譚麗菊,肖 慧,Craig A. Carlson,王江濤,*
1 中國(guó)海洋大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,青島 266100
2 中國(guó)海洋大學(xué)海洋生命學(xué)院,青島 266003
3 美國(guó)加州大學(xué)圣芭芭拉分校生態(tài)、演變和海洋生物系,加州 圣芭芭拉 CA93106- 6150
海水中天然細(xì)菌對(duì)不同生源要素有機(jī)物的礦化作用
譚麗菊1,肖慧2,Craig A. Carlson3,王江濤1,*
1 中國(guó)海洋大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,青島266100
2 中國(guó)海洋大學(xué)海洋生命學(xué)院,青島266003
3 美國(guó)加州大學(xué)圣芭芭拉分校生態(tài)、演變和海洋生物系,加州 圣芭芭拉 CA93106- 6150
摘要:海洋異養(yǎng)細(xì)菌是微食物網(wǎng)中非常重要的一部分,它消耗海洋中的溶解有機(jī)物并進(jìn)行細(xì)菌的二次生產(chǎn)。細(xì)菌對(duì)不同種類的溶解有機(jī)物分解速率不同,并且有機(jī)物的生物利用率影響細(xì)菌的生長(zhǎng)。研究了含有不同生源要素的4種溶解有機(jī)物(DOM)在海洋異養(yǎng)細(xì)菌存在下的礦化作用及對(duì)細(xì)菌生長(zhǎng)的影響。結(jié)果表明:添加不同生源要素的有機(jī)物,對(duì)海洋天然異養(yǎng)細(xì)菌的生長(zhǎng)均有促進(jìn)作用,其比生長(zhǎng)速率(μ)的大小順序?yàn)椋篘 >C >P >S >對(duì)照組,說明含氮有機(jī)物更有助于細(xì)菌的生長(zhǎng);細(xì)菌生長(zhǎng)效率(BGE)的大小順序?yàn)椋簩?duì)照組> C > P >N >S,說明細(xì)菌的二次生產(chǎn)跟有機(jī)物的分解速率沒有直接相關(guān)性;單個(gè)細(xì)菌對(duì)有機(jī)物的消耗速率I為:N >C >P >S >對(duì)照組,說明細(xì)菌生長(zhǎng)速率與有機(jī)物消耗速率直接相關(guān);有機(jī)物的生物可利用性順序?yàn)椋篘 >C >P >S >對(duì)照組,與有機(jī)物的消耗速率順序一致。上述結(jié)果表明,具有相同結(jié)構(gòu)但不同生源要素的有機(jī)物的礦化速率存在差異,含氮有機(jī)物最容易分解,其次是含碳有機(jī)物,然后是含磷有機(jī)物,含硫有機(jī)物分解最慢,說明細(xì)菌對(duì)含有不同生源要素有機(jī)物的分解利用存在差異。
關(guān)鍵詞:異養(yǎng)細(xì)菌;溶解有機(jī)物;生源要素;礦化作用
海洋細(xì)菌是海洋生物群落的重要組成部分,與海洋動(dòng)、植物有著密切的關(guān)系,在海洋生態(tài)系統(tǒng)中的物質(zhì)轉(zhuǎn)化,如C、N、S、P等元素的生物循環(huán)中起著重要的作用[1]。眾多研究表明,海洋中有25%—40%的浮游植物初級(jí)生產(chǎn)以溶解有機(jī)物(DOM)的形式被異養(yǎng)細(xì)菌吸收,并通過微食物網(wǎng)向上傳遞給浮游動(dòng)物[2- 3]。相對(duì)DOM的總量而言,其組分結(jié)構(gòu)和可利用程度與細(xì)菌的二次生產(chǎn)有著更為密切的關(guān)系[4]。通過礦化作用,細(xì)菌對(duì)與有機(jī)物密切相關(guān)的生源要素的再生和循環(huán)過程起著重要作用。對(duì)碳而言,浮游細(xì)菌能積累從大氣中固定的碳,通過微食物網(wǎng)進(jìn)入傳統(tǒng)食物鏈,直至海洋深處,從而促進(jìn)碳在全球范圍內(nèi)的循環(huán)[5],在寡營(yíng)養(yǎng)海區(qū),DOC的分解和細(xì)菌生物量的增加有直接的關(guān)系[6],在淡水中也有類似的規(guī)律[7]。有機(jī)物中的不穩(wěn)定組分,如葡萄糖和氨基酸等,在細(xì)菌每天吸收的有機(jī)碳中比例占到10%—30%,甚至更高[8]。因此,這種低分子量的有機(jī)分子是細(xì)菌能量的主要提供者。氮是核酸及蛋白質(zhì)的主要組成成分,是構(gòu)成生物體的必需元素。細(xì)菌的碳氮比較低,因此,它在氮循環(huán)中的功能更為受到重視[9]。磷在海洋中循環(huán)主要是靠生物進(jìn)行的,生物作用是造成海洋磷分布不均的主要因素。海洋環(huán)境中浮游植物只能吸收溶解無機(jī)磷,細(xì)菌能夠利用溶解態(tài)有機(jī)磷,通過細(xì)胞質(zhì)膜外的酶將有機(jī)磷分解為無機(jī)磷[10],然后提供給浮游植物。硫是構(gòu)成生命物質(zhì)所必須的元素,它是一些必需氨基酸、蛋白質(zhì)、多糖、維生素和輔酶的組成成分。硫的氧化過程是由多種化能自養(yǎng)硫細(xì)菌完成的,它的轉(zhuǎn)化是一個(gè)復(fù)雜的過程[11]。由此可見,細(xì)菌對(duì)以上各元素的生物地球化學(xué)循環(huán)都具有重要作用。在天然的海洋環(huán)境中,存在著不同的可溶性有機(jī)物和種類豐富的海洋異養(yǎng)細(xì)菌。不同種類的細(xì)菌可能會(huì)優(yōu)先選擇某一種或者某幾種特定的可溶性有機(jī)物分解利用[6,8],天然海洋中的細(xì)菌可能會(huì)出現(xiàn)只利用有機(jī)物中的氨基、磷基或硫基,而不破壞其他碳鏈的情況,但是還有一部分細(xì)菌可以利用所有類型的可溶性有機(jī)物[8],所以這些細(xì)菌可以繼續(xù)分解那些沒有被破壞的碳鏈。因此,在實(shí)驗(yàn)室條件下,用DOC濃度的變化衡量有機(jī)物的降解是目前常用的方法[5- 6,12]。本論文在實(shí)驗(yàn)室條件下培養(yǎng)天然異養(yǎng)細(xì)菌,研究異養(yǎng)細(xì)菌和含有不同生源要素有機(jī)物的相互作用,討論不同類型有機(jī)物的礦化速率和對(duì)細(xì)菌生長(zhǎng)的影響。
1材料和方法
1.1樣品收集和處理
海水采集時(shí)間為2012年3月,地點(diǎn)為美國(guó)加利福尼亞州圣芭芭拉近岸海水,采樣深度5m。水樣采集后,先用孔徑為3.0μm的聚碳酸酯濾膜過濾,除去浮游藻類,再用0.22μm核孔濾膜過濾,除去細(xì)菌。用8體積除去細(xì)菌的過濾海水和2體積僅除去浮游藻類的海水混合成4L的培養(yǎng)液,置于系列具塞聚四氟乙烯桶中,分別加入不同種類的有機(jī)物,使培養(yǎng)液中的有機(jī)物濃度(以碳計(jì))升高10μmol/L左右,在16℃恒溫條件下避光培養(yǎng)。每個(gè)培養(yǎng)條件平行做雙份。培養(yǎng)液所含有機(jī)物種類及濃度如表1所示。
1.2有機(jī)物分子結(jié)構(gòu)
葡萄糖具有簡(jiǎn)單的碳鏈結(jié)構(gòu),普遍存在于海水中,屬于最易分解的有機(jī)分子之一。為了消除有機(jī)物本身分子結(jié)構(gòu)的影響,選擇了具有葡萄糖基本結(jié)構(gòu)的有機(jī)物。細(xì)菌對(duì)這些有機(jī)物碳鏈部分的分解作用類似,但天然水體中細(xì)菌因其自身生命活動(dòng)需要會(huì)選擇性分解含有不同生源要素的有機(jī)物。天然海水中有機(jī)物種類繁多,本文只考慮了4種有機(jī)分子作為研究對(duì)象(圖1)。有機(jī)試劑均購(gòu)自美國(guó)Sigma公司。
1.3細(xì)菌生物量測(cè)定
采用DAPI(4′6-二脒基- 2-苯基吲哚)染色,熒光顯微鏡計(jì)數(shù),按照文獻(xiàn)12的方法進(jìn)行細(xì)菌生物量的測(cè)定,簡(jiǎn)述如下:
表1 培養(yǎng)體系所含有機(jī)物種類及濃度(以碳計(jì))
圖1 培養(yǎng)液中所添加的有機(jī)物Fig.1 Organic matters added in the bacteria inoculums
1.3.1準(zhǔn)備工作
從接種開始每隔12h取樣對(duì)細(xì)菌生物量進(jìn)行分析。取8mL水樣,加入10%的福爾馬林固定液2mL,置于4℃冰箱中冷藏保存,在3d之內(nèi)測(cè)定完畢。將孔徑為0.22μm的核孔濾膜置于Irgalan Black染料中浸泡15min染色,用于細(xì)菌的過濾。DAPI染液用0.22μm核孔濾膜過濾過的Milli-Q水配制,濃度為20μg/mL,避光冷藏保存。
1.3.2細(xì)菌生物量計(jì)算
取2mL(細(xì)菌生物量少時(shí),為5mL)已固定的水樣到專用濾器中,在<0.07atm負(fù)壓下抽濾到0.5mL,停止抽氣,加入0.5mL DAPI溶液,避光染色3min,繼續(xù)抽濾至干。在載玻片上滴加少量無熒光顯微鏡油,將濾膜取下放在鏡油上,再在濾膜上滴加少量鏡油,蓋上蓋玻片,壓實(shí),編號(hào)之后在專用盒中冷凍保存,用Olympus AX- 70熒光顯微鏡計(jì)數(shù),隨機(jī)均勻選取10個(gè)視野計(jì)數(shù)被染色的細(xì)菌個(gè)體。細(xì)菌豐度(BA)用公式(1)計(jì)算:
(1)
式中,A為10個(gè)視野的平均細(xì)菌數(shù);S1為濾膜的有效過濾面積;S2為視野面積;V為過濾水樣體積。用換算因子15fgC/個(gè)(將每個(gè)細(xì)菌數(shù)換算成碳含量)計(jì)算細(xì)菌生物量(BB)[12](μmolC/L)。
1.4DOC分析
從接種開始定時(shí)取樣,對(duì)培養(yǎng)液中的DOC進(jìn)行分析。采用高溫燃燒法,用島津TOC-VCPH有機(jī)碳自動(dòng)分析儀測(cè)定[12]。為了消除可能存在的玷污,樣品從培養(yǎng)桶中直接取樣到DOC測(cè)樣瓶中。DOC含量包括浮游細(xì)菌中的碳含量,但是浮游細(xì)菌碳含量占DOC的含量較小,因此可以忽略不計(jì)。
2結(jié)果和討論
2.1細(xì)菌生物量和有機(jī)物濃度的變化
由于細(xì)菌的指數(shù)生長(zhǎng)期較短,一般在3d左右,之后由于大量存在的噬菌體攝食,生物量會(huì)出現(xiàn)較大波動(dòng),因此,細(xì)菌生物量監(jiān)測(cè)到第6天。體系中有機(jī)物的分解較緩慢,監(jiān)測(cè)到第15天。細(xì)菌生物量和有機(jī)物濃度隨時(shí)間的變化曲線如圖2所示。由圖2可以看出,在含碳、含氮和含磷有機(jī)物的培養(yǎng)液中,細(xì)菌生長(zhǎng)較快,指數(shù)生長(zhǎng)期結(jié)束時(shí)生物量較大,而對(duì)照組和含硫有機(jī)物體系中細(xì)菌生長(zhǎng)緩慢,最終生物量較小。由有機(jī)物分解曲線可見,雖然有機(jī)物的初始濃度不同,在培養(yǎng)結(jié)束時(shí),DOC濃度均為70μmol/L左右,說明此時(shí)有機(jī)物已經(jīng)比較穩(wěn)定,在短時(shí)間內(nèi)不易分解。
圖2 培養(yǎng)過程中細(xì)菌生物量和有機(jī)物濃度的變化Fig.2 Organic matter concentration and bacteria biomass in the whole cultivation process
2.2細(xì)菌比生長(zhǎng)速率(μ)
細(xì)菌在指數(shù)生長(zhǎng)期的生長(zhǎng)速率用比生長(zhǎng)速率(μ)來表示,按公式(2)進(jìn)行計(jì)算[13]:
(2)
式中,BA0是初始t0時(shí)的細(xì)菌數(shù),BA1為指數(shù)生長(zhǎng)末期t1時(shí)的細(xì)胞數(shù),由圖2可見,大部分體系的指數(shù)生長(zhǎng)末期為第3天,因此,本文選取第3天的生物量和時(shí)間計(jì)算μ值。不同體系中的μ值如表2所示。
表2 不同體系中的比生長(zhǎng)速率值
C- 1和C- 2分別表示含碳有機(jī)物的2個(gè)平行樣,N- 1和N- 2分別表示含氮有機(jī)物的2個(gè)平行樣,以此類推
由表2可以看出,加入含氮有機(jī)物的體系細(xì)菌生長(zhǎng)速率最高(μ=1.26),其次是碳(μ=1.25),二者差異非常??;含磷有機(jī)物體系中細(xì)菌生長(zhǎng)速率(μ=1.16)比含有機(jī)氮和有機(jī)碳的體系要低,但明顯高于含硫有機(jī)物(μ=0.87)和對(duì)照組的細(xì)菌生長(zhǎng)速率(μ=0.78)。比生長(zhǎng)率的高低,反映了細(xì)菌活性的強(qiáng)弱[12],通過結(jié)果中的大小順序,可以看出在含氮和含碳有機(jī)物體系中細(xì)菌活性最強(qiáng)。細(xì)菌比生長(zhǎng)速率可能受到溶解有機(jī)物質(zhì)量、無機(jī)鹽、溫度等各種因素的影響[14],在本文其他因子一致的情況下,有機(jī)物種類不同決定了細(xì)菌的活性,含氮有機(jī)物最能促進(jìn)細(xì)菌的生長(zhǎng),含硫有機(jī)物的促進(jìn)作用最弱,跟對(duì)照組數(shù)值差異不大。
2.3細(xì)菌增長(zhǎng)效率(BGE)
BGE是水生系統(tǒng)中細(xì)菌通過二次生產(chǎn)將DOC轉(zhuǎn)化為自身顆粒有機(jī)物的效率,是一個(gè)描述水體細(xì)菌功能和生態(tài)角色的重要參數(shù)[15- 16],也是評(píng)價(jià)微生物群落碳收支的關(guān)鍵指標(biāo)[17]。該參數(shù)有不同的計(jì)算方法,本文用Carlson等[18]提出的公式(3)進(jìn)行計(jì)算:
(3)
式中,ΔBB為指數(shù)生長(zhǎng)期前后細(xì)菌生物量的變化,ΔDOC為細(xì)菌指數(shù)生長(zhǎng)期前后體系中DOC濃度的變化。由圖2可見,大部分體系在第3天時(shí)能達(dá)到指數(shù)生長(zhǎng)期,因此,本文計(jì)算BGE的公式為:
(4)
式中,BB3和BB0分別為第3天和初始時(shí)細(xì)菌生物量,DOC0和DOC3分別為體系中初始和第3天時(shí)有機(jī)物的含量。該公式的優(yōu)點(diǎn)是可以利用指數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)菌生物量和DOC的數(shù)據(jù),誤差相對(duì)較小,且不需要測(cè)定細(xì)菌呼吸所消耗的碳量。不同體系中BGE的值見表3。
由表2可見,BGE的值從含硫有機(jī)物的24%到對(duì)照組的54%,不同體系有較大的差異。大小順序與細(xì)菌比生長(zhǎng)速率的順序不同,說明細(xì)菌生長(zhǎng)和轉(zhuǎn)化有機(jī)物為自身組織的效率沒有直接的關(guān)系。
作為評(píng)價(jià)微生物群落碳收支的關(guān)鍵指標(biāo)[19],BGE與細(xì)菌本身的生理?xiàng)l件密切相關(guān)。BGE旨在對(duì)異養(yǎng)微生物次級(jí)生產(chǎn)與呼吸代謝兩大生態(tài)過程之間的相對(duì)關(guān)系進(jìn)行綜合比較[20],可以更客觀地反映細(xì)菌生長(zhǎng)過程中對(duì)有機(jī)碳源的利用效率,更有助于了解異養(yǎng)微生物對(duì)微食物網(wǎng)能量流動(dòng)與物質(zhì)循環(huán)的貢獻(xiàn)[19]。研究表明,BGE與多種因素有關(guān)。一般認(rèn)為溫度和營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的可利用性是影響B(tài)GE的最主要影響因子。Lee等認(rèn)為相對(duì)于溫度,底物質(zhì)量是調(diào)控BGE最主要的因子[21],而DOC的濃度高低對(duì)其影響不大[12]。Halewood等研究了圣芭芭拉近岸水體的BGE,結(jié)果顯示,在一年中,BGE最高值出現(xiàn)在12月,為52%,最低值出現(xiàn)在3月,為5%,其大小與海水中DOC濃度沒有相關(guān)性[12]。本文對(duì)照組用同海域的水樣測(cè)得的BGE為54%,比文獻(xiàn)值略高,可能是由于文獻(xiàn)所用培養(yǎng)體系的溫度為12—20℃之間,跟本文固定的16℃恒溫不同導(dǎo)致。另外,由表3可見,在本文溫度、光照和菌種等其他因子完全一致的情況下,只有有機(jī)物的種類不同,而不同體系的BGE有相對(duì)較大的差異,說明不同有機(jī)物轉(zhuǎn)化為細(xì)菌自身組織的比例不同。由結(jié)果可知,相對(duì)于外源有機(jī)物,海洋本身所產(chǎn)生的有機(jī)物更有助于轉(zhuǎn)化為細(xì)菌自身物質(zhì),而含硫有機(jī)物被細(xì)菌的利用效率最低。
表3 不同培養(yǎng)體系中的細(xì)菌增長(zhǎng)效率(BGE)
2.4有機(jī)碳的消耗速率
用2種方法分析了不同有機(jī)物的礦化速率,一種為體系總體情況,一種為單個(gè)細(xì)菌分解有機(jī)物的速率,分別計(jì)算如下。
2.4.1DOC生物可利用性
引用參數(shù)%BDOC表示有機(jī)物分解速率,也可以表示有機(jī)物的生物可利用性[12],用公式(5)計(jì)算:
(5)
圖3 在培養(yǎng)周期內(nèi)有機(jī)物的生物可利用性Fig.3 The bioavailability of different DOC in the whole culture process in various bacterial cultures
式中,CDOC0和CDOC1分別表示培養(yǎng)初期和結(jié)束時(shí)DOC的濃度。計(jì)算結(jié)果如圖3和表4所示。由圖3可見,含氮有機(jī)物分解的最充分,然后是含碳有機(jī)物,含磷和含硫有機(jī)物分解略慢,天然水體中的有機(jī)物分解最慢。
表4 DOC的生物可利用性%BDOC值
%BDOC: 有機(jī)物的生物可利用性bioavailability of DOC
由表4可以看出,含氮有機(jī)物的生物利用性最強(qiáng),分解最快。其次是含碳有機(jī)物,然后是含磷有機(jī)物,天然有機(jī)物的生物可利用性最小。本文所取圣芭芭拉近岸天然海水中DOC濃度在66.6—80.4μmol/L之間,3月時(shí),DOC濃度為(71.5±0.8)μmol/L[12]。Halewood等研究了該海區(qū)DOC的降解速率,結(jié)果表明,在7d內(nèi),DOC濃度降低為69μmol/L,26d時(shí)降低為68μmol/L,降低幅度為4.3%左右[12],跟本文對(duì)照組研究結(jié)果相近。在有外源性有機(jī)物加入的培養(yǎng)體系中,有機(jī)物的增加給細(xì)菌生長(zhǎng)提供了相對(duì)豐富的營(yíng)養(yǎng),導(dǎo)致細(xì)菌生命活動(dòng)加快,從而使有機(jī)物的分解量增加。研究表明,DOM的生物可利用性與其來源和性質(zhì)有密切的關(guān)系[22],同時(shí)與水體中可能存在的無機(jī)營(yíng)養(yǎng)鹽有關(guān)[23- 24]。在本文其他條件均一致的情況下,有機(jī)分子的生源要素組成成為影響其生物可利用性的唯一因子。在海水中各元素相對(duì)平衡的條件下,加上外源有機(jī)物后,其降解要同時(shí)伴隨著N的參與,因此含氮有機(jī)物的降解速率更快一些,其生物利用性也最高。
2.4.2有機(jī)碳的平均消耗速率
為了消除體系中細(xì)菌總量對(duì)分解有機(jī)物的影響,參照營(yíng)養(yǎng)鹽在藻類生長(zhǎng)過程中的吸收速率[25- 26],提出單個(gè)細(xì)菌對(duì)有機(jī)碳的消耗速率公式:
(6)
式中,I為單個(gè)細(xì)胞對(duì)有機(jī)碳的消耗速率(μmol 個(gè)-1d-1);C0、C1分別為起始和指數(shù)生長(zhǎng)期結(jié)束時(shí)的DOC濃度(μmol/L),t0、t1分別為起始和指數(shù)生長(zhǎng)期結(jié)束時(shí)的時(shí)間,B(個(gè)/L)為指數(shù)生長(zhǎng)期間細(xì)菌豐度的平均含量,用公式(7)計(jì)算:
(7)
式中,B0和B1分別為起始和指數(shù)生長(zhǎng)期時(shí)的細(xì)菌豐度(個(gè)/L)。
不同體系中單個(gè)細(xì)菌對(duì)有機(jī)碳的消耗速率如表5所示。通過表5可以看出,在有外源性有機(jī)物添加的體系中,含氮有機(jī)物的平均消耗速率最高,含硫有機(jī)物的平均消耗速率最低,與細(xì)菌比生長(zhǎng)速率和有機(jī)物消耗百分?jǐn)?shù)的大小順序一致,表明含有不同生源要素的有機(jī)物對(duì)細(xì)菌生長(zhǎng)的促進(jìn)作用有差異,從而造成有機(jī)物本身的礦化作用速率不同。其中,含氮有機(jī)物最容易被細(xì)菌吸收利用,同時(shí)礦物作用速率也最快,含硫有機(jī)物則相反。
表5 不同體系中單個(gè)細(xì)菌對(duì)有機(jī)碳的消耗速率
3結(jié)論
由以上結(jié)果和分析可見,含有不同生源要素的有機(jī)物會(huì)對(duì)異養(yǎng)細(xì)菌的生長(zhǎng)產(chǎn)生不同的影響,其中,含氮有機(jī)物對(duì)細(xì)菌生長(zhǎng)的促進(jìn)作用最明顯,其生物利用性最強(qiáng),分解速率也最快,其次是含磷有機(jī)物,含硫有機(jī)物對(duì)細(xì)菌生長(zhǎng)的促進(jìn)作用最弱,分解速率也最慢,生物利用性最低??梢?,天然水體中的有機(jī)物種類和細(xì)菌成長(zhǎng)密切相關(guān),但細(xì)菌生長(zhǎng)效率與有機(jī)物種類關(guān)系不大。
參考文獻(xiàn)(References):
[1]陳碧鵑, 李秋芬, 陳聚法, 馬紹賽, 崔毅, 辛福言. 乳山灣東流區(qū)細(xì)菌數(shù)量的分布及與環(huán)境因子關(guān)系的研究. 海洋水產(chǎn)研究, 1997, 18(2): 79- 85.
[2]Cheerier J, Bauer J E, Druffel E R M. Utilization and turnover of labile dissolved organic matter by bacterial heterotrophs in eastern North Pacific surface waters. Marine Ecology-Progress Series, 1996, 139: 267- 279.
[3]孫書存, 陸健健. 微型浮游生物生態(tài)學(xué)研究概述. 生態(tài)學(xué)報(bào), 2001, 21(2): 302- 308.
[4]Uwe Münster, Ryszard J Chróst. Origin, composition, and microbial utilization of dissolved organic matter // Overbeck J, Chróst R J, eds. Aquatic Microbial Ecology: Biochemical and Molecular Approaches. New York: Springer-Verlag, 1990: 8- 46.
[5]Craig A Carlson, Dennis A Hansell, Norman B Nelson, David A Siegel, William M Smethie, Samar Khatiwala, Meredith M Meyers, Elisa Halewood. Dissolved organic carbon export and subsequent remineralization in the mesopelagic and bathypelagic realms of the North Atlantic basin. Deep Sea Research Part II: Topical Studies in Oceanography, 2010, 57(16): 1433- 1445.
[6]Craig E Nelson, Craig A Carlson. Tracking differential incorporation of dissolved organic carbon types among diverse lineages of Sargasso Sea bacterioplankton. Environmental Microbiology, 2012, 14(6): 1500- 1516.
[7]Masanori Fujii, Hisaya Kojima, Tomoya Iwata, Jotaro Urabe, Manabu Fukui. Dissolved organic carbon as major environmental factor affecting bacterioplankton communities in mountain lakes of Eastern Japan. Microbial Ecology, 2012, 63(3): 496- 508.
[8]Laura Gomez-Consarnau, Markus V Lindh, Josep M Gasol, Jarone Pinhassi. Structuring of bacterioplankton communities by specific dissolved organic carbon compounds. Environmental Microbiology, 2012, 19(4): 2361- 2378.
[9]David L Kirchman, Richard G Keel, Meinhard Simon, Nicholas A Welschmeyer. Biomass and production of heterotrophic bacterioplankton in the oceanic subarctic pacific. Deep Sea Research PartⅠ: Oceanographic Research Papers, 1993, 40(5): 967- 988.
[10]Karin Bj?rkmen, David W Karl. Bioavailability of inorganic and organic phosphorus compounds to natural assemblages of microorganisms in Hawaiian coastal waters. Marine Ecology Progress Series, 1994, 111: 265- 273.
[11]張曉華. 海洋微生物學(xué). 青島: 中國(guó)海洋大學(xué)出版社, 2007.
[12]Elisa R Halewood, Craig A Carlson, Mark A Brzezinski, Daniel C Reed, Jo Goodman. Annual cycle of organic matter partitioning and its availability to bacteria across the Santa Barbara Channel continental shelf. Aquatic Microbial Ecology, 2012, 67: 189- 209.
[13]李洪波, 肖天, 趙三軍, 岳海東. 海洋異養(yǎng)浮游細(xì)菌參數(shù)的測(cè)定和估算. 海洋科學(xué), 2005, 29(2): 58- 63.
[14]Nelson D Sherry, Philip W Boyd, Kugako Sugimoto, Paul J Harrison. Seasonal and spatial patterns of heterotrophic bacterial production, respiration, and biomass in the subarctic NE Pacific. Deep Sea Research PartⅡ: Topical Studies in Oceanography, 1999, 46(11- 12): 2557- 2578.
[15]Enora Briand, Olivier Pringault, Séverine Jacquet, Jean-Pascal Torrtéon. The use of oxygen microprobes to measure bacterial respiration for determining bacterioplankton growth efficiency. Limnology and Oceanography, 2004, 2: 406- 416.
[16]Ram A S P, Nair S, Chandramohan D. Bacterial growth efficiency in the tropical estuarine and coastal waters of Goa, southwest coast of India. Microbial Ecology, 2003, 45(1): 88- 96.
[17]Paul A del Giorgio, Jonathan J Cole. Bacterial growth efficiency in natural aquatic systems. Annual Review of Ecology and Systematics, 1998, 29: 503- 541.
[18]Craig A Carlson, Hugh W. Ducklow. Growth of bacterioplankton and consumption of dissolved organic carbon in the Sargasso Sea. Aquatic Microbial Ecology, 1996, 10: 69- 85.
[19]王生福, 宋星宇, 黃良民, 譚燁輝. 海洋浮游細(xì)菌生長(zhǎng)效率研究進(jìn)展. 海洋科學(xué), 2012, 36(5): 130- 138.
[20]Paul A del Giorgio, Jonathan J Cole, André Cimbleris. Respiration rates in bacteria exceed phytoplankton production in unproductive aquatic systems. Nature, 1997, 385(6612): 148- 151.
[21]Choon Weng Lee, Chui Wei Bong, Yiisiang Hii. Temporal variation of bacterial respiration and growth efficiency in tropical coastal waters. Applied and Environmental Microbiology, 2009, 75(24): 7594- 7601.
[22]Michael W Lomas, Nicholas R Bates. Potential controls on interannual partitioning of organic carbon during the winter/spring phytoplankton bloom at the Bermuda Atlantic time-series study (BATS) site. Deep Sea Research Part I: Oceanographic Research Papers, 2004, 51(11): 1619- 1636.
[23]Rainer M W Amon, Ronald Benner. Bacterial utilization of different size classes of dissolved organic matter. Limnology and Oceanography, 1996, 41(1): 41- 51.
[24]Rainer M W Amon, Hans-Peter Fitznar, Ronald Benner. Linkages among the bioreactivity, chemical composition, and diagenetic state of marine dissolved organic matter. Limnology and Oceanography, 2001, 46(2): 287- 297.
[25]Christine Ferrier-Pagès, Markus Karner, Fereidoun Rassoulzadegan. Release of dissolved amino acids by flagellates and ciliates grazing on bacteria. Oceanologica Acta, 1998, 21(3): 485- 494.
[26]白潔, 張昊飛, 李巋然, 孫靖. 海洋異養(yǎng)浮游細(xì)菌生物量及生產(chǎn)力的制約因素. 中國(guó)海洋大學(xué)學(xué)報(bào): 自然科學(xué)版, 2004, 34(4): 594- 602.
Mineralization of different dissolved organic matter containing various biogenic elements by natural bacteria in seawater
TAN Liju1, XIAO Hui2, Craig A. CARLSON3, WANG Jiangtao1,*
1CollegeofChemistryandChemicalEngineering,OceanUniversityofChina,Qingdao266100,China
2CollegeofMarineLifeSciences,OceanUniversityofChina,Qingdao266003,China
3Ecology,EvolutionandMarineBiology,UniversityofCalifornia,SantaBarbara,CaliforniaCA93106-6150,USA
Abstract:Heterotrophic bacteria in seawater play an important role in biogeochemical cycling of biogenic elements. The decomposition rate of different dissolved organic matter (DOM) is related to the amount of heterotrophic bacteria, and the biological utilization ratio of DOM influences the growth of bacteria. In this study, mineralization and the effect of four kinds of DOM with similar structure but different biogenic elements on bacterial growth were investigated. The results suggested that organic matter added to cultures promoted the growth of natural marine heterotrophic bacteria, and the order of specific growth rate (μ) was as follows: N > C > P > S > control. DOM with nitrogen and carbon was the most effective in accelerating the growth of bacteria. The order of bacterial growth efficiency was as follows: Control > C > P > N > S; these results indicated that bacterial secondary production has no direct correlation with the decomposition rate of organic matter. The consumption rate of organic matter per individual bacterium (I) was in the following order: N > C > P > S > control, which was the same for biological availability of different organic matter. These results suggested that the mineralization rate is different for various organic matters having similar structure but different biogenic elements. The organic matter with nitrogen was decomposed most easily, followed by carbonaceous organic matter and organic phosphorus, but organic sulfur remained somewhat refractory to decomposition.
Key Words:heterotrophic bacteria; dissolved organic matter; biogenic element; mineralization
DOI:10.5846/stxb201408291720
*通訊作者Corresponding author.E-mail: jtwang@ouc.edu.cn
收稿日期:2014- 08- 29;
修訂日期:2015- 06- 01
基金項(xiàng)目:國(guó)家海洋局海洋生態(tài)環(huán)境科學(xué)與工程重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室開放基金(MESE- 2014-03)
譚麗菊,肖慧,Craig A. Carlson,王江濤.海水中天然細(xì)菌對(duì)不同生源要素有機(jī)物的礦化作用.生態(tài)學(xué)報(bào),2016,36(1):77- 85.
Tan L J, Xiao H, Craig A. Carlson, Wang J T.Mineralization of different dissolved organic matter containing various biogenic elements by natural bacteria in seawater.Acta Ecologica Sinica,2016,36(1):77- 85.