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        兔出血癥病毒感染機(jī)體后炎性因子的檢測(cè)分析

        2016-04-11 15:38:48仇汝龍范志宇王芳胡波宋艷
        江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2016年2期
        關(guān)鍵詞:熒光定量PCR炎性因子脾臟

        仇汝龍++范志宇++王芳++胡波++宋艷華++魏后軍++劉星++徐為中+薛家賓

        摘要:兔出血癥病毒(RHDV)感染成年兔可以誘導(dǎo)兔體內(nèi)產(chǎn)生強(qiáng)烈的炎性反應(yīng),是病毒感染后急性死亡的重要原因之一。為揭示病毒感染機(jī)體后體內(nèi)重要炎性因子的表達(dá)情況,采用熒光定量PCR方法檢測(cè)RHDV感染后6、12、24、30、36 h兔外周血、肝臟和脾臟內(nèi)病毒增殖情況以及IL-6、IL-10、TNF-α和IFN-γ炎性因子的表達(dá)情況。結(jié)果表明,兔出血癥病毒拷貝數(shù)在外周血、肝臟和脾臟內(nèi)隨著感染時(shí)間的變化呈快速上升的趨勢(shì)。外周血、肝臟和脾臟在病毒感染中,促炎性因子IL-6和TNF-α表達(dá)水平都明顯上調(diào)。肝臟促炎性因子IL-6在30 h左右達(dá)到最大值,而在外周血和脾臟中則持續(xù)上調(diào)。抑炎因子IL-10隨著炎性因子的上調(diào)也隨之上升,但其表達(dá)水平只有較低程度的上調(diào)。IFN-γ相對(duì)表達(dá)水平在肝臟和脾臟有短暫的上調(diào),在外周血中則持續(xù)下調(diào)。

        關(guān)鍵詞:兔出血癥病毒;炎性因子;熒光定量PCR;外周血;脾臟;肝臟

        中圖分類號(hào): S852.65;S858.291文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A文章編號(hào):1002-1302(2016)02-0238-03

        收稿日期:2016-01-20

        基金項(xiàng)目:現(xiàn)代農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系建設(shè)兔體系病毒病預(yù)防與控制崗位專項(xiàng)(編號(hào):CARS-44-C-1);公益性行業(yè)(農(nóng)業(yè))科研專項(xiàng)(編號(hào):201303046);江蘇省自然科學(xué)基金(編號(hào):BK20140740)。

        作者簡(jiǎn)介:仇汝龍(1988—),男,山東濟(jì)寧人,碩士研究生,助理研究員,主要從事家兔疾病防治與獸醫(yī)生物技術(shù)研究。E-mail:qrl8891@163.com。

        通信作者:王芳,博士,研究員,主要從事家兔重要疫病致病機(jī)制及防控技術(shù)的研究。E-mail:rwangfang@126.com。

        兔出血癥(RHD)是對(duì)野兔和家兔具有高度傳染性的疾病,其病原是兔出血癥病毒(RHDV),屬于杯狀病毒家族的兔病毒屬[1]。感染兔出血癥病毒的成年兔在48~72 h內(nèi)死亡[2],死亡原因主要為肝臟快速衰竭并伴隨強(qiáng)烈的炎癥反應(yīng)。在免疫反應(yīng)中,調(diào)節(jié)炎癥反應(yīng)的正是信號(hào)通路及細(xì)胞因子。

        細(xì)胞因子是調(diào)節(jié)性蛋白,在調(diào)節(jié)免疫反應(yīng)中的細(xì)胞反應(yīng)階段有著重要的作用,包括淋巴細(xì)胞的激活、增殖、分化、存活和凋亡[3]。它們是低分子量蛋白,主要是由淋巴細(xì)胞、抗原呈遞細(xì)胞、單核細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞和纖維細(xì)胞等分泌。細(xì)胞因子可分為不同的類別,比如白介素、干擾素、腫瘤壞死因子和趨化因子等。細(xì)胞因子相互作用,施展極化效應(yīng)于T細(xì)胞并且調(diào)整免疫反應(yīng)[4]。CD4+亞群(Th細(xì)胞)根據(jù)自身所分泌的細(xì)胞因子,分為Th1和Th2亞群。Th1細(xì)胞分泌IFN-γ、淋巴毒素和IL-2,可以刺激炎癥反應(yīng),比如遲發(fā)型超敏反應(yīng),促進(jìn)補(bǔ)體的產(chǎn)生和細(xì)胞毒性T細(xì)胞分化。Th2細(xì)胞分泌IL-4、IL-5和IL-10等,調(diào)節(jié)體液免疫反應(yīng)[5-6]。多數(shù)研究證明宿主感染的程度以Th1和Th2細(xì)胞為基礎(chǔ)[7]。IL-1、IL-2、IL-4、IL-6、IL-8、IL-10、IFN-γ和TNF-α等[8-11]兔細(xì)胞因子序列的發(fā)表,促使檢測(cè)兔細(xì)胞因子的分子生物學(xué)試驗(yàn)的產(chǎn)生。熒光定量PCR具有敏感性和結(jié)果快速性,可以作為檢測(cè)細(xì)胞因子的方法。本研究通過(guò)熒光定量的方法,檢測(cè)感染RHDV兔體內(nèi)病毒拷貝數(shù)和炎性因子的變化,為研究兔出血癥病毒的感染及致病機(jī)制奠定基礎(chǔ)。

        1材料與方法

        1.1病毒和試驗(yàn)兔

        兔出血癥病毒(由江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院獸醫(yī)研究所保存);新西蘭成年白兔40只,購(gòu)自南京金陵種兔場(chǎng)。

        1.2主要試劑和儀器

        Trizol RNAiso plus,反轉(zhuǎn)錄試劑盒PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser(Perfect Real Time)和熒光定量試劑SYBR Premix EX Taq,均購(gòu)自Takara公司。pMD18-T Vector和大腸桿菌DH5α均購(gòu)自南京基天生物公司,熒光定量機(jī)器Stepone 7300,人外周血淋巴細(xì)胞分離液,購(gòu)自天津市灝洋生物制品有限責(zé)任公司。

        1.3引物

        炎性因子IL-6、IL-10、IFN-γ和TNF-α的檢測(cè)引物[12]見(jiàn)表1,VP60模板引物及VP60檢測(cè)引物建立標(biāo)準(zhǔn)曲線和檢測(cè)樣品[13]。引物由Invitrogen公司合成。

        1.4試驗(yàn)動(dòng)物分組和取樣

        將40只新西蘭兔分為5組,每組5只攻毒兔和3只對(duì)照兔,兔攻毒采用頸部皮下注射0.5 mL HA為28 RHDV的肝懸液。5組兔分別在攻毒后6、12、24、30、36 h取樣后殺死。血液通過(guò)心臟采血,采集后立即分離淋巴細(xì)胞和血清,肝臟和脾臟則保存于-70 ℃?zhèn)溆谩?/p>

        1.5RNA的提取及反轉(zhuǎn)錄

        1.5.1炎性因子RNA提取外周血淋巴細(xì)胞、肝臟和脾臟的RNA提取采用Trizol法。按照6、12、24、30、36 h取樣,取外周血3 mL采用淋巴細(xì)胞分離液分離淋巴細(xì)胞后提取RNA。肝臟和脾臟則稱取0.5g勻漿提取RNA。提取的RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄。

        1.5.2病毒RNA提取病毒拷貝數(shù)的定量,采用外周血血清提取RNA,組織則采用0.5 g肝臟和脾臟的勻漿上清液來(lái)提取RNA[14]。提取的RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄。

        1.6熒光定量PCR檢測(cè)和計(jì)算

        1.6.1炎性因子的檢測(cè)炎性因子檢測(cè)的熒光定量體系:SYBR Mix 10 μL,PCR上下游引物(10 μmol/L)各0.4 μL,ROX 0.4 μL,DNA 模板2 μL,ddH2O 6.8 μL。程序:95 ℃預(yù)變性30 s;95 ℃ 5 s,60 ℃ 30 s,循環(huán)40次;熔解曲線默認(rèn)設(shè)置。分析數(shù)據(jù):細(xì)胞因子數(shù)據(jù)分析采用2-ΔΔCT方法,計(jì)算相對(duì)表達(dá)水平。

        1.6.2病毒拷貝數(shù)的檢測(cè)病毒拷貝數(shù)的檢測(cè)需要進(jìn)行絕對(duì)定量,定量體系和程序見(jiàn)“1.6.1”節(jié)。結(jié)果根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算。

        2結(jié)果與分析

        2.1外周血淋巴細(xì)胞的炎性因子和外周血病毒拷貝數(shù)

        感染RHDV的兔外周血中的病毒拷貝數(shù)迅速上升,導(dǎo)致病毒隨血液在兔體內(nèi)傳播(圖1-A)。炎性因子IL-6和TNF-α表達(dá)水平則持續(xù)上升直到36 h(圖1-B和圖1-C),說(shuō)明炎癥反應(yīng)加劇,而抗炎因子IL-10作為最重要的保護(hù)性因子,在外周血淋巴細(xì)胞中并沒(méi)有檢測(cè)出其mRNA的表達(dá)。IFN-γ在感染病毒的外周血中持續(xù)下調(diào)(圖1-D)。

        2.2肝臟炎性因子和病毒拷貝數(shù)

        肝臟作為RHDV感染中急性衰竭的部位,病毒拷貝數(shù)快速上升直到36 h(圖2-A),炎性因子IL-6和TNF-α也快速上升,表明炎癥反應(yīng)加劇,IL-6相對(duì)表達(dá)水平在30 h達(dá)到最大值,之后則相對(duì)表達(dá)水平大大降低(圖2-B和圖2-C)。不同于外周血,抗炎因子IL-10在肝臟中相對(duì)表達(dá)水平持續(xù)處于上調(diào)的趨勢(shì)(圖2-D)。IFN-γ在肝臟30 h則有短暫的上調(diào)(圖2-E)。

        2.3脾臟細(xì)胞因子和病毒拷貝數(shù)

        兔體感染RHDV后,脾臟內(nèi)病毒的拷貝數(shù)也持續(xù)上升并在30 h達(dá)到較高水平(圖3-A)。炎性因子IL-6和TNF-α同肝臟一樣,處于較高水平的表達(dá)(圖3-B和圖3-C),不同的是脾臟IL-6持續(xù)升高直到36 h??寡滓蜃覫L-10表達(dá)水平也有上調(diào),在30 h達(dá)到最大值(圖3-D)。脾臟的IFN-γ相對(duì)表達(dá)水平與肝臟相似在30 h都有短暫的上調(diào),然后迅速下調(diào)(圖3-E)。

        3討論

        近年來(lái)的研究表明,炎性因子(IL-1β、IL-6、TNF-α等)的急性升高在“暴發(fā)性肝臟衰竭” 中有著重要作用,是RHDV感染引起重癥炎癥反應(yīng)的關(guān)鍵因素。對(duì)炎性因子的研究,可以闡述細(xì)胞免疫在RHDV感染病毒清除和肝損傷中的作用,深化免疫損傷理論認(rèn)識(shí),為發(fā)展特異性免疫治療手段提供了科學(xué)依據(jù)。炎性因子作為調(diào)節(jié)性因子存在于整個(gè)免疫反應(yīng)階段,通過(guò)熒光定量PCR對(duì)炎性因子的跟蹤檢測(cè)可以對(duì)RHDV感染引發(fā)的炎癥反應(yīng)進(jìn)行深入的研究和了解。

        本研究發(fā)現(xiàn),通過(guò)實(shí)時(shí)熒光定量PCR的方法,對(duì)感染RHDV的兔體內(nèi)病毒拷貝數(shù)和炎性因子進(jìn)行檢測(cè),結(jié)合感染后不同時(shí)間點(diǎn)的相關(guān)結(jié)果分析,可以對(duì)RHDV感染兔體后的體內(nèi)傳播和引發(fā)的炎癥反應(yīng)有較為深刻的了解。

        兔出血癥病毒在感染成年兔后,體內(nèi)病毒隨血液到達(dá)全身,并且快速增殖直到36 h,作為靶器官的肝臟和脾臟內(nèi)病毒積累量快速上升。病毒量在靶器官增多的同時(shí),炎性因子IL-6和TNF-α的相對(duì)表達(dá)水平在外周血、肝臟和脾臟中都大幅度上調(diào),暗示炎癥反應(yīng)的加劇。隨著炎癥反應(yīng)的加劇,保護(hù)性抗炎因子IL-10相對(duì)表達(dá)水平也有一定程度的上調(diào),以調(diào)節(jié)炎癥反應(yīng)。但是炎癥反應(yīng)一直處于加劇的趨勢(shì),說(shuō)明炎癥反應(yīng)沒(méi)有得到有效的控制。肝臟和脾臟中具有抗病毒能力的IFN-γ雖然有一定程度的上調(diào),并不能阻止病毒在兩者中的增殖。感染兔出血癥病毒的兔體內(nèi)暴發(fā)炎癥反應(yīng),導(dǎo)致免疫反應(yīng)的失衡,抗炎因子無(wú)法起到保護(hù)作用,從而導(dǎo)致肝臟等組織器官衰竭和死亡[15]。總之,感染RHDV的兔體內(nèi)炎癥反應(yīng)的不斷加劇,病毒的快速增殖和在靶器官的不斷積累可能最終是導(dǎo)致兔快速死亡的重要原因。本研究為兔出血癥病毒感染和致病機(jī)制的研究奠定了基礎(chǔ)。

        參考文獻(xiàn):

        [1]Granzow H,Weiland F,Strebelow H G,et al. Rabbit hemorrhagic disease virus (RHDV):ultrastructure and biochemical studies of typical and core-like particles present in liver homogenates[J]. Virus Research,1996,41(2):163-172.

        [2]Ohlinger V F,Haas B,Meyers G,et al. Identification and characterization of the virus causing rabbit hemorrhagic disease[J]. Journal of Virology,1990,64(7):3331-3336.

        [3]Giulietti A,Overbergh L,Valckx D,et al. An overview of real-time quantitative PCR:applications to quantify cytokine gene expression[J]. Methods,2001,25(4):386-401.

        [4]Boeuf P,Vigan-Womas I,Jublot D,et al. CyProQuant-PCR:a real time RT-PCR technique for profiling human cytokines,based on external RNA standards,readily automatable for clinical use[J]. Bmc Immunology,2005,6(1):1-14.[5]Abbas A K,Murphy K M,Sher A . Functional diversity of helper T lymphoctes[J]. Nature,1996,383(6603):787-793.

        [6]Mena A,Ioannou X P,Kessel A V,et al. Th1/Th2 biasing effects of vaccination in cattle as determined by real-time PCR[J]. Journal of Immunological Methods,2002,263(1/2):11-21.

        [7]Dinarello C A. Proinflammatory and anti-inflammatory cytokines as mediators in the pathogenesis of septic shock[J]. Chest,1997,112(6):321-329.

        [8]Cannon J G,Clark B D,Wingfield P,et al. Rabbit IL-1 Cloning,expression,biologic properties,and transcription during endotoxemia[J]. Journal of Immunology,1989,142(7):2299-2306.

        [9]Shakhov A N,Kuprash D V,Azizov M M,et al. Structural analysis of the rabbit TNF locus,containing the genes encoding TNF-β(lymphotoxin) and TNF-α(tumor necrosis factor)[J]. Gene,1990,95(2):215-221.

        [10]Isono T,Nagano Y,Seto A. Expression of the interferon-gamma and interleukin-10 genes in rabbit HTLV-Ⅰ-transformed T-cell lines[J]. Immunogenetics,1996,44(4):306-308.

        [11]Perkins H,Van L B C,Kerr P. The complete cDNA sequences of IL-2,IL-4,IL-6 AND IL-10 from the European rabbit (Oryctolagus cuniculus)[J]. Cytokine,2000,12(6):555-565.

        [12]Liu W K,Dang R Y,Wang X L. Development of a SYBR-based real-time PCR to detect rabbit hemorrhagic disease virus (RHDV) and analyze its tissue distribution in experimentally infected rabbits[J]. Virol Sin,2015,30(3):228-30.

        [13]Espino A M,Rivera F. Quantitation of cytokine mRNA by real-time RT-PCR during a vaccination trial in a rabbit model of fascioliasis[J]. Vet Parasitol,2010,169(1/2):82-92.

        [14]Duarte M D,Carvalho C L,Barros S C,et al. A real time Taqman RT-PCR for the detection of rabbit hemorrhagic disease virus 2 (RHDV2)[J]. J Virol Methods,2015,219:90-5.

        [15]Abrantes J,Loo W V D,Pendu J L,et al. Rabbit haemorrhagic disease (RHD) and rabbit haemorrhagic disease virus (RHDV):a review[J]. Veterinary Research,2012,43(6):162-172.黃銀云,胡新崗,郭廣富,等. 櫻桃谷肉鴨大腸桿菌病PCR鑒定及治療藥物篩選與應(yīng)用[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2016,44(2):241-243.

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