烏日娜, 王茜茜, 唐筱揚(yáng), 張 穎, 鄒婷婷, 武俊瑞*(.沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,遼寧沈陽0866;2.江南大學(xué)食品學(xué)院,江蘇無錫2422)
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植物乳桿菌L. plantarum FS5-5在鹽脅迫下的蛋白質(zhì)組學(xué)
烏日娜1,2,王茜茜1,唐筱揚(yáng)1,張穎1,鄒婷婷1,武俊瑞*1
(1.沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,遼寧沈陽110866;2.江南大學(xué)食品學(xué)院,江蘇無錫214122)
摘要:L. plantarum FS5-5是一株篩選自東北傳統(tǒng)發(fā)酵大醬、具有耐鹽特性的植物乳桿菌。該研究利用蛋白組學(xué)雙向電泳技術(shù),比較了其在NaCl質(zhì)量濃度分別為0、3 g/dL的MRS培養(yǎng)基中生長(zhǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)中期的蛋白組學(xué)表達(dá)差異情況。結(jié)果表明,有16個(gè)蛋白質(zhì)點(diǎn)的表達(dá)發(fā)生了明顯的變化,經(jīng)過基質(zhì)輔助激光解吸/電離飛行時(shí)間質(zhì)譜鑒定,其中有12個(gè)蛋白質(zhì)點(diǎn)鑒定出來,包括10個(gè)表達(dá)增強(qiáng)的蛋白質(zhì),分別為UDP-N-乙酰氨基葡萄糖二磷酸化酶、6-磷酸葡萄糖脫氫酶、半胱氨酸氨基肽酶、UDP-N-乙酰胞壁酰丙氨酸-D-谷氨酸連接酶、前噬菌體蛋白、ABC轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(鐵硫聚類組裝蛋白)、膽鹽水解酶、谷氨酰胺合成酶、6-磷酸葡萄糖脫氫酶、Xaa-蛋白二肽酶;還有2個(gè)表達(dá)減弱的蛋白質(zhì),分別為腺苷酸琥珀酸合成酶,丙酮酸激酶。鹽脅迫可誘導(dǎo)乳酸菌產(chǎn)生復(fù)雜的鹽應(yīng)激反應(yīng),涉及不同的代謝調(diào)控途徑。
關(guān)鍵詞:L. plantarum FS5-5;蛋白質(zhì)組;鹽脅迫
植物乳桿菌是乳酸桿菌的一種,不產(chǎn)芽孢,兼性厭氧,最適pH 6.5左右,最適溫度為37℃,是一種公認(rèn)的益生菌[1]。它具有諸多生理功能,包括改善胃腸道功能[2]、抗腫瘤[3]、增強(qiáng)機(jī)體免疫力[4]、降低膽固醇[5]、維持泌尿系統(tǒng)菌群平衡[6]等作用,是一種常見的益生菌[7]。L.plantarum WCFS1[8]作為植物乳桿菌的模式菌株被測(cè)定出全基因組序列以來,對(duì)人們?cè)诜肿由飳W(xué)水平上研究植物乳桿菌耐受環(huán)境的性能方面提供了實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
植物乳桿菌在含有鹽的環(huán)境下可以生存,并且可以耐受高的滲透壓,基于植物乳桿菌的這種優(yōu)點(diǎn),植物乳桿菌在人類的生產(chǎn)活動(dòng)中應(yīng)用廣泛。在食品工業(yè)中,植物乳桿菌主要應(yīng)用于發(fā)酵傳統(tǒng)大醬[9]、腌制酸菜、泡菜、發(fā)酵肉制品、生產(chǎn)果蔬汁飲料[10]等。同時(shí),植物乳桿菌還可以用于生產(chǎn)生物性防腐劑[11],作為飼料的添加劑[12],生產(chǎn)青貯飼料[13]等領(lǐng)域。蛋白質(zhì)組(proteome)是一個(gè)基因組所表達(dá)的全套的蛋白質(zhì)[14],是后基因組研究的主要方式,其中雙向電泳技術(shù)(Two-dimensional gel electrophoresis,2-DE)是蛋白組學(xué)研究中的核心技術(shù)[15]。利用蛋白質(zhì)組學(xué)研究植物乳桿菌對(duì)鹽環(huán)境的適應(yīng)機(jī)理是一種非常有效的方法。
作者以東北傳統(tǒng)大醬中篩選出的耐鹽的植物乳桿菌L. plantarum FS5-5[16]為研究對(duì)象,利用雙向電泳技術(shù),構(gòu)建了該菌株在0、3 g/dL的鹽質(zhì)量濃度下,生長(zhǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期中期的菌體總蛋白質(zhì)的差異表達(dá)雙向凝膠電泳圖譜。掃描后,利用軟件Image 6.0對(duì)圖譜進(jìn)行了分析,找出與耐鹽相關(guān)的差異表達(dá)蛋白質(zhì),然后通過MALDI-TOF/TOF質(zhì)譜對(duì)蛋白質(zhì)進(jìn)行鑒定,并利用生物信息學(xué)對(duì)其功能進(jìn)行了分析,確定蛋白質(zhì)的種類及功能。
1.1實(shí)驗(yàn)材料
1.1.1菌種耐鹽植物乳桿菌L. plantarum FS5-5,由沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院從東北傳統(tǒng)大醬中分離得到。
1.1.2改良的MRS培養(yǎng)基(g/L)牛肉浸膏8;蛋白胨10;酵母粉4;無水乙酸鈉5;葡萄糖20;吐溫1;磷酸氫二鉀2;七水硫酸鎂0.58;檸檬酸鈉2;四水硫酸錳0.25。
1.1.3試劑MES、MOPS:北京Coolaber公司;Urea、Thisurea、DTT、CHAPS、Iodoacetamide、
Ammonium bicarbonate、考馬斯亮藍(lán)G250、R250、IPG(Immobilized pH gradient)干膠條(18 cm、pI 3~10):美國(guó)Bio-rad公司;Tris、SDS、TEMED、丙烯酸胺、N,N' -亞甲基雙丙烯酰胺、AgNO3、Trichloroacetic acid:美國(guó)Sigma公司;APS、Acetone、EDTA、Na2S2O3、Na2CO3、無水乙酸鈉、正丁醇:上海鼎國(guó)生物技術(shù)發(fā)展中心;低相對(duì)分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì):美國(guó)Bio-rad公司。
1.2儀器與設(shè)備
等電聚焦儀,Ettan DALT Twelve system灌膠裝置,Ettan IPGphor Isoelectric Focusing System,Hofer SE 600,UMax Powerlook 2110XL掃描儀,Image Master 6.0圖像分析系統(tǒng):美國(guó)GE公司;TGL-168低溫高速離心機(jī):德國(guó)Eppendorf公司。
1.3實(shí)驗(yàn)方法
1.3.1植物乳桿菌的培養(yǎng)將活化三代的L. plantarum FS5-5供試菌液以1 %的接種體積分?jǐn)?shù)分別接種到NaCl為0、3 g/dL的新鮮配置的MRS培養(yǎng)基中,培養(yǎng)基用HCl調(diào)節(jié)pH到6.5,同時(shí)添加MOPS、MES緩沖劑。以每管5 mL的量分裝試管,于37℃下恒溫培養(yǎng)24 h,每隔2小時(shí)進(jìn)行取樣,繪制L. plantarum FS5-5在不同鹽質(zhì)量濃度下的生長(zhǎng)曲線。
1.3.2蛋白質(zhì)樣品的提取與制備取100 μL菌體,加入600 μL 2D裂解液,超聲提取蛋白質(zhì)(80 W超聲10 s,停15 s,50個(gè)循環(huán))直至液體澄清,15℃、1 4000 g,離心45 min,取上清液至15 mL離心管中,加入13 mL預(yù)冷的丙酮,沉淀過夜,4℃、7 187 g離心45 min,棄去丙酮,加入預(yù)冷的丙酮清洗兩次,棄去丙酮,待剩余丙酮揮發(fā)完全后加入250 μL 2D裂解液。使用Bio-Radford蛋白質(zhì)含量測(cè)定試劑盒定量,-80℃低溫保存。
1.3.3雙向凝膠電泳將菌體蛋白質(zhì)樣品100 μg加入溶脹液中,使總體積為350 μL。充分混勻后,將其加入到持膠槽中,并將IPG干膠條膠面向下放于樣品之上進(jìn)行溶脹。膠條溶漲后,進(jìn)行第一向等電聚焦。等電聚焦參數(shù)為:30 V 12 h,500 V 1 h,1 000 V 1 h,8 000 V 8 h,500 V 4 h。聚焦結(jié)束后,將膠條分別放入含有1 g/dL DTT的SDS平衡液和含有2.5 %濃度的碘乙酰胺SDS平衡緩沖液中,于搖床上平衡15 min。然后將膠條轉(zhuǎn)移至12.5 g/dL 的SDS聚丙烯酰胺凝膠(26 cm×20 cm)進(jìn)行電泳,至溴酚藍(lán)色帶距離膠下沿0.5 cm時(shí)停止電泳,取下凝膠采用銀染法進(jìn)行染色[17]。
1.3.4圖像分析及質(zhì)譜鑒定將染色后的凝膠置于Image Scanner上進(jìn)行掃描,掃描后,利用軟件Image 6.0圖像分析軟件對(duì)凝膠圖譜進(jìn)行分析。選取在相同條件下的兩塊平行膠構(gòu)建成一個(gè)參考膠,通過參考膠蛋白質(zhì)量的匹配和比較,對(duì)不同條件下的蛋白質(zhì)表達(dá)情況進(jìn)行分析,對(duì)相互之間能夠匹配上的點(diǎn)進(jìn)行位置和量的重復(fù)性分析,對(duì)相互之間不能匹配的點(diǎn)進(jìn)行差異表達(dá)量的分析[18]。
在凝膠上選取差異蛋白點(diǎn),將差異蛋白點(diǎn)切下,經(jīng)胰酶消化處理后,通過MALDI-TOF/TOF質(zhì)譜對(duì)蛋白質(zhì)點(diǎn)消化后的肽段進(jìn)行鑒定,并利用生物信息學(xué)對(duì)其功能進(jìn)行分析,確定蛋白質(zhì)的種類及功能。
2.1不同鹽質(zhì)量濃度下L. plantarum FS5-5的生長(zhǎng)
L. plantarum FS5-5在NaCl質(zhì)量濃度分別為0 g/dL和3 g/dL的改良的MRS培養(yǎng)基中能夠生長(zhǎng),其生長(zhǎng)曲線見圖1。L. plantarum FS5-5在0 g/dL時(shí)4 h到達(dá)對(duì)數(shù)生長(zhǎng)中期,在3 g/dL條件下6 h到達(dá)對(duì)數(shù)生長(zhǎng)中期。緩沖劑的加入使L. plantarum FS5-5在進(jìn)入穩(wěn)定期前可維持初始pH在±0. 1~0. 3的范圍內(nèi)緩慢降低,可基本維持pH 6.5左右,進(jìn)入穩(wěn)定期后,培養(yǎng)液的pH值才會(huì)顯著下降[18]。
圖1 植物乳桿菌L. plantarum FS5-5在不同NaCl質(zhì)量濃度條件下的生長(zhǎng)Fig. 1 Growth of L. plantarum FS5-5 cultured in MRS medium at different NaCl concentrations
2.2不同NaCl質(zhì)量濃度下L. plantarum FS5-5對(duì)數(shù)生長(zhǎng)中期蛋白組雙向電泳圖像分析
利用雙向電泳技術(shù),構(gòu)建了L. plantarum FS5-5在不同NaCl質(zhì)量濃度下生長(zhǎng)的2-DE圖譜,見圖2。通過軟件Image 6.0對(duì)2-DE圖像進(jìn)行分析,結(jié)果表明,3塊平行膠的匹配率均在90以上??蓹z測(cè)到的斑點(diǎn)分別為1640±139(NaCl質(zhì)量濃度為0 g/dL),1730±140(NaCl質(zhì)量濃度為3 g/dL)。
圖2 L. plantarum FS5-5在不同NaCl質(zhì)量濃度下生長(zhǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)中期的蛋白組雙向電泳表達(dá)圖譜Fig. 2 2 -DE gels of the cytoplasmic proteins of L. plantarum FS5-5 exposed in MRS medium at different NaCl concentrations
2.3不同NaCl質(zhì)量濃度下L. plantarum FS5-5對(duì)數(shù)生長(zhǎng)中期蛋白組雙向電泳差異表達(dá)譜比較
經(jīng)過軟件Image 6.0軟件對(duì)2-DE圖譜的分析,以表達(dá)量增強(qiáng)(或下降)在1.5倍以上為標(biāo)準(zhǔn),研究發(fā)現(xiàn)有16種蛋白質(zhì)在L. plantarum FS5-5對(duì)數(shù)生長(zhǎng)中期的表達(dá)發(fā)生明顯變化,見表1。
表1 L. plantarum FS5-5在NaCl質(zhì)量濃度為0 g/dL和3 g/dL生長(zhǎng)至對(duì)數(shù)中期的差異表達(dá)蛋白質(zhì)Table 1 Identification of L. plantarum FS5-5 different expression proteins affected by different NaCl concentrations of 0 g/dL and 3 g/dL
由表1可知,在不同鹽質(zhì)量濃度條件下培養(yǎng)的L. plantarum FS5-5的雙向電泳圖中有16個(gè)表達(dá)情況不同的蛋白質(zhì)點(diǎn),其中有12個(gè)蛋白質(zhì)點(diǎn)通過MALDI-TOF/TOF質(zhì)譜鑒定技術(shù)鑒定出對(duì)應(yīng)的蛋白質(zhì),有4個(gè)蛋白質(zhì)點(diǎn)未鑒定出對(duì)應(yīng)的蛋白質(zhì)。在這16個(gè)差異表達(dá)蛋白質(zhì)點(diǎn)中,有10個(gè)蛋白質(zhì)點(diǎn)表達(dá)增強(qiáng),包括UDP-N-乙酰氨基葡萄糖二磷酸化酶(點(diǎn)250)、6-磷酸葡萄糖脫氫酶(點(diǎn)177)、半胱氨酸氨基肽酶(點(diǎn)277)、UDP-N-乙酰胞壁酰丙氨酸-D-谷氨酸連接酶(點(diǎn)289)、前噬菌體蛋白(點(diǎn)1446)、ABC轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白,鐵硫聚類組裝蛋白(點(diǎn)241)、膽鹽水解酶(點(diǎn)617)、谷氨酰胺合成酶(點(diǎn)348)、6-磷酸葡萄糖脫氫酶(點(diǎn)266)、Xaa-蛋白二肽酶(點(diǎn)507);有6個(gè)蛋白質(zhì)點(diǎn)表達(dá)減弱,包括已經(jīng)鑒定出的腺苷酸琥珀酸合成酶(點(diǎn)309)、丙酮酸激酶(點(diǎn)711)以及未鑒定出的4個(gè)蛋白質(zhì)點(diǎn)(點(diǎn)1294、點(diǎn)1608、點(diǎn)1237、點(diǎn)787)。
根據(jù)COG蛋白質(zhì)的功能分類,對(duì)鑒定出的蛋白質(zhì)進(jìn)行功能注釋[19]。其中,鑒定出的蛋白質(zhì)的功能主要包括糖代謝(點(diǎn)250、點(diǎn)177、點(diǎn)266),氨基酸代謝(點(diǎn)289、點(diǎn)348),核苷酸代謝(點(diǎn)309),脂類代謝(點(diǎn)617)和糖酵解(點(diǎn)711)。其中,3個(gè)與糖代謝相關(guān)的蛋白包括UDP-N-乙酰氨基葡萄糖二磷酸化酶(點(diǎn)250)、6-磷酸葡萄糖脫氫酶(點(diǎn)177)、6-磷酸葡萄糖脫氫酶(點(diǎn)266);2個(gè)與氨基酸代謝相關(guān)的蛋白包括UDP-N-乙酰胞壁酰丙氨酸-D-谷氨酸連接酶(點(diǎn)289)、谷氨酰胺合成酶(點(diǎn)348);1個(gè)與核苷酸代謝相關(guān)的蛋白為腺苷酸琥珀酸合成酶(點(diǎn)309);1個(gè)與脂類代謝相關(guān)的蛋白為膽鹽水解酶(點(diǎn)617);1個(gè)與糖酵解相關(guān)的蛋白為丙酮酸激酶(點(diǎn)711)。
植物乳桿菌處于NaCl環(huán)境中,會(huì)誘導(dǎo)植物乳桿菌產(chǎn)生鹽應(yīng)激反應(yīng)來適應(yīng)所處的NaCl環(huán)境。從差異表達(dá)的蛋白質(zhì)點(diǎn)的鑒定情況來看,依據(jù)蛋白質(zhì)功能分類,鑒定出的蛋白質(zhì)大多屬于代謝相關(guān)的酶類,這也說明了這類蛋白質(zhì)在植物乳桿菌菌體的生長(zhǎng)過程中起到了非常重要的作用[20]。
在植物乳桿菌生長(zhǎng)過程中,糖代謝途徑的主要功能是提供能量。在NaCl質(zhì)量濃度為3 g/dL的環(huán)境下生長(zhǎng)的植物乳桿菌表達(dá)上調(diào)的10種蛋白質(zhì)中,有3種是與糖代謝相關(guān)的,其中有2個(gè)蛋白質(zhì)點(diǎn)表達(dá)增強(qiáng)在2.5倍以上。這也說明了乳酸菌在某些不利的環(huán)境下,需要消耗更多的能量來維持自身的生長(zhǎng)和代謝,所以糖代謝途徑中的一些酶類的表達(dá)可能會(huì)發(fā)生變化[20-21]。除了糖代謝途徑外,氨基酸代謝途徑、脂類代謝在植物乳桿菌適應(yīng)NaCl環(huán)境方面也起到了重要作用。其中,半胱氨酸氨基肽酶、谷氨酰胺合成酶、Xaa-蛋白二肽酶表達(dá)的上調(diào)也說明了在NaCl質(zhì)量濃度為3 g/dL的MRS培養(yǎng)基中生長(zhǎng)時(shí)乳酸菌代謝中的氧化過程增多,乳酸菌氧化能力增強(qiáng)。
在鑒定出的蛋白質(zhì)中,UDP-N-乙酰氨基葡萄糖二磷酸化酶(點(diǎn)250)和UDP-N-乙酰胞壁酰丙氨酸-D-谷氨酸連接酶(點(diǎn)289)是與細(xì)菌細(xì)胞壁肽聚糖合成相關(guān)的酶。在NaCl質(zhì)量濃度為3 g/dL的MRS培養(yǎng)基中生長(zhǎng)時(shí),這兩種蛋白質(zhì)的表達(dá)均上調(diào)。Piuri等人相關(guān)的研究結(jié)果表明,如果在培養(yǎng)乳桿菌的培養(yǎng)基中增加與細(xì)胞膜相連的肽酶,可以增加其耐鹽性[22]。肽聚糖是細(xì)菌細(xì)胞壁的基本骨架,是抵抗不利環(huán)境因素的第一道防線,對(duì)植物乳桿菌適應(yīng)NaCl環(huán)境具有重要的生理功能[23]。
在本研究中,鑒定出的差異表達(dá)點(diǎn)還包括前噬菌體蛋白、膽鹽水解酶,它們?cè)谥参锶闂U菌耐受NaCl環(huán)境中所起的具體作用還需在后續(xù)的實(shí)驗(yàn)中進(jìn)一步研究。
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Proteomics Research on Salt Response of L. plantarum FS5-5 Grown at Different NaCl Concentrations Using Two-Dimensional Gel Electrophoresis
WU Rina1,2,WANG Qianqian1,TANG Xiaoyang1,ZHANG Ying1,ZOU Tingting1,WU Junrui*1
(1. College of Food Science,Shenyang Agricultural University,Shenyang 110866,China;2. School of Food Science and Technology,Jiangnan University,Wuxi 214122,China)
Abstract:L. plantarum FS5-5,isolated from traditional home-made fermented soybean in northeast of China,has been considered as a new salt tolerance bacterium. Proteomics research were carried out to identify proteins expression of L. plantarum FS5-5 grown at different NaCl concentrations of 0% and 3% in this study. Cytosolic proteins of mid-exponential phase were resolved and further analyzed by two-dimensional gel electrophoresis. The results showed that sixteen protein spots were found with statistically significant differences.Twelve of total protein spots were identified asbook=124,ebook=17UDP-N-acetylglucosamine diphosphorylase,glucose-6-phosphate 1-dehydrogenase,UDP-N-acetylmuramoylalanine-D-glutamate ligase,adenylosuccinate synthetase,cysteine aminopeptidase,prophage protein,pyruvate kinase,ABC transporter(iron-sulfur cluster assembly protein),bile salt hydrolase,glutamine synthetase,6-phosphogluconate dehydrogenase,Xaa-Pro dipeptidase using matrix-assisted laser desorption /ionization timeof-flight mass spectrometry(MALDI-TOF/MS),indicating the complex response of lactic acid bacteria to salt stress.
Keywords:L. plantarum FS5-5,proteomics,salt stress
*通信作者:武俊瑞(1977—),男,內(nèi)蒙古呼和浩特人,工學(xué)博士,副教授,碩士研究生導(dǎo)師,主要從事食品生物技術(shù)方面的研究。E-mail: junruiwu@126.com
作者簡(jiǎn)介:烏日娜(1979—),女,蒙古族,內(nèi)蒙古呼和浩特人,農(nóng)學(xué)博士,副教授,碩士研究生導(dǎo)師,主要從事食品生物技術(shù)方面的研究。E-mail: wrn6956@163.com
基金項(xiàng)目:國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(31000805,31471713);中國(guó)博士后科學(xué)基金資助項(xiàng)目(2014M560395);遼寧省農(nóng)業(yè)領(lǐng)域青年科技創(chuàng)新人才培養(yǎng)資助計(jì)劃(2014048);遼寧省高等學(xué)校優(yōu)秀人才計(jì)劃(LJQ 2011071);沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)“天柱山英才支持計(jì)劃”;遼寧省教育廳科學(xué)技術(shù)項(xiàng)目課題(L2012249)。
收稿日期:2014-09-16
中圖分類號(hào):Q 51
文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A
文章編號(hào):1673—1689(2016)02—0123—06