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        兔須癬毛癬菌感染樣本常規(guī)診斷與定量PCR診斷的比較研究

        2016-07-26 05:05:45劉利強(qiáng)劉建釵劉彥威

        沈 潔,劉 月,劉利強(qiáng),劉 娜,劉建釵,劉彥威,邢 鑫

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        兔須癬毛癬菌感染樣本常規(guī)診斷與定量PCR診斷的比較研究

        沈潔,劉月,劉利強(qiáng),劉娜,劉建釵,劉彥威,邢鑫

        河北工程大學(xué)農(nóng)學(xué)院,邯鄲動(dòng)物醫(yī)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河北056021

        摘要:目的為探討須癬毛癬菌快速、敏感、特異的診斷方法。方法采集患兔臨床樣本63例,分別進(jìn)行培養(yǎng)法、鏡檢法和定量PCR法診斷,比較這些方法的敏感性、特異性、陽(yáng)性預(yù)測(cè)值和陰性預(yù)測(cè)值。結(jié)果顯示樣本培養(yǎng)法、鏡檢法和定量PCR法的陽(yáng)性率分別為65%、73%和86%;與常規(guī)方法(培養(yǎng)法和鏡檢法)相比,定量PCR法敏感性和陰性預(yù)測(cè)值均為100%,高于培養(yǎng)法(77.35%和45.45%)和鏡檢法(86.79%和64.17%),而特異性(90.90%對(duì)100%~100%)和陽(yáng)性預(yù)測(cè)值(90.90%對(duì)100%~100%)兩種方法無(wú)明顯差異。結(jié)論培養(yǎng)法特異,但敏感性差、耗時(shí)長(zhǎng),有假陰性;鏡檢快速,但不特異,敏感性低;而定量PCR快速、敏感、又特異,可以替代鏡檢用于臨床樣品的診斷,但不能替代培養(yǎng)法。

        關(guān)鍵詞:定量PCR;常規(guī)診斷;兔、須癬毛癬菌

        須癬毛癬菌是兔的常見(jiàn)皮膚真菌病的病原,不僅引起兔的皮膚及附屬物感染,還能通過(guò)兔傳染人,引起人的皮膚感染,因此,有效防控須癬毛癬菌感染,無(wú)論對(duì)促進(jìn)養(yǎng)兔業(yè)健康發(fā)展,還是在公共衛(wèi)生等方面都具有重要意義[1-2]。目前,對(duì)須癬毛癬菌病診斷基于病料的直接顯微觀察和病原真菌分離培養(yǎng),盡管這些方法沿用了80余年,仍然存在多局限,如直接顯微觀察缺乏特異性,不能區(qū)分病原真菌的種類;分離培養(yǎng)及后續(xù)的鑒定較慢,通常需要2~4周[2]。大量臨床資料和經(jīng)驗(yàn)表明,須癬毛癬菌感染的療效與轉(zhuǎn)歸,很大程度上取決于早期診斷和治療[3]。然而,目前臨床上皮膚真菌感染的診斷面臨著巨大的困難和挑戰(zhàn),很大程度上制約了早期診斷和治療,延誤了最佳治療時(shí)機(jī),因此,發(fā)展敏感、特異、快速的診斷方法已經(jīng)成為研究的熱點(diǎn)和焦點(diǎn)。基于此2013年本實(shí)驗(yàn)室建立了兔須癬毛癬菌巢式PCR方法,雖然巢式PCR比常規(guī)PCR敏感,但巢式PCR需進(jìn)行兩次PCR較繁瑣,且還需電泳進(jìn)行驗(yàn)證,易污染[1]。針對(duì)巢式PCR的局限,2015年又建立了須癬毛癬菌敏感、特異、快速定量PCR方法,并與直接顯微觀察和分離培養(yǎng)方法進(jìn)行比較,以期望找出更適合臨床快速診斷的方法。

        1材料與方法

        1.1病料樣品采集和常規(guī)診斷在2014年6月到10月,疑似皮膚真菌感染兔主要表現(xiàn)皮屑增多、結(jié)痂、脫毛、滲出、毛囊炎及癢感等癥狀。共收集來(lái)自不同兔場(chǎng)的病料樣品(皮屑和被毛)63份(編號(hào)S1-S63),沒(méi)有皮膚病變健康兔的皮屑和被毛10份作對(duì)照。病料采集時(shí),用無(wú)菌手術(shù)刀片在病變與健康皮膚組織交界處刮取皮屑或被毛,每份病料樣和對(duì)照樣品分成3份,分別用于直接鏡檢、培養(yǎng)及定量PCR分析,其中用于定量PCR的病料-20 ℃保存。

        鏡檢:取患兔的病料(皮屑和被毛)于載玻片,滴加改良復(fù)方KOH溶液,直接涂片。加蓋玻片,酒精燈加熱以促進(jìn)角質(zhì)溶解,但避免過(guò)度加熱而使封固液沸騰,輕壓蓋玻片驅(qū)除氣泡,吸除蓋玻片周?chē)缫海胖?0 min,使之軟化透明后,置光學(xué)顯微鏡下觀察。以查到菌絲和(或)孢子為陽(yáng)性,未檢出菌絲和(或)孢子為陰性。

        培養(yǎng):病料涂布在沙保弱培養(yǎng)基(含0.05 g/L氯霉素和0.5 g/L環(huán)己酰亞胺),27 ℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)5 d,每天觀察菌落生長(zhǎng)情況。純化培養(yǎng)用土豆瓊脂培養(yǎng)基,27 ℃,培養(yǎng)1周,觀察菌落特征。用膠帶黏的一面按在生長(zhǎng)的菌落上,乳酸酚棉藍(lán)染色,在顯微鏡下觀察菌絲和孢子結(jié)構(gòu)。

        1.2定量PCR方法

        DNA提?。簩⒉×霞羲?,放入液氮研磨,收集病料約0.05~0.1 g于1.5 mLEP管中,用真菌DNA提取試劑盒(Solarbio試劑盒)提取基因組DNA。

        引物設(shè)計(jì): 從GenBank找出與須癬毛癬菌及相關(guān)種類(包括犬小孢子菌、絮狀表皮癬、紅毛癬菌、白色念珠菌、煙曲霉)ITS基因。進(jìn)行聚類分析,采用Primer Express2.0軟件設(shè)計(jì)一對(duì)特異性引物,上游引物為(5′-GCAAAGAAG CCT GGAAGAAG-3′,核苷酸46-65),下游引物為(5′-GGAGACCATCTGTGAGAGTT-3,核苷酸166-185)預(yù)期擴(kuò)增片段大小140 bp。引物由華大基因合成。

        定量PCR:采用25 μL的反應(yīng)體系:SYBR Premix Ex Taq(2×)12.5 μL,上、下游引物各0.5 μL,DNA模板1.0 μL,用雙蒸水補(bǔ)足至25 μL。反應(yīng)程序?yàn)椋?4 ℃預(yù)變性60 s;94 ℃10 s,60 ℃30 s,72 ℃30 s,進(jìn)行40個(gè)循環(huán)。反應(yīng)結(jié)束后,作熔解曲線,采用軟件自動(dòng)分析。

        1.3ITS序列分析對(duì)于定量PCR與常規(guī)診斷不一致的樣品,再進(jìn)行ITS序列分析,經(jīng)過(guò)直接顯微檢查、培養(yǎng)和定量PCR比較,最終確定樣品陽(yáng)性與陰性。

        DNA提?。夯纪貌杉×蠘悠芳羲?,放入200 μL緩沖液(10 mmol/L Tris-HCIpH8.0,10 mmol/L Na2-EDTA,100 mmol/L NaCl,2%十二烷基硫酸鈉)56 ℃過(guò)夜,加10 μL蛋白酶K孵育3 h。步驟按試劑盒(Solarbio試劑盒)方法進(jìn)行。

        第一輪PCR:上游引物為5′-CATCGAGTACATGTGCTCGC-3′,下游引物5′-CATCGA GTA CATGTGCT GC-3′,目的片段為435 bp。反應(yīng)體系25 μL:Mix(2×)12.5 μL,引物各0.5 μL,模板DNA 1.0 μL,加雙蒸水補(bǔ)足25 μL。反應(yīng)條件:94 ℃變性3 min,94 ℃變性60 s,60 ℃退化75 s,72 ℃延伸120 s,共30循環(huán),72 ℃延伸7 min,4 ℃終止反應(yīng)。

        巢式PCR:上游引物為5′-GCAAAGAAGCCTGGAAGAAG3′,下游引物5′-GGAGACCA TCT GTGAGAG TTG-3′,目的基因片段為288 bp。反應(yīng)體系25 μL:Mix(2×)12.5 μL,引物各0.5 μL,模板DNA(第1輪PCR產(chǎn)物1∶6稀釋)1.0 μL,加雙蒸水補(bǔ)足25 μL。反應(yīng)條件條件同第1輪PCR。取5 μL巢式PCR產(chǎn)物在0.5 g/L瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳。序列測(cè)定由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)公司完成。

        1.4統(tǒng)計(jì)學(xué)處理數(shù)據(jù)處理采用SAS6.12統(tǒng)計(jì)軟件包,采用方差統(tǒng)計(jì)分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2結(jié)果

        2.1常規(guī)檢查在顯微鏡下,觀察到呈串珠狀的菌絲段(圖1)者為陽(yáng)性,檢出陽(yáng)性率為73%(46/63)培養(yǎng)基上兔須癬毛癬菌菌落為顆粒型,正面為淺黃色,背面為褐色,在顯微鏡下,小分生孢子為葡萄狀,數(shù)量較多,大分生孢子為棒狀,數(shù)量較少,同時(shí)還有特征性的螺旋菌絲和破梳子狀菌絲(圖2),陽(yáng)性率為65%(41/63)。

        圖1 皮屑中菌絲段(10×40)

        圖2  養(yǎng)的菌絲和孢子(10×40)

        2.2定量PCR檢查定量PCR檢測(cè),呈“S”型擴(kuò)增曲線,Ct值≤36.5,且Tm值介于為86.5 ℃~90.0 ℃之間時(shí),說(shuō)明樣本含有須癬毛癬菌,陽(yáng)性率為86%(54/63),10份對(duì)照樣本為陰性。

        2.3鏡檢與定量PCR檢查比較在檢測(cè)63份樣本中,分離培養(yǎng)、鏡檢和定量PCR陽(yáng)性結(jié)果是一致的。在12例樣本檢查結(jié)果不一致:S12、S14、S16、S23、S33鏡檢陽(yáng)性、S13、S15、S26、S31、S48、S52ITS序列分析陽(yáng)性,最終結(jié)論均為陽(yáng)性。 S4鏡檢和ITS序列分析均陰性,最終結(jié)論亦然。

        圖3 定量PCR熔解曲線

        圖4 定量PCR擴(kuò)增曲線

        2.4常規(guī)診斷與定量PCR方法性能比較培養(yǎng)的敏感性、特異性、陽(yáng)性預(yù)測(cè)值和陰性預(yù)測(cè)值分別為77.35%、100%、100% 和45.45%,鏡檢的敏感性、特異性、陽(yáng)性預(yù)測(cè)值和陰性預(yù)測(cè)值分別為86.79%、100%、100%和64.17%,定量PCR的敏感性、特異性、陽(yáng)性預(yù)測(cè)值和陰性預(yù)測(cè)值分別為100%、90.9%、98.1%和100%(見(jiàn)表1)。與培養(yǎng)和鏡檢相比,定量PCR的敏感性(P<0.05)和陰性預(yù)測(cè)值(P<0.01)最高,而特異性和陽(yáng)性預(yù)測(cè)值與培養(yǎng)和鏡檢沒(méi)有明顯差異(P>0.05)。

        表1 常規(guī)診斷與定量PCR方法性能比較

        *:**P<0.05; #:##P<0.01.

        3討論

        3.1培養(yǎng)診斷方法及影響因素須癬毛癬菌分離培養(yǎng)常選用沙保弱培養(yǎng)基,純化用土豆培養(yǎng)基,根據(jù)菌落形態(tài)和菌絲及孢子的結(jié)構(gòu)進(jìn)行診斷,有時(shí)也配合生理試驗(yàn)(如尿素酶和毛發(fā)穿孔試驗(yàn))[4]。本試驗(yàn)從患兔病料分離的皮膚真菌,其菌落主要為顆粒型,有特征性螺旋和梳狀菌絲,小分生孢子為圓形數(shù)量多,大分生孢子為棒狀數(shù)量較少,這些完全符合親動(dòng)物須癬毛癬菌形態(tài)特征,即診斷為兔須癬毛癬菌。該菌生長(zhǎng)緩慢,從分離培養(yǎng)、純化到觀察到特征形態(tài)變化,一般需要1~2周,即用培養(yǎng)診斷需要1~2周。文獻(xiàn)報(bào)道時(shí)間長(zhǎng)短不同,短則1周,長(zhǎng)則4周[4-7]。用培養(yǎng)診斷方法,對(duì)臨床樣品檢查陽(yáng)性率報(bào)道不一致,一般為25%~80%。本試驗(yàn)陽(yáng)性率為65%。造成陽(yáng)性率差異原因有多種,首先病料中有20%為死菌絲,無(wú)法培養(yǎng)[7],特別是使用抗真菌藥治療病例,會(huì)造成菌絲死亡。我們發(fā)現(xiàn)5例樣品經(jīng)過(guò)藥物治療,鏡檢為陽(yáng)性,而培養(yǎng)均為陰性。其次非皮膚真菌混合感染,由于非皮膚真菌生長(zhǎng)快,破壞皮膚真菌生長(zhǎng)[8]。另外,有實(shí)驗(yàn)證明念珠菌抑制皮膚真菌生長(zhǎng),致使皮膚真菌分離率降低[9]。本試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),與鏡檢和定量PCR相比,培養(yǎng)方法特異性和陽(yáng)性預(yù)測(cè)值沒(méi)有明顯差異,敏感性最低(77.35%),有17.5%(11/63)假陽(yáng)性。雖然培養(yǎng)診斷方法耗時(shí)長(zhǎng),敏感性差,但因培養(yǎng)方法可檢測(cè)可培養(yǎng)任何病原真菌,且特異性高,也是其他診斷方法的基礎(chǔ),目前仍是不可替代診斷方法。

        3.2鏡檢診斷結(jié)果及影響因素直接顯微觀察方法是把病料放在顯微鏡進(jìn)行觀察,通過(guò)尋找菌絲或孢子,對(duì)病料進(jìn)行診斷。由于須癬毛癬菌為嗜角質(zhì)真菌,主要在皮膚角質(zhì)層或其皮膚附屬物生長(zhǎng)繁殖,這些組織特點(diǎn)較硬,不易直接觀察到侵染的真菌,為軟化角化的細(xì)胞,增加其透明性,一般滴加10%KOH,目前,報(bào)道該方法陽(yáng)性率為67%~91%[2]。本試驗(yàn)陽(yáng)性率為73%,比培養(yǎng)的方法高。鏡檢陽(yáng)性率的高低與檢查者的經(jīng)驗(yàn)和病料采集有關(guān)。判斷角化上皮有無(wú)感染,需要長(zhǎng)時(shí)間的經(jīng)驗(yàn)積累,最近報(bào)道有豐富經(jīng)驗(yàn)的皮膚真菌形態(tài)學(xué)專家,對(duì)374例人臨床樣本進(jìn)行直接顯微檢查,其陽(yáng)性率為73.8%[2],這與本實(shí)驗(yàn)陽(yáng)性率基本一致;病料采集時(shí),首先應(yīng)該與其他皮膚病進(jìn)行鑒別,即取得病料應(yīng)該是皮膚真菌感染病料,取病料應(yīng)該在病變與健康皮膚組織交界處刮取皮屑或被毛。由于該方法局限和影響因素存在,本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)直接鏡檢敏感性低(86.79%),真正感染病料有時(shí)無(wú)法檢出,有9.5%(6/63)假陽(yáng)性;特異性差,即檢查了菌絲,也不能確定感染真菌種類。由于直接顯微檢查速度快,簡(jiǎn)單,目前仍是臨床皮膚真菌常用診斷方法之一。

        3.3定量PCR與常規(guī)診斷方法比較近年來(lái),為鑒定皮膚真菌的病原,建立多種分子生物學(xué)方法,包括基于染色體DNA(G+C)的含量、總DNA同源性、線粒體DNA限制酶斷片長(zhǎng)度多態(tài)分析、隨機(jī)引物PCR、隨機(jī)擴(kuò)增DNA多態(tài)性分析、PCR指紋,特異基因序列分析等[5,10]。而這些方法是基于純化培養(yǎng)樣品,而不是臨床病料樣品。最近,建立了基于臨床病料的方法,包括PCR反向線點(diǎn)雜交技術(shù)(PCR-RLB)[11]、特異基因和探針定量PCR[12]、復(fù)合PCR[13]、巢式PCR[14]、寡核苷酸芯片[15]和PCR-ELISA[16]等。這些分子生物學(xué)方法都是對(duì)人臨床病料的檢查,對(duì)動(dòng)物皮膚真菌臨床病料分子生物學(xué)檢查,特別是兔須癬毛癬菌臨床病料定量PCR檢查方法還未見(jiàn)報(bào)道。本實(shí)驗(yàn)用定量PCR方法,對(duì)患兔臨床病料進(jìn)行檢測(cè),與常規(guī)培養(yǎng)和直接鏡檢方法相比,定量PCR的敏感性和陰性預(yù)測(cè)值明顯高于常規(guī)方法,而特異性和陽(yáng)性預(yù)測(cè)值與常規(guī)方法沒(méi)有明顯差異。在63例臨床樣品檢查中,定量PCR陽(yáng)性率為86%,其陽(yáng)性率高于培養(yǎng)和直接鏡檢方法,多種指標(biāo)綜合評(píng)定,定量PCR方法優(yōu)于常規(guī)方法。

        綜上所述,本試驗(yàn)建立定量PCR方法,只能檢測(cè)須癬毛癬菌,對(duì)其它皮膚真菌和非皮膚真菌無(wú)法進(jìn)行診斷。培養(yǎng)方法可診斷和培養(yǎng)任何病原真菌,因此,盡管定量PCR綜合評(píng)定優(yōu)于培養(yǎng),但不能替代培養(yǎng)。直接鏡檢速度快、費(fèi)用低,但缺乏特異性、敏感性低以及有假陰性。與直接鏡檢比,定量PCR更敏感,更特異性更強(qiáng),完全可以替代直接鏡檢用于兔須癬毛癬菌的臨床診斷。

        參考文獻(xiàn):

        [1]Liu YW, Liu N, Zhang YY, et al. Establishment of a method for rapid diagnosis ofTrichophytonmentagrophytesinfection in rabbits[J]. Chin Vet Sci, 2013, 43(11): 1184-1189. (in Chinese)

        劉彥威,劉娜,張永英,等.家兔須癬毛癬菌感染快速診斷方法的建立.中國(guó)獸醫(yī)科學(xué)[J].2013 ,43(11):1184-1189.

        [2]Arabatzis M, Bruijnesteijn van Coppenraet LE, Kuijper EJ, et al. Diagnosis of common dermatophyte infections by a novel multiplex real-time polymerase chain reaction detection/identification scheme[J]. Br J Dermatol, 2007, 157(4): 681-689.

        [3]Yadav P, Singal A, Pandhi D,et al. Clinico-mycological study of dermatophyte toenail onychomycosis in New Delhi, India[J]. Indian J Dermatol, 2015, 60(2): 153-158.

        [4]Bergman A, Heimer D, Kondori N, et al. Fast and specific dermatophyte detection by automated DNA extraction and real-time PCR[J]. Clin Microbiol Infect, 2013, 19(4): 205-211. DOI: 10. 1111/1469 -069 1.12153

        [5]Han HW, Hsu MM, Choi JS,et al. Rapid detection of dermatophytes andCandidaalbicansin onychomycosis specimens by an oligonucleotide array[J]. BMC Infect Dis, 2014, 14: 581. DOI: 10.1186/s12879-014-0581-5

        [6]Robert R, Pihet M. Conventional methods for the diagnosis of dermatophytosis[J] . Mycopathologia, 2008, 166: 295-306.

        [7]Paugam A, Lollivier C, Viguie C, et al. Comparison of real-time PCR with conventional methods to detect dermatophytes in samples from patients with suspected dermatophytosis[J]. J Microbiol Methods, 2013, 95(2): 218-222.

        [8]Summerbell RC. Epidemiology and ecology of onychomycosis[J]. Dermatology(Basel), 1997, 194: 32-36.

        [9]Bergmans AM, van der Ent M, Klaassen A, et al. Evaluation of a single-tube real-time PCR for detection and identification of 11 dermatophyte species in clinical material[J]. Clin Microbiol Infect, 2010, 16(6): 704-710.

        [10]Frealle E, Rodrigue M, Gantois N. Phylogenetic analysis ofTrichophytonmentagrophyteshuman and animal isolates based on MnSOD and ITS sequence comparison[J]. Microbiology, 2007, 153: 3466-3477.

        [11]Brillowska-Dabrowska A, Saunte DM, Cavling Arendrup M. Five-hour diagnosis of dermatophyte nail infections with specific detection ofTrichophytonrubrum[J] . J Clin Microbiol, 2007, 45: 1200-1204.

        [12]Wisselink GJ, van Zanten E, Kooistra-Smid AMD. Trapped in keratin; a comparison of dermatophyte detection in nail, skin and hair samples directly from clinical samples using culture and real-time PCR[J]. J Microbiol Methods, 2011, 85: 62-66.

        [13]Kim JY, Choe YB, Ahn KJ, et al. Identification of dermatophytes using multiplex polymerase chain reaction[J]. Ann Dermatol, 2011, 23: 304-312.

        [14]Verrier J, Krahenbuhl L, Bontems O, et al. Dermatophyte identification in skin and hair samples using a simple and reliable nested-PCR assay[J]. Br J Dermatol, 2012, 168: 295-301.

        [15]Li HC, Bouchara JP, Hsu MML, et al. Identification of dermatophytes by an oligonucleotide array[J]. J Clin Microbiol, 2007, 45: 3160-3166.

        [16]Beifuss B, Bezold G, Gottlober P, et al. Direct detection of five common dermatophyte species in clinical samples using a rapid and sensitive 24-h PCR-ELISA technique open to protocol transfer[J]. Mycoses, 2011, 54: 137-145.

        DOI:10.3969/j.issn.1002-2694.2016.02.013

        通訊作者:劉彥威,Email:Liuyw.edu@126.com

        Corresponding author:Liu Yan-wei, Email: liuyw.edu@126.com

        中圖分類號(hào):R379

        文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A

        文章編號(hào):1002-2694(2016)02-0165-04

        收稿日期:2015-06-10;修回日期:2015-10-12

        Comparison of real-time PCR with conventional methods to diagnose Trichophyton mentagrophytes in clinical specimens from rabbits

        SHEN Jie,LIU Yue,LIU Li-qiang,LIU Na,LIU Jian-chai,LIU Yan-wei,XING Xin

        (Key Laboratory of Animal Medicine, Agricultural College, Hebei University of Engineering, Handan 056021, China)

        Abstract:To investigate a rapid, specific and sensitive method to diagnose Trichophyton mentagrophytes infections in rabbits, a total of 63 clinical specimens were collected from rabbit with suspected dermatophytosis. These specimens were examined by both conventional diagnostic (direct microscopy and culture) method and real-time PCR assay, which were compared by sensitivity, specificity, positive and negative predictive value. The results showed that real-time PCR assay for Trichophyton mentagrophytes was positive in 86%, followed by direct microscopy(73%) and culture method(65%). Comparing with direct microscopy and culture method, real-time PCR assay had significantly higher sensitivity (100%vs 86.79%-77.35%) and negative predictive value (100% vs 64.17%-45.45%), while no significant differences were observed in specificity (90.90% vs 100%-100%) and positive predictive value (98.11% vs 100%-100%). In vitro culture is a specific diagnostic test, but is in poor sensitivity and long turnaround time of technique, with false negative results. Direct microscopy is a rapid diagnostic method but it lacks specificity and sensitivity. The specific result and short response time makes this real-time PCR assay very suitable as a routine diagnostic assay for Trichophyton mentagrophytes. It could advantageously replace the direct microscopy, but not the culture method.

        Keywords:real-time PCR; Trichophyton mentagrophytes; conventional diagnosis; rabbit

        河北省自然基金項(xiàng)目(No.C180501);河北省教育廳重點(diǎn)項(xiàng)目(No.Z02014048)和邯鄲市科技局資助項(xiàng)目(No.1422101047-3)聯(lián)合資助

        Supported by the Natural Science Foundation Project of Hebei Province (No. C180501), the Key Project of Hebei Province Department of Education (No. Z02014048) and the Science and Technology Bureau--Funded Project (No. 1422101047-3)

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