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        腦轉(zhuǎn)移瘤動物模型的制備方法及研究進(jìn)展

        2016-05-10 02:24:22崔白蘋孫安陽
        中國藥理學(xué)通報 2016年3期
        關(guān)鍵詞:動物模型乳腺癌小鼠

        崔白蘋,陳 平,孫安陽

        (1.鹽城衛(wèi)生職業(yè)技術(shù)學(xué)院神經(jīng)退行性疾病與修復(fù)實驗室;2.鹽城市第一人民醫(yī)院腫瘤科,江蘇鹽城 224005)

        腦轉(zhuǎn)移瘤動物模型的制備方法及研究進(jìn)展

        崔白蘋1,陳 平2,孫安陽1

        (1.鹽城衛(wèi)生職業(yè)技術(shù)學(xué)院神經(jīng)退行性疾病與修復(fù)實驗室;2.鹽城市第一人民醫(yī)院腫瘤科,江蘇鹽城 224005)

        腦轉(zhuǎn)移瘤(brain metastasis)是指源于中樞神經(jīng)系統(tǒng)以外的腫瘤細(xì)胞轉(zhuǎn)移到腦組織的顱內(nèi)常見惡性腫瘤。目前腦轉(zhuǎn)移瘤造模有外周接種和直接腦內(nèi)接種瘤細(xì)胞兩大類方法。外周接種方法包括造模動物左心室或頸動脈內(nèi)注射、原位接種等途徑;腦內(nèi)接種方法包括腫瘤細(xì)胞株直接接種于動物特定腦區(qū)的簡化方法和臨床腦轉(zhuǎn)移瘤活檢標(biāo)本直接接種于裸大鼠腦內(nèi)的新方法。該文綜述了腦轉(zhuǎn)移瘤模型的制備方法,包括可選用的接種動物、瘤細(xì)胞系、接種方法和模型的檢測方法,并介紹這一領(lǐng)域的最新研究進(jìn)展。

        腦轉(zhuǎn)移;腫瘤;動物模型;裸鼠;細(xì)胞接種;制備方法;檢測方法

        腦轉(zhuǎn)移瘤是成年人最常見的顱內(nèi)惡性腫瘤,外周腫瘤腦轉(zhuǎn)移的發(fā)生率為10%~40%,患者數(shù)量大約是原發(fā)性腦腫瘤的10倍。未治療的腦轉(zhuǎn)移瘤患者中位生存期1~2月,治療后延長為4~6月[1]。腦轉(zhuǎn)移瘤的原發(fā)病灶以肺癌最多見,其次是乳腺癌、惡性黑色素瘤、消化道腫瘤和腎癌;以腫瘤發(fā)生腦轉(zhuǎn)移的機(jī)率看,以黑色素瘤最易發(fā)生腦轉(zhuǎn)移(50%左右),其次為小細(xì)胞性肺癌和乳腺癌。兒童腦轉(zhuǎn)移瘤的原發(fā)腫瘤則以白血病、淋巴瘤多見。臨床腦轉(zhuǎn)移瘤雖已嘗試多種治療方法如手術(shù)切除、全腦放療、立體定向放療和化療,但效果欠佳,尚缺乏有效的治療手段。因此,迫切需要建立理想的腦轉(zhuǎn)移瘤實驗?zāi)P?,以加?qiáng)其分子機(jī)制與治療措施的研究。

        1 腦轉(zhuǎn)移瘤的轉(zhuǎn)移途徑、部位與分子機(jī)制

        腫瘤細(xì)胞向腦內(nèi)轉(zhuǎn)移的途徑主要是通過血液,其中最多是通過動脈系統(tǒng),通過靜脈或淋巴系統(tǒng)轉(zhuǎn)移并不常見。腦室內(nèi)轉(zhuǎn)移見于脊髓腫瘤的上行性侵犯。大多數(shù)患者的腦轉(zhuǎn)移瘤為多發(fā)性,瘤細(xì)胞侵入附近的毛細(xì)血管網(wǎng),由頸動脈和椎動脈系統(tǒng)到達(dá)腦內(nèi)形成多個大小不一的轉(zhuǎn)移灶,常位于大腦中動脈分布區(qū),即額葉和頂葉區(qū)。腦轉(zhuǎn)移瘤80%分布于大腦,15%小腦,5%腦干。另外,急性白血病可見軟腦膜和蛛網(wǎng)膜轉(zhuǎn)移;兒童惡性淋巴瘤等可見硬腦膜轉(zhuǎn)移。與原發(fā)腦瘤不同,腦轉(zhuǎn)移瘤與周圍組織分界清楚。

        腫瘤轉(zhuǎn)移經(jīng)歷兩個階段:①局部侵襲(invasion)、滲入血管(intravasation)與散播(dissemination);②溢出血管(ex-travasation),進(jìn)入組織,在組織內(nèi)形成瘤細(xì)胞克隆(coloniza-tion)。腦轉(zhuǎn)移瘤發(fā)生、發(fā)展是瘤細(xì)胞與腦內(nèi)微環(huán)境(如基質(zhì))相互作用的結(jié)果[2],即“種子-土壤”學(xué)說。以乳腺癌腦轉(zhuǎn)移為例,腫瘤細(xì)胞通過非開窗型毛細(xì)血管溢入腦組織,其中環(huán)氧合酶COX2、表皮生長因子受體配體HBEGF和α2,6-唾液酸轉(zhuǎn)移酶ST6GALNAC5是瘤細(xì)胞通過血腦屏障的關(guān)鍵介導(dǎo)分子[3]。在上述一系列過程中起重要作用的分子尚有:血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)高表達(dá)促進(jìn)腫瘤血管新生;表皮生長因子EGF促進(jìn)腫瘤生長;基質(zhì)金屬蛋白酶(MMP-1)[4]、組織蛋白酶cathepsin S[5]促進(jìn)腫瘤侵襲;黏附分子(E-cad-herin)參與腦轉(zhuǎn)移瘤形成的多個步驟。DNA雙鏈缺口修補基因BARD1、RAD51抵抗自由基毒性,促進(jìn)腦轉(zhuǎn)移瘤克隆形成。

        2 腦轉(zhuǎn)移瘤動物模型的類型

        由于黑色素瘤自發(fā)性腦轉(zhuǎn)移在臨床較常見,在腦轉(zhuǎn)移瘤模型研制初期試圖從嚙齒類動物中尋覓黑色素瘤的自發(fā)性模型。發(fā)現(xiàn)的第1個小鼠黑色素瘤細(xì)胞株B16-F1來自于C57BL/6小鼠耳部,經(jīng)反復(fù)接種、篩選獲得的亞系B16-B10b 與B16-B10-n左心室接種有明顯的腦轉(zhuǎn)移潛能[6]。通過紫外照射或致癌物暴露可誘發(fā)嚙齒類或其他動物惡性腫瘤,再從中篩選出腦轉(zhuǎn)移瘤細(xì)胞株。如瘤細(xì)胞與造模動物同系,所制備的模型稱為同源性模型(syngeneic models)。同源性模型的優(yōu)點為免疫功能保留,可研究瘤細(xì)胞宿主反應(yīng);缺點是瘤細(xì)胞為動物來源,與患者腫瘤細(xì)胞存在生物學(xué)差異。在80年代以后轉(zhuǎn)向人-鼠異源性模型(xenograft models),即用人源性腫瘤細(xì)胞接種于鼠體內(nèi)造模。異源性模型又以接種部位與原發(fā)腫瘤的異同而分為原位(orthotopic)模型與異位(ectopic)模型。各種異源性與同源性腦轉(zhuǎn)移瘤模型的優(yōu)點與局限性總結(jié)見Tab 1。

        3 腦轉(zhuǎn)移瘤動物模型的制備方法

        3.1 造模常用動物 制備異源性腦轉(zhuǎn)移瘤模型選用免疫缺陷動物,常用裸鼠[7]和(或)嚴(yán)重聯(lián)合免疫缺陷小鼠(SCID小鼠)[9]等,一般在4~6周齡造模。制備同源性模型常用正常免疫功能的動物。

        3.1.1 裸鼠 裸鼠包括裸小鼠(nu)和裸大鼠(rnu),是位于第11對染色體上的裸基因nu隱性突變所致。裸小鼠純合子胸腺僅有殘跡,沒有T淋巴細(xì)胞正常分化,B淋巴細(xì)胞和NK細(xì)胞基本正常,因而缺乏成熟T淋巴細(xì)胞所執(zhí)行的輔助與殺傷功能,不能產(chǎn)生細(xì)胞毒效應(yīng)與移植排斥[7]。裸小鼠隨月齡增長,T細(xì)胞會有所增加,故后述的瘤細(xì)胞接種實驗常采用4~6周齡幼鼠。另外,裸小鼠正常的NK細(xì)胞功能也會制約瘤細(xì)胞的播散。裸大鼠T細(xì)胞缺陷的特征與裸小鼠相似,用于腦轉(zhuǎn)移瘤造模[8]有轉(zhuǎn)移瘤較大、成像或手術(shù)容易、組織與血標(biāo)本量多的優(yōu)點,但維持成本較高。

        3.1.2 SCID小鼠 SCID小鼠(severe combined immune defi-ciency mice)是由常染色體隱性突變而來的另一種免疫缺陷動物。SCID小鼠外觀有白毛,但胸腺、脾、淋巴結(jié)的重量是正常的30%以下,組織學(xué)上T細(xì)胞和B淋巴細(xì)胞嚴(yán)重缺乏[9],對人類腫瘤移植的存活率一般高于裸鼠。SCID小鼠的NK細(xì)胞、巨噬細(xì)胞和粒細(xì)胞功能正常,故仍一定程度地制約瘤細(xì)胞的散播。另需注意的是SCID小鼠有“滲漏”現(xiàn)象,大約15%的SCID小鼠血中仍可檢測出有限數(shù)量的T細(xì)胞和B細(xì)胞以及一定水平的免疫球蛋白。SCID小鼠的滲漏現(xiàn)象不遺傳,僅需在選種時對留種小鼠進(jìn)行免疫球蛋白篩選。

        SCID小鼠已發(fā)展一些變種,如與非肥胖性糖尿病小鼠NOD雜交獲得NOD/SCID小鼠以及再合并白介素-2受體γ-鏈基因敲除的NOD/SCID/IL-2Rγ-/-(NSG)小鼠,其NK細(xì)胞活性明顯降低,有利于瘤細(xì)胞的散播,適用于原位模型的制備[15,24,30]。

        3.1.3 同源性模型可用免疫正常動物 同源性模型可用裸鼠或者常規(guī)動物造模,后者降低了動物可得性難度。同源性模型成模較快(2周左右),但缺陷是腦轉(zhuǎn)移的特異性不高,腦實質(zhì)轉(zhuǎn)移率較低。Zhang等[10]將Lewis肺癌細(xì)胞經(jīng)頸動脈內(nèi)注射入4月齡C57BL/6NCrj小鼠,注射后12 d腦內(nèi)即檢測到大量瘤細(xì)胞,小鼠存活22 d。Hochman等[11]用近交系BALB/c乳鼠(出生后7 d)腹腔注射小鼠T細(xì)胞惡性淋巴瘤Rev-2-T-6細(xì)胞系,接種后9~14 d先轉(zhuǎn)移至蛛網(wǎng)膜下腔、脈絡(luò)叢、顱神經(jīng),但大腦皮質(zhì)以及白質(zhì)受累遲(>1月)而少(<30%)。

        出于成像或注射方便,國內(nèi)有研究者采用較大接種動物,如張貴祥等[12]采用新西蘭大白兔頸總動脈注射兔VX2肝癌細(xì)胞制備腦轉(zhuǎn)移瘤模型。該造模方法在注射瘤細(xì)胞前5 ~10 min先行注射20%甘露醇5 ml·kg-1以開放血腦屏障,接種瘤細(xì)胞數(shù)量大(約需106~108個),造模兔存活期短于1個月。該兔模型也有顱外與腦膜成瘤比例偏高、腦實質(zhì)轉(zhuǎn)移特異性低等缺點。

        3.1.4 轉(zhuǎn)基因或基因敲除小鼠 通過遺傳技術(shù)導(dǎo)入癌基因或失活抑癌基因,可制備腫瘤的遺傳性小鼠模型,但由于原發(fā)瘤發(fā)展過快而導(dǎo)致轉(zhuǎn)移瘤的發(fā)生機(jī)率不高。僅少數(shù)通過轉(zhuǎn)基因或基因敲除途徑制備的小鼠腫瘤模型可發(fā)生多器官(包括腦)轉(zhuǎn)移,例如癌基因Ret轉(zhuǎn)基因產(chǎn)生的皮膚黑色素瘤;HCCR-2轉(zhuǎn)基因產(chǎn)生的乳腺癌;肺上皮細(xì)胞Trp53與Rb1條件性基因敲除[13]產(chǎn)生的小細(xì)胞肺癌。另一方面,將轉(zhuǎn)基因或基因敲除技術(shù)與瘤細(xì)胞心內(nèi)注射方法結(jié)合起來[5,14-15]可用以研究特定基因或分子對腫瘤腦轉(zhuǎn)移的調(diào)節(jié)作用或提高造模成功率。如前所述,裸鼠或SCID小鼠尚存NK細(xì)胞活性,而重組激活基因Rag2-/-與白介素-2受體γ鏈IL-2Rγ-/-雙基因敲除小鼠則缺乏T細(xì)胞、B細(xì)胞和NK細(xì)胞活性,可替代裸鼠或SCID小鼠成功用于Her2陽性的乳腺癌細(xì)胞腦轉(zhuǎn)移瘤造模[14]??傊?,基因工程小鼠腫瘤模型或技術(shù)代表著腦轉(zhuǎn)移瘤動物模型研制的一個新方向。

        3.2 造模常用的腫瘤細(xì)胞系 制作腦轉(zhuǎn)移瘤模型選用的細(xì)胞系因原發(fā)瘤不同而異,以乳腺癌和肺癌腦轉(zhuǎn)移模型研究與應(yīng)用得最多。

        乳腺癌腦轉(zhuǎn)移模型通常采用三陰性乳腺癌(triple-nega-tive breast cancer)細(xì)胞系造模。三陰性乳腺癌細(xì)胞不表達(dá)雌激素受體(ER)、孕酮受體(PR)和人表皮生長因子受體2 (Her2/neu),對于常規(guī)化療不敏感。三陰性乳腺癌初始細(xì)胞系MDA-MB-231并無形成腦轉(zhuǎn)移的特異性。Yoneda等[16]將MDA-MB-231母代細(xì)胞系經(jīng)若干次“外周接種-腦轉(zhuǎn)移-傳代培養(yǎng)-外周接種”循環(huán)篩選后,篩出優(yōu)先轉(zhuǎn)移到腦(brain-seeking)的乳腺癌細(xì)胞亞系MDA-MB-231BR,在裸小鼠心內(nèi)注射后僅產(chǎn)生腦轉(zhuǎn)移。通過病理學(xué)或MRI成像顯示,2%的注射細(xì)胞在腦內(nèi)形成較大的轉(zhuǎn)移灶,5%的注射細(xì)胞仍然呈休眠狀態(tài)[17]。為了方便成像,231BR細(xì)胞又轉(zhuǎn)染增強(qiáng)綠色熒光蛋白(eGFP)或者螢火蟲熒光素酶,但轉(zhuǎn)染熒光素酶可改變瘤細(xì)胞生物學(xué)特性,降低腦轉(zhuǎn)移的特異性,轉(zhuǎn)染eGFP則影響較小。因而,MDA-MB-231BR或再表達(dá)eGFP的細(xì)胞系是目前乳腺癌腦轉(zhuǎn)移造模最常用的細(xì)胞系。其他的人乳腺癌細(xì)胞系如MA11、MCF-7等,因造模潛伏期過長或腦轉(zhuǎn)移特異性不高已很少使用。

        肺癌腦轉(zhuǎn)移動物模型研制相對滯后,目前尚未建立肺癌特異性腦轉(zhuǎn)移的模型。肺癌細(xì)胞系A(chǔ)549細(xì)胞為人肺泡基底上皮腺癌細(xì)胞,裸鼠心內(nèi)注射A549細(xì)胞并不產(chǎn)生腦轉(zhuǎn)移,因而需采用腦內(nèi)直接注射的方法造模[17]。將A549細(xì)胞過表達(dá)金屬蛋白酶ADAM9增加瘤細(xì)胞的侵襲性,注射后可產(chǎn)生腦內(nèi)微轉(zhuǎn)移灶[18]。非小細(xì)胞肺癌細(xì)胞系EBC-1經(jīng)反復(fù)篩選之后獲得高腦轉(zhuǎn)移的細(xì)胞亞系EBC-1/brain,左心室注射后獲得較高幾率的腦轉(zhuǎn)移[19]。雷貝等[20]從中國人肺腺癌細(xì)胞系CPA-Yang1通過體內(nèi)外篩選獲得較高腦轉(zhuǎn)移潛能的亞系CPA-Yang1-BR,一次接種可有1/2的裸小鼠產(chǎn)生腦轉(zhuǎn)移。用于轉(zhuǎn)移瘤造模的其他非小細(xì)胞肺癌細(xì)胞系尚有PC-9、PC-14、A925LPE3等[21-22]。另一方面,有研究者采用的小細(xì)胞肺癌細(xì)胞系NCI-H187、DMS273肺內(nèi)接種,以制備原位小細(xì)胞肺癌腦轉(zhuǎn)移模型,腦轉(zhuǎn)移發(fā)生幾率(20%左右)與特異性均不高,但從DMS273篩選的G3H亞細(xì)胞系腦轉(zhuǎn)移能力提高[23]。

        人或小鼠的黑色素瘤細(xì)胞系很多,各實驗室用于制備腦轉(zhuǎn)移模型的細(xì)胞系也各不相同。Rozenberg等[24]比較了原位皮下接種11種黑色素瘤細(xì)胞系腦轉(zhuǎn)移模型潛力的差別,發(fā)現(xiàn)其中A375、A2058、RPMI8322、WM2664細(xì)胞產(chǎn)生較高比例的腦轉(zhuǎn)移。將人黑色素瘤多種細(xì)胞系用超順磁性的氧化鐵納米顆粒標(biāo)記后再左心室內(nèi)接種[25],可方便成像追蹤。人前列腺癌細(xì)胞DU145心內(nèi)注射后并不能形成轉(zhuǎn)移瘤,但其Ras突變亞系DU145/RasB1用于造??尚纬晒呛湍X轉(zhuǎn)移[26]。

        3.3 瘤細(xì)胞接種方法 腦轉(zhuǎn)移瘤異位模型的構(gòu)建通常采取動物左心室內(nèi)(Fig 1)或頸動脈注射;原位模型目前應(yīng)用較多的是動物肺內(nèi)、乳腺脂肪墊或皮下接種。

        3.3.1 左心室內(nèi)注射 左心室內(nèi)注射是異位模型最常用的接種方法。以小鼠心內(nèi)盲注射為例:小鼠適當(dāng)麻醉后仰臥固定,胸部消毒備皮。注射瘤細(xì)胞數(shù)量大約為1×106,懸浮于100 μL磷酸鹽緩沖液;用0.25~0.5 ml注射器,27~28 G針頭。在胸骨上切跡與劍突的中點偏左標(biāo)記注射點,從左心室腔正上方可垂直進(jìn)針;也可將注射點向外下移動少許,以45°角朝左心室進(jìn)針,以方便使用注射推進(jìn)裝置。待見到明顯回血后即固定針頭位置,分段間斷推注。注射完畢后以輕微負(fù)壓退針。

        小鼠心內(nèi)盲注射法為非直視下操作,有一定的注射失敗幾率,部分小鼠還可能在注射點附近的心壁和肺部形成腫瘤。有條件的實驗室可采用小動物超聲成像(如Vevo 770高分辨率小動物超聲影像系統(tǒng))輔助小鼠心室內(nèi)注射[27-28]:動物麻醉后仰臥固定,先調(diào)節(jié)好超聲影像探頭位置以清晰顯示左心室超聲心動圖像;再將注射器固定于可操縱的推進(jìn)裝置,在動態(tài)超聲影像輔助下將針尖推進(jìn)至左心室腔內(nèi),以準(zhǔn)確注射。與盲注射方法相比,使用小動物超聲成像輔助不僅注射準(zhǔn)確,造模成功率提高,造模小鼠死亡率也從20%~25%大大降低到1%~2%,因手術(shù)引起的體重下降也有所緩解。另外,如果注射的瘤細(xì)胞有熒光素酶標(biāo)記,可用小動物PET成像來檢查心內(nèi)注射的準(zhǔn)確性,正確心內(nèi)注射的小鼠其熒光素酶信號迅速分布于動物全身。

        即使心內(nèi)注射準(zhǔn)確完成,仍然有一部分造模動物在注射瘤細(xì)胞后死亡。瘤細(xì)胞具有促凝血活性,可引起廣泛的血栓形成與栓塞,可能是導(dǎo)致動物死亡的主因。Stocking等[29]報道在瘤細(xì)胞心內(nèi)接種前10 min尾靜脈注射低分子量肝素(enoxaparin)10 mg·kg-1可大大減少隨后瘤細(xì)胞接種引起的造模動物死亡。瘤細(xì)胞操作應(yīng)置于冰上。

        Fig 1 Brain metastasis formation following intracardiac injection of tumor cells

        3.3.2 頸動脈接種 頸動脈接種也模擬瘤細(xì)胞血行腦轉(zhuǎn)移。頸動脈注射雖在直視下操作,但注射技術(shù)要求高,注射瘤細(xì)胞數(shù)量與體積受限,易發(fā)生注射局部腫瘤生長,故較少應(yīng)用。仍以小鼠頸動脈注射為例:小鼠麻醉后仰臥固定,頸部行正中切口,分離出一側(cè)頸總動脈。注射瘤細(xì)胞數(shù)量通常在5×104上下,懸浮于5或10 μL磷酸鹽緩沖液,用10~20 μL微量注射器,32~33G針頭。于頸總動脈分叉下方5~6 mm處進(jìn)針,可下墊小金屬柄以方便進(jìn)針。注射后用明膠海綿輕壓或絲線結(jié)扎止血,縫合切口。

        3.3.3 原發(fā)瘤原位接種 原發(fā)瘤原位接種模型(orthotopic models)與臨床腫瘤轉(zhuǎn)移發(fā)生情況最為接近,包括腦轉(zhuǎn)移瘤發(fā)生發(fā)展的各個環(huán)節(jié)。早期研究發(fā)現(xiàn),腫瘤細(xì)胞原位接種不同于臨床晚期,難以形成轉(zhuǎn)移灶。近些年,通過研制高轉(zhuǎn)移特性的細(xì)胞株、基因工程技術(shù)改變接種的微環(huán)境等手段使原位接種模型研制取得明顯的進(jìn)展。受解剖特點、臨床相關(guān)性等因素影響,腫瘤轉(zhuǎn)移原位模型研究較多的是肺癌、乳腺癌和黑色素瘤。人小細(xì)胞肺癌細(xì)胞系NCI-H187、DMS273接種至裸鼠肺部,可以在骨、腎和腦形成轉(zhuǎn)移[23]。人乳腺癌細(xì)胞MDA-MB-231[15,30]、小鼠乳腺癌細(xì)胞4T1亞系4TBM[31]也用于乳腺癌細(xì)胞腦轉(zhuǎn)移原位模型的制備,通常將癌細(xì)胞接種于裸小鼠乳腺脂肪墊或乳腺導(dǎo)管。黑色素瘤原位接種為皮下注射,因較易操作而被廣泛應(yīng)用。人黑色素瘤細(xì)胞系WM239A的變異株131/4-5B1、131/4-5B2皮下注射后97~180 d檢測到腦實質(zhì)轉(zhuǎn)移瘤[32]。裸小鼠皮下接種其他黑色素瘤細(xì)胞系YDFR.CB3、A375、A205890等[24],大于90 d后可見類似的腦實質(zhì)轉(zhuǎn)移。原位模型的缺點有成模潛伏期較長,常需要7~12周或以上,一般產(chǎn)生多個器官的轉(zhuǎn)移。

        3.3.4 其它外周接種途徑 尾靜脈注射易于操作,雖曾是小鼠瘤細(xì)胞接種的一個途徑,但尾靜脈注射后瘤細(xì)胞大部分滯留在肺部,肺部以外的器官如骨、腦發(fā)生轉(zhuǎn)移瘤的概率不高,故現(xiàn)已少用。尾靜脈注射尚因肺癌惡病質(zhì),易致小鼠在腦轉(zhuǎn)移瘤形成之前死亡。另外,靜脈注射造模方法與臨床患者多由動脈血運產(chǎn)生轉(zhuǎn)移瘤的情況不一致。

        腹腔接種更易操作,也被個別研究者采用。Hochman等[11]用BALB/c小鼠腹腔接種鼠惡性淋巴瘤細(xì)胞Rev-2-T-6構(gòu)建腦轉(zhuǎn)移的同源性模型,發(fā)現(xiàn)瘤細(xì)胞主要經(jīng)脈絡(luò)叢和顱神經(jīng)轉(zhuǎn)移,較少轉(zhuǎn)移至腦實質(zhì),說明腹腔接種造模也具有明顯的局限性。

        3.3.5 直接腦內(nèi)接種 心內(nèi)注射能模擬臨床腫瘤血行腦轉(zhuǎn)移的特點,但實驗操作有一定難度,且成模率有限制,一部分研究者采用腫瘤細(xì)胞直接接種到特定腦區(qū)的簡化方法,以快速成模,尤其適用于一些無明顯腦轉(zhuǎn)移特性的腫瘤細(xì)胞株。當(dāng)然,這種模型非嚴(yán)格意義上的轉(zhuǎn)移瘤模型,而稱之局部生長模型更為準(zhǔn)確。這種造模方法借助于腦立體定位儀,采用裸大鼠等較大免疫缺陷動物,接種部位有尾狀核、丘腦腹后內(nèi)側(cè)核等。人肺腺癌細(xì)胞株A549沒有腦轉(zhuǎn)移特性,Pishko等[33]將A549細(xì)胞直接接種于裸大鼠腦尾殼核內(nèi),來作為肺癌腦轉(zhuǎn)移的大鼠模型,用于VEGF單克隆抗體療效的研究。

        有一些研究者為了避開應(yīng)用瘤細(xì)胞株,而將臨床腦轉(zhuǎn)移瘤活檢標(biāo)本直接種于裸大鼠腦內(nèi)[34]。這種模型的優(yōu)點是很大程度上保留了臨床腫瘤的原有特性,并部分保留了腫瘤基質(zhì)成分,適用于治療方法研究。

        4 腦轉(zhuǎn)移瘤動物模型的檢測方法

        4.1 影像學(xué)檢測 臨床腦轉(zhuǎn)移瘤檢查方法有CT、正電子發(fā)射成像(PET)和磁共振成像(MRI)等,而動物模型腦轉(zhuǎn)移瘤很小,影像學(xué)檢測方法主要為磁共振成像,且需采用高分辨率儀器與多模式成像(multimodal imaging)等技術(shù)。早期3.0T磁共振成像多用于較大動物模型如裸大鼠模型,用于裸小鼠檢測靈敏度不足,后者需要應(yīng)用7.0T或以上的小動物磁共振成像儀。多模式成像技術(shù)包括T2加權(quán)成像、釓增強(qiáng)后T1加權(quán)成像、動態(tài)磁敏感對比增強(qiáng)灌注加權(quán)成像,以顯示腫瘤血管分布與血流灌注情況的變化。用氧化鐵納米顆粒磁標(biāo)記腫瘤細(xì)胞造模,可以實現(xiàn)單個瘤細(xì)胞磁共振腦成像追蹤和全腦自動定量[25]。腦轉(zhuǎn)移瘤定期影像檢測可提供多病灶動態(tài)發(fā)展的資料,而單細(xì)胞水平磁共振腦成像對于追蹤休眠期瘤細(xì)胞或微轉(zhuǎn)移灶有重要價值。

        常規(guī)釓增強(qiáng)MRI僅對較大腫瘤敏感。為提高檢測靈敏度,牛津大學(xué)Sibson實驗室發(fā)展了分子MRI方法[35],用連接抗體的氧化鐵微顆粒作為靶向造影劑對血管內(nèi)皮黏附分子-1(VCAM-1)進(jìn)行MRI成像。裸小鼠心內(nèi)注射小鼠4T1瘤細(xì)胞和SCID小鼠心內(nèi)注射人MDA-231-BR細(xì)胞制備乳腺癌腦轉(zhuǎn)移模型,在注射瘤細(xì)胞5 d后,VCAM-1靶向分子MRI成像即可檢測到腦內(nèi)轉(zhuǎn)移瘤信號,檢測靈敏度較常規(guī)MRI方法提高2~3個數(shù)量級。選擇血管形成、細(xì)胞運動與凋亡、組織炎癥特異分子建立各種靶向磁共振成像方法,可以動態(tài)檢測腦轉(zhuǎn)移瘤微環(huán)境的分子與細(xì)胞變化。

        4.2 病理生物學(xué)檢測

        4.2.1 常規(guī)HE染色 腫瘤組織學(xué)檢測最基礎(chǔ)的方法是蘇木精-伊紅(HE)染色,腦轉(zhuǎn)移瘤動物模型分析要盡量采用系列的全腦完整切片。HE染色可以觀察組織細(xì)胞的分化程度和異型性大小。腦轉(zhuǎn)移瘤模型的瘤細(xì)胞形態(tài)差異雖較臨床標(biāo)本小,但瘤細(xì)胞核通常染色仍較深、排列密集、易見核分裂。如有必要,HE染色成像后可用1%鹽酸乙醇液脫色,再做免疫組化染色來獲得腫瘤細(xì)胞來源等信息。

        4.2.2 特殊染色 特殊染色用于顯示組織中的正常結(jié)構(gòu)或病理物質(zhì),與腦轉(zhuǎn)移瘤相關(guān)的方法包括改良的Gomori銀氨法和Alcian blue/PAS復(fù)合染色。

        Gomori銀氨法將網(wǎng)狀纖維染成黑色,可用于癌與肉瘤的鑒別診斷:癌細(xì)胞間多無網(wǎng)狀纖維;肉瘤細(xì)胞間多有網(wǎng)狀纖維。Gomori銀氨法還可用于腦轉(zhuǎn)移瘤與原發(fā)瘤的鑒別,轉(zhuǎn)移瘤常有明顯的網(wǎng)狀纖維,而腦內(nèi)大多數(shù)原發(fā)瘤網(wǎng)狀纖維很少。Alcian blue染色顯示硫酸粘多糖。腦轉(zhuǎn)移瘤細(xì)胞分泌的粘蛋白以酸性為主,可被Alcian blue深染成藍(lán)色,而PAS (Periodic Acid-Schiff)染色法檢測組織中的糖類。腦轉(zhuǎn)移瘤組織被Alcian blue/PAS復(fù)合染色顯示為藍(lán)紅色。

        4.2.3 免疫組化與免疫印跡 腫瘤組織的分子標(biāo)志物常用免疫組化方法檢測,例如,Ki-67及增殖細(xì)胞核抗原PCNA是廣泛采用的增殖相關(guān)標(biāo)志物,其免疫反應(yīng)性與腫瘤分級及預(yù)后相關(guān)。血細(xì)胞簇分化抗原CD系列不僅用于區(qū)分不同發(fā)育階段和不同亞類淋巴細(xì)胞,還可用于顯示腫瘤組織血管增殖(如CD31)[36]。一些細(xì)胞結(jié)構(gòu)蛋白常用于顯示腫瘤來源,如角蛋白cytokeratin(上皮細(xì)胞、間皮細(xì)胞、癌細(xì)胞)、波形蛋白vimentin(間葉組織、肉瘤細(xì)胞)、S-100(神經(jīng)組織、黑色素瘤)等。臨床常用的腫瘤分子標(biāo)志物也可選擇性用于對應(yīng)的腦轉(zhuǎn)移瘤動物模型檢測。另外,如果腦轉(zhuǎn)移瘤造模采用表達(dá)綠色熒光蛋白的瘤細(xì)胞系,可在熒光顯微鏡下直接觀察到腦轉(zhuǎn)移瘤病灶。

        由于腦轉(zhuǎn)移瘤多發(fā)且大小形狀不一,定量檢測相對困難。筆者曾設(shè)計了腦轉(zhuǎn)移瘤半腦或全腦標(biāo)本采用GFP等標(biāo)簽蛋白免疫印跡方法,結(jié)合全腦片病理學(xué)檢查來進(jìn)行腦轉(zhuǎn)移瘤的半定量檢測,并介紹給同事應(yīng)用[37],取得了良好效果。

        5 小結(jié)與展望

        臨床腦轉(zhuǎn)移瘤治療困難,預(yù)后較差,持續(xù)推動了腦轉(zhuǎn)移瘤動物模型研制成為一個研究熱點。不同類型的腦轉(zhuǎn)移瘤模型側(cè)重反映轉(zhuǎn)移瘤發(fā)生發(fā)展的不同環(huán)節(jié),以原位模型反映的環(huán)節(jié)最為全面。動物自發(fā)或誘導(dǎo)的同源性模型保留了宿主的免疫功能,可用于研究瘤細(xì)胞與宿主微環(huán)境之間的相互作用,但由于瘤細(xì)胞為動物來源,所得結(jié)果必須在患者標(biāo)本上加以驗證。人-鼠異源性模型是目前方法最成功、應(yīng)用最多的模型。其中的異位模型雖然因左心室或頸動脈內(nèi)注射跳過了原發(fā)瘤生長、外侵、滲入血管之前的環(huán)節(jié),但仍可用于惡性腫瘤經(jīng)過血道轉(zhuǎn)移至腦的機(jī)制研究。另外,異位模型的成模穩(wěn)定性好于原位模型,可用于治療措施的研究。原位模型與臨床腫瘤腦轉(zhuǎn)移最為接近,但成模所需的時間也最長,目前在腦轉(zhuǎn)移特異性和成模率上尚有缺陷,期待未來不斷完善。腦內(nèi)直接接種模型省略了腫瘤腦轉(zhuǎn)移的大部分環(huán)節(jié),適用于試驗?zāi)[瘤細(xì)胞局部生長或治療措施。另外,動物模型將如何模擬與復(fù)發(fā)有關(guān)的腫瘤休眠(tumor dormancy),尚待進(jìn)一步研究。

        目前的腦轉(zhuǎn)移瘤動物模型在成模方面存在不同動物個體之間的較大差異,使治療措施的試驗仍面臨較大挑戰(zhàn)。借助小動物活體影像學(xué)動態(tài)檢測與自身前后對照可克服上述限制,尤其是近幾年發(fā)展了單個瘤細(xì)胞成像示蹤和分子靶向磁共振等靈敏方法。然而,對于大多數(shù)無動物磁共振影像檢測條件的實驗室,進(jìn)一步研制出更穩(wěn)定、個體差異小的動物模型將有廣泛的實用價值。

        利用基因工程技術(shù)導(dǎo)入癌基因或失活抑癌基因是腫瘤動物模型研制的一個新方向,可以與傳統(tǒng)造模方法結(jié)合起來。CRISPR-Cas9新技術(shù)是基因編輯與中止的強(qiáng)有力工具,它通過人工設(shè)計具有引導(dǎo)作用的sgRNA(short guide RNA),將核酸酶Cas9引導(dǎo)到基因組的靶點上,對DNA進(jìn)行定點切割。麻省理工學(xué)院的研究人員已經(jīng)使用CRISPR-Cas9系統(tǒng)構(gòu)建了高效、快速的基因敲除動物模型制備新方法。最近他們又報道了另一個新方法,將CRISPR-Cas9系統(tǒng)用于高效體內(nèi)篩選全基因組與腫瘤生長和轉(zhuǎn)移相關(guān)的抑癌基因[38]。研究人員先將基因組規(guī)模的sgRNAs文庫導(dǎo)入無轉(zhuǎn)移特性的小鼠瘤細(xì)胞系,再將基因突變的細(xì)胞系注射進(jìn)免疫缺陷動物,以快速產(chǎn)生轉(zhuǎn)移瘤;通過在轉(zhuǎn)移瘤中富集的sgRNAs找到其靶點,即與腫瘤轉(zhuǎn)移有關(guān)的抑癌基因。相信通過類似的技術(shù)不久便可找到導(dǎo)致腫瘤腦轉(zhuǎn)移的關(guān)鍵基因,在此基礎(chǔ)上制備出表型更穩(wěn)定、機(jī)制更明確或與臨床情況更相似的腦轉(zhuǎn)移瘤動物模型。

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        Animal models of brain metastasis:preparation methods and research progress

        CUI Bai-ping1,CHEN Ping2,SUN An-yang1
        (1.Laboratory of Neurodegenerative Diseases and Repair,Yancheng Institute of Health Sciences;2.Dept of Oncology,Yancheng First People′s Hospital,Yancheng Jiangsu 224005,China)

        Brain metastasis(BM)is a common brain tumor in a-dults,originating from extracranial location in the body.There has been a growing interest in producing suitable animal models for studying BM in vivo.Current BM models take peripheral or brain route for tumor cell inoculation,including intra-cardiac or intra-carotid artery injection or orthotopic injection.Direct im-plantation of patient tumor biopsies into rodent brain bears ad-vantages of clinical relevance.This review presents a compre- hensive introduction to key elements for establishing animal mod-els of BM,with highlights on selections of suitable model ani-mals,brain-seeking tumor cell lines,reasonable inoculation routes,as well as succedent phenotyping methods.In the end,perspectives and future directions in this field are discussed.

        brain metastasis;tumor;animal models;nude mice;cell inoculation;model preparation;model evaluation

        時間:2016-2-26 10:20 網(wǎng)絡(luò)出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/34.1086.R.20160226.1020.004.html

        10.3969/j.issn.1001-1978.2016.03.002

        A

        1001-1978(2016)03-0304-06

        R-05;R363-332;R739.41;R73-37

        2015-10-30,

        2015-12-20

        崔白蘋(1987-),女,碩士,講師,研究方向:神經(jīng)系統(tǒng)疾病,E-mail:cuibaiping@126.com;陳 平(1963-),女,主任醫(yī)師,教授,研究方向:腫瘤轉(zhuǎn)移與治療,共同第一作者,E-mail:doc_pchen@126.com;孫安陽(1966-),男,博士,教授,研究方向:神經(jīng)系統(tǒng)疾病,通訊作者,E-mail:asun08@fudan.edu.cn

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