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        類(lèi)球紅細(xì)菌輔酶Q10發(fā)酵培養(yǎng)基的優(yōu)化*

        2016-07-13 10:09:04福建師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院廈門(mén)市科環(huán)海洋生物科技有限公司
        海峽科學(xué) 2016年3期
        關(guān)鍵詞:輔酶培養(yǎng)基因子

        .福建師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院 2.廈門(mén)市科環(huán)海洋生物科技有限公司 周 勇 鄭 毅

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        類(lèi)球紅細(xì)菌輔酶Q10發(fā)酵培養(yǎng)基的優(yōu)化*

        1.福建師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院2.廈門(mén)市科環(huán)海洋生物科技有限公司周勇1,2鄭毅1

        [摘要]為了提高類(lèi)球紅細(xì)菌輔酶Q10的發(fā)酵能力,本研究對(duì)發(fā)酵培養(yǎng)基中重要因子進(jìn)行優(yōu)化組合。首先對(duì)重要因子進(jìn)行單因子實(shí)驗(yàn),確定最佳濃度范圍。在最佳濃度范圍內(nèi)進(jìn)行均勻設(shè)計(jì)試驗(yàn),分別采用多項(xiàng)式逐步回歸、偏最小二乘二次回歸、偏最小二乘二次回歸(考慮交換項(xiàng))、偏最小二乘二次回歸(考慮平方項(xiàng))分析。結(jié)果表明,偏最小二乘二次回歸分析的優(yōu)化方案預(yù)測(cè)值與實(shí)驗(yàn)值最為接近,顯示各因子濃度與輔酶Q10濃度呈現(xiàn)二次曲線關(guān)系,各因子間的交換作用不能忽略。偏最小二乘二次回歸分析優(yōu)化方案使輔酶Q10濃度得到明顯提高,輔酶Q10的發(fā)酵水平達(dá)到230.71mg.L-1,比優(yōu)化前提高了53.81%。

        [關(guān)鍵詞]類(lèi)球紅細(xì)菌輔酶Q10均勻設(shè)計(jì)偏最小二乘二次回歸

        輔酶Q(Coenzyme Q,CoQ)又稱(chēng)泛醌(Ubiquinone),是自然界中廣泛存在的脂溶性醌類(lèi)化合物,存在于原核生物的細(xì)胞膜或真核生物的線粒體內(nèi)膜的磷脂雙分子層的疏水區(qū)域中。輔酶Q是有氧呼吸電子傳遞鏈的重要遞氫體,同時(shí)也是一種天然的抗氧化性劑和非特異免疫增強(qiáng)劑,在多種疾病中具有良好的輔助醫(yī)療效果[1, 2]。

        目前輔酶 Q10的制備方法有三種:動(dòng)植物組織提取法、化學(xué)合成法、微生物發(fā)酵生產(chǎn)法[3]。由于微生物發(fā)酵法的產(chǎn)物為天然物質(zhì),生物活性高、容易被人體吸收[4],成為制備輔酶 Q10最有潛力的方法與研究熱點(diǎn)。發(fā)酵培養(yǎng)基優(yōu)化是提高微生物代謝產(chǎn)物積累水平最有效的辦法。于子玲等[5]采用Plackett-Burman實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和Box- Behnken響應(yīng)面分析方法對(duì)輔酶Q10生產(chǎn)菌的發(fā)酵培養(yǎng)基進(jìn)行優(yōu)化,優(yōu)化后輔酶Q10產(chǎn)量為51.31mg/L,比優(yōu)化前提高了 99.34%。邵玲莉等[6]對(duì)輔酶Q10生產(chǎn)菌鞘氨醇單胞菌YZ0803的發(fā)酵條件進(jìn)行探討及組分的正交試驗(yàn)優(yōu)化,在搖瓶水平上,輔酶 Q10的最終濃度高達(dá)192mg/L,比優(yōu)化前提高了39.13%。

        均勻設(shè)計(jì)法[7]是一種常用的因子優(yōu)化組合方法,它利用試驗(yàn)設(shè)計(jì)和數(shù)學(xué)建模,通過(guò)局部試驗(yàn)回歸,擬合因素與結(jié)果間的全局函數(shù)關(guān)系,從而能獲得比較準(zhǔn)確的優(yōu)化組合。

        本文先采用單因子實(shí)驗(yàn),確定基礎(chǔ)培養(yǎng)基中重要成分的適宜濃度范圍。在單因子實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上,對(duì)重要因子進(jìn)行均勻設(shè)計(jì)試驗(yàn),分別采用二次多項(xiàng)式逐步回歸、偏最小二乘二次回歸、偏最小二乘二次回歸(考慮交換項(xiàng))、偏最小二乘二次回歸(考慮平方項(xiàng))分析,以期提高類(lèi)球紅細(xì)菌產(chǎn)輔酶Q10的發(fā)酵水平。

        1 材料和方法

        1.1菌株

        類(lèi)球紅細(xì)菌(Rhodobacter sphaeroides),本實(shí)驗(yàn)室選育保藏。

        1.2培養(yǎng)基

        (1)瓊脂平板培養(yǎng)基(單位:g·L-1):葡萄糖18、酵母粉4.5、味精2、(NH4)2SO45.25、MgSO48.75、KH2PO41.5、FeSO41.2、NaCl4.2、瓊脂粉 20。

        (2)種子培養(yǎng)基:與瓊脂平板培養(yǎng)基相同,但不添加瓊脂,另外添加0.5% CaCO3作為pH緩沖劑。

        (3)基礎(chǔ)培養(yǎng)基(單位:g·L-1):葡萄糖20、玉米漿粉3.5、味精2.5、(NH4)2SO44.0、MgSO41.0、KH2PO41.2、FeSO41.6、NaCl 3.5、A 0.1、B 0.1,添加1% CaCO3作為pH緩沖劑。

        1.3培養(yǎng)方法

        從活化的瓊脂平板培養(yǎng)基上,挑取單菌落,接入裝有20mL種子培養(yǎng)基的 250mL三角瓶中,在溫度 32℃、轉(zhuǎn)速220r/min下培養(yǎng)24h,作為搖瓶種子液;按10%接種量,將種子液接入 45mL基礎(chǔ)培養(yǎng)基的250mL三角瓶中,在溫度32℃、轉(zhuǎn)速220r/min下培養(yǎng)48h。

        1.4輔酶Q10的提取及檢測(cè)

        采用超聲波提取法[8, 9]破碎細(xì)胞,獲得輔酶 Q10;采用HPLC法[10]測(cè)定輔酶Q10濃度。

        1.5實(shí)驗(yàn)方法

        (1)采用單因子實(shí)驗(yàn),確定基礎(chǔ)培養(yǎng)基中重要成分的最佳濃度范圍。

        (2)在Data Processing Statio(DPS)7.05軟件中對(duì)重要因子進(jìn)行均勻設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn),分別采用二次多項(xiàng)式逐步回歸、偏最小二乘二次回歸、偏最小二乘二次回歸(考慮交換項(xiàng))、偏最小二乘二次回歸(考慮平方項(xiàng))分析,得出不同的優(yōu)化方案。通過(guò)驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),確定輔酶 Q10發(fā)酵培養(yǎng)基的最佳優(yōu)化組合。

        2 結(jié)果與分析

        2.1重要組分的單因子濃度實(shí)驗(yàn)

        在輔酶Q10基礎(chǔ)培養(yǎng)基上,分別對(duì)葡萄糖、玉米漿粉、(NH4)2SO4、味精進(jìn)行單因子優(yōu)化試驗(yàn),結(jié)果見(jiàn)圖1~圖4。

        圖1 葡萄糖對(duì)輔酶Q10產(chǎn)量的影響

        圖2 玉米漿粉對(duì)輔酶Q10產(chǎn)量的影響

        圖3 (NH4)2SO4對(duì)輔酶Q10產(chǎn)量的影響

        圖4 味精對(duì)輔酶Q10產(chǎn)量的影響

        由圖1~圖4可初步確定這4種成分的最佳濃度范圍:葡萄糖25~40g·L-1、玉米漿粉5~9g·L-1、(NH4)2SO43~7g·L-1、味精5~9g·L-1。

        2.2均勻設(shè)計(jì)試驗(yàn)表格及實(shí)施

        在葡萄糖、玉米漿粉、(NH4)2SO4、味精的單因子濃度基礎(chǔ)上,按照均勻設(shè)計(jì)表U15(54)進(jìn)行試驗(yàn)設(shè)計(jì),各因子濃度安排水平見(jiàn)表1。

        表1 均勻設(shè)計(jì)試驗(yàn)因素水平

        將上述4種組分的濃度水平按照DPS7.05軟件自動(dòng)生成的均勻設(shè)計(jì)表U15(54)排列,培養(yǎng)基其他組分濃度按照基礎(chǔ)培養(yǎng)基進(jìn)行,試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表2。

        表2 4種培養(yǎng)基成分均勻設(shè)計(jì)優(yōu)化

        2.3均勻設(shè)計(jì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

        2.3.1二次多項(xiàng)式逐步回歸分析

        采用二次多項(xiàng)式逐步回歸分析法對(duì)表2進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,得到以下數(shù)學(xué)模型方程:

        此回歸方程相關(guān)系數(shù)R2=0.9998,表明方程有效。總體顯著性檢驗(yàn)值 F=222.25,顯著水平 P=0.05,表明該模型可信度高。其優(yōu)化組合為:葡萄糖38g·L-1、(NH4)2SO47.5 g·L-1、味精6.0 g·L-1、玉米漿粉7.0 g·L-1。結(jié)果表明,輔酶Q10積累濃度為221m g·L-1,與模型預(yù)測(cè)值(249mg·L-1)相差11.24%,這表明二次多項(xiàng)式逐步回歸分析法所建立的模型不能很好反映出因子與響應(yīng)值的非線性關(guān)系。

        2.3.2偏最小二乘二次回歸分析

        對(duì)表2數(shù)據(jù)進(jìn)行偏最小二乘二次回歸、偏最小二乘二次回歸(考慮平方項(xiàng))、偏最小二乘二次回歸(考慮交換項(xiàng))分析得出不同的優(yōu)化方案,結(jié)果見(jiàn)表3。

        表3 培養(yǎng)基不同優(yōu)化方案對(duì)輔酶Q10發(fā)酵的影響

        由表3可知,偏最小二乘二次回歸、偏最小二乘二次回歸(考慮平方項(xiàng))、偏最小二乘二次回歸(考交換項(xiàng))的實(shí)驗(yàn)值相差不大,但是后兩者的預(yù)測(cè)值與實(shí)驗(yàn)值偏差要大于前者。這表明,上述4個(gè)因子濃度與輔酶Q10濃度呈二次曲線關(guān)系,同時(shí)各因子間的交換作用不可忽略。如果在偏最小二乘二次回歸分析中,只考慮各因子的平方項(xiàng)或各因子間的互作項(xiàng)時(shí),則分析預(yù)測(cè)值與實(shí)驗(yàn)值都有較大的偏差。所以將偏最小二乘二次回歸分析方案作為輔酶Q10發(fā)酵培養(yǎng)基最佳優(yōu)化方案:葡萄糖38 g·L-1、玉米漿粉7.0 g·L-1、硫酸銨3.5g·L-1、味精 7.2 g·L-1。該優(yōu)化方案下的輔酶 Q10濃度為 230.71 mg·L-1,比優(yōu)化前(150 mg·L-1)提高了53.81%。

        3 結(jié)論

        本實(shí)驗(yàn)先采用單因子實(shí)驗(yàn),確定基礎(chǔ)培養(yǎng)基中重要成分的適宜濃度范圍,再采用均勻設(shè)計(jì)對(duì)重要因子進(jìn)行優(yōu)化組合,分別進(jìn)行二次多項(xiàng)式逐步回歸、偏最小二乘二次回歸、偏最小二乘二次回歸(考慮交換項(xiàng))、偏最小二乘二次回歸(考慮平方項(xiàng))分析。結(jié)果表明,各因子的平方項(xiàng)和各因子間的互作項(xiàng)對(duì)響應(yīng)值都具有影響作用。偏最小二乘二次回歸分析的模型預(yù)測(cè)值與實(shí)驗(yàn)值偏差最小,其優(yōu)化方案使輔酶 Q10濃度得到明顯提高。

        參考文獻(xiàn):

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        [4] 鄭毅,王婭, 朱志春,等. 發(fā)酵法生產(chǎn)輔酶 Q10研究進(jìn)展[J]. 海峽科學(xué), 2012(8):128-130.

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        * 福建省自然基金資助,項(xiàng)目編號(hào):2015J01127。

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