廖 晴 ,龔松旺 ,瑪爾哈巴·吾斯?jié)M ,沙 紅 ,高 燕

(1.新疆農(nóng)業(yè)科學(xué)院園藝作物研究所，烏魯木齊 830091；2.新疆霍城縣農(nóng)業(yè)技術(shù)推廣站,新疆霍城　835200)

?

新疆薰衣草C-197優(yōu)選優(yōu)株快繁體系的建立及快繁

廖 晴1,龔松旺2,瑪爾哈巴·吾斯?jié)M1,沙 紅1,高 燕1

(1.新疆農(nóng)業(yè)科學(xué)院園藝作物研究所，烏魯木齊 830091；2.新疆霍城縣農(nóng)業(yè)技術(shù)推廣站,新疆霍城835200)

摘要：【目的】選擇新疆薰衣草主栽品種C-197優(yōu)選優(yōu)株，并建立快繁體系，研究新疆薰衣草種質(zhì)資源提純技術(shù)的有效途徑，為提高新疆薰衣草產(chǎn)量及質(zhì)量提供技術(shù)支撐?！痉椒ā坎捎眯陆挂虏軨-197優(yōu)選優(yōu)株作為外植體材料，進(jìn)行無(wú)菌苗誘導(dǎo)，在培養(yǎng)基中加入不同激素及不同濃度的激素進(jìn)行叢生苗和生根的誘導(dǎo)，建立其快繁體系。運(yùn)用快繁體系獲得大量?jī)?yōu)質(zhì)新疆薰衣草C-197種苗?！窘Y(jié)果】在選取薰衣草外植體誘導(dǎo)時(shí)，選用優(yōu)選優(yōu)株莖段或莖尖作外植體進(jìn)行無(wú)菌苗誘導(dǎo)，誘導(dǎo)培養(yǎng)基為：MS+BA1.0 mg/L；繼代培養(yǎng)基為：MS+BA1.0 mg/L+IBA0.3 mg/L；生根培養(yǎng)基為：1/2MS+NAA0.5~1.0 mg/L【結(jié)論】新疆薰衣草C-197的優(yōu)選優(yōu)株快繁體系的建立，提純了薰衣草C-197的品種，可大量快繁C-197優(yōu)質(zhì)種苗。

關(guān)鍵詞：新疆薰衣草；誘導(dǎo)；激素；快繁

0引 言

【研究意義】薰衣草是新疆特色經(jīng)濟(jì)花卉之一。據(jù)統(tǒng)計(jì)，我國(guó)每年消耗薰衣草精油70 t左右，其中2/3是新疆生產(chǎn)的，目前我國(guó)對(duì)薰衣草精油需求量以每年15%以上遞增。我國(guó)薰衣草雖有幾十年的栽培歷史，栽培技術(shù)已相對(duì)完善，但栽培品種卻嚴(yán)重退化混雜，生產(chǎn)量及質(zhì)量在逐年下降，需要對(duì)薰衣草種質(zhì)資源的優(yōu)化。薰衣草是異花授粉植物，該群體異質(zhì)性復(fù)雜，選擇優(yōu)良個(gè)體進(jìn)行常規(guī)繁殖，優(yōu)良性狀是很難穩(wěn)定遺傳的。為獲得較穩(wěn)定的純合后代和保證選擇效果，對(duì)新疆主栽品種C-197進(jìn)行種質(zhì)的提純和優(yōu)化，選擇C-197優(yōu)選優(yōu)株進(jìn)行組培快繁試驗(yàn)，建立快繁體系，為薰衣草種質(zhì)創(chuàng)新奠定堅(jiān)實(shí)的基礎(chǔ)?！厩叭搜芯窟M(jìn)展】國(guó)外對(duì)薰衣草育種一直都很重視，除傳統(tǒng)的系統(tǒng)育種外，還進(jìn)行基因工程和多倍體育種研究。但我國(guó)對(duì)薰衣草的育種及優(yōu)良品種的繁殖技術(shù)研究開(kāi)展甚少。尤其在新疆受經(jīng)濟(jì)條件的制約，育種及優(yōu)質(zhì)種苗生產(chǎn)嚴(yán)重滯后，極大地限制了精油生產(chǎn)的深層次發(fā)展。針對(duì)目前新疆薰衣草產(chǎn)業(yè)亟待解決的種質(zhì)混雜問(wèn)題，通過(guò)生物技術(shù)手段-組培快繁技術(shù)，快速進(jìn)行種質(zhì)的提純和優(yōu)化，為優(yōu)質(zhì)種苗的大量生產(chǎn)提供可靠的技術(shù)支撐。【本研究切入點(diǎn)】目前對(duì)新疆薰衣草C-197進(jìn)行優(yōu)選優(yōu)株的選擇并進(jìn)行快繁體系的建立研究未見(jiàn)報(bào)道。針對(duì)目前新疆薰衣草產(chǎn)業(yè)亟待解決的種質(zhì)混雜問(wèn)題，通過(guò)先進(jìn)的生物技術(shù)手段-組培快繁技術(shù)，快速進(jìn)行種質(zhì)的提純和優(yōu)化，為優(yōu)質(zhì)種苗的大量生產(chǎn)提供可靠的技術(shù)支撐?！緮M解決的關(guān)鍵問(wèn)題】通過(guò)優(yōu)選優(yōu)株的組培快繁，提純薰衣草品種的種質(zhì)，在良好的種質(zhì)基礎(chǔ)上，通過(guò)誘導(dǎo)多倍體進(jìn)行種質(zhì)創(chuàng)新，擬解決目前新疆薰衣草產(chǎn)業(yè)中栽培品種嚴(yán)重退化混雜，生產(chǎn)量及質(zhì)量在逐年下降的問(wèn)題。

1材料與方法

1.1　材 料

以新疆薰衣草主栽品種C-197為試材，選取優(yōu)選優(yōu)株的莖段或莖尖做外植體。

1.2　方 法

1.2.1取C-197優(yōu)選優(yōu)株當(dāng)年新發(fā)枝條的嫩莖部分，剪取7~10個(gè)節(jié)位，表面清洗干凈后，再進(jìn)行滅菌處理，消毒時(shí)間設(shè)5、7、10 min三個(gè)處理，將消毒好的材料剪成莖尖和莖段，各接10瓶，每瓶接4個(gè)外植體，接種在MS+BA 1.0 mg/L誘導(dǎo)培養(yǎng)基中,每天光照12 h，光照強(qiáng)度為1 600~2 000 lx,培養(yǎng)溫度24~28℃，接種15 d后統(tǒng)計(jì)污染率。

1.2.2將外植體誘導(dǎo)出的無(wú)菌苗，剪切成3 cm的莖段，接種于MS培養(yǎng)基，添加不同水平的BA(0、0.5、1.0、1.5、2.0 mg/L)和MS+BA 1.0 mg/L加不同水平的IBA(0、0.1、0.3、0.5、1.0 mg/L)中，共10個(gè)處理，每瓶5株，設(shè)5個(gè)重復(fù)。每天光照12 h，光照強(qiáng)度為1 600~2 000 lx,培養(yǎng)溫度24~28℃，接種30 d后統(tǒng)計(jì)增殖率。

1.2.3將增值后的試管苗，剪切成3 cm莖段，接種于1/2MS培養(yǎng)基，添加不同水平NAA(0、0.1、0.5、1.0、1.5 mg/L)和不同水平IAA(0、0.1、0.5、1.0、1.5 mg/L)及CCC(0、0.1、0.5、1.0、1.5 mg/L)組合，共15個(gè)處理，每瓶5株，設(shè)5個(gè)重復(fù)。每天光照12 h，光照強(qiáng)度為3 000~5 000 lx,培養(yǎng)溫度24~28℃，接種25 d后統(tǒng)計(jì)生根率。

1.2.4將生根小植株洗去根部附著的殘留培養(yǎng)基,移栽到4種不同基質(zhì)(泥炭、泥炭與珍珠巖1∶1混合、蛭石、珍珠巖)中，每處理100株，待20~25 d后逐漸撤去薄膜，種苗正常管理并統(tǒng)計(jì)成活率。

2 結(jié)果與分析

2.1　外植體的滅菌效果

外植體無(wú)菌苗誘導(dǎo)15 d后，調(diào)查污染率。研究表明，不同滅菌時(shí)間對(duì)不同部位的滅菌效果有差異，莖尖滅菌7 min與滅菌10 min比較差異極顯著，與滅菌5 min比較差異顯著，莖尖滅菌7 min，污染率為17.5%；而莖段滅菌時(shí)間10 min與5 min比較差異極顯著，與滅菌7 min比較差異顯著，莖段滅菌10 min，污染率僅為5%。莖尖滅菌時(shí)間為7 min、莖段滅菌時(shí)間為10 min為宜。表1

表1不同時(shí)間對(duì)不同部位外植體滅菌效果
Table 1Effect of sterilizing on different parts of the explants

品種Species部位Position滅菌時(shí)間(min)Sterilizationtime接種數(shù)(個(gè))Numberofexplants污染數(shù)(個(gè))Numberofcontamination污染率(%)ContaminationrateC-197莖尖571040404015Bb7Cc21Aa(18個(gè)褐化)37.5Bb17.5Cc52.5AaC-197莖段571040404018Aa9Bb2Cc45Aa22.5Bb5Cc

2.2　不同激素種類(lèi)和濃度梯度配比對(duì)不定芽增殖的影響

將無(wú)菌苗的莖段，接種于附加有不同激素種類(lèi)和濃度梯度的MS培養(yǎng)基中，培養(yǎng)30 d后統(tǒng)計(jì)分化總芽數(shù)、新稍平均長(zhǎng)度、莖平均粗度、愈傷平均直徑、增值率。

研究表明，增殖培養(yǎng)基中添加的BA與IBA水平不同，芽的增殖率與長(zhǎng)勢(shì)存在著差異。在單因子試驗(yàn)中與對(duì)照比較，不定芽增殖率以添加BA 1.0、1.5 mg/L差異極顯著；在多因子試驗(yàn)中與對(duì)照比較，BA 1.0 mg/L+IBA 0.3 mg/L差異極顯著；對(duì)這三種配方的其它指標(biāo)綜合，以BA 1.0 mg/L+IBA 0.3 mg/L配方為最優(yōu)，與單因子配方比較，其愈傷平均直徑及新稍平均長(zhǎng)度差異不顯著，莖平均粗度差異顯著，說(shuō)明該配方愈傷組織小，叢芽壯，增殖效果更好。表2

表2不同激素濃度梯度配比下C-197不定芽增殖變化
Table 2Effect of C-197′s proliferation of adventitious on the different concentrations of hormones

培養(yǎng)基(mg/L)Medium接種數(shù)Numberofexplants(個(gè))分化芽總數(shù)Budsdifferentiatednumber(個(gè))不定芽的增殖率Theincrementrateofadventitiousbud(%)新梢平均長(zhǎng)度Averagelengthofnewshoots(cm)莖平均粗度Averagethicknesofstems(cm)愈傷平均直徑AverageDiameterofcallus(cm)MS(CK)MS+BA0.5MS+BA1.0MS+BA1.5MS+BA2.05555510Cc17Bb28Aa28Aa27Aa100Dd240Cc460Aa460Aa440Bb28.698Cd35.191ABb33.064Bc36.378Aa34.567Bbc0.515Dd0.526Cc0.542Bb0.515Dd0.611Aa2.667Dd1.798Cc3.350Bb4.884Aa3.130BbMS+BA1.0(CK)MS+BA1.0+IBA0.1MS+BA1.0+IBA0.3MS+BA1.0+IBA0.5MS+BA1.0+IBA1.05555528Cc36Bb42Aa25Cc21Dd460Cc620Bb740Aa400Dd320Ee33.064Aa27.116Bc21.678Cd29.023Bb22.760Cd0.542Bc0.611Aa0.570Bb0.510Cd0.484Cd3.350Aa2.856Cc1.964Dd3.104Bb1.902Dd

2.3　不同激素濃度梯度對(duì)試管苗生根的影響

將增值后的試管苗，剪切成3 cm的莖段，接種于附加有不同激素濃度梯度的1/2MS培養(yǎng)基中，接種20 d后統(tǒng)計(jì)生根總數(shù)、新稍長(zhǎng)度、莖粗及根長(zhǎng)度。

研究表明，在1/2MS培養(yǎng)基中添加不同濃度的NAA對(duì)生根質(zhì)量有一定的差異。添加NAA 1.0 mg/L時(shí)，除了新梢平均長(zhǎng)度與對(duì)照相比差異不顯著外，其它幾項(xiàng)指標(biāo)均為極顯著。實(shí)際工作中，根太粗、太長(zhǎng)都不利于移栽，因而以添加NAA 0.5 mg/L較適宜。單獨(dú)添加CCC也能生根，但除添加CCC 1.5 mg/L時(shí)差異顯著外，其他處理差異均不顯著。添加IAA 0.5~1.0 mg/L雖對(duì)薰衣草的枝條生長(zhǎng)差異顯著，但不能誘導(dǎo)生根。因此，在薰衣草不定根誘導(dǎo)培養(yǎng)中，1/2MS培養(yǎng)基中添加NAA 0.5~1.0 mg/L生根效果好。表3

表3不同激素濃度梯度下C-197試管苗生根變化
Table 3Effect of C-197′s rooting on different concentrations of hormones.

培養(yǎng)基(mg/L)Medium接種數(shù)Numberofexplants(個(gè))生根總數(shù)Roottotal(條)新梢平均長(zhǎng)度Averagelengthofnewshoots(cm)莖平均粗度Averagethicknesofstems(cm)根平均數(shù)Averagenumberofroot(條)根平均長(zhǎng)度Averagelengthofroot(cm)1/2MS(CK)1/2MS+NAA0.11/2MS+NAA0.51/2MS+NAA1.01/2MS+NAA1.5555558Dd14Cc19Bb27Aa17Bb28.698Dd35.852Cc43.164Bb34.312Cc49.061Aa0.515De0.779Bb0.716Cc0.920Aa0.634Cd2.70Dd3.50Cc6.30Bb6.75Aa3.40Cc1.410Cd2.291Bc2.717Ab2.847Aa2.917Aa1/2MS+CCC0.11/2MS+CCC0.51/2MS+CCC1.01/2MS+CCC1.555555Bb1Cc2BCc11Aa42.066Cc38.998Cd62.805Aa52.143Bb0.619Bb0.705Aa0.595Bb0.685Aa1.0Bb0.2Cc0.4Cc2.2Aa0.94Cd1.20Bc1.50Aa1.31Bb1/2MS+IAA0.11/2MS+IAA0.51/2MS+IAA1.01/2MS+IAA1.55555無(wú)無(wú)無(wú)無(wú)31.621Bb38.476Aa39.058Aa40.635Aa0.498Bb0.649Aa0.650Aa0.438Bc無(wú)無(wú)無(wú)無(wú)無(wú)無(wú)無(wú)無(wú)

2.4　不同基質(zhì)對(duì)薰衣草C-197移栽成活率的影響

將生根的小植株洗去根部附著的殘留培養(yǎng)基,移栽在不同的基質(zhì)(泥炭、泥炭與珍珠巖1∶1混合、蛭石、珍珠巖)中，移栽30 d后統(tǒng)計(jì)成活率。

在園土中試管苗移栽成活率較低，雖然能正常生長(zhǎng)，但苗黃；在山土中試管苗移栽成活率較高，生長(zhǎng)正常，但速度較慢；在進(jìn)口草炭土中試管苗移栽成活率為100%；在草炭土+珍珠巖中試管苗移栽成活率高，苗生長(zhǎng)速度快，比純草炭土中要快。用草炭土+珍珠巖移栽是最理想的。表4

表4不同基質(zhì)下C-197試管苗移栽成活率變化
Table 4 Effect of C-197′s transplanting plantlets from culture vessel on different base materials

品種Variety基質(zhì)Basematerial移栽數(shù)Plantlets(株)生長(zhǎng)狀況Growth成活率Survivalrate(%)C-197草炭土草炭土+珍珠巖山土園土100100100100苗綠、生長(zhǎng)正常苗綠、生長(zhǎng)正常且速度快苗綠、生長(zhǎng)正常速度較慢苗黃、生長(zhǎng)正常速度慢1001009381

3討 論

3.1在選擇外植體誘導(dǎo)時(shí),取植株的什么部位進(jìn)行誘導(dǎo)是誘導(dǎo)快慢、成否的決定因素之一，通過(guò)對(duì)薰衣草C-197不同部位的外植體誘導(dǎo)試驗(yàn)，發(fā)現(xiàn)不同部位滅菌效果有一定的差異：莖尖誘導(dǎo)不定芽速度最快，但滅菌時(shí)間不好掌握，時(shí)間短消毒不徹底，時(shí)間稍長(zhǎng)又會(huì)使幼嫩的組織被破壞產(chǎn)生褐化，對(duì)莖尖滅菌時(shí)間為7 min效果較好，污染率為17.5%,滅菌時(shí)間到10 min左右，易將幼嫩的組織破壞產(chǎn)生褐化而死亡，污染率高達(dá)52.5%；而對(duì)莖段滅菌時(shí)間為10 min效果較好,污染率最低為5%，滅菌5 min，消毒不徹底，污染率37.5%以上。用幼嫩的莖段作外植體誘導(dǎo)比較好。

3.2在增殖培養(yǎng)中，培養(yǎng)基中添加的BA與IBA水平不同，芽的增殖率與長(zhǎng)勢(shì)存在顯著差異。增殖率與BA濃度密切相關(guān)，在試驗(yàn)濃度范圍內(nèi)，增殖率先隨BA濃度的升高呈升高趨勢(shì)，但BA濃度過(guò)高時(shí)，增殖率有所下降，且芽的長(zhǎng)勢(shì)減弱。后續(xù)試驗(yàn)表明，BA濃度大于2.0 mg/L時(shí)，隨繼代次數(shù)增加，不定芽易出現(xiàn)玻璃化現(xiàn)象，不利于后期成苗。當(dāng)BA濃度為1.5 mg/L時(shí)雖然分化率、生長(zhǎng)高度比BA濃度為1.0 mg/L時(shí)高或相當(dāng)，但其莖的粗度較小、愈傷較大，BA濃度為1.0 mg/L時(shí)增殖效果為最優(yōu)；增殖率與IBA濃度亦表現(xiàn)出一定的相關(guān)性，同時(shí)添加BA 1.0 mg/L和IBA的梯度試驗(yàn)中，試驗(yàn)濃度范圍內(nèi)，當(dāng)IBA濃度為0.3 mg/L時(shí)增殖率最高，且愈傷小，叢芽壯。因此，薰衣草不定芽增殖培養(yǎng)中，在MS培養(yǎng)基中同時(shí)添加BA 1.0 mg/L和IBA 0.3 mg/L增殖效果好。

3.3不同激素及濃度梯度對(duì)試管苗生根的影響是不同的，在不添加激素時(shí)，C-197也可以生根，但根的質(zhì)量差，添加NAA有利于根的誘導(dǎo)，隨著添加NAA的濃度升高，試管苗分化出的根條數(shù)也隨之增多、增長(zhǎng)，但NAA濃度過(guò)高時(shí)，生根率有所下降，且根的長(zhǎng)勢(shì)減弱，雖然在添加NAA 1.0 mg/L時(shí)，比起添加NAA 0.5 mg/L的各項(xiàng)根生長(zhǎng)指標(biāo)更優(yōu)，但根粗易斷，根長(zhǎng)影響移栽，添加NAA 0.5 mg/L更好一些；只添加CCC雖也能生根，在試驗(yàn)濃度范圍內(nèi)生根率比添加NAA的低；只添加IAA是不能誘導(dǎo)薰衣草生根的。因此，在薰衣草不定根誘導(dǎo)培養(yǎng)中，1/2MS培養(yǎng)基中添加NAA 0.5~1.0 mg/L生根效果好。另外，在薰衣草生根試驗(yàn)中，發(fā)現(xiàn)單枝不如3~5枝一叢的生根容易，這可能與枝條的幼嫩程度有關(guān)。

3.4在園土中試管苗移栽成活率較低，雖然能正常生長(zhǎng)，但苗黃，可能與土的粘重有關(guān)，也有可能是缺素的原因或有機(jī)質(zhì)含量低的問(wèn)題，需進(jìn)一步研究；在山土中試管苗移栽成活率較高，生長(zhǎng)正常，但速度較慢；在草炭土中試管苗移栽成活率為100%；在草炭土+珍珠巖中試管苗移栽成活率高，苗生長(zhǎng)速度快，比純草炭土中要快。用草炭土+珍珠巖移栽是比較理想的，但由于進(jìn)口草炭土價(jià)格昂貴，因而，在考慮生產(chǎn)成本時(shí)，用山土最為適宜。

4結(jié) 論

新疆薰衣草C-197的優(yōu)選優(yōu)株快繁體系的建立，提純了薰衣草C-197的品種，從而可大量快繁出C-197的優(yōu)質(zhì)種苗，通過(guò)該方法可解決目前新疆薰衣草產(chǎn)業(yè)中栽培品種嚴(yán)重退化混雜，生產(chǎn)量及質(zhì)量在逐年下降的問(wèn)題。選用優(yōu)選優(yōu)株的莖段作外植體進(jìn)行無(wú)菌苗誘導(dǎo)時(shí)，莖尖滅菌時(shí)間為7 min、莖段滅菌時(shí)間為10 min為宜；誘導(dǎo)培養(yǎng)基為：MS+BA 1.0 mg/L；繼代培養(yǎng)基為：MS+BA 1.0 mg/L+IBA 0.3 mg/L；生根培養(yǎng)基為：1/2MS+NAA 0.5~1.0 mg/L。

參考文獻(xiàn)(References)

[1]孫會(huì)兵，孫永竹，劉心力.矮壯素對(duì)孟士德薰衣草組培苗的影響[J].山西農(nóng)業(yè)科學(xué)，2011，39(11)：1 141-1 142，1 145.

SUN Hui- bing, SUN Yong- zhu, LIU Xin-li. (2011). Effect of CCC on Tissue Culture Seedling of L. angustifolia Munstead [J].JournalofShanxiAgriculturalSciences, 39(11): 1,141- 1,142 ，1,145. (in Chinese)

[2]戴麗娜，于志鵬，呂國(guó)華，等.薰衣草玻璃化組培苗逆轉(zhuǎn)技術(shù)研究[J].新疆農(nóng)業(yè)科學(xué)，2012，49(11)：2 054-2 061

DAI Li-na, YU Zhi-peng, LV Guo-hua, et al. (2012).The Study on Reversal Technique of Vitreous Tissue culturing Plantlets of Lavender [J].XinjiangAgriculturalSciences, 49(11): 2,054-2,061. (in Chinese)

[3]蘇琛.薰衣草離體培養(yǎng)技術(shù)研究[J].湖北農(nóng)業(yè)科學(xué)，2012，51(3)：623-625.

SU Chen. (2012). Study on in vitro Cultivation of Lavandula angustifolia [J].HubeiAgricuhuralSciences, 51(3): 623-625. (in Chinese)

[4]江明，夏凱國(guó)，易清元.薰衣草的育種研究進(jìn)展[J].香料香精化妝品，2009，8(4)：30-32.

JIANG Ming, XIAKai-guo, YI Qing-yuan. (2009). The Study on Development of Breeding of Lavender [J].FlavourFragranceCosmetics, 8(4): 30-32. (in Chinese)

[5] Urwin, N. A. R., Horsnell, J., & Moon, T. (2007). Generation and characterisation of colchicine-induced autotetraploid lavandula angustifolia.Euphytica, 156(1-2)：257-266.

[6] Tsuro, M., Koda, M., & Inoue, M. (1999). Comparative effect of different types of cytokinin for shoot formation and plant regeneration in leaf-derived callus of lavender (lavandula vera dc).ScientiaHorticulturae,81(3)： 331-336.

[7] Sudria CPinol, M. T., Palazon, J., Cusido, R. M., Vila, R., Morales, C., & Bonfill, M., et al. (1999). Influence of plant growth regulators on the growth and essential oil content of cultured lavandula dentata plantlets..PlantCellTissue&OrganCulture, 58(3)：177-184．

[8]劉珊，陳全家，蘇秀娟，等.英國(guó)薰衣草愈傷再生體系的建立[J].新疆農(nóng)業(yè)科學(xué)，2010，47(1)：73-77.

LIU Shan, CHEN Quan-jia, SU Xiu-juan, et al.(2010). Establishment of Callus Regeneration System of English Lavender [J].XinjiangAgriculturalSciences,47(1): 73-77. (in Chinese)

[9] Tsuro, M., Koda, M., & Inoue, M. (2000). Efficient plant regeneration from multiple shoots formed in the leaf-derived callus of lavandula vera, using the "open culture system".ScientiaHorticulturae, 86(1)：81-88．

[10]謝翠蘋(píng)，倪孟羽，胡千云，等.薰衣草繁殖技術(shù)研究[J].北方園藝，2012，(18)：110-111.

XIE Cui-ping, NI Meng-yu, HU Qian-yun, et al. (2012). Research on Breeding Technology of Lavandula angustifol [J].NorthernHorticulture, (18):110-111. (in Chinese)

[11] Andrade, L. B., Echeverrigaray, S., Fracaro, F., Pauletti, G. F., & Rota, L. (1999). The effect of growth regulators on shoot propagation and rooting of common lavender (lavandula vera dc).PlantCellTissue&OrganCulture, 56(2)：79-83．

[12]王佳佳，鄭鳳英，王康，等.新西蘭薰衣草快速繁殖技術(shù)的研究[J].北方園藝，2010，(12)：161-163.

WANG Jia-jia, ZHENG Feng-ying, WANG Kang, et al. (2010).The Technology of Rapid Propagation of New Zealand Lavender [J].NorthernHorticulture, (12): 161-163. (in Chinese)

[13]路結(jié)，王樸 ，蔣新明,等.新疆不同品種的薰衣草精油成分及含量研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué)，2013，41(4)：1 736-1 737，1 739.

LU Zhe, WANG Pu, JIANG xin-ming, et al.(2013). Study on Composition and Content of Essential oil from Three Lavender Varieties in Xinjiang [J].JournalofAnhuiAgriculturalScience, 41(4)：1,736-1,737 ，1,739. (in Chinese)

[14]王嬋,陳麗娟,程明華,等.狹葉薰衣草離體培養(yǎng)技術(shù)研究[J].海南師范大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版)，2012,25(4):435-437,469.

WANG Chan, CHEN Li-juan, CHENG Ming-hua, et al.(2012). Study on in Vitro Cultivation of Lavandula angustifol [J].JournalofHainanNormalUniversity(NaturalScienceEdition), 25(4):435-437 ，469.(in Chinese)

[15] Teuscher, E., Bauermann, U., Werner, M., Brinckmann, J. A., Lindenmaier, M. P., & Duke, J. A. (2005). Medicinal spices : a handbook of culinary herbs, spices, spice mixtures and their essential oils.Medpharm, CRC Press.

Fund project:Supported the Basic Science and Technology Research Support Funds of Non-profit Research Institutions of Xinjiang Uygur Autonomous Region (KY2014033)

The Establishment of the Fast Propagation System and Rapid

Propagation for the Optimal Strains of C-197 Xinjiang Lavender

LIAO Qing1, GONG Song-wang2, Marbaha Wsman1, SHA Hong1, GAO Yan1

(1.ResearchInstituteofHorticulturalCrops,XinjiangacademyofAgriculturalSciences,Urumgi830091,China: 2.HuochengCountyAgriculturalTechnologyExtensionStation，HuochengXinjiang835200,China)

Abstract：【Objective】 To explore the effective way to purify Xinjiang lavender germplasm resources and establish rapid propagation system in the hope of providing reliable technical support to improve the quality of Xinjiang lavender production through choosing optimal strain of C-197, a major cultivation variety in Xinjiang. 【Method】 The optimal strain of C-197 was used as primal explant, then buds and roots were induced into different medium with different hormones and different concentrations were applied to establish rapid propagation system. A large number of high-quality C -197 plants were quickly got using the rapid propagation system. 【Result】 During selecting lavender explant induction, stem segments and stem tip of optimal plant as explant, adventitious buds induction medium was: MS+BA 1.0 mg/L; subculture medium was: MS + BA 1.0 mg/L + IBA 0.3 mg/L; root induction medium was: 1/2MS+NAA 0.5-1.0 mg/L. 【Conclusion】 Through the establishment of rapid propagation system, C -197 variety was purified and a large number of high-quality C-197 plants were got.

Key words:Xinjiang lavender; induction; hormones; rapid propagation

作者簡(jiǎn)介:廖晴(1962-)，女，四川安岳人，副研究員，研究方向?yàn)榛ɑ芤?、種、繁及植物組培快繁,(E-mail)lq08270029@sina.com

基金項(xiàng)目:新疆維吾爾自治區(qū)公益性科研項(xiàng)目(KY2014033)

收稿日期：2015-09-04

中圖分類(lèi)號(hào)：S68

文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼：A

文章編號(hào)：1001-4330(2016)02-0289-06

doi:10.6048/j.issn.1001-4330.2016.02.014