(中南民族大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,湖北武漢430074)
谷氨酰胺轉(zhuǎn)胺酶(transglutaminase,TG),即蛋白質(zhì)-谷氨酸-γ-谷氨酰胺基轉(zhuǎn)移酶(EC2.3.2.13),可以催化蛋白質(zhì)和氨基酸之間交聯(lián)、蛋白分子內(nèi)谷氨酰胺基的水解以及蛋白分子內(nèi)及分子間的連接,可以改善食品結(jié)構(gòu)、提高食品彈性、保持食品營養(yǎng)。TG 可從植物、動(dòng)物、微生物中獲得[1-2],其中微生物來源的谷氨酰胺轉(zhuǎn)胺酶(MTG)是TG 獲取的主要渠道。酶修飾法反應(yīng)條件溫和、副作用少、作用快捷安全,廣泛應(yīng)用于食品改造[3]。因此,MTG 作為一種新型的食品添加劑,在改造及生產(chǎn)新型蛋白食品方面具有良好的發(fā)展前景[4]。
蛋白質(zhì)三維結(jié)構(gòu)模型的確定和分析在酶促反應(yīng)、突變分析、蛋白質(zhì)復(fù)合物和酶活位點(diǎn)的界面相互作用分析等方面有著重要的作用。但蛋白質(zhì)序列數(shù)據(jù)庫中多肽記錄的數(shù)量與結(jié)構(gòu)數(shù)據(jù)庫中結(jié)構(gòu)記錄的數(shù)量都很少,需要發(fā)展計(jì)算機(jī)預(yù)測(cè)方法來預(yù)測(cè)蛋白質(zhì)的三維結(jié)構(gòu)。目前,三維結(jié)構(gòu)的主要預(yù)測(cè)方法有:比較建模(comparative modeling,CM)、穿線(threading)及自由建模(free modeling)。其中比較建模法是最為成功的方法,它是利用相似性的已知結(jié)構(gòu)來預(yù)測(cè)未知序列的三維結(jié)構(gòu),而常用的就是利用網(wǎng)絡(luò)直接搜索PDB數(shù)據(jù)庫和SWISS-MODEL服務(wù)器。
作者在此根據(jù)分離得到的吸水鏈霉菌的MTG 基因,預(yù)測(cè)其三維結(jié)構(gòu),確定其酶活中心,并構(gòu)建定點(diǎn)突變體。
1.1.1 菌株及載體
吸水鏈霉菌(Streptomycessp.)H197菌株、質(zhì)粒pET-22b(+)、E.coliBL21(DE3),中南民族大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院生物工程實(shí)驗(yàn)室;pMD19-T,TaKaRa公司。
1.1.2 培養(yǎng)基
LB液體培養(yǎng)基:NaCl 1%,胰蛋白胨1%,酵母提取物0.5%,pH 值7.0。
高氏一號(hào)固體培養(yǎng)基:可溶性淀粉2%,MgSO4·7H2O 0.05%,NaCl 0.05%,KNO30.1%,K2HPO40.05%,瓊脂2.5%,pH 值7.2~7.4。
發(fā)酵培養(yǎng)基:葡萄糖2.5%,蛋白胨2.5%,酵母膏0.5%,K2HPO40.2%,KH2PO40.2%,MgSO4·7H2O 0.2%,CaCO30.5%,pH 值7.0。
1.1.3 試劑
BamHⅠ、HindⅢ、Amp+、Ex-Taq 酶、pfu酶,TaKaRa 公司;凝膠回收試劑盒,Axygen 公司;DL2000DNA marker、λHindⅢ,BBI公司;其它試劑均為國產(chǎn)分析純。
1.1.4 引物
引物由上海生工生物工程有限公司合成,測(cè)序由擎科生物公司完成。擴(kuò)增引物f1(正向)、f2(反向)及加酶切位點(diǎn)的擴(kuò)增引物F1(正向)、F2(反向)由DNAMAN5.0設(shè)計(jì),突變引物R1(正向)、R2(反向)為PrimerX 在線設(shè)計(jì),R1和R2是兩條互補(bǔ)的引物,在互補(bǔ)區(qū)域內(nèi)引入突變位點(diǎn)。
f1:5′-ATCCATGTACAAACGCCGGAGATT-3′f2:5′-CTTACGGCCAGCCCTGCTT-3′
F1:5′-CGAGGATCCATGTACAAACGCCGGAGATT-3′(下劃線為BamHⅠ酶切位點(diǎn))
F2:5′-CGCAAGCTTACGGCCAGCCCTGCTT-3′(下劃線為HindⅢ酶切位點(diǎn))
R1:5′-CAAAACCATATGGACCAAA·GCCAACCACTATCACG-3′(“·”標(biāo)記為突變位點(diǎn))
R2:5′-CGTGATAGTGGTTGGCTTTGGTCCATATGGTTTTG-3′(“·”標(biāo)記為突變位點(diǎn))
1.2.1 目的基因片段的獲得
將實(shí)驗(yàn)室-70 ℃保藏的吸水鏈霉菌H197 在高氏一號(hào)固體培養(yǎng)基上30 ℃培養(yǎng)3~4d;挑取單菌落,接種到5 mL LB 液體培養(yǎng)基中,于30 ℃、200r·min-1培養(yǎng)3~5d;再挑取單菌落,接種到20mL發(fā)酵培養(yǎng)基上進(jìn)行擴(kuò)大培養(yǎng),于30℃、200r·min-1培養(yǎng)4~5d[5];采用優(yōu)化的SDS方法[6]提取鏈霉菌總DNA,經(jīng)0.8%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行鑒定檢測(cè);以其為模板,以f1、f2為引物,擴(kuò)增MTG 基因。
反應(yīng)體系(25μL):10×PCR buffer(含Mg2+)2.5μL,dNTP(10mmol·L-1)2μL,f1、f2(10mmol·L-1)各1.0μL,Ex-Taq酶(2.5U·μL-1)0.5μL,總DNA 1.0μL,ddH2O 17μL。
反應(yīng)條件:預(yù)變性94 ℃5min;94 ℃40s,58 ℃60s,72℃40s,30個(gè)循環(huán);72℃延伸10min,10℃保溫20min。PCR 產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),大孔徑切膠回收,連接pMD19-T 載體進(jìn)行測(cè)序。
1.2.2 目的基因片段的序列比對(duì)及分析
將測(cè)序后的序列(完整的ORF)在NCBI上進(jìn)行序列比對(duì)。通過文獻(xiàn)找到這個(gè)蛋白的活性位點(diǎn)(Cys64-Asp255-His274)[7];通過序列比對(duì),找到目的蛋白的可能的酶活位點(diǎn)Cys151-Asp342-His361。利用ExPASy對(duì)序列進(jìn)行MTG 編碼蛋白的理化性質(zhì)分析,并在線預(yù)測(cè)MTG 的信號(hào)肽序列、糖基化位點(diǎn)。
1.2.3 目的蛋白的三維結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)
通過SWISS-MODEL獲取PDB格式的蛋白三維結(jié)構(gòu)[8-10],根據(jù)數(shù)據(jù)庫比對(duì)結(jié)果,在構(gòu)建的三維結(jié)構(gòu)中找到可能活性位點(diǎn)。并根據(jù)氨基酸的性質(zhì),確定突變其中一個(gè)位點(diǎn),研究其對(duì)酶活性的影響。
1.2.4 定點(diǎn)突變
采用重疊延伸PCR(SOE-PCR)技術(shù)進(jìn)行定點(diǎn)突變,其原理與過程見圖1。
圖1 SOE-PCR原理與過程Fig.1 Principle and process of SOE-PCR
1)以構(gòu)建的pMD19-T-MTG 質(zhì)粒作為模板,以F1、R2、F2、R1為引物,分別擴(kuò)增出上下游片段A、B。
反應(yīng)體系:10×PCR buffer(含Mg2+)2.5μL,dNTP(10 mmol·L-1)2μL,F(xiàn)1、R2(F2、R1)(10 mmol·L-1)各1.0μL,pfu酶(2.5 U·μL-1)0.5 μL,總DNA 1.0μL,ddH2O 17μL。
反應(yīng)條件:預(yù)變性94 ℃5min;94 ℃40s,60 ℃40s,72℃40s,25個(gè)循環(huán);72℃延伸10min,10℃保溫20min。PCR 產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),然后分別大孔徑切膠回收,-20 ℃保存。
2)將所得2份PCR 產(chǎn)物互為模板及引物,進(jìn)行第二次PCR 擴(kuò)增。
反應(yīng)體系:F1、F2(10mmol·L-1)各1.0μL,上游目的片段A 1.0 μL,下游目的片段B 1.0 μL,ddH2O 16μL,其它同第一次PCR。
反應(yīng)條件:同第一次PCR。PCR 產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),大孔徑切膠回收,-20 ℃保存。
1.2.5 突變工程菌的構(gòu)建
pET-22b(+)質(zhì)粒及PCR 產(chǎn)物的雙酶切:分別在37 ℃下用酶切體系處理pET-22b(+)質(zhì)粒及PCR 產(chǎn)物6h,取3μL進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),大孔徑切膠回收,-20 ℃保存。
酶切體系:10×K buffer 5.0μL,BamHⅠ1.0 μL,HindⅢ1.0μL,ddH2O 8.0μL,pET-22b(+)質(zhì)粒35μL(PCR 產(chǎn)物35μL),37 ℃,6h。
重組質(zhì)粒的連接:將雙酶切后的PCR 產(chǎn)物8.0 μL、線性化pET-22b(+)質(zhì)粒5.0μL、10×T4buffer 1.5μL、ddH2O 0.5μL、T4DNA ligase 1.0μL 16 ℃過夜,采用CaCl2法將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化到感受態(tài)細(xì)胞E.coliBL21(DE3)中,采用藍(lán)白斑法,挑取陽性菌落進(jìn)行菌落PCR 驗(yàn)證,陽性轉(zhuǎn)化子測(cè)序。
吸水鏈霉菌H197總DNA 和MTG 基因擴(kuò)增產(chǎn)物的電泳圖譜見圖2。
由圖2a可以看到,在23kbp處有特異性片段,初步確定DNA 提取成功。由圖2b可以看到,MTG 基因擴(kuò)增產(chǎn)物出現(xiàn)1 200bp左右的目的基因片段。
在NCBI中進(jìn)行protein blast,跟一株已知結(jié)構(gòu)的茂原鏈輪絲菌進(jìn)行比對(duì),根據(jù)茂原鏈輪絲菌基因的結(jié)構(gòu),找到可能酶活位點(diǎn)Cys151-Asp342-His361(圖3中的方框)。圖中陰影部分為MTG 的α螺旋和β折疊區(qū)域。
圖2 吸水鏈霉菌H197總DNA(a)和MTG 基因擴(kuò)增產(chǎn)物(b)的電泳圖譜Fig.2 Electrophorogram of Streptomyces sp.H197genomic DNA(a)and PCR product of gene MTG(b)
圖3 目的基因片段序列比對(duì)Fig.3 Alignment of objective gene fragment sequence
經(jīng)ExPASy服務(wù)器在線分析MTG 的氨基酸組成,結(jié)果如表2所示。
MTG 蛋白共418 個(gè)氨基酸長度,預(yù)期大小為46 635.95Da,PI點(diǎn)為7.08,GC 含量為61.26%,通過http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP-2.0/在線預(yù)測(cè)蛋白質(zhì)信號(hào)肽,發(fā)現(xiàn)MTG 信號(hào)肽含有29個(gè)氨基酸。通過http://www.cbs.dtu.dk/service/NetOGlyc/預(yù)測(cè)MTG 蛋白O-糖基化修飾位點(diǎn)時(shí)發(fā)現(xiàn),該序列含有蘇氨酸糖基化位點(diǎn),但其G 值低于可被糖基化的最小閾值,所以不被糖基化。通過http://www.cbs.dtu.dk/service/NetNGlyc-1.0/檢測(cè)也未發(fā)現(xiàn)N-糖基化位點(diǎn)。表明表達(dá)的蛋白大小不會(huì)改變。
表2 吸水鏈霉菌H197中MTG 的氨基酸組成Tab.2 Amino acid composition of MTG from Streptomyces sp.H197
圖4 MTG 三維結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)Fig.4 Three-dimensional structure prediction of MTG
通過SWISS-MODEL構(gòu)建的三維結(jié)構(gòu)模型分析,MTG 分子主要由α螺旋區(qū)(灰色)和β折疊區(qū)(黑色)構(gòu)成,α螺旋區(qū)相對(duì)分布在分子的外部,而β折疊區(qū)相對(duì)分布在分子內(nèi)部,其中兩個(gè)活性位點(diǎn)都在β折疊區(qū)。預(yù)測(cè)的活性中心在分子內(nèi)部相對(duì)靠攏,形成一個(gè)內(nèi)陷的空間。
以構(gòu)建的pMD19-T-MTG 質(zhì)粒為模板,以F1、R2、F2、R1為引物,分別擴(kuò)增出上下游目的片段A、B,其中上游目的片段A 大小為1 117bp,下游目的片段B大小為186bp,經(jīng)1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),在相應(yīng)大小的位置檢測(cè)到了特異性片段(圖5a、b)。經(jīng)重疊延伸后,在1 200bp左右的位置找到了單一的目的條帶(圖5c),與預(yù)期目的片段大小相當(dāng),初步確定已獲得目的突變片段。
圖5 目的片段A(a)、B(b)和SOE-PCR產(chǎn)物(c)的電泳圖譜Fig.5 Electrophorogram of objective fragment A(a),objective fragment B(b)and SOE-PCR product(c)
將pET-22b(+)質(zhì)粒和突變后的PCR 基因產(chǎn)物采用BamHⅠ、HindⅢ進(jìn)行雙酶切,回收酶切后的產(chǎn)物,將連接后重組質(zhì)粒pET-22b(+)-MTG 采用CaCl2法轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞E.coliBL21(DE3),使用藍(lán)白斑篩選,提取陽性轉(zhuǎn)化子進(jìn)行單、雙酶切驗(yàn)證,經(jīng)1%瓊脂糖凝膠檢測(cè),在相應(yīng)位置檢測(cè)到預(yù)期大小的目的片段(圖6)。
將突變型基因測(cè)序結(jié)果與野生型基因序列對(duì)比,在1 090位和1 092位的C均變成了A(圖7),與預(yù)期結(jié)果相同。表明已成功應(yīng)用SOE-PCR 技術(shù)進(jìn)行了突變,且突變工程菌pET-22b(+)-MTG 已成功構(gòu)建。
圖6 單酶切及雙酶切電泳圖譜Fig.6 Electrophorogram of single enzyme digestion and double enzyme digestion
圖7 突變基因序列與野生型基因序列比對(duì)Fig.7 Alignment of mutant gene sequence and wild gene sequence
定點(diǎn)突變可以便捷地改造優(yōu)化基因,是研究基因與蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)與功能的重要手段之一。陳熙等[11]利用定點(diǎn)突變技術(shù)將人溶菌酶進(jìn)行定點(diǎn)突變并在真核表達(dá)系統(tǒng)中進(jìn)行體外表達(dá),得到較野生型更高活力的突變體。郝大利等[12]定點(diǎn)突變大腸桿菌aroG基因,并與trpBA基因串聯(lián)表達(dá),獲得了高產(chǎn)色氨酸菌株。
SOE-PCR技術(shù)自1989年由Horton等構(gòu)建以來已成為主要的定點(diǎn)突變技術(shù)[13]。孫萬菊等[14]利用SOE-PCR 技術(shù)成功突變幽門螺桿菌熱休克蛋白60基因,在原核表達(dá)載體中獲得了高效表達(dá)的可溶性hsp60蛋白。在使用SOE-PCR 技術(shù)的時(shí)候應(yīng)注意DNA 聚合酶的質(zhì)量,應(yīng)避免使用普通的Taq酶,而應(yīng)使用高保真Taq酶,因?yàn)槠胀═aq酶會(huì)在PCR 產(chǎn)物的3′末端加上一個(gè)A,從而造成移碼突變,本實(shí)驗(yàn)采用的pfu高保真酶避免了此問題的發(fā)生。SOE-PCR 技術(shù)因原理簡(jiǎn)單、操作方便、適用性廣而被廣泛用于基因克隆的研究。本實(shí)驗(yàn)成功地通過SOE-PCR 技術(shù)實(shí)現(xiàn)了定點(diǎn)突變,構(gòu)建了突變體。
通過預(yù)測(cè)谷氨酰胺轉(zhuǎn)胺酶基因的三維結(jié)構(gòu),同源比對(duì)確定其可能的酶活中心,利用SOE-PCR 技術(shù)定點(diǎn)突變其中一個(gè)活性位點(diǎn),并構(gòu)建了突變工程菌,為后續(xù)研究其活性位點(diǎn)的功能奠定了基礎(chǔ)。
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