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        ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對擴展青霉生長和產(chǎn)毒的影響

        2016-05-24 09:04:20姜辣陳海燕張婧崔亞敏孟祥紅
        食品與發(fā)酵工業(yè) 2016年4期
        關(guān)鍵詞:產(chǎn)毒生長

        姜辣,陳海燕,張婧,崔亞敏,孟祥紅

        (中國海洋大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,山東 青島,266003)

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        ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對擴展青霉生長和產(chǎn)毒的影響

        姜辣,陳海燕,張婧,崔亞敏,孟祥紅*

        (中國海洋大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,山東 青島,266003)

        摘要通過固體和液體兩種培養(yǎng)方式,探究了ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對擴展青霉菌體生長和展青霉素產(chǎn)生的影響。結(jié)果表明,固體培養(yǎng)方式下,ε-聚賴氨酸鹽酸鹽可以顯著地抑制擴展青霉孢子萌發(fā)和菌體生長,且具有濃度依賴性。液體培養(yǎng)方式下,不同濃度的ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對擴展青霉菌體生長的影響不同,但是均明顯地抑制毒素的產(chǎn)生。其中1.2 mg/mL ε-聚賴氨酸鹽酸鹽在一定時間內(nèi)可以顯著地抑制擴展青霉菌體生長和產(chǎn)毒,但在培養(yǎng)后期抑制作用減弱,并促進了產(chǎn)毒。

        關(guān)鍵詞ε-聚賴氨酸鹽酸鹽;擴展青霉;產(chǎn)毒;生長

        擴展青霉(Penicilliumexpansum)是果蔬采后的主要病原菌之一,廣泛存在于蘋果、梨、葡萄、柑橘和桃等水果中[1-2],它不僅會導(dǎo)致水果的腐爛,而且還會產(chǎn)生一種次級代謝產(chǎn)物——展青霉素(Patulin)。展青霉素具有潛在的細胞和動物毒性,存在致畸性、致癌性和免疫毒性[3],嚴重危害人體健康,世界上許多國家已經(jīng)對水果及其加工制品中的展青霉素含量做出了嚴格的限定[4]。

        化學(xué)殺菌劑是控制采后病害的主要方法,但殺菌劑的化學(xué)殘留對人類健康及環(huán)境的影響已引起關(guān)注,同時由于病原菌變異和耐藥性的產(chǎn)生,使得化學(xué)殺菌劑的應(yīng)用越來越受到限制。因此,尋求安全、高效的抑菌物質(zhì)來代替化學(xué)殺菌劑用于控制采后病害一直是國內(nèi)外的研究熱點[5]。目前,已有將殼聚糖和植物精油用于控制采后病害的報道[6-7],但殼聚糖不溶于水,黏度高,其抑菌效果受分子量大小和脫乙酰度的影響,而植物精油易揮發(fā),不容易控制,有些植物精油還具有強烈的刺激性氣味,應(yīng)用領(lǐng)域受到限制。ε-聚賴氨酸作為一種食品添加劑,具有來源廣泛、水溶性好、熱穩(wěn)定性和安全性高[8-10]等優(yōu)點。有研究表明,ε-聚賴氨酸具有良好的抑菌效果,劉蔚等[11]以大腸桿菌、枯草芽孢桿菌、青霉為研究對象,確定了ε-聚賴氨酸對3種菌的最小抑菌質(zhì)量濃度分別為25、25和400 mg/L。YE等[12]研究發(fā)現(xiàn),ε-聚賴氨酸對大腸桿菌(E. coliO157:H7)具有明顯的抑菌效果,ε-聚賴氨酸能夠破壞細胞膜結(jié)構(gòu);誘導(dǎo)活性氧的產(chǎn)生,激活細胞中氧脅迫基因的表達;并能激活細胞的DNA損傷修復(fù)應(yīng)答(SOS應(yīng)答)機制,對菌體DNA造成一定程度的損傷。之前有關(guān)ε-聚賴氨酸抑菌作用的研究主要集中在對細菌生長的抑制作用和機理方面的探究,但ε-聚賴氨酸對真菌生長方面的研究、尤其是對擴展青霉菌體生長和產(chǎn)毒的影響卻鮮有報道。

        本文通過固體和液體2種培養(yǎng)方式,探究了ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對擴展青霉孢子萌發(fā)、菌體生長和展青霉素產(chǎn)生的影響,以期為ε-聚賴氨酸鹽酸鹽在采后病害控制中的應(yīng)用提供依據(jù)。

        1材料與方法

        1.1材料與試劑

        ε-聚賴氨酸鹽酸鹽, 浙江新銀象生物工程有限公司;乙腈(色譜純), 德國Merck公司;冰乙酸(色譜純),天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;展青霉素標(biāo)準(zhǔn)品(純度98%), 美國Sigma公司;超純水,美國Millipore超純水系統(tǒng);其他試劑均為分析純。擴展青霉(Penicillium expansun)由實驗室從感染青霉病的發(fā)病蘋果果實中分離純化,回接驗證所得(經(jīng)鑒定編號為M1),于4 ℃ PDA斜面培養(yǎng)基中保存。

        PDA培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g,瓊脂20 g,蒸餾水1 L,自然pH。

        PDB培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g,蒸餾水1 L,自然pH。

        1.2儀器與設(shè)備

        BMJ-250C霉菌培養(yǎng)箱,上海博訊實業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;BK5000-LEDR光學(xué)顯微鏡,重慶奧特光學(xué)儀器有限責(zé)任公司;Agilent-1260高效液相色譜儀,美國安捷倫科技有限公司;IS-RDS3恒溫振蕩器,美國精騏有限公司;RE-52A旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,上海榮生化學(xué)儀器廠;YGC-12氮吹儀,鄭州寶晶電子科技有限公司。

        1.3試驗方法

        1.3.1擴展青霉孢子懸浮液及其菌餅的制備

        將擴展青霉接種到PDA斜面上,25 ℃下培養(yǎng)7d后,加入無菌生理鹽水,將菌落表面的孢子刮下,用滅菌的4層紗布過濾除去菌絲等雜質(zhì),用血球計數(shù)板計數(shù),將孢子濃度調(diào)整至106CFU/mL。

        取一定體積的孢子懸浮液制備成含孢子濃度為105CFU/mL的PDA培養(yǎng)基,混勻后以每皿10 mL添加量倒入直徑為90 mm的無菌培養(yǎng)皿中制成平板。用無菌打孔器在含菌培養(yǎng)基上打孔得到直徑為9 mm的圓形菌餅。本實驗均在經(jīng)紫外線殺菌的無菌操作臺內(nèi)進行。

        1.3.2孢子萌發(fā)試驗

        制備ε-聚賴氨酸鹽酸鹽質(zhì)量濃度分別為0、0.1、0.2、0.3、0.4 mg/mL的PDA培養(yǎng)基,調(diào)節(jié)pH為5.6?;靹蚝笠悦棵?0 mL添加量倒入直徑為90 mm的無菌培養(yǎng)皿中,待培養(yǎng)基凝固后,均勻涂布100 μL擴展青霉孢子懸浮液。將培養(yǎng)皿置于25 ℃,相對濕度90%的霉菌培養(yǎng)箱中培養(yǎng)9.5 h后,在顯微鏡下觀察,以孢子芽管超過孢子直徑視為萌發(fā)[13],并計算孢子萌發(fā)率。每個處理設(shè)3個平行,每個平行樣中至少統(tǒng)計200個孢子。

        1.3.3固體培養(yǎng)條件下抑菌試驗

        制備ε-聚賴氨酸鹽酸鹽質(zhì)量濃度分別為0、0.4、0.8、1.2、1.6、2.0、4.0、6.0、8.0、10.0、20.0 mg/mL的PDA培養(yǎng)基,調(diào)節(jié)pH 為5.6?;靹蚝笠悦棵?5 mL添加量倒入直徑為90 mm的無菌培養(yǎng)皿中,待培養(yǎng)基凝固后,取含有擴展青霉孢子懸液的菌餅置于培養(yǎng)皿中央。將培養(yǎng)皿置于25 ℃,相對濕度90%的霉菌培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。培養(yǎng)7 d后,直至對照組的菌落直徑生長至培養(yǎng)皿直徑1/2~2/3時[14],用十字交叉法測量各處理組的菌落直徑,計算抑制率:

        每組實驗設(shè)3個平行。

        1.3.4液體培養(yǎng)條件下菌體生長和產(chǎn)毒試驗

        1.3.4.1擴展青霉生長量的測定

        制備ε-聚賴氨酸鹽酸鹽質(zhì)量濃度為0、0.4、0.8、1.2、1.6、2.0、4.0 mg/mL的PDB培養(yǎng)基,調(diào)節(jié)pH為5.6?;靹蚝笠悦科?0 mL添加量置于250 mL無菌錐形瓶中,接入0.4 mL 1×106CFU/mL 的擴展青霉孢子懸浮液,用透氣的封瓶膜封口。將錐形瓶置于25 ℃,相對濕度90%的霉菌培養(yǎng)箱中靜置培養(yǎng) 7d。其中將質(zhì)量濃度為0和1.2 mg/mL的處理組分別培養(yǎng)5,7,9,11,13 d。培養(yǎng)結(jié)束后抽濾收集菌體,于60 ℃下烘干至恒重,稱重,每組實驗設(shè)3個平行。

        1.3.4.2展青霉素的測定

        展青霉素測定采用高效液相色譜法,參考測定方法[15]。量取10 mL抽濾所得濾液,用于提取測量展青霉素,向待測樣品中加入15 mL乙酸乙酯振蕩提取1 h,靜置分層后,收集上層的乙酸乙酯相。重復(fù)2次,合并有機相,加入10 mL Na2CO3溶液(15 mg/mL),振蕩1 min,靜置分層后,再用10 mL的乙酸乙酯對Na2CO3層提取1次,合并乙酸乙酯提取液,于40 ℃水浴上旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至液體剩余1~2 mL,將濃縮液轉(zhuǎn)移至5 mL離心管中,于40 ℃下氮氣吹干,用1.0 mL乙酸水溶液(pH=4.0)溶解殘留物,經(jīng)0.45 μm濾膜過濾后,用HPLC進行測定。色譜柱:Agilent SB-C18柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動相:乙腈-水(10∶90,體積比);流速1.0 mL/min;柱溫30 ℃;檢測波長276 nm;進樣量20 μL。

        1.3.4.3pH和還原糖的測定

        將濾除菌體的濾液用于以下指標(biāo)的測定:pH值采用酸度計測定;還原糖采用DNS比色法測定[16]。

        1.4統(tǒng)計分析

        所有數(shù)據(jù)采用SPSS(Version 20.0, Inc., Chicago, IL, USA)軟件進行統(tǒng)計。實驗數(shù)據(jù)通過ANOVA進行鄧肯多重比較。當(dāng)P< 0.05時,即表示差異顯著。

        2結(jié)果與討論

        2.1ε-聚賴氨酸鹽酸鹽質(zhì)量濃度對擴展青霉孢子萌發(fā)的影響

        如圖1所示,培養(yǎng)9.5 h后,對照組的孢子萌發(fā)率達到87.3 %± 1.0%,而0.4 mg/mL ε-聚賴氨酸鹽酸鹽組孢子萌發(fā)率為(5.4±1.0)%。擴展青霉孢子培養(yǎng)9.5 h后,用顯微鏡觀察,對照組孢子幾乎全部萌發(fā),而0.4 mg/mL ε-聚賴氨酸鹽酸鹽組孢子基本沒有萌發(fā),多數(shù)孢子還沒有完成萌發(fā)所必須的體積膨大過程(圖2)。說明ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對擴展青霉孢子萌發(fā)具有明顯的抑制作用,其抑制作用強弱依賴于濃度的變化。這與β-氨基丁酸(BABA)對擴展青霉孢子萌發(fā)的研究結(jié)果[17]是一致的。

        圖1 ε-聚賴氨酸鹽酸鹽質(zhì)量濃度對擴展青霉孢子萌發(fā)的影響Fig.1 Effect of ε-poly-L-lysine·HCl with different concentrations on spore germination of P. expansum

        圖2 ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對擴展青霉孢子形態(tài)的影響Fig.2 Effect of ε-poly-L-lysine·HCl on spore morphology of P. expansum

        2.2固體培養(yǎng)方式下ε-聚賴氨酸鹽酸鹽質(zhì)量濃度對擴展青霉菌體生長的影響

        如圖3a所示,培養(yǎng)至第7天時,對照組的菌餅直徑達到(50.7±0.1) mm。0.4 mg/mL ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對擴展青霉菌體生長的抑制率為21.9%±0.1%,隨著濃度的升高,ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對菌體生長的抑制作用逐漸增強,當(dāng)濃度達到20 mg/mL時,抑制率為(68.6±3.6)%(圖3b)。說明固體培養(yǎng)方式下,ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對擴展青霉菌體生長的抑制具有濃度依賴性。

        圖3 固體培養(yǎng)方式下ε-聚賴氨酸鹽酸鹽質(zhì)量濃度對擴展青霉菌體生長的影響Fig.3 Effect of ε-poly-L-lysine·HCl with different concentrations on the mycelial growth of P. expansum in solid medium

        2.3液體培養(yǎng)方式下ε-聚賴氨酸鹽酸鹽質(zhì)量濃度對擴展青霉菌體生長和產(chǎn)毒的影響

        考慮到菌體生長和產(chǎn)毒過程中會引起培養(yǎng)環(huán)境發(fā)生變化,因此,采用液體培養(yǎng)的方式來探究ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對擴展青霉菌體生長和產(chǎn)毒的影響。由表1可以看出,液體培養(yǎng)方式下,相同培養(yǎng)時間(7 d)內(nèi),ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對擴展青霉菌體生長的抑制作用并不呈現(xiàn)濃度依賴性。在ε-聚賴氨酸鹽酸鹽濃度為1.2 mg/mL時,對菌體生長的抑制效果最好。但隨著ε-聚賴氨酸鹽酸鹽濃度的升高,抑制作用逐漸減弱。當(dāng)質(zhì)量濃度達到2.0 mg/mL以上時,擴展青霉菌體生長量與對照組相當(dāng)。分析可能的原因是液體培養(yǎng)方式下,ε-聚賴氨酸鹽酸鹽分子中大量帶正電荷的基團與菌體表面的吸附作用,使菌體生長量增加,劉勝榮[18]的研究也發(fā)現(xiàn),生理條件下,ε-聚賴氨酸可以大量的吸附至產(chǎn)生菌細胞。也可能是液體培養(yǎng)方式下,高濃度的ε-聚賴氨酸鹽酸鹽促進了菌體的生長,使菌體生長量增加。張昕等[19]的研究表明還原糖的降低與菌體生長量的上升具有一致性,這與本研究中高濃度處理組菌體對還原糖的消耗要高于1.2 mg/mL處理組的結(jié)果具有一致性。

        表1液體培養(yǎng)方式下ε-聚賴氨酸鹽酸鹽質(zhì)量濃度對擴展青霉菌體生長量、毒素含量及相關(guān)指標(biāo)的影響

        Table1Effect of ε-poly-L-lysine·HCl with different concentrations on the mycelial growth ofP.expansum, the production of patulin and the related indicators in liquid medium

        處理濃度/(mg·mL-1)菌體干重/mg毒素濃度/(μg·mL-1)還原糖/(mg·mL-1)pH值00.40.81.21.62.03.04.0348.7±7.1ae333.0±8.6ab319.3±6.1b277.6±16.7c321.4±17.9b333.1±2.1ab363.1±12.4e368.9±6.1e221.3±11.2a192.5±22.4a135.4±25.6b82.2±22.4c93.6±23.6c104.3±30.8bc111.0±11.1bc110.4±8.1bc0.9±0.0a8.0±0.5b9.5±0.5c11.4±0.5d8.1±0.5b8.0±0.3b6.9±0.7e5.6±0.5f3.6±0.1ab3.7±0.1b3.6±0.1ab3.7±0.0b3.7±0.1b3.5±0.1ac3.4±0.1cd3.4±0.0cd

        注:不同小寫字母代表同種指標(biāo)不同濃度處理間差異顯著(P<0.05)

        相同培養(yǎng)時間內(nèi),與對照組相比,ε-聚賴氨酸鹽酸鹽能夠明顯地抑制產(chǎn)毒,隨著ε-聚賴氨酸鹽酸鹽濃度的升高,產(chǎn)毒呈現(xiàn)先降低后保持平緩的變化趨勢。其中對菌體生長抑制效果最明顯的1.2 mg/mL ε-聚賴氨酸鹽酸鹽組,其產(chǎn)毒受到強烈抑制??赡苁窃摑舛鹊摩?聚賴氨酸鹽酸鹽強烈的抑制了菌體生長而阻止了菌體產(chǎn)生次級代謝產(chǎn)物,因而降低了產(chǎn)毒[20]。而高濃度處理組雖然對菌體生長量無顯著影響但卻明顯地降低了產(chǎn)毒。關(guān)于抑菌劑對菌體生長和產(chǎn)毒不一致的情況在其他的研究中也有報道。例如,MOSSINI等[21]研究發(fā)現(xiàn),含有槲皮素和其他酚類物質(zhì)的苦楝樹葉提取物不抑制擴展青霉菌體生長,但是卻能夠抑制展青霉素的產(chǎn)生,這與本研究結(jié)果一致。但關(guān)于其產(chǎn)毒的機制有待進一步研究。

        相同培養(yǎng)時間內(nèi),各處理組還原糖均明顯降低。但是與對照組相比,ε-聚賴氨酸鹽酸鹽組均顯著降低了對還原糖的消耗。其中菌體生長量最小的1.2 mg/mL ε-聚賴氨酸鹽酸鹽組其還原糖的消耗最少。說明菌體生長和產(chǎn)毒的過程中需要消耗還原糖。相同培養(yǎng)時間內(nèi),各處理組的pH均明顯降低。說明在擴展青霉菌體生長和產(chǎn)毒的過程中會產(chǎn)酸。PRUSKY等[22]的研究發(fā)現(xiàn),擴展青霉生長過程中會分泌有機酸,如葡萄糖酸,而展青霉素也在酸性條件下產(chǎn)生。NERI等[23]研究也發(fā)現(xiàn),展青霉素產(chǎn)生比較弱的擴展青霉菌株并不能酸化基質(zhì)。這與本研究結(jié)果一致。

        2.4液體培養(yǎng)方式下ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對擴展青霉菌體生長和產(chǎn)毒隨時間變化的影響

        相同培養(yǎng)時間內(nèi),1.2 mg/mL ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對擴展青霉菌體生長和產(chǎn)毒的抑制效果最明顯,因此選擇該質(zhì)量濃度來探究其對擴展青霉菌體生長和產(chǎn)毒隨時間變化的影響。由圖4a可以看出,對照組從培養(yǎng)第5~13天,菌體生長量變化不明顯。而ε-聚賴氨酸鹽酸鹽組,從培養(yǎng)第5~9天菌體生長量一直增加,但低于對照組。從第11天開始,菌體生長量與對照組相當(dāng),變化不明顯。說明ε-聚賴氨酸鹽酸鹽在一定時間內(nèi)抑制了擴展青霉菌體生長。

        圖4 液體培養(yǎng)方式下ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對擴展青霉菌體生長量、毒素含量及相關(guān)指標(biāo)隨時間變化的影響Fig.4 Effect of ε-poly-L-lysine·HCl with different time on the mycelial growth of P. expansum, the production of patulin and the related indicators in liquid medium

        由圖4b可以看出,在培養(yǎng)過程中,對照組與ε-聚賴氨酸鹽酸鹽組產(chǎn)毒均呈現(xiàn)先上升后降低的變化趨勢。對照組在培養(yǎng)的第7天達到產(chǎn)毒高峰,而ε-聚賴氨酸鹽酸鹽組在培養(yǎng)的第5~9天產(chǎn)毒一直在增加,但一直低于對照組,當(dāng)培養(yǎng)至第11天時,ε-聚賴氨酸鹽酸鹽組產(chǎn)毒達到高峰,并高于對照組。說明ε-聚賴氨酸鹽酸鹽在一定時間內(nèi)抑制了產(chǎn)毒。而在培養(yǎng)過程中ε-聚賴氨酸鹽酸鹽組出現(xiàn)了產(chǎn)毒高于對照組的情況,可能是因為ε-聚賴氨酸鹽酸鹽提供了一個菌體生長的“逆境”環(huán)境,使病原真菌更傾向于向次級代謝產(chǎn)物的方向合成[24]。展青霉素是擴展青霉的次級代謝產(chǎn)物,培養(yǎng)前期ε-聚賴氨酸鹽酸鹽強烈的抑制菌體生長,而抑制產(chǎn)毒,但隨著培養(yǎng)時間的增加,這種“逆境”下的菌體不斷生長,因而促進了擴展青霉產(chǎn)生更多的次級代謝產(chǎn)物,使產(chǎn)毒增加。在培養(yǎng)過程中,對照組與ε-聚賴氨酸鹽酸鹽組產(chǎn)毒分別從培養(yǎng)的第7和11天開始降低。

        如圖4c所示,對照組與ε-聚賴氨酸鹽酸鹽組在培養(yǎng)過程中還原糖都隨著時間的增加而逐漸降低,分別在培養(yǎng)的第7,11天達到最低值,隨后兩組還原糖變化不明顯。而pH均呈現(xiàn)先下降后上升的變化趨勢,對照組與ε-聚賴氨酸鹽酸鹽組分別在培養(yǎng)的第5,9天達到最低值,隨后開始上升 (圖4d)。這說明菌體生長和產(chǎn)毒的過程中需要不斷地消耗還原糖,并產(chǎn)酸。而培養(yǎng)后期各處理組還原糖達到最低值后變化不明顯,以及pH值的升高,這可能與培養(yǎng)后期產(chǎn)毒降低有一定的關(guān)系。由于營養(yǎng)物質(zhì)缺乏,展青霉素合成被終止,同時培養(yǎng)液的pH發(fā)生改變,會導(dǎo)致展青霉素不穩(wěn)定,而發(fā)生降解。VARGA等[25]也認為,毒素可以被菌體自身降解,同時由于營養(yǎng)物質(zhì)缺乏,真菌毒素的產(chǎn)生或積累可以被終止,這與本研究結(jié)果一致。

        3結(jié)論

        本研究通過固體和液體兩種培養(yǎng)方式,探究了ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對擴展青霉菌體生長和展青霉素產(chǎn)生的影響,結(jié)果表明:固體培養(yǎng)方式下,ε-聚賴氨酸鹽酸鹽能夠顯著地抑制擴展青霉孢子萌發(fā)和菌體生長,且具有濃度依賴性。液體培養(yǎng)方式下,ε-聚賴氨酸鹽酸鹽對擴展青霉菌體生長的抑制作用并不呈現(xiàn)濃度依賴性,當(dāng)濃度達到2.0 mg/mL以上時,擴展青霉菌體生長量與對照組相當(dāng),因此要注意不同的培養(yǎng)方式對其發(fā)揮抑菌作用的影響,但是不同濃度的ε-聚賴氨酸鹽酸鹽均明顯地抑制了產(chǎn)毒,關(guān)于其產(chǎn)毒的機制還有待深入研究;其中1.2 mg/mL ε-聚賴氨酸鹽酸鹽在一定時間內(nèi)可以顯著地抑制擴展青霉菌體生長和產(chǎn)毒,但在培養(yǎng)后期對菌體生長和產(chǎn)毒的抑制作用減弱,并促進了產(chǎn)毒。因此,對ε-聚賴氨酸鹽酸鹽進行抑菌性評價時,應(yīng)該考慮培養(yǎng)方式對其抑菌作用的影響,同時更應(yīng)重視其對產(chǎn)毒的影響。本文的研究結(jié)果可為ε-聚賴氨酸鹽酸鹽在采后病害控制中的應(yīng)用提供依據(jù)。

        參考文獻

        [1]CERIONI L,de losNGELES LAZARTE M,VILLEGAS J M,et al. Inhibition of Penicillium expansum by an oxidative treatment[J].Food Microbiology,2013,32(2):298-301.

        [2]MOSS M O.Fungi,quality and safety issues in fresh fruits and vegetables[J].Journal of Applied Microbiology,2008,104(5):1 239-1 243.

        [3]PUEL O,GALTIER P,OSWALD I P.Biosynthesis and toxicological effects of patulin[J].Toxins, 2010,2(4):613-631.

        [4]CUNHA S C,FARIA M A,PEREIRA V L,et al. Patulin assessment and fungi identification in organic and conventional fruits and derived products[J].Food Control,2014,44:185-190.

        [5]TAYLOR M.Handbook of natural antimicrobials for food safety and quality[M].UK:Woodhead Publishing,2014:287-313.

        [6]ZHANG H Y,LI R P,LIU W M.Effects of chitin and its derivative chitosan on postharvest decay of fruits:a review[J].International Journal of Molecular Sciences,2011,12(2):917-934.

        [7]SIVAKUMAR D,BAUTISTA-BANOS S.A review on the use of essential oils for postharvest decay control and maintenance of fruit quality during storage[J].Crop Protection,2014,64:27-37.

        [8]REN X D,CHEN X S,ZENG X,et al. Acidic pH shock induced overproduction of ε-poly-L-lysine in fed-batch fermentation byStreptomycessp.M-Z18 from agro-industrial by-products[J].Bioprocess and Biosystems Engineering,2015,38(6):1 113-1 125.

        [9]趙娟,賈士儒,譚之磊,等.生物防腐劑ε-聚賴氨酸的穩(wěn)定性[J].天津科技大學(xué)學(xué)報,2009,24(4):9-13.

        [10]HIRAKI J,ICHIKAWA T,NINOMIYA S,et al. Use of ADME studies to confirm the safety of ε-polylysine as a preservative in food[J].Regulatory Toxicology and Pharmacology,2003,37(2):328-340.

        [11]劉蔚,周濤. ε-聚賴氨酸抑菌機理研究[J].食品科學(xué),2009,30(9):15-20.

        [12]YE R S,XU H Y,WAN C X,et al. Antibacterial activity and mechanism of action of ε-poly-l-lysine[J].Biochemical and Biophysical Research Communications,2013,439(1):148-153.

        [13]臧睿,黃麗麗.蘋果樹腐爛病菌分生孢子萌發(fā)及其影響條件研究[J].西北農(nóng)業(yè)學(xué)報,2007,16(1):64-67.

        [14]孫昊,張萬萍,孟繁博,等.番茄采后灰霉病原對幾種抑菌劑的敏感性研究[J].食品與機械,2014(1):165-168.

        [15]MENG J,HUANG F F,WU R,et al. Determination of patulin in apple and hawthorn products by HPLC[J].Acta Agriculturae Shanghai,2009,25(1):27-31.

        [16]徐瑋,汪東風(fēng).食品化學(xué)實驗和習(xí)題[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2008:14-16.

        [17]ZHANG C F,WANG J M,ZHANG J M,et al. Effects of β-aminobutyric acid on control of postharvest blue mould of apple fruit and its possible mechanisms of action[J].Postharvest Biology and Technology,2011,61(2):145-151.

        [18]劉盛榮.ε-聚賴氨酸生物合成及代謝調(diào)控研究[D].廣州:華南理工大學(xué),2012.

        [19]張昕.擴展青霉分批培養(yǎng)中展青霉素的降解機制[D].楊凌:西北農(nóng)林科技大學(xué),2008.

        [20]GARCIA D,RAMOS A J,SANCHIS V,et al. Predicting mycotoxins in foods:a review[J].Food Microbiology,2009,26(8):757-769.

        [21]APARECIDA G M S,De OLIVEIRA K P,Kemmelmeier C.Inhibition of patulin production byPenicilliumexpansumcultured with neem (Azadirachtaindica) leaf extracts[J].Journal of Basic Microbiology,2004,44(2):106-113.

        [22]PRUSKY D,MCEVOY J L,Saftner R,et al. Relationship between host acidification and virulence ofPenicilliumspp.on apple and citrus fruit[J].Phytopathology,2004,94(1):44-51.

        [23]NERI F,DONATI I,VERONESI F,et al. Evaluation ofPenicilliumexpansumisolates for aggressiveness,growth and patulin accumulation in usual and less common fruit hosts[J].International Journal of Food Microbiology,2010,143(3):109-117.

        [24]CALVO A M,WILSON R A,BOK J W,et al. Relationship between secondary metabolism and fungal development[J].Microbiology and Molecular Biology Reviews,2002,66(3):447-459.

        [25]VARGA J,RIGó K,TEREN J.Degradation of ochratoxin A byAspergillusspecies[J].International Journal of Food Microbiology,2000,59(1):1-7.

        Effects of ε-poly-L-lysine·HCl on growth ofPenicilliumexpansumand production of patulin

        JIANG La,CHEN Hai-yan,ZHANG Jing,CUI Ya-min,MENG Xiang-hong*

        (College of Food Science and Engineering,Ocean University of China,Qingdao 266003,China)

        ABSTRACTEffects of ε-poly-L-lysine·HCl on the growth of Penicillium expansum and the production of patulin were investigated in solid and liquid medium. The results showed that ε-poly-L-lysine·HCl obviously inhibited spore germination and the growth of Penicillium expansum with increasing dose in solid medium. Treatment with different concentrations of ε-poly-L-lysine·HCl had different effects on the growth of Penicillium expansum. However, it could obviously reduce the production of patulin in liquid medium. Particularly, 1.2 mg/mL ε-poly-L-lysine·HCl significantly inhibited the growth of Penicillium expansum and the production of patulin within a certain time,but weakened inhibiting at the end of cultivation, even promoted the production of patulin. This study provides foundation for application of ε-poly-L-lysine·HCl in controlling of postharvest diseases.

        Key wordsε-poly-L-lysine·HCl;Penicillium expansum;patulin;growth

        收稿日期:2015-11-10,改回日期:2015-12-06

        基金項目:國家科技計劃課題(863計劃)(2012AA101607); 國家自然科學(xué)基金(31171762)

        DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.201604008

        第一作者:碩士研究生(孟祥紅教授為通訊作者,E-mail : mengxh@ouc.edu.cn)。

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