亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        毛果楊半胱氨酸蛋白酶基因PtCP2和PtCP4原核表達及蛋白純化

        2016-05-30 10:48:04張強李麗紅要笑云蔣璐瑤王瑩撖靜宜曹山李慧陸海
        南方農(nóng)業(yè)學(xué)報 2016年4期
        關(guān)鍵詞:原核表達

        張強 李麗紅 要笑云 蔣璐瑤 王瑩 撖靜宜 曹山 李慧 陸海

        摘要:【目的】對毛果楊半胱氨酸蛋白酶基因PtCP2和PtCP4進行原核表達及重組蛋白純化,為進一步研究該基因的酶學(xué)特征和生理功能打下基礎(chǔ)?!痉椒ā繌拿麠钪锌寺蓚€半胱氨酸蛋白酶基因PtCP2和PtCP4,構(gòu)建其原核表達載體pET-30a-PtCP2及pET-30a-PtCP4,并在轉(zhuǎn)入大腸桿菌后在體外誘導(dǎo)表達重組蛋白,采用包涵體洗滌法對目的蛋白進行純化。【結(jié)果】PtCP2基因CDS序列全長1107 bp,編碼368個氨基酸;PtCP4基因CDS序列全長1104 bp,編碼367個氨基酸。PtCP2和PtCP4基因編碼的蛋白均屬于RD19A-like類型木瓜蛋白酶。PtCP2和PtCP4基因在毛果楊根、莖、葉中均有表達,其中PtCP2在葉中表達量最高,PtCP4在根中表達量最高。通過包涵體洗滌法在體外得到了高表達量、單一的重組蛋白PtCP2和PtCP4,切除信號肽后蛋白酶大小分別為38.151和38.069 kD?!窘Y(jié)論】原核表達獲得的純化重組蛋白PtCP2和PtCP4可用于進一步研究毛果楊半胱氨酸蛋白酶的酶學(xué)特征和生理功能。

        關(guān)鍵詞: 毛果楊;半胱氨酸蛋白酶;原核表達;蛋白純化;定量PCR

        中圖分類號: Q785;Q786 文獻標志碼:A 文章編號:2095-1191(2016)04-0511-08

        0 引言

        【研究意義】半胱氨酸蛋白酶(Cysteine protease)是植物體內(nèi)一類十分龐大的蛋白酶家族,廣泛參與植物的各生理過程(Ahmad et al.,2014)。大量研究發(fā)現(xiàn),植物各組織器官的衰老與半胱氨酸蛋白酶關(guān)系密切。木本植物的細胞程序性死亡(PCD)過程主要表現(xiàn)為木質(zhì)部形成、葉衰老等,而毛果楊基因組已全部測序并公布,可作為木本植物研究中的模式生物,因此,深入研究毛果楊半胱胺酸蛋白酶PtCP2和PtCP4,對木材的利用和改良等具有重要意義?!厩叭搜芯窟M展】有研究表明,在干旱、低溫等非生物脅迫條件下,半胱氨酸蛋白酶基因的表達會明顯上升(Battelli et al.,2014);在細胞衰老和細胞程序性死亡過程中,半胱氨酸蛋白酶也發(fā)揮著至關(guān)重要的作用(Zhang et al.,2014)。Wagstaff等(2002)研究發(fā)現(xiàn),萱草科植物中的半胱氨酸蛋白酶基因SEN11和SEN102均在花的衰老過程中表達,其中,SEN102基因在萱草屬的葉片衰老過程中呈下調(diào)表達,但在花的衰老過程中呈上調(diào)表達;在擬南芥葉片的衰老過程中,有8個半胱氨酸蛋白酶基因表達,其中最引人注目的是木瓜蛋白酶SAG12,被認為是衰老的標志性蛋白(Wan et al.,2002;McLellan et al.,2009);與擬南芥RD19蛋白同源率較高的MsCyp15A則被發(fā)現(xiàn)在苜蓿葉片衰老進程中發(fā)揮十分重要的作用(Bernoux et al.,2008)。Mackey等(2002)研究發(fā)現(xiàn),RD19類基因主要編碼干旱誘導(dǎo)性半胱氨酸蛋白酶,青枯雷爾氏菌引發(fā)的干旱脅迫可以導(dǎo)致該基因轉(zhuǎn)錄水平明顯上升,但這類蛋白在干旱脅迫中的作用機理目前尚不明確;研究還發(fā)現(xiàn)RD19類蛋白的失活會導(dǎo)致感染植物中細菌大量繁殖。目前,已有很多半胱氨酸蛋白酶基因在體外表達且相應(yīng)蛋白酶已成功進行純化。半滑舌鰨中的半胱氨酸蛋白酶基因CsCatB已成功進行原核表達并純化,且在35 ℃和pH 5.5條件下獲得最大酶活性(Chen and Sun,2012);另外,Nandana等(2014)成功將牛角瓜半胱氨酸蛋白酶基因Procerain B進行原核表達及純化,并在pH 4.0條件下成功體外激活?!颈狙芯壳腥朦c】目前,半胱胺酸蛋白酶在草本植物中研究比較透徹,但由于木本植物生長周期長于草本植物等原因,半胱氨酸蛋白酶在木本植物中的研究明顯滯后?!緮M解決的關(guān)鍵問題】以毛果楊為試驗材料,在體外大量表達毛果楊重組蛋白PtCP2和PtCP4的基礎(chǔ)上,探討重組蛋白的純化方法,建立一套合理有效的包涵體蛋白純化體系,為今后進一步研究該基因的生理功能打下基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1. 1 試驗材料

        供試材料毛果楊(Populus trichocarpa Torr. & Gray)由北京林業(yè)大學(xué)生物化學(xué)與分子生物學(xué)實驗室提供。大腸桿菌(Escherichia coli)感受態(tài)DH5α和BL21及表達載體pET-30a由北京林業(yè)大學(xué)生物化學(xué)與分子生物學(xué)實驗室保存;克隆載體pMD18-T購自TaKaRa公司。Easyspin Plus植物RNA快速提取試劑盒購自北京艾德萊生物科技公司;FastQuant RT Kit試劑盒購自Promega公司;質(zhì)粒小提試劑盒、瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒及SuperReal熒光定量預(yù)混試劑均購自天根生化科技(北京)有限公司;Ex Taq酶、T4 DNA連接酶、限制性內(nèi)切酶等均購自TaKaRa公司;Taq 10 MasterMix購自北京奧賽博科技發(fā)展有限公司;引物序列由生工生物工程(上海)股份有限公司合成;異丙基硫代半乳糖苷(IPTG)、尿素、胃蛋白酶等購自Sigma公司。

        1. 2 試驗方法

        1. 2. 1 PtCP2和PtCP4基因的克隆與分析 按照艾德萊公司的植物全RNA提取試劑盒操作流程提取毛果楊葉片RNA,通過瓊脂糖凝膠電泳進行鑒定。將提取的RNA按照Promega公司的RT-PCR試劑盒操作說明進行反轉(zhuǎn)錄得到cDNA。通過在毛果楊數(shù)據(jù)庫JGI上檢索獲得半胱氨酸蛋白酶基因PtCP2和PtCP4,根據(jù)基因序列,運用Primer 5.0軟件分別設(shè)計特異性引物PtCP2(上游引物:5'-ATGTCTCTCAACCTCTCTCTCTTTC-3',下游引物:5'-CTAGAGGGAGTTGGTCTGCACG-3')和PtCP4(上游引物:5'-GTCCAAACCATGGAACGCTTAC-3',下游引物:5'-CACAGCAATCTACTGGGCAG-3'),以反轉(zhuǎn)錄所得cDNA為模板進行特定目的片段PCR擴增。反應(yīng)體系(25.0 μL):0.5 μL Ex Taq酶,2.5 μL 10×Ex Taq Buffer,2.5 μL dNTP,上下游引物各1.0 μL,cDNA模板2.0 μL,ddH2O 15.5 μL。擴增程序: 95 ℃預(yù)變性5 min; 95 ℃ 30 s,55 ℃ 1 min,72 ℃ 1 min,進行30個循環(huán);72 ℃延伸10 min。

        將PCR產(chǎn)物按照瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒說明進行回收,將回收產(chǎn)物與pMD18-T載體進行連接并轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,培養(yǎng)挑菌后進行PCR初步鑒定,將陽性克隆送至北京六合華大基因公司測序。對克隆得到的毛果楊PtCP2和PtCP4基因進行生物信息學(xué)分析:使用SignalP 3.0軟件對PtCP2和PtCP4基因的信號肽序列進行預(yù)測;使用ExPASy軟件對PtCP2和PtCP4基因編碼的蛋白酶PtCP2和PtCP4的等電點、分子量等要素進行分析預(yù)測;使用MEGA 5.1軟件對蛋白酶PtCP2和PtCP4進行系統(tǒng)發(fā)育樹構(gòu)建;使用BioEdit軟件將蛋白酶PtCP2和PtCP4與已知RD19A類蛋白酶進行氨基酸序列比對。

        1. 2. 2 PtCP2和PtCP4基因的組織表達分析 以毛果楊的根、莖、葉為試驗材料分別提取總RNA,通過反轉(zhuǎn)錄獲得cDNA。通過Primer 5.0軟件設(shè)計特異性引物PtCP2(上游引物:5'-CTTTAGCGTGGTGTCCCT-3',下游引物:5'-CTCCTCCAATGTATGTTTGC-3')和PtCP4(上游引物:5'-GGAACGCTTACCTCTGCT-3',下游引物:5'-TGACACGACTTGCCTGAT-3'),以各部位cDNA為模板,按SuperReal熒光定量預(yù)混試劑盒操作流程分別對PtCP2和PtCP4基因進行熒光定量分析。反應(yīng)體系(20.0 μL):10.0 μL 2×SuperReal PreMix Plus,上、下游引物各0.5 μL,cDNA模板0.7 μL,ddH2O 8.3 μL。熒光定量PCR程序: 95 ℃預(yù)變性15 min; 95 ℃ 30 s,56 ℃ 20 s,72 ℃ 20 s,進行40個循環(huán);95 ℃ 30 s,65 ℃ 30 s,然后以0.5 ℃/s的速度升至95 ℃,進行61個循環(huán)。每個根、莖、葉試驗組均設(shè)1個對照組,對照組采用與試驗組相同部位的cDNA為模板,以β-actin為內(nèi)參基因進行特異性擴增,每組試驗重復(fù)3次以上。

        1. 2. 3 PtCP2和PtCP4基因原核表達載體構(gòu)建和表達 用限制性內(nèi)切酶Kpn I和Xho I對毛果楊PtCP2、PtCP4基因和原核表達載體pET-30a同時進行雙酶切,將酶切產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠電泳,回收目的產(chǎn)物,使用T4 DNA連接酶進行體外連接,將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,培養(yǎng)挑菌后提取質(zhì)粒進行PCR擴增和雙酶切鑒定,獲得pET-30a-PtCP2和pET-30a-PtCP4表達載體。PCR鑒定體系(25.0 μL):12.5 μL 2×Taq 10 MasterMix,上、下游引物各1.0 μL,質(zhì)粒1.0 μL,ddH2O 9.5 μL。擴增程序: 95 ℃預(yù)變性5 min; 95 ℃ 30 s,55 ℃ 1 min,72 ℃ 1 min,進行30個循環(huán); 72 ℃延伸10 min。雙酶切鑒定體系(20.0 μL):2.0 μL 10×M Buffer,Kpn I 1.0 μL,Xho I 1.0 μL,質(zhì)粒16.0 μL。

        將上述構(gòu)建好的表達載體轉(zhuǎn)化至大腸桿菌BL21中,于37 ℃、200 r/min條件下在含有卡那霉素(50 mg/L)的LB中擴大培養(yǎng)至OD600為0.4~0.6,加入經(jīng)抽濾的IPTG溶液(終濃度為0.3 mmol/L),于28 ℃、140 r/min條件下誘導(dǎo)培養(yǎng)3 h。取1 mL菌液用SDS-PAGE檢測蛋白條帶,以相同培養(yǎng)條件下未加IPTG菌液為對照,檢測重組蛋白是否在體外表達。

        1. 2. 4 重組蛋白PtCP2和PtCP4的純化 將獲得的誘導(dǎo)菌液在4 ℃、4000 r/min條件下離心10 min,收集菌體后用Tris緩沖液(300 mmol/L NaCl、50 mmol/L Tris、pH 8.0)重懸,超聲波破碎200次直至菌液澄清,于4 ℃、12000 r/min條件下離心30 min獲得含有目的蛋白的包涵體。對包涵體蛋白采用包涵體洗滌法進行純化,使用包涵體洗滌液(1 mmol/L EDTA、50 mmol/L Tris-HCl、50 mmol/L NaCl、0.5% Triton X-100、2 mmol/L β-巰基乙醇、2 mol/L 尿素、pH 8.0)將包涵體蛋白重懸,置于冰上后于水平搖床上搖動20 min,然后4 ℃、12000 r/min條件下離心20 min,棄去上清液,重復(fù)5次。用含8 mol/L尿素的Tris緩沖液將最終獲得的包涵體蛋白重懸,超聲波破碎50次,4 ℃、12000 r/min條件下離心30 min,獲得含有重組蛋白的上清液,用SDS-PAGE檢測蛋白純度,考馬斯亮藍法測定蛋白濃度。

        1. 2. 5 重組蛋白PtCP2和PtCP4的復(fù)性及酶原激活

        測定上一步純化的重組蛋白濃度后,用含8 mol/L尿素的Tris緩沖液將蛋白濃度稀釋至100 ng/μL以下復(fù)性。將稀釋后的重組蛋白依次放入含6、4、2 mol/L尿素的復(fù)性液(含1 mmol/L EDTA、50 mmol/L Tris-HCl、50 mmol/L NaCl、1 mmol/L還原型谷胱甘肽、0.1 mmol/L氧化型谷胱甘肽)中,每個梯度低溫攪拌透析4 h,經(jīng)2 mol/L尿素復(fù)性后將重組蛋白放入不含尿素的復(fù)性液中繼續(xù)低溫攪拌透析2 d,期間更換1次復(fù)性液,最后收集蛋白溶液。

        用HAc-NaAc緩沖液(pH 4.0)對復(fù)性蛋白進行酸化,酸化環(huán)境為pH 4.5,反應(yīng)時間分別為30 s、1 min、5 min、10 min、30 min、1 h、6 h、12 h、1 d和3 d,待酸化完成后加入1 mol/L NaOH中和反應(yīng)體系,終止酸化反應(yīng)。使用SDS-PAGE檢測酸化條帶,對照組為未酸化蛋白。另外,本研究采用組織蛋白酶B催化的方法進行酶原激活(Gogiel et al.,2012),在上述酸化體系中加入終濃度為10 μg/mL的組織蛋白酶B,以幫助酶原激活,按照上述時間梯度進行酸化,待酸化完成后,使用1 mol/L NaOH中和反應(yīng)體系,終止酸化反應(yīng);使用SDS-PAGE檢測酸化條帶,對照組分別為未酸化蛋白和組織蛋白酶B。

        2 結(jié)果與分析

        2. 1 PtCP2和PtCP4基因克隆及蛋白序列分析

        以毛果楊cDNA為模板,分別使用PtCP2和PtCP4特異性引物進行PCR克隆并測序。結(jié)果(圖1)顯示,PtCP2基因(JGI基因編號grail3.0001039901)全長1107 bp,編碼368個氨基酸,通過SignalP 3.0軟件預(yù)測該蛋白信號肽為21個氨基酸,去除信號肽后分子量為38.151 kD,理論等電點為6.11;PtCP4基因(JGI基因編號grail3.0002061802)全長1104 bp,編碼367個氨基酸,通過SignalP 3.0軟件預(yù)測該蛋白信號肽為20個氨基酸,去除信號肽后分子量為38.069 kD,理論等電點為6.44。選取木本棉體內(nèi)的已知RD19A類蛋白酶KHG24064和KHG15062與PtCP2、PtCP4進行序列比對,結(jié)果(圖2)表明,PtCP2中的C160、H303、N330及PtCP4中的C159、H302、N329組成催化三聯(lián)體,其為木瓜蛋白酶的核心催化殘基。由于PtCP2和PtCP4蛋白結(jié)構(gòu)域中由ERFNAQ元件取代了ERFNIN元件組成花環(huán)狀結(jié)構(gòu),且蛋白酶結(jié)構(gòu)域中VxNFS或VxNFT元件中有保守的PGS序列(NxS/T),因此可以推論PtCP2和PtCP4屬于RD19A-like類型木瓜蛋白酶。

        2. 2 系統(tǒng)發(fā)育樹分析

        分別選擇來自木本棉(Gossypium arboreum)、大豆(Glycine soja)、擬南芥(Arabidopsis thaliana)及菜豆(Phaseolus vulgaris)的RD19A類蛋白酶的物種和基因及分別來自木本棉、大豆、擬南芥、小球藻(Auxenoc-hlorella protothecoides)、桑樹(Morus notabilis)、玉米(Zea mays)及節(jié)節(jié)麥(Aegilops tauschii)的RD21A類蛋白酶的物種和基因,對毛果楊半胱氨酸蛋白酶PtCP2和PtCP4進行系統(tǒng)發(fā)育進化分析,結(jié)果(圖3)顯示,PtCP2與木本棉RD19A類蛋白KHG15253和KHG24064同源率較高,PtCP4則與木本棉RD19A類蛋白KHG15062同源率較高,此外,其所在的亞組還包括其他所有選取的RD19A類蛋白,由此可以看出PtCP2和PtCP4與其他物種的RD19A類蛋白親緣關(guān)系較近;而在與8類RD21A類蛋白的同源性比較中發(fā)現(xiàn),PtCP2和PtCP4與其親緣關(guān)系相對較遠。

        2. 3 PtCP2和PtCP4基因的組織表達特性分析

        為研究PtCP2和PtCP4基因在不同組織器官的表達量,分別取毛果楊的根、莖、葉3個部位的材料提取總RNA,反轉(zhuǎn)錄后進行熒光定量PCR檢測,結(jié)果表明,PtCP2和PtCP4基因在毛果楊根、莖、葉中均有表達,但表達量存在差異,PtCP2基因在葉中的表達量最高,是內(nèi)參基因β-actin表達量的3.180倍,根次之,莖中表達量最低(圖4-A);PtCP4基因則在根中的表達量最高,為內(nèi)參基因β-actin表達量的0.285倍,葉次之,莖中表達量最低(圖4-B);PtCP2基因整體表達量明顯高于PtCP4基因。

        2. 4 PtCP2和PtCP4基因原核表達載體的構(gòu)建

        由于PtCP2和PtCP4基因中包含信號肽序列,該序列不能在原核生物中表達,因此需要在構(gòu)建原核表達載體時去除該部分序列。以已克隆得到的毛果楊PtCP2和PtCP4基因為模板,用特異性引物通過PCR擴增得到目的片段,大小約1044 bp,與預(yù)期結(jié)果一致(圖5)。將該片段回收,與pMD-18T連接,獲得陽性克隆并測序正確。

        使用限制性內(nèi)切酶Kpn I和Xho I分別對克隆載體pMD18-T-PtCP2和pMD18-T-PtCP4進行酶切獲得目的片段,與表達載體pET-30a連接,獲得重組質(zhì)粒。重組質(zhì)粒雙酶切電泳檢測結(jié)果(圖6)顯示,重組質(zhì)粒經(jīng)雙酶切后獲得長度約5400 bp的大片段和1000 bp的小片段,分別與表達載體pET-30a和目的片段大小相符。

        2. 5 重組蛋白PtCP2和PtCP4的表達和純化

        將重組質(zhì)粒pET-30a-PtCP2和pET-30a-PtCP4轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21后體外誘導(dǎo)表達,所得蛋白為包涵體形式。采用包涵體洗滌法對目的蛋白進行純化,所得重組蛋白PtCP2和PtCP4去除信號肽后理論分子量大小分別為38.151和38.069 kD,與His-tag(5.3 kD)結(jié)合后,大小分別約為43.5和43.4 kD(圖7)。

        2. 6 重組蛋白PtCP2和PtCP4的體外酶原激活結(jié)果

        對酶原進行體外激活,結(jié)果顯示,在酸性條件下,酶原出現(xiàn)降解,且隨著酸化時間的延長酶原降解程度增加,在酸化達24 h后,酶原完全降解,但沒有新的成熟酶條帶產(chǎn)生;在組織蛋白酶B催化條件下,單位時間內(nèi)酶原降解程度較酸性條件下有所增加,在16 h左右即可完全降解,但同樣沒有成熟酶條帶產(chǎn)生。表明這兩個蛋白酶不能在本研究酸性條件下完成酶原激活,也不能在組織蛋白酶B催化條件下完成酶原激活,可能需要其他蛋白酶參與其酶原激活過程。

        3 討論

        半胱氨酸蛋白酶主要分為木瓜蛋白酶(Papain)、豆類天冬氨酸蛋白內(nèi)切酶(Legumain)、天冬氨酸特異性半胱氨酸蛋白酶(Caspase)和鈣依賴半胱氨酸蛋白酶(Calpain)(Barrett and Rawlings,2001),其中木瓜蛋白酶是種類最多,研究最深入、最透徹的一類(Bar-Ziv et al.,2015)。木瓜蛋白酶家族成員均含有1個由保守氨基酸殘基組成的催化三聯(lián)體Cys25-His159-Asn175,這一結(jié)構(gòu)也是木瓜蛋白酶家族的分類標志之一(閆龍鳳等,2005)。木瓜蛋白酶家族成員主要分為9類:RD21A-like、RD19A-like、CEP 1-like、XCP2-like、XBCP3-like、THIl-like、SAG12-like、AALP-like和CTB3-like(Ri-chau et al.,2012)。其中,RD19A-like在蛋白結(jié)構(gòu)域中由ERFNAQ元件取代了ERFNIN元件,蛋白酶結(jié)構(gòu)域存在VxNFS或VxNFT元件且元件中存在保守的PGS序列(NxS/T)。RD19類蛋白酶家族與動物組織蛋白酶F相似,可以劃分為RD19A、RD19B和RD19C 3個亞家族(Babula-Skowrońska et al.,2015)。本研究成功克隆獲得毛果楊半胱氨酸蛋白酶基因PtCP2和PtCP4,通過氨基酸序列分析表明PtCP2蛋白中的C160、H303、N330及PtCP4蛋白中的C159、H302、N329與木瓜蛋白酶保持一致,是證明其屬于木瓜蛋白酶家族的重要證據(jù);另外,PtCP2和PtCP4蛋白結(jié)構(gòu)中由ERFNAQ元件取代了ERFNIN元件,蛋白酶結(jié)構(gòu)域中存在VxNFS或VxNFT元件且元件中有保守的PGS序列(NxS/T),這些都是PtCP2和PtCP4屬于RD19A-like類型木瓜蛋白酶的重要證據(jù)。

        有研究表明擬南芥的RD系列基因與干旱脅迫和鹽脅迫等非生物脅迫有密切聯(lián)系(Yang et al.,2011),但對高溫和低溫等脅迫無響應(yīng)。本研究通過系統(tǒng)進化樹構(gòu)建和蛋白質(zhì)序列比對分析,發(fā)現(xiàn)PtCP2、PtCP4和擬南芥AT4G39090基因編碼的RD19A蛋白同屬于RD19A亞家族且具有很高的同源性,由于同一亞家族的基因功能通常相似,因此推測毛果楊PtCP2和PtCP4基因與非生物脅迫相關(guān)。通過組織表達定量結(jié)果分析,本研究發(fā)現(xiàn)PtCP2和PtCP4基因表達存在明顯差異,推測這兩個基因具有不同的生物學(xué)功能。進一步檢索楊樹EST數(shù)據(jù)庫,發(fā)現(xiàn)這兩個基因均在干旱脅迫條件下大量表達,但表達時期和表達量存在顯著差異,表明這兩個基因可能在參與干旱脅迫應(yīng)答的不同時期起作用,將是今后基因功能研究的重點方向。

        木瓜蛋白酶的氨基酸序列從N端到C端按其功能可以劃分為3個區(qū)域:信號肽序列、前體肽序列和成熟酶序列(Wiederanders,2003)。信號肽作為引導(dǎo)新生蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移的短肽鏈,在木瓜蛋白酶進入到內(nèi)質(zhì)網(wǎng)后即被切除,蛋白質(zhì)則以一種前體酶的形式存在,不具備活性,前體肽序列則在酶發(fā)揮活性時被自動切除,形成具有活性的成熟酶(Riese and Chapman,2000;Martinez and Diaz,2008)。氨基酸序列分析結(jié)果表明,RD19類蛋白酶家族與動物組織蛋白酶F相似,但也有報道把組織蛋白酶F歸入組織蛋白酶L類(Wex et al.,2000)。有報道顯示與RD19A類蛋白相似度很高的組織蛋白酶L在弱酸性環(huán)境中易被活化(Fonseca et al.,2012),但新產(chǎn)生的成熟酶在堿性和中性環(huán)境中無法穩(wěn)定存在。因此,本研究選用pH 4.0~5.5作為酸化環(huán)境,同時在組織蛋白酶B催化條件下對酶原進行激活,但經(jīng)酸化后始終無法獲得穩(wěn)定的成熟酶序列。分析原因,可能是RD19A類蛋白酶在進行前體肽切除后成熟酶無法在酸性環(huán)境下穩(wěn)定存在,需要自身體內(nèi)異體蛋白酶的催化,有助于穩(wěn)定成熟酶的結(jié)構(gòu),這一部分工作將成為今后的研究重點。

        本研究將PtCP2和PtCP4基因與原核表達載體pET-30a連接,在原核表達系統(tǒng)中成功誘導(dǎo)表達,采用包涵體洗滌法對目的蛋白進行純化即可獲得單一的目的蛋白。此外,本研究通過熒光定量PCR對PtCP2和PtCP4基因進行組織表達分析,初步分析了該基因可能的功能。為了更加透徹地研究PtCP2和PtCP4的生物學(xué)功能,下一步將構(gòu)建這兩個基因的正義表達載體,轉(zhuǎn)化野生型擬南芥,并對轉(zhuǎn)基因擬南芥進行性狀分析,初步鑒定該基因在PCD過程中的作用,為進一步揭示PtCP2和PtCP4在毛果楊體內(nèi)的功能提供參考。

        4 結(jié)論

        本研究克隆獲得了毛果楊半胱氨酸蛋白酶基因PtCP2和PtCP4,在大腸桿菌中成功誘導(dǎo)表達,并經(jīng)包涵體洗滌法純化后獲得重組蛋白PtCP2和PtCP4,為進一步研究毛果楊半胱氨酸蛋白酶的酶學(xué)特征和生理功能打下基礎(chǔ)。

        參考文獻:

        閆龍鳳,楊青川,韓建國,劉志鵬. 2005. 植物半胱氨酸蛋白酶研究進展[J]. 草業(yè)學(xué)報, 14(5):11-18.

        Yan L F, Yang Q C, Han J G, Liu Z P. 2005. Summary of cysteine protease in plants[J]. Acta Prataculturae Sinica, 14(5):11-18.

        Ahmad R, Zuily-Fodil Y, Passaquet C, Bethenod O, Roche R, Repellin A. 2014. Identification and characterization of MOR-CP, a cysteine protease induced by ozone and developmental senescence in maize(Zea mays L.) leaves[J]. Chemosphere, 108:245-250.

        Babula-Skowrońska D, Ludwików A, Ciela A, Olejnik A, Cegielska-Taras T, Bartkowiak-Broda I, Sadowski J. 2015. Involvement of genes encoding ABI1 protein phosphatases in the response of Brassica napus L. to drought stress[J]. Plant Molecular Biology, 88(4-5): 445-457.

        Barrett A J, Rawlings N D. 2001. Evolutionary lines of cysteine peptidases[J]. Biological Chemistry, 382(5): 727-733.

        Bar-Ziv A, Levy Y, Citovsky V, Gafni Y. 2015. The Tomato yellow leaf curl virus(TYLCV) V2 protein inhibits enzymatic activity of the host papain-like cysteineprotease CYP1[J]. Biochemical and Biophysical Research Communications, 460(3): 525-529.

        Battelli R, Lombardi L, Picciarelli P, Lorenzi R, Frigerio L, Rogers H J. 2014. Expression and localisation of a senescence-associated KDEL-cysteine protease from Lilium longiflorum tepals[J]. Plant Science, 214:38-46.

        Bernoux M, Timmers T, Jauneau A, Brière C, de Wit P J, Marco Y, Deslandes L. 2008. RD19, an arabidopsis cysteine protease required for RRS1-R-mediated resistance, is relocalized to the nucleus by the Ralstonia solanacearum PopP2 effector[J]. Plant Cell, 20(8): 2252-2264.

        Chen L, Sun L. 2012. Cathepsin B of Cynoglossus semilaevis: identification, expression, and activity analysis[J]. Comparative Biochemistry and Physiology B-Biochemistry & Molecular Biology, 161(1):54-9.

        Fonseca F P, Soares-Costa A, Ribeiro A F, Rosa J C, Terra W R, Henrique-Silva F. 2012. Recombinant expression, localization and in vitro inhibition of midgut cysteine peptidase(Sl-CathL) from sugarcane weevil, Sphenophorus levis[J]. Insect Biochemistry and Molecular Biology, 42(1):58-69.

        Gogiel T, Galewska Z, Romanowicz L. 2012. Differential distribution of cathepsin B in human umbilical cord tissues[J]. Acta Biochimica Polonica, 59(4):679-684.

        Mackey D, Holt B F, Wiig A, Dangl J L. 2002. RIN4 interacts with Pseudomonas syringae type III effector molecules and is required for RPM1-mediated resistance in Arabidopsis[J]. Cell, 108(6):743-754.

        Martinez M, Diaz I. 2008. The origin and evolution of plant cystatins and their target cysteine proteinases indicate a complex functional relationship[J]. BMC Evolutionary Bio-logy, 8:198.

        McLellan H, Gilroy E M, Yun B W, Birch P R, Loake G J. 2009. Functional redundancy in the Arabidopsis Cathepsin B gene family contributes to basal defence, the hypersensitive response and senescence[J]. New Phytologist, 183(2):408-418.

        Nandana V, Singh S, Singh A N, Dubey V K. 2014. Procerain B, a cysteine protease from Calotropis procera, requires N-terminus pro-region for activity: cDNA cloning and expression with pro-sequence[J]. Protein Expression and Purification, 103:16-22.

        Richau K H, Kaschani F, Verdoes M, Pansuriya T C, Niessen S, Stüber K, Colby T, Overkleeft H S, Bogyo M, Van der Hoorn R A. 2012. Subclassification and biochemical analysis of plant papain-like cysteine proteases displays subfamily-specific characteristics[J]. Plant Physiology, 158(4):1583-1599.

        Riese R J,Chapman H A. 2000. Cathepsins and compartmenta-lization in antigen presentation[J]. Current Opinion in Immunology, 12(1):107-113.

        Wagstaff C, Leverentz M K, Griffiths G, Thomas B, Chanasut U, Stead A D, Rogers H J. 2002. Cysteine protease gene expression and proteolytic activity during senescence of Alstroemeria petals[J]. Journal of Experimental Botany, 53(367):233-240.

        Wan L, Xia Q, Qiu X, Selvaraj G. 2002. Early stages of seed development in Brassica napus: a seed coat-specific cysteine proteinase associated with programmed cell death of the inner integument[J]. Plant Journal, 30(1):1-10.

        Wex T, Levy B, Wex H, Brmme D. 2000. Human cathepsins W and F form a new subgroup of cathepsins that is evolutionary separated from the cathepsin B-and L-like cysteine proteases[J]. Advances in Experimental Medicine and Biology, 477:271-280.

        Wiederanders B. 2003. Structure-function relationship in class CA1 cysteine peptidase propeptides[J]. Acta Biochemica Polonica, 50(3):691-713.

        Yang S D, Seo P J, Yoon H K, Park C M. 2011. The Arabidopsis NAC transcription factor VNI2 integrates abscisic acid signals into leaf senescence via the COR/RD genes[J]. Plant Cell, 23(6):2155-2168.

        Zhang D, Liu D, Lv X, Wang Y, Xun Z, Liu Z, Li F, Lu H. 2014. The cysteine protease CEP1, a key executor involved in tapetal programmed cell death, regulates pollen development in Arabidopsis[J]. Plant Cell, 26(7): 2939-2961.

        (責(zé)任編輯 麻小燕)

        猜你喜歡
        原核表達
        丹參蛋白激酶SmSnRK2.4的克隆及表達分析
        H7亞型禽流感病毒HA基因的原核表達及表達產(chǎn)物的反應(yīng)原性分析
        結(jié)核分枝桿菌Erp蛋白PGLTS的4基序突變體的構(gòu)建
        棉花GhGGPase2基因克隆、功能序列分析、原核表達及煙草的遺傳轉(zhuǎn)化
        人FOXA1蛋白的原核表達、純化及蛋白互作分析
        柑橘CitSERK—LIKE基因原核表達載體的構(gòu)建與表達
        信號分子與葉銹菌誘導(dǎo)下小麥病程相關(guān)蛋白1基因的表達分析
        山桃醇腈酶基因PdHNL1的克隆、序列分析與原核表達
        ShSAP1的原核表達及多克隆抗體的制備
        水稻抗白葉枯病基因xa5的原核表達及蛋白純化
        国产极品视觉盛宴| 99熟妇人妻精品一区五一看片| 国产精品国产三级国a| 国产精品高清视亚洲乱码| а√天堂资源官网在线资源| 处破痛哭a√18成年片免费| 亚洲日本在线va中文字幕| 久久色悠悠综合网亚洲| 精品精品国产高清a毛片| 麻豆精品传媒一二三区| 亚洲欧美一区二区三区国产精| 国产亚洲精品高清视频| 日本人妻免费在线播放| 小鲜肉自慰网站| 人妻丰满多毛熟妇免费区| 亚洲国产精品色婷婷久久| 男女真人后进式猛烈视频网站 | 麻豆国产成人精品午夜视频| 日本午夜理伦三级好看| 麻豆视频在线播放观看| 99久久国产综合精品女图图等你| 99热成人精品免费久久| 日韩色久悠悠婷婷综合| 精品一区二区三区四区国产| 亚洲av成人无码网站大全| 精品少妇爆乳无码aⅴ区| 亚洲综合精品一区二区| 久久婷婷五月综合色欧美| 内射交换多p国产| 日本一区二区在线资源| 国产麻豆精品传媒av在线| 亚洲色欲色欲www在线观看| 狠狠狠色丁香婷婷综合激情| 亚洲无av高清一区不卡| 久青草影院在线观看国产| 国产乱子乱人伦电影在线观看| 日韩av中出在线免费播放网站 | 国产欧美日本亚洲精品一4区| 日本一级片一区二区三区| 三年片免费观看大全有| 国产高清无码91|