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        白藜蘆醇對LPS誘導HUVEC細胞線粒體跨膜電位影響研究*

        2016-04-19 09:01:06唐晶姜鮮李茂孫玉紅章卓
        四川生理科學雜志 2016年1期
        關鍵詞:白藜蘆醇

        唐晶 姜鮮 李茂 孫玉紅 章卓△

        (1.瀘州醫(yī)學院藥學院藥理教研室,四川 瀘州 646000;

        2.達州職業(yè)技術學院藥學教研室,四川 達州 635000;

        3.瀘州醫(yī)學院附屬醫(yī)院麻醉科,四川 瀘州 646000)

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        白藜蘆醇對LPS誘導HUVEC細胞線粒體跨膜電位影響研究*

        唐晶1,2姜鮮3李茂1孫玉紅1章卓1△

        (1.瀘州醫(yī)學院藥學院藥理教研室,四川 瀘州646000;

        2.達州職業(yè)技術學院藥學教研室,四川 達州635000;

        3.瀘州醫(yī)學院附屬醫(yī)院麻醉科,四川 瀘州646000)

        摘要目的:探討白藜蘆醇對LPS刺激HUVEC細胞活性及線粒體跨膜電位影響。方法:體外培養(yǎng)HUVEC,隨機分為LPS組、陰性組、白藜蘆醇160、80、40、20 μg·l(-1)劑量組。其中,LPS組與白藜蘆醇各組分別以1 μg·ml(-1)LPS刺激細胞24 h后,采用CCK-8法檢測細胞活力,熒光顯微鏡下觀察羅丹明染色后細胞線粒體跨膜電位。結果:白藜蘆醇各組均能提高LPS誘導的HUVEC細胞存活率,提高細胞線粒體跨膜電位,與模型組比較有統(tǒng)計學差異(P<0.05)。結論:白藜蘆醇能提高LPS刺激HUVEC細胞活性,提高細胞線粒體跨膜電位。

        關鍵詞:白藜蘆醇;HUVEC細胞;線粒體跨膜電位

        血管內(nèi)皮細胞(Vascular endothelial cell,VEC)參與了血管通透性,具有參與機體炎癥反應和免疫應答,調(diào)節(jié)血管舒張、參與止血和趨化白細胞的作用[1]。脂多糖(Lipopolysaccharides,LPS)屬于革蘭陰性菌細胞壁的重要成分,可以通過激活多種細胞因子損傷血管內(nèi)皮細胞,引起血管內(nèi)皮細胞嚴重炎性反應[2]。而炎癥所致血管內(nèi)皮損傷是多種疾病和綜合征發(fā)生、發(fā)展的病理基礎,比如急性肺損傷、動脈粥樣硬化等心血管疾病、創(chuàng)傷、休克、腫瘤等[2],因此探討尋找保護內(nèi)皮損傷的措施有重要意義。白藜蘆醇(Resveratro1,Res)是多年生草本植物蓼科蓼屬虎杖的根莖中的提取物,廣泛存在于葡萄、花生、虎杖等天然食物或藥物中,具有抗炎、抗血小板聚集、抗氧化等生物藥理活性[3-5]。白藜蘆醇對LPS致HUVEC細胞凋亡保護效應是否與細胞線粒體跨膜電位有關目前仍不清楚。據(jù)此,本文通過觀察不同劑量白藜蘆醇對LPS刺激下HUVEC細胞凋亡保護效應,分析其保護效應是否與影響細胞線粒體跨膜電位有關。

        1材料與方法

        1.1試劑

        白藜蘆醇(陜西森弗生物技術有限公司,批號:20081478,純度98%);LPS(Sigma,L2880);HUVEC細胞(購自武漢大學CCTCC細胞庫);羅丹明123(碧云天生物技術研究所);RPMI1640培養(yǎng)基,胎牛血清(Hyclone,USA);CCK-8試劑盒(碧云天生物技術研究所)。

        1.2儀器

        超凈工作臺(蘇州凈化設備有限公司,SW-CJ-1F型);倒置相差顯微鏡(日本Olympus公司,CKX41型);酶標分析儀(北京普朗新技術有限公司,DNM-9602型);熒光顯微鏡(德國LEICA公司,DMR型)。

        1.3CCK-8法檢測白藜蘆醇對LPS刺激HUVEC后細胞活性的影響

        將LPS配成10 mg·ml-1母液分裝后-20℃凍存?zhèn)溆?。將白藜蘆醇用DMSO與無血清培養(yǎng)基配成640 μg·ml-1母液(DMSO濃度小于0.1%)。HUVEC細胞株采用RPMI1640+10%胎牛血清培養(yǎng)。取對數(shù)生長期的HUVEC細胞,按1×105·ml-1細胞濃度接種于96孔板,每孔90 μl,培養(yǎng)24 h后處理。將細胞分為LPS組(1 μg·ml-1LPS+細胞),陰性組(細胞+培養(yǎng)基),空白組(僅有培養(yǎng)基無細胞)以調(diào)整培養(yǎng)基的顏色誤差,白藜蘆醇分為160、80、40、20 μg·l-14個劑量組(白藜蘆醇+1 μg·ml-1LPS+細胞),溶媒對照組(DMSO+細胞)加終濃度為0.1%DMSO,處理時間為24 h,加入CCK-8 10 μl繼續(xù)培養(yǎng)1 h,酶標儀450 nm波長下檢測各孔吸光度值,以OD值反應細胞活力。每個濃度3個復孔,連續(xù)重復3次。

        1.4羅丹明染色檢測線粒體跨膜電位

        細胞分組同1.4,將不同處理后的HUVEC細胞用0.25%胰酶消化,收集1×l06個細胞,經(jīng)PBS清洗2次,與1 μmol·L-1羅丹明(Rhodamine 123,Rh123)在37℃共同孵育30 min,PBS清洗2次,熒光顯微鏡下觀察熒光強度。

        1.5統(tǒng)計學處理

        2結果

        2.1白藜蘆醇對LPS刺激HUVEC細胞后細胞活性影響

        LPS組細胞活力明顯下降,表明LPS抑制HUVEC細胞生長明顯。與LPS組比較,白藜蘆醇160, 80, 40與20 μg·L-1可明顯提高細胞活力,有統(tǒng)計學意義(P<0.05或0.01),見圖1。

        圖1 白藜蘆醇對LPS刺激HUVEC后細胞活力影響注:同LPS組比較,*P<0.05;**P<0.01

        2.2白藜蘆醇對LPS刺激HUVEC細胞后對線粒體跨膜電位影響

        熒光顯微鏡結果顯示,LPS組熒光較強,表明線粒體跨膜電位較低。陰性對照組熒光較弱,表明線粒體膜完整,線粒體跨膜電位較高。與LPS組比較,白藜蘆醇160, 80, 40 μg·L-1劑量組熒光強度弱于模型組,提示白藜蘆醇各劑量組能夠提高LPS刺激HUVEC細胞后的線粒體跨膜電位,見圖2。

        (A)陰性組              (B)LPS組

        (C)Res 160 μg·L-1           (D)Res 80 μg·L-1

        (E)Res 40 μg·L-1          (F)Res 20 μg·L-1圖2 白藜蘆醇對LPS刺激HUVEC后線粒體跨膜電位影響(×200)

        3討論

        脂多糖致血管內(nèi)皮細胞凋亡機制復雜,但主要與脂多糖激活多種細胞因子,激活NF-κB,改變線粒體跨膜電位有關[6]。線粒體跨膜電位(△ψm)與細胞凋亡間關系密切?!鳓譵是由線粒體內(nèi)膜兩側電子的不對稱分布造成。正常生理情況下,線粒體內(nèi)膜通透性很低,僅允許不帶電荷的小分子物質(zhì)通過,是維持電化學質(zhì)子梯度、進行氧化磷酸化的結構基礎[7]。在細胞凋亡早期,線粒體外膜對蛋白質(zhì)的通透性增高,線粒體內(nèi)膜的跨膜潛能降低。線粒體膜電位降低,可引起細胞凋亡的級聯(lián)反應,最終導致細胞凋亡[8]。本實驗選擇羅丹明染色后熒光顯微鏡檢測線粒體跨膜電位。Rh123是一種可透過細胞膜的陽離子熒光染料,其在正常細胞中能夠依賴線粒體跨膜電位進入線粒體基質(zhì),熒光強度減弱或消失。而在凋亡發(fā)生時,線粒體膜完整性破壞,線粒體跨膜電位破壞,Rh123重新釋放出線粒體,發(fā)出強黃綠色熒光。實驗結果顯示,正常細胞熒光較弱,表明線粒體膜完整。LPS刺激后的HUVEC細胞熒光較強,表明線粒體跨膜電位受到破壞。白藜蘆醇干預后可以明顯看見熒光減弱,提示白藜蘆醇減少HUVEC細胞凋亡可能是與提高線粒體跨膜電位有關。

        綜上可以看出,脂多糖對血管內(nèi)皮細胞活性影響與線粒體跨膜電位改變有關,白藜蘆醇能夠改善LPS刺激HUVEC細胞后活性,可能與改變HUVEC線粒體跨膜電位有關。但由于白藜蘆醇藥理作用較多,涉及作用機制亦較多,因此白藜蘆醇對血管內(nèi)皮細胞保護作用的機制以及相關應用尚需進一步探討和研究。

        參考文獻

        1Maier JA. Endothelial cells and magnesium: implications in atherosclerosis[J]. Clin Sci (Lond), 2012, 122(9): 397-407.

        2Noratto GD, Angel-Morales G, Talcott ST, et al. Polyphenolics from a?aí(Euterpe oleracea Mart.) and red muscadine grape (Vitis rotundifolia) protect human umbilical vascular endothelial cells (HUVEC) from glucose and lipopolysaccharide(LPS)-induced inflammation and target microRNA-126[J]. J Agric Food Chem, 2011, 59(14): 7999-8012.

        3Gresele P, Cerletti C, Guglielmini G, et al. Effects of resveratrol and other wine polyphenols on vascular function: an update[J]. J Nutr Biochem, 2011, 22(7): 201-211.

        4Zeuke S, Ulmer A J, Kusumoto S, et al. TLR4-mediated inflammatory activation of human coronary artery endothelial cells by LPS[J]. Cardiovasc Res, 2002, 56(1): 126-134.

        5Pirola L, Frojdo S. Resveratrol: one molecule, many targets[J]. IUBMB Life, 2008, 60(5): 323-332.

        6Shi Q, Wang J, Wang XL, et al. Comparative analysis of vascular endothelial cell activation by TNF-alpha and LPS in humans and baboons[J]. Cell Biochem Biophys, 2004, 40(3): 289-303.

        7Li Y, Shibata Y, Zhang L, et al. Periodontal pathogen aggregatibacter actinomycetemcomitans LPS induces mitochondria-dependent-apoptosis in human placental trophoblasts[J]. Placenta, 2011, 32(1): 11-19.

        8Emre Y, Hurtaud C, Nübel T, et al. Mitochondria contribute to LPS-induced MAPK activation via uncoupling protein UCP2 in macrophages[J]. Biochem J, 2007, 402(2): 271-278.

        Effects of resveratrol on mitochondrial membrane potential of HUVEC cells induced by LPS*

        Tang Jing1,2, Jiang Xian3, Li Mao1, Sun Yu-hong1,2, Zhang Zhuo1△(1.Department of Pharmacology, Luzhou Medical College, Sichuan Luzhou 646000;2.Department of Pharmacy, Dazhou Vocational and Technical College, Sichuan Dazhou 63500;3.Department of Anesthesia, Affiliated Hospital of Luzhou Medical College, Sichuan Luzhou 646000)

        AbstractObjective:To investigate the effects of resveratrol on the mitochondrial membrane potential of the HUVEC cells induced by LPS. Methods: HUVEC cells were cultured in vitro and divided into LPS group, normal group, 160, 80, 40, 20 μg·L-1resveratrol group. LPS group and resveratrol groups were stimulated by 1 μg·m l-1LPS for 24 h, cell viability was observed by CCK-8; mitochondrial membrane potential were tested by the fluorescence microscope. Results: Compared with model group, resveratrol at the concentration of 160, 80, 40, 20 μg·L-1could increase the cell viability and increase the mitochondrial membrane potential significantly(P<0.05). Conclusion: Resveratrol could against the apoptosis of HUVEC cell induced by LPS, and the mechanism may be associated with the increasion of the mitochondrial membrane potential.

        Key Words:Resveratrol; HUVEC cell; Mitochondrial membrane potential

        (收稿日期:2015-10-24)

        作者簡介:唐晶,女,講師,主要從事神經(jīng)藥理研究,Email:498926268@qq.com?!魍ㄓ嵶髡撸赫伦浚?,副教授,主要從事神經(jīng)與免疫藥理學,Email:zhhuozhang100@163.com。

        *基金項目:四川省教育廳課題(編號:14ZA0143)

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