姜上川+梅超+王小芳+張大鵬
摘要:植物激素脫落酸(ABA)參與調(diào)控植物生長發(fā)育各個階段,并在植物對多種脅迫的抗逆反應(yīng)中起著重要作用。PPR基因家族是擬南芥最大的基因家族之一,PPR蛋白在調(diào)控植物生長發(fā)育與響應(yīng)逆境脅迫過程中發(fā)揮重要作用,然而參與ABA信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的線粒體PPR蛋白仍有待進(jìn)一步研究。本研究發(fā)現(xiàn)擬南芥線粒體PPR蛋白APPR6的2個T-DNA插入突變體在萌發(fā)與萌發(fā)后幼苗早期生長過程中對外源ABA超敏,報道APPR6參與ABA信號轉(zhuǎn)導(dǎo)為進(jìn)一步闡明線粒體PPR蛋白的作用機(jī)制以及復(fù)雜的ABA信號網(wǎng)絡(luò)提供了新的信息。
關(guān)鍵詞:脫落酸(ABA);APPR6;PPR蛋白;種子萌發(fā);幼苗生長;擬南芥
中圖分類號: Q945.3
文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A
文章編號:1002-1302(2016)04-0053-05
PPR(pentatricopeptide repeats)蛋白是擬南芥中最大的細(xì)胞核編碼的蛋白家族之一,最早在擬南芥基因組序列中發(fā)現(xiàn)[1]。在擬南芥中約有450個PPR蛋白,其他陸生植物基因組序列中可編碼更多[2-3],并且來自不同種屬的PPR蛋白具有高度同源性。PPR蛋白的主要結(jié)構(gòu)特征是以35個氨基酸為重復(fù)單位連續(xù)排列,串聯(lián)重復(fù)可達(dá)到30次[2]。PPR蛋白在細(xì)胞內(nèi)主要分布在線粒體與葉綠體中,在線粒體和葉綠體等細(xì)胞器RNA代謝過程中起著重要作用[3],包括RNA剪接[4-6]、穩(wěn)定[7]、編輯[8-11]、加工[12]以及蛋白質(zhì)翻譯起始和核糖體組裝等[13]。大量研究表明,PPR具有直接結(jié)合RNA功能,通過PPR基序形成的螺旋結(jié)構(gòu)直接結(jié)合RNA,或與其輔助因子共同結(jié)合RNA[2-3]。近年來結(jié)構(gòu)生物學(xué)研究為進(jìn)一步闡明PPR蛋白的識別機(jī)理與識別密碼奠定基礎(chǔ)[14]。
脫落酸(ABA)是植物體內(nèi)最重要的激素之一,參與調(diào)控植物生長發(fā)育各個階段,并在植物應(yīng)對干旱、滲透、鹽、低溫等非生物脅迫以及病蟲害等生物脅迫的響應(yīng)中起著重要作用[15-16]。定位在線粒體或葉綠體的PPR蛋白在調(diào)控植物生長發(fā)育與逆境脅迫響應(yīng)的過程中發(fā)揮重要作用[2-3]。有的PPR蛋白還與雄性胞質(zhì)不育有密切聯(lián)系[17-18]。目前人們在擬南芥中已經(jīng)發(fā)現(xiàn)幾個線粒體定位的PPR蛋白參與了ABA信號轉(zhuǎn)導(dǎo)過程,包括ABO5[4]、SLO2[9]、SLG1[10]、AHG11[11]、PPR40[19]與PGN[20]等,這幾種PPR蛋白通過調(diào)控線粒體中活性氧(ROS)的變化參與ABA信號轉(zhuǎn)導(dǎo)過程。然而在擬南芥龐大的PPR蛋白家族中,仍有更多可能參與ABA信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的線粒體PPR蛋白有待鑒定。
最近研究發(fā)現(xiàn)擬南芥線粒體PPR蛋白APPR6參與調(diào)控胚胎發(fā)育過程[21]。APPR6(At1g77360)的3個T-DNA插入突變體SALK_045714(appr6-1)、SALK_091917(appr6-2)和SALK_061950(appr6-3)的雜合體中,僅3/4的種子能夠萌發(fā)并且沒有純合體植株;另外1/4純合體種子在發(fā)育的角果中顏色透明、胚胎發(fā)育遲緩,成熟后干種子體積小、皺縮,在土中不能直接萌發(fā),而在含有蔗糖的MS培養(yǎng)基上表現(xiàn)為生長發(fā)育嚴(yán)重滯后、植株矮小等[21]。然而對于APPR6在擬南芥中的其他功能仍有待研究。
本研究通過鑒定APPR6另外2個T-DNA插入突變體SALK_078430(appr6-4)與SALK_005601(appr6-5)在種子萌發(fā)與萌發(fā)后幼苗早期生長過程中對ABA的響應(yīng),發(fā)現(xiàn) APPR6 參與ABA信號轉(zhuǎn)導(dǎo),為進(jìn)一步闡明線粒體PPR蛋白的作用機(jī)制以及ABA信號網(wǎng)絡(luò)奠定基礎(chǔ)。1 材料與方法
1.1 植物材料
擬南芥(Arabidopsis thaliana)野生型(Col)種子購自美國俄亥俄州立大學(xué)擬南芥生物資源中心(Arabidopsis Biological Resource Center,Ohio State University,USA,簡稱ABRC)。
APPR6(At1g77360)基因T-DNA插入突變體SALK_078430(appr6-4)以及SALK_005601(appr6-5)種子購自ABRC,其遺傳背景為Col生態(tài)型。
ABI1(AT4G26080)基因T-DNA插入突變體abi1-3(SALK_076309)、ABI2(AT5G57050)基因T-DNA插入突變體abi2-2(SALK_015166)購自ABRC,其遺傳背景為Col生態(tài)型。abi1-3 abi2-2雙突變體純合體由中國農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院郭巖教授饋贈。
1.2 方法
1.2.1 擬南芥種植 將適量擬南芥種子用0.5%次氯酸鈉(NaClO)表面消毒,振蕩20 min后用無菌水漂洗5次,播種于固體MS[22]培養(yǎng)基(MS干粉 4.43 g/L,蔗糖30 g/L,瓊脂 7~8 g/L,pH值5.8~6.0)上,將培養(yǎng)皿置于4 ℃環(huán)境中低溫處理3 d后取出,置于光照培養(yǎng)箱中培養(yǎng)10~14 d,光周期為光照16 h—黑暗8 h,溫度20 ℃,光照度約80 μmol/(m2·s)。將適齡幼苗移栽入小盆中,種植用土的成分體積配比為營養(yǎng)土 ∶草炭土 ∶蛭石=2 ∶1 ∶1。幼苗覆膜培養(yǎng)5 d后揭膜,光周期為光照16 h—黑暗8 h,溫度22~24 ℃,光照度為120 μmol/(m2·s)。
1.2.2 T-DNA插入突變體鑒定 采用表1中所示引物對突變體進(jìn)行鑒定。T-DNA插入突變體appr6-4和appr6-5純合體基因組DNA用自身基因RP引物與T-DNA序列LBa1引物可以擴(kuò)增出特異條帶,而LP+RP引物擴(kuò)增不出條帶;野生型或無插入植株基只有LP+RP引物能擴(kuò)增出目的條帶。PCR程序:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性 30 s,58 ℃退火30 s,72 ℃延伸1.5 min,35個循環(huán);之后72 ℃總延伸 10 min。
進(jìn)一步對突變體的T-DNA序列插入位置進(jìn)行分析。以突變體純合體植株的基因組DNA為模板,用T-DNA序列左右端引物L(fēng)Ba1 5′-TGGTTCACGTAGTGGGCCATCG-3′、RBa1 5′-TGGTTCACGTAGTGGG CCATCG-3′分別與基因組序列兩端引物RP、LP(表1)擴(kuò)增,將所得目的擴(kuò)增產(chǎn)物片段用凝膠回收試劑盒回收,之后重組到克隆載體上(pEASY-T1),送至北京Life Technologies測序并比對分析T-DNA插入位置。
1.2.3 實時熒光定量PCR檢測基因表達(dá) 采用通用植物總RNA提取試劑盒提取不同植物材料RNA,反轉(zhuǎn)錄后采用實時熒光定量PCR分析。所用的引物如表2所示。反應(yīng)體系(10 μL)中加入SYBR Premix Ex Taq(2×)5 μL,正向引物與反向引物(20 μmol/L)各0.1 μL,cDNA 模板0.2 μL,ddH2O補(bǔ)至10 μL。每個反應(yīng)體系重復(fù)3次,充分混勻,短暫離心后采用CFX96熒光定量PCR儀(Bio-Rad,美國)進(jìn)行擴(kuò)增。實時熒光定量PCR反應(yīng)程序:95 ℃ 30 s,94 ℃ 5 s、60 ℃ 20 s讀取熒光值并重復(fù)40個循環(huán),95 ℃ 10s,65 ℃升溫至95 ℃,每次上升0.5 ℃,每次5 s讀取熒光值。數(shù)據(jù)分析:CT值為PCR反應(yīng)熒光信號達(dá)到所設(shè)域值時對應(yīng)的循環(huán)數(shù),ΔCT為目的基因引物CT(APPR6)與內(nèi)參引物CT(Actin)值之差,ΔΔCT為處理組與對照組ΔCT之差,以2-ΔΔCT衡量標(biāo)準(zhǔn)化后基因表達(dá)差異。
1.2.4 種子萌發(fā)試驗 將適量擬南芥種子表面消毒后,播種在含有不同濃度(±) ABA的固體MS培養(yǎng)基上,經(jīng)4 ℃左右低溫處理2~3 d后將培養(yǎng)皿轉(zhuǎn)移至光照培養(yǎng)箱中。種子萌發(fā)以種子露白作為記錄標(biāo)準(zhǔn),分別在不同時間點(12、24、36、48、60、72 h)記錄不同基因型種子對應(yīng)的萌發(fā)數(shù)量。按照公式“萌發(fā)率=萌發(fā)數(shù)/總數(shù)×100%”對萌發(fā)率數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計分析。
1.2.5 幼苗萌發(fā)后生長試驗 將適量擬南芥種子表面消毒后,播種在含有不同濃度(±)ABA的固體MS培養(yǎng)基上,經(jīng) 4 ℃ 低溫層積處理2~3 d后將培養(yǎng)皿轉(zhuǎn)移至光照培養(yǎng)箱中,經(jīng)適當(dāng)生長天數(shù)(10 d)后觀察記錄幼苗生長狀況。
2 結(jié)果與分析
2.1 突變體appr6-4和appr6-5的T-DNA插入位點鑒定
之前報道的T-DNA插入突變體SALK_045714(appr6-1)和SALK_091917(appr6-2)均插入擬南芥APPR6基因起始密碼子下游1 435 bp,SALK_061950(appr6-3)插入擬南芥APPR6基因起始密碼子下游1 449 bp,這幾個突變體純合體種子胚胎發(fā)育異常、不能正常萌發(fā)生長;在添加蔗糖的培養(yǎng)基上生長出的植株移入土中生長后,其株高與角果大小均顯著小于野生型,生長嚴(yán)重滯后。
本研究選擇APPR6另外2個T-DNA插入突變體SALK_078430(appr6-4)與SALK_005601(appr6-5)。appr6-4突變體中T-DNA插入APPR6基因啟動子區(qū),即起始密碼子ATG上游第271 bp到第254 bp之間,插入造成約18 bp堿基缺失;appr6-5突變體中T-DNA插入APPR6基因起始密碼子ATG下游1539 bp到終止密碼子TGA下游37 bp 之間,插入造成約52 bp堿基缺失(圖1)。
同時,與野生型相比,appr6-4和appr6-5突變體的純合體種子形態(tài)與野生型接近,并能夠正常萌發(fā),在土中可繼續(xù)生長;進(jìn)入生殖生長階段,僅appr6-5在早期(35 d前)表現(xiàn)出株高(花序高度)較低、生長滯后,然而在42 d后appr6-4和appr6-5突變體與野生型相比植株高度差異不顯著(圖2)。因此選擇appr6-4和appr6-5突變體作為遺傳材料進(jìn)行后續(xù)研究。
2.2 APPR6基因表達(dá)在種子中最高并受到ABA誘導(dǎo)
首先檢測了擬南芥不同生長時期APPR6表達(dá)變化情況(圖3-A)。采用實時熒光定量PCR檢測野生型低溫層積處理3 d后生長24 h種子、生長12 d幼苗和21 d幼苗中APPR6基因表達(dá)情況,發(fā)現(xiàn)APPR6在種子中表達(dá)量顯著上調(diào)。在基因表達(dá)數(shù)據(jù)公共網(wǎng)站Arabidopsis eFP Browser(http://bar.utoronto.ca/efp/cgi-bin/efpWeb.cgi)(圖3-C)以及Genevestigator(http://www.genevestigator.com)(圖3-D)查找生物芯片檢測相關(guān)數(shù)據(jù),發(fā)現(xiàn)APPR6在不同組織、器官中均有表達(dá),并在種子中表達(dá)量最高。這些數(shù)據(jù)與圖2-A中試驗結(jié)果基本一致。
進(jìn)一步檢測了ABA處理后APPR6基因表達(dá)變化,結(jié)果圖3-B表明。施加不同濃度(±) ABA(0、1、3 μmol/L)低溫處理3 d后生長24 h的野生型Col種子中,APPR6表達(dá)隨ABA濃度升高而顯著升高。
2.3 APPR6調(diào)控種子萌發(fā)對ABA的響應(yīng)
植物種子休眠與萌發(fā)過程受到ABA的調(diào)控,外源ABA會在一定程度上抑制種子的正常萌發(fā)過程。為研究APPR6在種子萌發(fā)過程中對ABA敏感性的影響,采用ABA誘導(dǎo)的種子萌發(fā)抑制試驗檢測不同基因型種子在萌發(fā)過程中對ABA敏感性的差異。用ABA信號轉(zhuǎn)導(dǎo)負(fù)調(diào)節(jié)子編碼基因ABI1與ABI2雙突變體abi1-3 abi2-2作為對ABA敏感的對照,將野生型Col、突變體appr6-4和appr6-5、雙突變體abi1-3 abi2-2的種子播種在無ABA(0 μmol/L)以及含有(±)ABA(05、1 μmol/L)的MS培養(yǎng)基上,經(jīng)4 ℃低溫處理約3 d后放入光照培養(yǎng)箱中正常生長,計算其在12 ~72 h的萌發(fā)率,統(tǒng)計結(jié)果如圖4所示。在不含ABA的MS培養(yǎng)基上,野生型Col、appr6-4和appr6-5突變體種子在生長36 h后萌發(fā)率均可達(dá)到100%。而在含有不同濃度(±) ABA(05、1 μmol/L)的MS培養(yǎng)基上,與野生型Col相比,appr6-4和appr6-5突變體的萌發(fā)率受到ABA顯著抑制,其超敏程度低于雙突變體abi1-3 abi2-2。
2.4 APPR6調(diào)控幼苗早期生長對ABA的響應(yīng)
高濃度ABA能夠抑制植物幼苗生長。為研究APPR6對幼苗早期生長過程中對ABA敏感性的影響,采用ABA誘導(dǎo)的萌發(fā)后生長抑制試驗檢測不同基因型幼苗早期生長過程中對ABA敏感性的差異。用ABA信號轉(zhuǎn)導(dǎo)負(fù)調(diào)節(jié)子編碼基因ABI1與ABI2雙突變體abi1-3 abi2-2作為對ABA敏感的對照。
將不同基因型種子直接播種在無ABA(0 μmol/L)以及含有不同濃度(±) ABA的MS培養(yǎng)基上,經(jīng)4 ℃低溫處理約3 d后放入光照培養(yǎng)箱中正常生長10 d,結(jié)果如圖5所示。在無ABA(0 μmol/L)培養(yǎng)基上,除appr6-5根長略短、表現(xiàn)出顯著生長滯后外,其他基因型植物根長差異不顯著。在含有0.3 μmol/L ABA的MS培養(yǎng)基上,appr6-5突變體的子葉不能變綠伸展、胚軸與根部生長受到ABA顯著抑制,appr6-4盡管超敏程度低于appr6-5突變體,但根系生長受到ABA抑制程度顯著高于野生型(圖5-A、圖5-B)。在0.5 μmol/L ABA的MS培養(yǎng)基上,appr6-4受到ABA抑制程度仍顯著高于野生型,appr6-5突變體的生長狀態(tài)與雙突變體abi1-3 abi2-2接近(圖5-A、圖5-B)。為排除appr6-5根長生長滯后的影響,以無ABA(0 μmol/L)培養(yǎng)基上根長數(shù)值為參照,將不同材料根長換算為相對值(圖5-C),其結(jié)果與圖 5-B中根長變化趨勢一致。
3 結(jié)論與討論
本研究首次發(fā)現(xiàn)擬南芥線粒體PPR蛋白APPR6參與ABA調(diào)控種子萌發(fā)與幼苗生長。在種子中APPR6的表達(dá)量最高,且受到外源ABA誘導(dǎo)。利用APPR6的另外2個可以完成整個生命周期的T-DNA插入突變體appr6-4和appr6-5作為遺傳材料,發(fā)現(xiàn)在種子萌發(fā)與萌發(fā)后幼苗生長過程中,與野生型相比,突變體appr6-4和appr6-5均表現(xiàn)出顯著的對ABA敏感的表型。這些證據(jù)表明APPR6參與ABA信號轉(zhuǎn)導(dǎo)。
擬南芥APPR6在玉米中的同源蛋白是線粒體PPR蛋白MPPR6(MAGIv4_67802),主要在種子中表達(dá),參與促進(jìn)玉米線粒體中編碼核糖體蛋白S3的rps3 mRNA 5′端成熟以及翻譯起始,并影響胚胎發(fā)育;MPPR6在不同物種中結(jié)構(gòu)域功能的保守性較高,可恢復(fù)擬南芥appr6-3突變體的生長滯后表型[21]。APPR6以及MPPR6主要在種子中表達(dá)與其在種子階段的關(guān)鍵作用密切相關(guān)。
同時,在正常生長條件下,appr6-4(SALK_078430)的生長發(fā)育狀態(tài)與野生型差異不顯著,而appr6-5(SALK_005601)在早期幼苗生長過程中以及生殖生長初期表現(xiàn)出發(fā)育滯后表型;并且在萌發(fā)后生長過程中,appr6-5對ABA的超敏程度顯著高于appr6-4。然而這2個突變體均能正常完成整個生命周期,純合體種子外觀與野生型差異不顯著。根據(jù)APPR6的結(jié)構(gòu)特征[21],之前報道的純合體致死、 胚胎發(fā)育發(fā)生嚴(yán)重異常的突變體株系SALK_045714(appr6-1)、SALK_091917(appr6-2)和SALK_061950(appr6-3)的 T-DNA 插入擬南芥APPR6基因的區(qū)段對應(yīng)APPR6蛋白PPR結(jié)構(gòu)域。突變體appr6-4的T-DNA插入在APPR6啟動子區(qū),其基因全長序列未受到影響;而appr6-5的T-DNA插入位點對應(yīng)APPR6蛋白C端遠(yuǎn)離PPR結(jié)構(gòu)域的位置。這表明APPR6中PPR結(jié)構(gòu)域的完整性對其正常行使功能至關(guān)重要。
本研究為進(jìn)一步闡明線粒體PPR蛋白的作用機(jī)制以及ABA信號網(wǎng)絡(luò)提供了新的信息。進(jìn)一步對擬南芥APPR6可能結(jié)合的RNA靶標(biāo)進(jìn)行篩選,并研究其表達(dá)變化對ABA信號轉(zhuǎn)導(dǎo)關(guān)鍵調(diào)節(jié)基因表達(dá)的影響,有助于理解其可能的作用機(jī)制。此外由于ABA是重要的抗逆激素,對APPR6在干旱、鹽、低溫、滲透脅迫等主要非生物逆境中的功能有待后續(xù)鑒定。
參考文獻(xiàn):
[1]Small I D,Peeters N. The PPR motif—a TPR-related motif prevalent in plant organellar proteins[J]. Trends in Biochemical Sciences,2000,25(2):46-47.
[2]Lurin C,Andres C,Aubourg S,et al. Genome-wide analysis of Arabidopsis pentatricopeptide repeat proteins reveals their essential role in organelle biogenesis[J]. Plant Cell,2004,16(8):2089-2103.
[3]Schmitz-Linneweber C,Small I. Pentatricopeptide repeat proteins:a socket set for organelle gene expression[J]. Trends in Plant Science,2008,13(12):663-670.
[4]Liu Y,He J,Chen Z,et al. ABA overly-sensitive 5 (ABO5),encoding a pentatricopeptide repeat protein required for cis-splicing of mitochondrial nad2 intron 3,is involved in the abscisic acid response in Arabidopsis[J]. Plant Journal,2010,63(5):749-765.
[5]Chateigner-Boutin A,des Francs-Small C C,Delannoy E,et al. OTP70 is a pentatricopeptide repeat protein of the E subgroup involved in splicing of the plastid transcript rpoC1[J]. Plant Journal,2011,65(4):532-542.
[6]de Longevialle A F,Meyer E H,Andres C,et al. The pentatricopeptide repeat gene OTP43 is required for trans-splicing of the mitochondrial nad1 intron 1 in Arabidopsis thaliana[J]. Plant Cell,2007,19(10):3256-3265.
[7]Pfalz J,Bayraktar O A,Prikryl J,et al. Site-specific binding of a PPR protein defines and stabilizes 5′ and 3′ mRNA termini in chloroplasts[J]. EMBO Journal,2009,28(14):2042-2052.
[8]Sung T Y,Tseng C C,Hsieh M H. The SLO1 PPR protein is required for RNA editing at multiple sites with similar upstream sequences in Arabidopsis mitochondria[J]. Plant Journal,2010,63(3):499-511.
[9]Zhu Q,Dugardeyn J,Zhang C,et al. SLO2,a mitochondrial pentatricopeptide repeat protein affecting several RNA editing sites,is required for energy metabolism[J]. Plant Journal,2012,71(5):836-849.
[10]Yuan H,Liu D. Functional disruption of the pentatricopeptide protein SLG1 affects mitochondrial RNA editing,plant development,and responses to abiotic stresses in Arabidopsis[J]. Plant Journal,2012,70(3):432-444.
[11]Murayama M,Hayashi S,Nishimura N,et al. Isolation of Arabidopsis ahg11,a weak ABA hypersensitive mutant defective in nad4 RNA editing[J]. Journal of Experimental Botany,2012,63(14):5301-5310.
[12]Meierhoff K,F(xiàn)elder S,Nakamura T,et al. HCF152,an Arabidopsis RNA binding pentatricopeptide repeat protein involved in the processing of chloroplast psbB-psbT-psbH-petB-petD RNAs[J]. Plant Cell,2003,15(6):1480-1495.
[13]Prikryl J,Rojas M,Schuster G,et al. Mechanism of RNA stabilization and translational activation by a pentatricopeptide repeat protein[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2011,108(1):415-420.
[14]Yin P,Li Q,Yan C,et al. Structural basis for the modular recognition of single-stranded RNA by PPR proteins[J]. Nature,2013,504(7478):168-171.
[15]Cutler S R,Rodriguez P L,F(xiàn)inkelstein R R,et al. Abscisic acid:emergence of a core signaling network[J]. Annual Review of Plant Biology,2010,61:651-679.
[16]Finkelstein R R,Gampala S S L,Rock C D. Abscisic acid signaling in seeds and seedlings[J]. Plant Cell,2002,14(Suppl):S15-S45.
[17]Chetrit P,Rios R,De Paepe R,et al. Cytoplasmic male sterility is associated with large deletions in the mitochondrial DNA of two Nicotiana sylvestris protoclones[J]. Current Genetics,1992,21(2):131-137.
[18]Wang Z H,Zou Y J,Li X Y,et al. Cytoplasmic male sterility of rice with boro II cytoplasm is caused by a cytotoxic peptide and is restored by two related PPR motif genes via distinct modes of mRNA silencing[J]. Plant Cell,2006,18(3):676-687.
[19]Zsigmond L,Rigó G,Szarka A,et al. Arabidopsis PPR40 connects abiotic stress responses to mitochondrial electron transport[J]. Plant Physiology,2008,146(4):1721-1737.
[20]Laluk K,Abuqamar S,Mengiste T. The Arabidopsis mitochondria-localized pentatricopeptide repeat protein PGN functions in defense against necrotrophic fungi and abiotic stress tolerance[J]. Plant Physiology,2011,156(4):2053-2068.
[21]Manavski N,Guyon V,Meurer J,et al. An essential pentatricopeptide repeat protein facilitates 5′ maturation and translation initiation of rps3 mRNA in maize mitochondria[J]. Plant Cell,2012,24(7):3087-3105.
[22]Murashige T,Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture[J]. Physiol Plant,1962,15:473-497. 馬芳芳,蔣明義. 外源ABA處理的玉米葉片酵母雙雜交cDNA文庫的構(gòu)建及評價[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2016,44(4):58-61.