劉曉青+朱世東+張克永+梁麗建+佘建明+葉曉青

摘要： 白掌（Spathiphyllum floribundum）是優(yōu)良的室內(nèi)觀花觀葉植物，具有較高的經(jīng)濟(jì)價值、觀賞價值，市場發(fā)展前景廣闊。在綜述國內(nèi)外白掌組培研究現(xiàn)狀的基礎(chǔ)上，從外植體選擇、消毒處理、激素配比、培養(yǎng)條件到煉苗移栽等方面進(jìn)行了分析，總結(jié)了白掌組培中存在的一些問題，并提出建議。

關(guān)鍵詞： 白掌；組培技術(shù)；激素；研究進(jìn)展

中圖分類號： S682.360.4 文獻(xiàn)標(biāo)志碼： A 文章編號：1002-1302（2016）03-0207-03

白掌（Spathiphyllum floribundum）別稱白鶴芋，原產(chǎn)哥倫比亞，是天南星科白鶴芋屬多年生常綠草本植物，其葉色濃綠，花姿獨(dú)特，猶如風(fēng)帆，是室內(nèi)優(yōu)良的觀花觀葉植物，此外，它可以過濾空氣中的苯、三氯乙烯、甲醛，對凈化空氣有一定作用，具有較高的經(jīng)濟(jì)價值、觀賞價值，現(xiàn)在我國各地均有栽培[1]。2010年，荷蘭盆栽白掌的年銷售額已達(dá)1 990萬美元，位列荷蘭盆花產(chǎn)量的第九位。我國從20世紀(jì)80年代末開始引種白掌并投入小規(guī)模生產(chǎn)，栽培時間較短[2]。近年來，隨著我國人民生活水平的提高，白掌一直供不應(yīng)求[3]。白掌常用分株繁殖，但年繁殖系數(shù)低、周期長、速度慢，通過組培方法可以在短期內(nèi)擴(kuò)繁大量組培苗[4]，且種苗整齊度高、質(zhì)量好，能極大滿足市場需求。本研究對國內(nèi)外白掌組培技術(shù)研究現(xiàn)狀進(jìn)行了綜述，對其組培中存在的問題進(jìn)行了總結(jié)，以期為白掌組培研究及其規(guī)?；?、產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)提供參考依據(jù)。

1 國內(nèi)外白掌組培研究概況

白掌組培技術(shù)研究始于20世紀(jì)70年代末，F(xiàn)onnesbech等第一次用芽、莖段作外植體，在添加2 mg/L PBA的MS培養(yǎng)基上成功誘導(dǎo)出不定芽[5]，隨后國內(nèi)外關(guān)于白掌組培的研究逐漸開展起來。我國最早由張?jiān)崎_等用芽作外植體，在添加6 mg/L BA+0.2 mg/L NAA激素組合的MS培養(yǎng)基上誘導(dǎo)出不定芽，成功建立了白掌組培快繁體系，同時發(fā)現(xiàn)30 ℃下叢芽增殖效果最好[6]。1993年，馬國華等研究發(fā)現(xiàn)，同等條件下，液體振蕩培養(yǎng)方式能顯著提高白掌叢芽增殖率[7]。1994年，周麗儂等用白掌幼嫩花序作為外植體，在添加4～5 mg/L BA+0.5 mg/L NAA的MS培養(yǎng)基上，經(jīng)25 d黑暗培養(yǎng)，第一次成功誘導(dǎo)出體細(xì)胞胚[8]。1995年，Werbrouck等研究發(fā)現(xiàn)，同等條件下，咪唑殺菌劑、多效唑能顯著提高細(xì)胞分裂素對不定芽的誘導(dǎo)[9]。21世紀(jì)以來，關(guān)于白掌組培技術(shù)研究迅速增多，包括外植體選擇[10]、消毒處理[6，11]、激素配比[12]、培養(yǎng)條件[7，13]、煉苗移栽[3，14]等。

2 外植體選擇及消毒

2.1 外植體的選擇

目前，白掌組培采用的外植體有花序[8，10，15-16]、莖段和莖尖[14，17-19]、側(cè)芽[6，11，20-21]、葉片和葉柄[21-22]、花絲[23]等，其中以花序、莖和側(cè)芽為外植體的研究報(bào)道較多。江金蘭等研究表明，側(cè)芽更適合作為外植體材料，葉片、葉柄雖然可以通過誘導(dǎo)愈傷組織分化不定芽，但時間較側(cè)芽長且變異率更高[21]。一般來說應(yīng)選擇幼嫩部位，因?yàn)樗幱跔I養(yǎng)生長旺盛期，易被誘導(dǎo)、分化，且污染率低。周俊輝等在蚊凈香草中以不同葉齡葉片作為外植體進(jìn)行誘導(dǎo)試驗(yàn)，結(jié)果表明，成熟葉片也可誘導(dǎo)出愈傷組織，但污染率較高[24]。

2.2 消毒

獲得無菌材料的關(guān)鍵在于選擇合適的消毒方式。消毒劑的種類、濃度以及消毒時間等對不同外植體的消毒效果存在差異，因而選擇消毒方式時要求既能達(dá)到滅菌效果，又不對植物組織造成嚴(yán)重傷害。目前，白掌外植體采用的消毒劑有75%乙醇、0.1%HgCl2、2%次氯酸鈉、10%滅菌凈以及0.01%新潔爾滅。白掌外植體的消毒步驟一般為：先用清水將外植體表面沖洗干凈，然后在超凈工作臺上用75%乙醇浸泡 30 s，無菌水沖洗1～2次，再用0.1%HgCl2浸泡8～15 min，最后用無菌水沖洗5～6次[10，21]。張?jiān)崎_等研究發(fā)現(xiàn)，經(jīng)過預(yù)處理的外植體（將苗除去老葉，切掉頂芽，在室內(nèi)重新栽種，待長出新芽才用作外植體）有80%成活，對照（直接取原始材料移植生長）100%污染[6]。朱飛雪等研究表明，離體單芽消毒5～6 min比短根莖整塊消毒效果要好，且操作方便，而且白掌無菌體的獲得率與其品種有關(guān)，獲得無菌體芽數(shù)最高的品種為克麗斯，其獲得率為82.22%[11]。楊舒婷等研究表明，同在乙醇中處理30 s，0.1%HgCl2處理10 min，花序的滅菌效果最好，達(dá)90%，莖段效果最差，在接種第5天即出現(xiàn)細(xì)菌性污染，葉片、葉柄污染率較高[10]。

3 誘導(dǎo)及增殖培養(yǎng)

3.1 誘導(dǎo)途徑 白掌組培苗的誘導(dǎo)途徑有3種：一是器官發(fā)生途徑，主要是通過莖段、葉片誘導(dǎo)愈傷組織，再由愈傷組織分化為不定芽，優(yōu)點(diǎn)是外植體材料來源廣泛，易消毒，缺點(diǎn)是植株變異率高；二是胚狀體途徑，主要是從肉穗花序中誘導(dǎo)產(chǎn)生，優(yōu)點(diǎn)是再生頻率高，可制成人工種子，有利于種質(zhì)保存，是理想的遺傳轉(zhuǎn)化受體；三是不定芽途徑，即通過芽直接誘導(dǎo)產(chǎn)生不定芽，優(yōu)點(diǎn)是遺傳穩(wěn)定性高，缺點(diǎn)是取材有限，不易消毒。

3.2 基本培養(yǎng)基

植物組培常用的培養(yǎng)基有MS、1/2MS、B5、N6、White等。崔月羚等在紅掌組培研究中發(fā)現(xiàn)，用葉片作外植體，接種到這幾種培養(yǎng)基時，愈傷組織誘導(dǎo)率及誘導(dǎo)速度為1/2MS>MS>N6>B5>White[25]。Dewir等研究了不同含量MS、不同濃度蔗糖對芽生長及增殖的影響，結(jié)果表明，全量MS培養(yǎng)基有利于芽增殖及生長，30 g/L蔗糖有利于芽增殖，50 g/L蔗糖有利于芽生長[13]。朱根發(fā)研究表明，將MS培養(yǎng)基中的KH2PO4濃度提高至255 mg/L可促進(jìn)叢芽增殖[26]，這與羅建勛等在絲石竹中的研究結(jié)果[27]相似。

3.3 激素

激素種類和不同功能激素配比是影響外植體能否成功啟動的關(guān)鍵因素之一[28]。目前，白掌組培常用的細(xì)胞分裂素為6-BA、TDZ，生長素為NAA、2，4-D、IBA。

3.3.1 激素種類對白掌誘導(dǎo)增殖的影響 Zhao等在葉片和葉柄誘導(dǎo)體細(xì)胞胚研究中發(fā)現(xiàn)，與BA、CPPU、2-iP相比，TDZ與NAA或2，4-D組合的誘導(dǎo)效果最好，這可能與TDZ穩(wěn)定性高、能抵抗細(xì)胞分裂素氧化酶的降解且能與生長素互作有關(guān)[29]。陳榮等在對白掌莖外植體芽誘導(dǎo)增殖研究中也發(fā)現(xiàn)，TDZ與NAA組合培養(yǎng)80 d后，芽增殖倍數(shù)高達(dá)26以上[4]。目前報(bào)道的白掌芽的增殖倍數(shù)一般只有4左右。Dewir等用莖尖作外植體，在增殖不定芽試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)，BA的增殖效果最好，TDZ的增殖效果最差，且易發(fā)生變異[13]，這與Han等研究結(jié)果相似[30]。究其原因，可能是不同細(xì)胞分裂素對不同外植體的作用效果存在差異，也可能是不同外植體自身的生長狀態(tài)及基因型有所不同。

3.3.2 激素配比對白掌誘導(dǎo)增殖的影響 Dewir等[13]、Ramirez-Malagon等[31]研究結(jié)果表明，單一細(xì)胞分裂素可誘導(dǎo)芽增殖，但增殖效果明顯不如細(xì)胞分裂素與生長素組合使用效果。楊培君等認(rèn)為，高濃度BA和較小的BA/IBA（NAA）比值有利于誘導(dǎo)綠巨人愈傷組織形成，當(dāng)BA和IBA（NAA）濃度均較低且其比值為（5～10） ∶ 1時有利于綠巨人芽分化[12]。這與黎建玲等在蜻蜓鳳梨[32]、韓偉等在紅掌[33]中的報(bào)道相似。朱飛雪等認(rèn)為，繼代增殖過程中，6-BA使用濃度過高易引起玻璃化現(xiàn)象和因愈傷組織增多而抑制腋芽增殖，將6-BA濃度在10、0.5 mg/L交替使用則可以避免這種現(xiàn)象，但在使用過程中，0.5 mg/L濃度不能連續(xù)使用3代，否則其增殖系數(shù)會明顯減少[11]。

3.4 培養(yǎng)條件

白掌誘導(dǎo)和增殖培養(yǎng)中，溫度、濕度、光強(qiáng)、光質(zhì)、碳源、pH值等都會對其產(chǎn)生一定影響。張?jiān)崎_等研究表明，溫度在一定程度上影響叢芽增殖和生長，30 ℃下芽增殖最為理想，芽增殖數(shù)多，生長快且生長正常[6]。周麗儂等和Zhao等研究發(fā)現(xiàn)，外植體在暗處培養(yǎng)有利于誘導(dǎo)體細(xì)胞胚產(chǎn)生[8，29]。此外，江如藍(lán)等對紅掌的研究表明，在培養(yǎng)基中分別加入相同濃度的葡萄糖、蔗糖（30 g/L），葡萄糖比蔗糖更易于促進(jìn)愈傷組織誘導(dǎo)和生長[34]。

3.5 培養(yǎng)方式

植物組培有固體培養(yǎng)、液體培養(yǎng)2種方式，前者易操作，通氣性較好，但營養(yǎng)分布不均，后者營養(yǎng)分布均勻，但通氣性較差。白掌組培多采用固體培養(yǎng)基。馬國華等研究了液體振蕩培養(yǎng)方式對白掌叢芽增殖的影響，發(fā)現(xiàn)通過液體培養(yǎng)1個月，其增殖指數(shù)比固體培養(yǎng)1個月高4倍以上，且不發(fā)生褐變，出芽整齊，原因是液體培養(yǎng)中，叢芽組織極性消失，組織四周都能誘導(dǎo)叢芽體[7]。Dewir等研究結(jié)果表明，固體培養(yǎng)基更利于叢芽增殖，液體培養(yǎng)中可能因?yàn)槿鄙傺鯕?，從而抑制了芽的增殖速度[13]。

4 生根培養(yǎng)

白掌組培苗較易生根，其直接移栽成活率可達(dá)95%以上[26]，能有效降低生產(chǎn)成本，但未經(jīng)生根培養(yǎng)的移栽苗種苗整齊度不一致[21]。目前白掌組培苗生根常用的激素為NAA、IBA，濃度多為0.2～1.0 mg/L。崔錫明等研究表明，同等條件下，1/2MS培養(yǎng)基上的白掌無菌苗生根率明顯高于全量MS，說明低鹽培養(yǎng)基更有利于白掌無菌苗根的分化[20]。陳榮等認(rèn)為，IBA處理優(yōu)于NAA 處理，但以添加NAA 0.2 mg/L+IBA 0.4 mg/L為最佳選擇，該組合可以縮短生根時間，提高一級主根數(shù)量，且根系質(zhì)量高，移栽容易成活[4]。陳漢鑫等利用正交試驗(yàn)對白掌無根苗的生根培養(yǎng)基進(jìn)行了篩選，發(fā)現(xiàn)影響白掌生根的主次因素為：基本培養(yǎng)基>IBA>活性炭>蔗糖，試驗(yàn)獲得的優(yōu)化培養(yǎng)基配方為2/3MS+IBA 1.5 mg/L+AC 0.15%+蔗糖3%[14]。此外，張?jiān)崎_等發(fā)現(xiàn)，無根苗的高度影響植株根系的誘導(dǎo)，同一培養(yǎng)基上，無根苗高的易生根，苗高3 cm以上時，其生根率最高，達(dá)85.4%；苗高2 cm以下時，誘導(dǎo)生根較少，僅53.5%[6]。朱根發(fā)研究表明，白掌生根能力與品種有關(guān)，香水白掌生根能力最強(qiáng)，其次是綠巨人、神燈白掌，大漢白掌的生根能力最差[26]。

5 煉苗移栽

5.1 煉苗

白掌組培苗生長的瓶內(nèi)條件是一種無菌、高濕、弱光的特殊環(huán)境，可能導(dǎo)致其在植物形態(tài)、解剖結(jié)構(gòu)及生理生化方面產(chǎn)生一系列變化[35-36]，當(dāng)將其轉(zhuǎn)移到瓶外環(huán)境中時，這些異常變化需要通過煉苗得以糾正，從而更好地適應(yīng)瓶外環(huán)境[37]，提高移栽成活率。一般而言，煉苗的過程是：當(dāng)組培苗長到 3～4 cm，有3～4條根系時就可以打開瓶蓋，注入 1 cm 深的自來水以及少量多菌靈或甲基硫菌靈1 000倍溶液馴化2～3 d，洗凈幼苗根部的培養(yǎng)基，栽植到消毒后的基質(zhì)中，保持空氣濕度在85%～95%，溫度25～30 ℃，遮陰80%～90%，同時加強(qiáng)肥水管理和病蟲害防治，1個月后待其長出新葉，再逐漸降低遮陰度和濕度，以適應(yīng)溫室生長環(huán)境[18，21]。

5.2 移栽

就移栽基質(zhì)而言，一般要求基質(zhì)具有疏松、透氣、排水等特點(diǎn)，常用基質(zhì)有腐葉土、泥炭土、珍珠巖等。陳漢鑫等研究了不同比例組合泥炭土和珍珠巖對白掌試管苗成活率的影響，發(fā)現(xiàn)其在泥炭土+珍珠巖（10 ∶ 2）的基質(zhì)上成活率可達(dá)919%[14]。王春榮等研究了不同配方基質(zhì)對白掌組培苗生長的影響，結(jié)果表明，白掌組培苗在50%樹皮+25%草炭+25%花生殼和50%草炭+50%花生殼的配方基質(zhì)上長勢最好，對這些有機(jī)廢棄物的利用，有利于大幅度降低栽培成本，減少對環(huán)境的污染[38]。徐婉莉等觀察發(fā)現(xiàn)，生長在珍珠巖中的組培白掌根系較白但細(xì)弱，在沙子里的根比較強(qiáng)壯，且植株生長狀態(tài)更好[39]。此外，陳星星研究了不同光質(zhì)比例的新型光源LED對白掌組培苗移栽后生長的影響，發(fā)現(xiàn)高比例紅光80%R+20%B處理的組培苗移栽后生長狀況最好，葉幅、葉長、根系活力、根數(shù)均達(dá)到最大值；但在新型光源CCFL對白掌組培苗移栽后生長的影響研究中卻發(fā)現(xiàn)，白光處理下，組培苗的株高、葉幅、葉長、根長、根數(shù)等生理指標(biāo)均達(dá)到最大值，且明顯優(yōu)于其他處理，包括80%R+20%B處理[40]。

6 建議

與傳統(tǒng)分株繁殖方式相比，白掌組培繁殖具有速度快、周期短、年繁殖系數(shù)高等優(yōu)點(diǎn)，但在其組培過程中，也存在一些問題：一是試驗(yàn)重復(fù)性差，有些報(bào)道可能激素配比相同，但得出的結(jié)論卻存在差異，究其原因，可能與所取外植體生長狀態(tài)以及內(nèi)源激素含量不同有關(guān)；二是白掌品種較多，不同的品種其消毒、誘導(dǎo)、增殖、生根都存在顯著差異；三是目前關(guān)于白掌組培的報(bào)道主要集中于再生體系的建立，而在新品種選育、種質(zhì)保存、抗性育種以及基因工程等方面的研究極少；四是沒有建立一套標(biāo)準(zhǔn)的快繁體系，極大地限制了白掌組培苗市場的生產(chǎn)效益、經(jīng)濟(jì)效益。面對白掌廣闊的市場前景，解決上述問題的關(guān)鍵首先在于研制一套經(jīng)濟(jì)、標(biāo)準(zhǔn)、高效的白掌快繁體系，規(guī)范白掌組培苗市場；其次是加強(qiáng)白掌新品種選育，通過基因工程技術(shù)改進(jìn)白掌現(xiàn)有性狀，如花色、花期、葉型等，以及進(jìn)行一系列抗性育種，如耐陰性育種，使白掌更好地適應(yīng)室內(nèi)環(huán)境，發(fā)揮觀花觀葉的優(yōu)良特性；再次是借助白掌組培技術(shù)，探討白掌遺傳轉(zhuǎn)化過程中的一系列生理生化現(xiàn)象，建立種質(zhì)資源基因庫，對于白掌種質(zhì)資源保護(hù)及創(chuàng)新具有十分深遠(yuǎn)的意義。

參考文獻(xiàn)：

[1]余亞白，陳 源，賴呈純，等. 室內(nèi)空氣凈化植物的研究與利用現(xiàn)狀及應(yīng)用前景[J]. 福建農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào)，2006，21（4）：425-429.

[2]吳維堅(jiān)，鞠玉棟. 不同移栽方式對白鶴芋試管苗移栽成活率的影響[J]. 中國園藝文摘，2010（9）：45-46.

[3]陳星星，徐明輝，何松林. 新型光源發(fā)光二極管（LED）下白掌組培苗移栽后生長狀況研究[J]. 中國農(nóng)學(xué)通報(bào)，2014，30（19）：196-200.

[4]陳 榮，李慶玲，朱昌叁. TDZ在白掌組織培養(yǎng)中的應(yīng)用[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué)，2012，40（5）：34-35.

[5]Fonnesbech M，F(xiàn)onnesbech A. In vitro propagation of Spathiphyllum[J]. Scientia Horticculturae，1979，10（1）：21-25.

[6]張?jiān)崎_，朱西儒，黃鴻樞. 白鶴芋試管苗快速繁殖及移栽試驗(yàn)[J]. 廣東農(nóng)業(yè)科學(xué)，1991（4）：29-31.

[7]馬國華，朱西儒，張?jiān)崎_，等. 液體振蕩培養(yǎng)高速繁殖白鶴芋叢芽[J]. 園藝學(xué)報(bào)，1993，20（3）：307-308.

[8]周麗儂，鄺哲師，陳俊秋，等. 白鶴芋體細(xì)胞胚無性系的建立[J]. 廣東園林，1994（4）：18-20.

[9]Werbrouck S O，Debergh P C. Imidazole fungicides and paclobutrazol enhance cytokinin-induced adventitious shoot proliferation in Araceae[J]. Journal of Plant Growth Regulation，1996，15（2）：81-85.

[10]楊舒婷，王華新，李 娜，等. 白鶴芋外植體材料的初步篩選研究[J]. 現(xiàn)代農(nóng)業(yè)科技，2011（16）：187.

[11]朱飛雪，郭 麗. 白掌的組織培養(yǎng)技術(shù)研究[J]. 河南農(nóng)業(yè)，2014（6）：40-42.

[12]楊培君，趙 樺，李會寧，等. 綠巨人繼代培養(yǎng)與快繁的培養(yǎng)基篩選[J]. 漢中師范學(xué)院學(xué)報(bào)：自然科學(xué)版，2001（3）：75-78.

[13]Dewir Y H，Chakrabarty D，Hahn E J，et al. A simple method for mass propagation of Spathiphyllum cannifolium using an airlift bioreactor[J]. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant，2006，42（3）：291-297.

[14]陳漢鑫，張連水，萬學(xué)鋒，等. 白掌品種‘維克莖尖離體培養(yǎng)及快速繁殖[J]. 福建農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào)，2013，28（5）：486-489.

[15]許大熊. 白鶴芋組織培養(yǎng)快繁及生產(chǎn)技術(shù)[J]. 花木盆景：花卉園藝，1998（2）：5.

[16]范 敏，張瑞麟. 白掌的組織培養(yǎng)及快速繁殖[J]. 植物生理學(xué)通訊，2003，39（5）：477.

[17]高天霞，郝 昀. 白鶴芋的組織培養(yǎng)和快速繁殖[J]. 生物學(xué)通報(bào)，1999（8）：43.

[18]唐 征，張小玲. 白掌組培快繁技術(shù)的研究[J]. 溫州農(nóng)業(yè)科技，2004（3）：65-67.

[19]覃和業(yè)，邱美歡. 白掌的組織培養(yǎng)和快速繁殖[J]. 熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)，2008，28（1）：32-33.

[20]崔錫明，林思誠，柯沛強(qiáng). 兩種外源激素在白掌組織培養(yǎng)不同階段的劑量研究[J]. 廣東林業(yè)科技，2004，20（2）：20-22.

[21]江金蘭，葉 煒，羅慶國，等. 白掌的組培與快繁技術(shù)[J]. 浙江農(nóng)業(yè)科學(xué)，2011（5）：1019-1020.

[22]趙秀梅，劉 芬. 火鶴與白鶴芋組培快繁技術(shù)研究[J]. 甘肅農(nóng)業(yè)科技，1999（6）：42-43.

[23]秦靜遠(yuǎn). 白鶴芋花絲體細(xì)胞胚的誘導(dǎo)及快繁技術(shù)[J]. 中國農(nóng)學(xué)通報(bào)，2005，21（9）：67-69.

[24]周俊輝，楊妙賢，冼元香.蚊凈香草葉片離體培養(yǎng)研究[J]. 仲愷農(nóng)業(yè)技術(shù)學(xué)院學(xué)報(bào)，2005，18（2）：21-24.

[25]崔月羚，盧慶延，徐迎春.火鶴花離體培養(yǎng)無菌體系建立技術(shù)的研究[J]. 山東農(nóng)業(yè)科學(xué)，2007（2）：26-28.

[26]朱根發(fā). 白鶴芋屬觀賞植物的組織培養(yǎng)和快速繁殖技術(shù)研究[J]. 中國農(nóng)學(xué)通報(bào)，2003，19（3）：75-76，88.

[27]羅建勛，王 宇，黃顏梅. 絲石竹優(yōu)良單株快速繁殖的研究[J]. 四川林業(yè)科技，1998（4）：22-26.

[28]胡瑩，楊柳青. 山茶科植物組織培養(yǎng)研究進(jìn)展[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué)，2008（2）：6-9.

[29]Zhao J，Cui J，Liu J，et al. Direct somatic embryogenesis from leaf and petiole explants of Spathiphyllum‘Supremeand analysis of regenerants using flow cytometry[J]. Plant Cell Tissue and Organ Culture，2012，110（2）：239-249.

[30]Han B H，Yae B W，Yu H J，et al. In-vitro propagation of Spathiphyllum floribundum cv.Cupid[J]. Korean Journal of Plant Tissue Culture，2001，28：209-213.

[31]Ramirez-Malagon R，Borodanenko A，Barrera-Guerra J A. Shoot number and shoot size as affected by growth regulators in in vitro cultures of Spathiphyllum floribundum L.[J]. Scientia Horticulturae，2001，89（3）：227-236.

[32]黎建玲，蔣 波，何小燕，等. 蜻蜓鳳梨快速繁殖的研究[J]. 玉林師范學(xué)院學(xué)報(bào)，2006，27（3）：101-104.

[33]韓 偉，馬麗霞. 紅掌組織培養(yǎng)技術(shù)研究進(jìn)展[J]. 現(xiàn)代農(nóng)業(yè)科技，2013（2）：172-173，183.

[34]江如藍(lán)，張施君，鄭迎冬，等. 紅掌的組織培養(yǎng)和快速繁殖[J]. 仲愷農(nóng)業(yè)技術(shù)學(xué)院學(xué)報(bào)，2002，15（4）：49-53.

[35]Capellades M，F(xiàn)ontarnau R，Carulla C，et al. Environment influences anatomy of stomata and epidermal-cells in tissue-cultured rosa-multiflora[J]. Journal of the American Society for Horticultural Science，1990，115（1）：141-145.

[36]Donnelly D J，Vidaver W E，Lee K Y. The anatomy of tissue cultured red raspberry prior to and after transfer to soil[J]. Plant Cell Tissue and Organ Culture，1985，4（1）：43-50.

[37]Preece J E，Sutter E G. Micropropagation[M]. Netherlands：Kluwer Academic Publishers，1991：71-93.

[38]王春榮，畢 君，陳 霞. 不同配方基質(zhì)對白鶴芋生長的影響[J]. 北方園藝，2013（7）：77-79.

[39]徐婉莉，羅天寬，王元輝. 應(yīng)用植物扦插快繁系統(tǒng)進(jìn)行白掌組培苗移栽煉苗及生根的試驗(yàn)[J]. 溫州農(nóng)業(yè)科技，2006（2）：24-25，30.

[40]陳星星. 新型光源冷陰極熒光燈（CCFL）下白掌組培苗移栽后生長狀況研究[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué)，2014，42（9）：128-130.