添加量的增加，含四種陽離子的空膠束粒徑均呈現(xiàn)先顯著增加后趨于平穩(wěn)的趨勢，其中含LiCl的緩沖液添加量為0.19 mL/mL時，空膠束粒徑最大，為（16.41± 0.49）nm；實膠束粒徑則先顯著增加后顯著降低然后趨于穩(wěn)定，且含四種鹽的實膠束粒徑均在緩沖溶液添加量為0.03 mL/mL時達到最大。

如表5所示，含不同鹽的反膠束前萃率大小各不相同，但是總的來看，隨著緩沖溶液添加量的增加，前萃率均呈現(xiàn)先增加然后降低的趨勢。其中含MgCl2的緩沖溶液在添加量為0.03 mL/mL達到最大值98.55%±0.60%。結(jié)合圖4中空膠束和實膠束粒徑變化，對于同一種鹽，緩沖液添加量高于0.03 mL/mL時，膠束粒徑繼續(xù)增加但不顯著，說明增溶于膠束的水接近極限，繼續(xù)添加緩沖液，不能促進水的增溶，而實膠束粒徑在振蕩萃取后，由于表面活性劑重新組裝成新的包裹蛋白的反膠束，隨著緩沖液的增加，實膠束分散成粒徑相對較小的膠束，且數(shù)目變多，雖然粒徑在0.03 mL/mL達到最大，但由于反膠束數(shù)目相對較少，因此前萃率不能達到最大值；對于不同陽離子，前萃率的大小不同，但總體上前萃率MgCl2＞NaCl＞KCl＞LiCl，這個現(xiàn)象可以從兩個方面考慮：一方面，Mg2+、Na+均為容易與水結(jié)合的離子［13］，使增溶于反膠束的水增加，粒徑增大，帶正電荷的陽離子降低AOT反膠束內(nèi)表面的負電荷，從而在蛋白與反膠束靜電引力的作用下促進蛋白進入膠束，提高萃取率；另一方面，從離子半徑的角度考慮［14］，離子半徑對反膠束與蛋白之間的作用力具有一定的影響，因此能間接地影響前萃率。

與前萃率的變化顯著不同，四種陽離子之間的后萃率差異顯著，KCl＞NaCl＞MgCl2＞LiCl。而對于同一種鹽，隨著緩沖液添加量的增加，NaCl呈現(xiàn)逐漸增加的趨勢，KCl則呈現(xiàn)先增加后減小然后再增加的趨勢，最大后萃率分別達到54.81%±0.39%和96.75%±0.11%，MgCl2和LiCl后萃率呈現(xiàn)先降低后逐漸增加的趨勢，最大萃取率分別僅為16.84%±1.74%和10.08% ±1.57%。首先，離子尺寸對靜電作用也有影響，K+離子半徑大，與蛋白的靜電作用較強，使進入水相的蛋白含量最大，Na+、Mg2+則次之，進入水相的蛋白含量相對較低［13］；其次，水相的離子強度與帶電表面的靜電屏蔽效應密切相關(guān)，小尺寸的陽離子如Li+由于水合作用而產(chǎn)生微弱的靜電屏蔽效應，導致水相離子強度降低而減少了蛋白的溶解，更多的蛋白進入有機相而不是水相。

由圖4中反膠束粒徑的變化可以看出前萃不符合“固定大小模型”，且實膠束粒徑大于空膠束粒徑可以看出，蛋白進入膠束后，實膠束重新分布成了粒徑較大的膠束，因此不符合“水殼模型”，而是符合“水殼模型”。

圖4 陽離子種類對反膠束粒徑的影響Fig.4 Effect of cation species on reverse micelles sizes

2.3.2 陰離子種類及緩沖溶液添加量對反膠束粒徑及萃取率的影響規(guī)律研究 圖5中，與含陽離子鹽的反膠束粒徑變化趨勢相近，但含陰離子的空膠束和實膠束粒徑總體上均小于陽離子；緩沖液添加量為0.03 mL/mL時，含KNO3的實膠束粒徑最大，為（60.56± 1.42）nm。結(jié)合前萃率的變化，可以從離子所帶電荷來解釋萃取率較低的現(xiàn)象，膠束中的陰離子與內(nèi)表面相互作用［16］，加劇了反膠束內(nèi)表面的靜電斥力，而與高于等電點的帶負電荷的蛋白質(zhì)相互排斥，不利于蛋白進入膠束中，從而導致較小的實膠束粒徑和前萃率。由表6的后萃率可以看出，總體上后萃率KCl＞K2SO4＞KNO3，極為反常的是含KNO3的反膠束后萃率出現(xiàn)負值，對于后萃水相中NO3-凱氏定氮過程與其他不同的是，硝化過程中有棕紅色煙生成，猜測在此過程中，KNO3在濃硫酸與硫酸銅的作用下，與蛋白質(zhì)作用生成NO2氣體［17］，致使蛋白不能轉(zhuǎn)化成銨鹽而被蒸餾，導致測得的值低于儀器測得的空白值而得到負值。

圖5 陰離子種類對反膠束粒徑的影響Fig.5 Effect of anion species on reverse micelles sizes

表5 陽離子種類對萃取率的影響Table5 Effect of cation species on extraction rates

表6 陰離子種類對萃取率的影響Table6 Effect of anion species on extraction rates

由以上結(jié)果可以看出不同離子對反膠束萃取花生蛋白的影響不同，整體上陽離子種類對空膠束和實膠束粒徑以及萃取率的影響大于陰離子，增加緩沖溶液添加量不能使反膠束粒徑持續(xù)增加；不同的離子種類，膠束粒徑與前萃率和后萃率的關(guān)系也不同，當實膠束粒徑最大時，萃取率不一定最大。

3 結(jié)論

本文研究了不同條件下反膠束萃取花生蛋白前后粒徑變化與萃取率之間的關(guān)系，考察了緩沖溶液中KCl的濃度、AOT濃度、緩沖溶液的pH、緩沖液添加量、離子種類等條件對AOT反膠束萃取花生蛋白粒徑及萃取率的影響。結(jié)果表明，KCl濃度增加，使粒徑減小，前萃率也相應降低；在0.04～0.09 g/mL范圍內(nèi)，AOT濃度越大，空膠束及實膠束粒徑越大，但是前萃率降低，而后萃率則相反，說明粒徑大的膠束萃取率不一定高；緩沖液pH對空膠束粒徑影響不顯著，但通過靜電相互作用影響實膠束粒徑和萃取率；不同的離子種類對反膠束粒徑及花生蛋白的萃取影響差異顯著，其中含MgCl2的緩沖溶液在添加量為0.03 mL/mL前萃率達到最大值98.55%±0.60%，含KCl的緩沖溶液在添加量為0.19 mL/mL后萃率達到最大值96.75% ±0.11%。結(jié)合得出的結(jié)果，反膠束粒徑與萃取率之間的關(guān)系會受到許多因素的影響，不同因素影響下，得出的關(guān)系不同，得出反膠束前萃花生蛋白的模型為“水殼模型”。

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Changes of relationship between the sizes of reverse micelles before and after extraction of peanut protein and their extraction rates

WANG Li-min，CHEN Fu-sheng*，LIU Kun-lun，YIN Li-jun
（College of Food Science and Technology，Henan University of Technology，Zhengzhou 450001，China）

This study evaluated the sizes of reverse micelles before and after the extraction of peanut protein by AOT/isooctane reverse micelles and investigated the relationship between the size change and extraction rates.The results showed that increasing the concentration of KCl，the particle sizes and forward extraction rates decreased.And increasing the concentration of AOT in the range of 0.04～0.09 g/mL，the empty reverse micelles and full reverse micelles increased，forward extraction rates increased，while the backward extraction rates were on the contrary.The pH had no significant influence on empty reverse micelles，but could influence full reverse micelles sizes and extraction rates by electrostatic interaction.The ion species had significant effects on the sizes of reverse micelles and extraction of peanut protein，when the addition amount of buffer solution containing MgCl2was 0.03 mL/mL，the forward extraction rate reached the peak of 98.55%±0.60%.The relationship between reverse micelles sizes and extraction rates could influenced by many factors，and their relation varied under different conditions.The model of the forward extraction process was“water-shell model”.

reverse micelle；peanut protein；size；forward extraction rate；backward extraction rate

TS201.1

B

1002-0306（2016）02-0228-06

10.13386/j.issn1002-0306.2016.02.038

2015－07－21

王麗敏（1989-），女，碩士研究生，研究方向：食品蛋白質(zhì)資源開發(fā)及利用，E-mail：wanglm2000@126.com。

*通訊作者：陳復生（1963-），男，教授，研究方向：食品蛋白質(zhì)資源開發(fā)與利用，E-mail：fushengc@aliyun.com。

國家自然科學基金項目（21176058）；863項目（2013AA102208）；鄭州市創(chuàng)新型科技人才隊伍建設(shè)工程（ISTTCPZZC）；河南省成果轉(zhuǎn)化資金項目（132201610014）。