王華僑,李天明,羅宏武
中南大學(xué)湘雅三醫(yī)院普通外科,湖南 長沙410013
門脈高壓性胃病(portal hypertensive gastropathy,PHG)是指門脈高壓癥伴發(fā)的胃黏膜非炎癥病變,是上消化道出血的重要原因之一,嚴(yán)重時危及生命。PHG 的發(fā)病機(jī)制十分復(fù)雜,目前認(rèn)為是多因素、多種作用機(jī)制共同參與并相互作用形成的。NO 在PHG的發(fā)生、發(fā)展中發(fā)揮了關(guān)鍵作用[1]。有研究表明,PHG大鼠模型中胃黏膜組織內(nèi)NO 含量明顯增高[2]。NO由一氧化氮合酶合成,包括組織型一氧化氮合酶(constitutive nitric oxide synthase,cNOS)和誘導(dǎo)型一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase,iNOS)。參與致病的NO 則主要由iNOS 合成[3]。他汀類藥物是3-羥-3-甲基戊二酸單酰輔酶A 還原酶抑制劑,除了其降脂作用外,近年研究發(fā)現(xiàn)他汀類藥物能夠抑制iNOS,減少NO 的產(chǎn)生[4-5]。目前國內(nèi)外尚未見他汀類藥物治療PHG 的相關(guān)報道,本文擬通過動物實驗研究辛伐他汀對大鼠PHG 的作用并探討其可能機(jī)制,為藥物治療PHG 提供一種新方法。
1.1 主要試劑、儀器和實驗對象 辛伐他汀購自山東魯抗醫(yī)藥集團(tuán)賽特有限責(zé)任公司(產(chǎn)品批號:130101);BCA 蛋白濃度測定試劑盒,購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司;一氧化氮合成酶試劑盒(分型)、一氧化氮測定試劑盒(硝酸還原法)購自南京建成生物工程研究所;健康雄性Wistar 大鼠40 只,SPF 級,體質(zhì)量220 ~250 g,購自中南大學(xué)湘雅醫(yī)學(xué)院實驗動物學(xué)部;組織勻漿機(jī)、MIAS-2000 圖像分析系統(tǒng)、TV-1901雙光束紫外可見光分光光度計、奧林巴斯BX51 光學(xué)顯微鏡、日立7600 全自動生化分析儀由中南大學(xué)湘雅醫(yī)學(xué)院實驗中心提供。
1.2 方法
1.2.1 動物分組和模型制備:健康雄性Wistar 大鼠40 只,隨機(jī)分為假手術(shù)組(SO 組,n =14)、結(jié)扎組(LIG 組,n=14)、辛伐他汀治療組(SVS 組,n =12)。LIG 組和SVS 組造模方法采用門靜脈主干部分結(jié)扎+左腎上腺靜脈結(jié)扎法,2 周后即可形成PHG 大鼠模型[6]。SO 組僅分離門靜脈和左側(cè)腎上腺靜脈及周圍血管而不結(jié)扎,余操作同結(jié)扎組。各實驗組大鼠關(guān)腹術(shù)后5 d 內(nèi)常規(guī)肌注青霉素注射液200 000 U/d。
1.2.2 給藥方法和標(biāo)本采集:造模2 周后對SVS 組大鼠予以辛伐他汀(20 mg/kg)溶于水后灌胃,同時SO組和LIG 組給予等量生理鹽水,1 次/d,持續(xù)4 周。于造模后2 周從SO 組和LIG 組大鼠中隨機(jī)抽取3 只,測定門靜脈壓力(portal pressure,PP)值。PP 值測定后,處死大鼠完整摘除胃,經(jīng)10%甲醛固定30 min 后,沿胃大彎剪開胃,生理鹽水清洗胃黏膜黏液及血跡,肉眼下觀察胃黏膜損傷程度。
1.2.3 PP 值測定:大鼠經(jīng)乙醚麻醉后沿腹中線進(jìn)腹,切口長約5 cm,找到腸系膜上靜脈與脾靜脈匯合點上方,將一充滿肝素鈉生理鹽水的5 號靜脈輸液套管針逆行穿刺刺入門靜脈,然后拔出針芯。固定套管針后,以大鼠右心房為“0”點測量門靜脈壓力,PP 值>16 cm H2O 可診斷為大鼠門脈高壓癥[7]。
1.2.4 胃黏膜形態(tài)學(xué)觀察:給藥4 周后,處死并采集各組大鼠胃黏膜,采集方法同前,分別在肉眼和光學(xué)顯微鏡下觀察胃黏膜損傷程度。另外取部分胃底組織于甲醛液中固定,常規(guī)石蠟包埋,連續(xù)4 μm 切片行HE染色,其余標(biāo)本液氮凍存。
1.2.5 黏膜下層毛細(xì)血管面積和最大直徑測定:光學(xué)顯微鏡下對胃底組織HE 染色切片,應(yīng)用計算機(jī)輔助圖像分析系統(tǒng)檢測和統(tǒng)計黏膜下毛細(xì)血管面積和最大直徑[8]。每張切片各隨機(jī)選擇5 個視野(100)測定胃底黏膜下血管最大直徑和面積,結(jié)果取其平均值。
1.2.6 胃黏膜組織iNOS、cNOS 活性及NO 含量測定:取出液氮凍存標(biāo)本并復(fù)溫,分析天平稱取0.2 g胃底組織,于冰鹽水洗凈血跡。加入生理鹽水制備重量體積比為10%組織勻漿,高速冷凍離心機(jī)4 000 r/min離心10 min,保留上清液棄去沉淀,取部分上清液用BCA 法測定蛋白質(zhì)含量。其余部分用于cNOS、iNOS活性和NO 濃度的測定。測定方法依據(jù)一氧化氮合成酶試劑盒(分型)及一氧化氮測定試劑盒(硝酸還原法)說明書操作。
1.3 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS 16.0 軟件包進(jìn)行統(tǒng)計分析,數(shù)據(jù)以±s 表示,符合正態(tài)分布資料采用單因素方差分析(ANOVA)檢驗;若為非正態(tài)分布資料則采用Games-Howell 檢驗。P <0. 05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 造模情況 大鼠經(jīng)造?;蚣偈中g(shù)后,術(shù)后前2 d狀態(tài)欠佳,活動量及進(jìn)食量較少,3 d 后恢復(fù)正?;顒雍惋嬍场IG 組大鼠造模術(shù)后死亡1 只,考慮為手術(shù)操作時間較長,麻醉過深所致。SVS 組大鼠在辛伐他汀灌胃期間死亡1 只,為灌胃數(shù)分鐘內(nèi)死亡,考慮為藥物誤入氣管窒息所致。造模后第2 周測定結(jié)果SO 組大鼠PP 值分別為10. 4 cmH2O、10. 7 cmH2O 和11.2 cmH2O,LIG 組大鼠PP 值分別為23.3 cmH2O、23.1 cmH2O 和24.2 cmH2O。胃大體標(biāo)本可見SO 組大鼠胃黏膜皺襞光滑,無黏膜充血水腫及出血點、糜爛及壞死;LIG 組大鼠胃黏膜充血水腫及廣泛糜爛、出血點(見圖1),提示造模成功。
2.2 PP 值 LIG 組大鼠平均PP 值(24.26 ± 2.14)cmH2O 較SO 組(10.35 ± 1.32)cmH2O 顯著增加(P <0.01),SVS 組的平均PP 值(18.33 ± 2.11)cmH2O 較LIG 組明顯下降(P <0. 01),但仍高于SO 組(P <0.01)。
2.3 胃黏膜形態(tài)學(xué)觀察 大鼠處死后,胃大體形態(tài)觀察可見SO 組大鼠胃黏膜光滑,未見散在出血點、黏膜下充血水腫及毛細(xì)血管擴(kuò)張;LIG 組大鼠可見廣泛胃黏膜充血、糜爛,局部小潰瘍形成伴點狀出血;SVS組以上病變較LIG 組減輕(見圖2);HE 染色可見LIG組黏膜上皮細(xì)胞脫落,毛細(xì)血管迂曲擴(kuò)張,充血明顯,黏膜下層水腫增厚;SVS 組病變較LIG 組緩解(見圖3)。
圖1 造模2 周胃大體標(biāo)本 A:SO 組;B:LIG 組Fig 1 Gross morphology of gastric mucosa of rats after modeling for 2 weeks A:SO group;B:LIG group
圖2 各組大鼠胃黏膜大體形態(tài) A:SO 組;B:LIG 組;C:SVS 組Fig 2 Gross morphology of gastric mucosa of rats in different groups A:SO group;B:LIG group;C:SVS group
注:箭頭所示為黏膜下血管。圖3 各組大鼠胃黏膜HE 染色(100 ×) A:SO 組;B:LIG 組;C:SVS 組Fig 3 HE stain of gastric mucosa of rats in different groups (100 ×) A:SO group;B:LIG group;C:SVS group
2.4 藥物對胃黏膜下血管的影響 LIG 組黏膜下毛細(xì)血管面積和最大直徑較SO 組明顯增多(P <0.01),SVS 組黏膜下毛細(xì)血管面積和最大直徑較LIG 組減少(P <0.01),但仍高于SO 組(P <0.01,見表1)。
表1 各組大鼠胃黏膜下層血管面積、最大直徑比較(±s)Tab 1 Comparison of the area and maximum diameter of gastric mucosal capillaries of rats in each group (±s)
表1 各組大鼠胃黏膜下層血管面積、最大直徑比較(±s)Tab 1 Comparison of the area and maximum diameter of gastric mucosal capillaries of rats in each group (±s)
注:與SO 組比較,★P <0.01;與LIG 組比較,▲P <0.01 。
SO 組★▲
2.5 胃黏膜組織的iNOS、cNOS 活性測定及NO 含量測定 LIG 組胃壁組織中iNOS 的活性和NO 的含量顯著高于SO 組(P <0.01);SVS 組iNOS 的活性和NO 含量明顯低于LIG 組,但仍高于SO 組(P <0.01,見表2)。
表2 各組大鼠胃黏膜組織iNOS、cNOS 活性及NO 含量(±s)Tab 2 Constitutive nitric oxide synthase activity,inducible nitric oxide synthase activity and NO content of the gastric mucosal tissue of rats in each group (±s)
表2 各組大鼠胃黏膜組織iNOS、cNOS 活性及NO 含量(±s)Tab 2 Constitutive nitric oxide synthase activity,inducible nitric oxide synthase activity and NO content of the gastric mucosal tissue of rats in each group (±s)
注:與SO 組比較,★P <0.01;與LIG 組比較,▲P <0.01。
組別 只數(shù)cNOS 活性(U/mg)iNOS 活性(U/mg)NO 含量(μmol/g)11 0.568 ± 0.104 0.106 ± 0.025 0.612 ± 0.106 LIG 組10 0.895 ± 0.113★ 0.712 ± 0.108★ 2.660 ± 0.431★SVS 組11 0.706 ± 0.116★▲0.332 ± 0.084★▲1.686 ± 0.145 SO 組★▲
PHG 表現(xiàn)為胃黏膜淤血、水腫和糜爛,呈馬賽克或蛇皮樣改變。目前研究認(rèn)為NO 參與了PHG 的形成[1]。NO 的強(qiáng)力擴(kuò)張血管作用引起胃黏膜微循環(huán)障礙并作為自由基引發(fā)脂質(zhì)過氧化損傷胃黏膜。cNOS合成生理狀態(tài)的NO,調(diào)節(jié)各種生理功能;iNOS 在生理狀態(tài)不表達(dá),受到如TNF-α、內(nèi)毒素等刺激時大量合成非生理濃度的NO,對細(xì)胞產(chǎn)生損害作用。門靜脈高壓所致門-體分流引起內(nèi)毒素血癥,刺激TNF-α、IFNγ、ET-1 等細(xì)胞因子大量產(chǎn)生,可刺激胃黏膜iNOS 的表達(dá)及活性明顯增強(qiáng)[3],使局部NO 合成增加,形成惡性循環(huán)。另外,過量NO 還可破壞胃黏膜的防御機(jī)制[9]。
他汀類藥物具有諸多非降脂作用。研究發(fā)現(xiàn)他汀類藥物可抑制iNOS,減少NO 生成[4-5],明顯降低TNF-α 和IFN-γ 誘導(dǎo)的iNOS 的水平[10];抑制血小板的黏附與聚集,預(yù)防心血管血栓形成,其機(jī)制可能與其上調(diào)cNOS mRNA 表達(dá),增加NO 含量有關(guān)[11];保持內(nèi)皮細(xì)胞表面光滑完整,調(diào)節(jié)微循環(huán)及白細(xì)胞相互作用[12];顯著降低內(nèi)毒素休克大鼠血漿過量的NO,恢復(fù)血管反應(yīng)性[13]。本研究表明,與SO 組相比,LIG 組大鼠PP 值、胃黏膜病變、胃黏膜組織內(nèi)iNOS 活性及NO含量均出現(xiàn)明顯的增高,提示iNOS 過度激活,NO 大量產(chǎn)生,并對胃黏膜產(chǎn)生了明顯的損傷作用,與以往報道一致[14-15]。SVS 組與LIG 組比較,各項指標(biāo)均有不同程度改善,胃黏膜組織iNOS 活性及NO 的含量均下降明顯,表明辛伐他汀對大鼠PHG 有治療作用,其機(jī)制與降低胃黏膜iNOS 活性、減少NO 的過量產(chǎn)生有關(guān)。同時,實驗還發(fā)現(xiàn),LIG 組cNOS 活性較SO 組明顯增加,這是機(jī)體對損傷因素的一種自我保護(hù)機(jī)制。SVS 組iNOS 活性及NO 的含量下降后,cNOS 活性也伴有不同程度降低,提示機(jī)體可根據(jù)損傷因素強(qiáng)弱程度自主調(diào)節(jié)cNOS 活性,使其在新的狀態(tài)下達(dá)到平衡。在本研究中,與SO 組相比,LIG 組的iNOS 活性增高約6 倍,cNOS 僅增高約50%,LIG 組cNOS 和iNOS 活性相對比例失衡,使破壞因素相對增強(qiáng),加重了胃黏膜損傷;而給予辛伐他汀治療后,則在一定程度上糾正了這種失衡。另外,iNOS 催化合成NO 的能力較cNOS大,但當(dāng)cNOS 催化合成的微量NO 上調(diào),則有利于內(nèi)皮功能的恢復(fù)[16],由此推測cNOS 和iNOS 及其相應(yīng)產(chǎn)物可能通過不同的代謝途徑和作用機(jī)制參與細(xì)胞病理生理過程。SVS 組各測量指標(biāo)尚未完全恢復(fù)正常,一方面提示PHG 病變是由多因素、多種發(fā)病機(jī)制共同作用形成的,NO 含量、iNOS 活性的增加及cNOS 和iNOS 活性相對比例的失衡在PHG 發(fā)病中發(fā)揮了重要作用,但并非唯一因素;另一方面可能與辛伐他汀給藥時間過短有關(guān),有待進(jìn)一步研究。
總之,本研究表明辛伐他汀對PHG 模型大鼠胃黏膜具有一定保護(hù)作用,其機(jī)制可能是通過降低胃黏膜iNOS 活性、減少NO 的過量產(chǎn)生及恢復(fù)iNOS 與cNOS活性的相對平衡有關(guān)。
[1] Ohta M,Yamaguchi S,Gotoh N,et al. Pathogenesis of portal hypertensive gastropathy:a clinical and experimental review[J]. Surgery,2002,131(1 Suppl):S165-S170.
[2] Marques C,Mauriz JL,Simonetto D,et al. Glutamine prevents gastric oxidative stress in an animal model of portal hypertension gastropathy[J].Ann Hepatol,2011,10(4):531-539.
[3] Helmer KS,West SD,Chang L,et al. Gastric nitric oxide synthase expression during endotoxemia:implications in mucosal defense in rats[J].Gastroenterology,2002,123(1):173-186.
[4] Madonna R,Di Napoli P,Massaro M,et al. Simvastatin attenuates expression of cytokine-inducible nitric-oxide synthase in embryonic cardiac myoblasts[J]. J Biol Chem,2005,280(14):13503-13511.
[5] Dobashi K,Araki S,Kubo K,et al. Hydroxymethylglutaryl-CoA reductase inhibitor inhibits induction of nitric oxide synthase in 3T3-L1 preadipocytes[J]. Life Sci,2008,82(1-2):85-90.
[6] Zhang R,Liu XY. Effect of losartan on portal hypertensive gastropathy in rats[J]. J Cent Couth Univ (Med Sci),2007,32(3):494-497.張瑞,劉潯陽. 洛沙坦在大鼠門脈高壓性胃病中的作用[J]. 中南大學(xué)學(xué)報(醫(yī)學(xué)版),2007,32(3):494-497.
[7] Schneider AR,Benz C,Adamek HE,et al. Minilaparoscopy versus conventional laparoscopy in the diagnosis of hepatic diseases[J]. Gastrointest Endosc,2001,53(7):771-775.
[8] Huo LJ,Xu DY. Histological and ultrastructual studies on colonic mucosa of patients and rats with cirrhotic portal hypertension[J]. Chin J Dig,1996,16(6):336-338.霍麗娟,徐大毅. 肝硬化門脈高壓病人及大鼠結(jié)腸粘膜的光電鏡觀察[J]. 中華消化雜志,1996,16(6):336-338.
[9] Baatar D,Kitano S,Yoshida T,et al. The role of nitric oxide in the inhibition of gastric epithelial proliferation in portal hypertensive rats[J].J Hepatol,1999,30(6):1099-1104.
[10] Wagner AH,Schwabe O,Hecker M. Atorvastatin inhibition of cytokine-inducible nitric oxide synthase expression in native endothelial cells in situ[J]. Br J Pharmacol,2002,136(1):143-149.
[11] Yokoyama S,Ikeda H,Haramaki N,et al. HMG-CoA reductase inhibitor protects against in vivo arterial thrombosis by augmenting platelet-derived nitric oxide release in rats[J]. J Cardiovasc Pharmacol,2005,45(4):375-381.
[12] Scalia R,Stalker TJ. Microcirculation as a target for the anti-inflammatory properties of statins[J]. Microcirculation,2002,9(6):431-442.
[13] Giusti-Paiva A,Martinez MR,F(xiàn)elix JV,et al. Simvastatin decreases nitric oxide overproduction and reverts the impaired vascular responsiveness induced by endotoxic shock in rats[J]. Shock,2004,21(3):271-275.
[14] Kawanaka H,Kinjo N,Anegawa G,et al. Abnormality of the hepatic vein waveforms in cirrhotic patients with portal hypertension and its prognostic implications[J]. J Gastroenterol Hepatol,2008,23(7 Pt 2):e129-e136.
[15] Ei-Newihi HM,Kanji VK,Mihas AA. Activity of gastric mucosal nitric oxide synthase in portal hypertensive gastropathy[J]. Am J Gastroenterol,1996,91(3):535-538.
[16] Xian HT,Yao HG,Zhang YL. Effects of statins on the nitric oxide synthase during sepsis[J]. China Tropical Medicine,2008,8(3):487-489.冼海濤,姚華國,張媛莉. 他汀類藥物對膿毒癥一氧化氮合酶的影響[J]. 中國熱帶醫(yī)學(xué),2008,8(3):487-489.