李建武，鞏迎春

（1.甘肅省農業(yè)科學院馬鈴薯研究所，甘肅 蘭州 730070；2.農業(yè)部西北旱作馬鈴薯科學觀測實驗站，甘肅 渭源 748201；3.甘肅農業(yè)大學生命科學技術學院，甘肅 蘭州 730070）

馬鈴薯（Solanum tuberosum L.）是茄科（Solanaceae）茄屬（Solanum）馬鈴薯組（Tuberarium）雙子葉草本植物，可一年一季或一年兩季栽培，普通馬鈴薯是馬鈴薯亞組中能形成地下塊莖的一年生草本四倍體作物。由于受到同源四倍體遺傳復雜性的限制，馬鈴薯遺傳規(guī)律極為復雜，常規(guī)雜交育種效率較低，近年來在分子水平方面開展了大量的研究。DNA的分離提取是進行植物分子生物學研究工作的基礎，DNA的提取效率和純度嚴重影響分子生物學實驗的結果，因此快速提取得到高純度的DNA，是分子生物學實驗成敗的關鍵因素之一［1］。目前，普通植物DNA提取方法已經非常成熟，常用的有十六烷基三甲基溴化銨（CTAB）［2］，十二烷基苯磺酸鈉（SDS）法［3］，尿素法［4］、試劑盒法提取基因組DNA［5］。其中，CTAB法是植物提取的經典方法，提取效果好，但步驟繁瑣、試劑組成復雜、易污染［5-6］；SDS法較為簡易、產量高，但有蛋白污染可能［3］；尿素法具有產量高、快速省時、可常溫操作、成本耗用低等優(yōu)點［4］；試劑盒法操作簡便、快速省時、污染少、提取的DNA純度高，但其成本比較高［4］。我們采用CTAB和試劑盒2種不同的DNA提取方法，以常規(guī)種植馬鈴薯植株葉片為實驗材料，探索了適合批量高效的馬鈴薯葉片基因組DNA提取方法。

1 材料與方法

1.1 供試材料

供試材料為8份馬鈴薯品系，均為普通栽培種。植物基因組DNA提取試劑盒（DP305-2）購自天根生化科技（北京）有限公司。

1.2 試驗方法

試驗材料于4月28日種植于農業(yè)部西北旱作區(qū)馬鈴薯野外觀測實驗站（甘肅省渭源縣），出苗后15 d，剪取馬鈴薯植株上部倒數(shù)未完全展開的第2片復葉，放入冰盒帶到實驗室，經液氮速凍后置于-80℃下保存?zhèn)溆?。馬鈴薯基因型編號分別為 001、010、039、043、052、060、109、111。

1.3 DNA提取

采用改良CTAB法和試劑盒法兩種方法分別提取馬鈴薯葉片基因組DNA。

1.3.1 改良CTAB法提取DNA［7］取備用馬鈴薯葉片約500 mg，加液氮研磨成粉末狀，迅速移入2 mL離心管。加入700μL的CTAB提取緩沖液，混勻（CTAB在65℃水浴預熱），待所有樣品研磨完后，逐個加入2μLβ-巰基乙醇（通風櫥下），放回水浴鍋中，每5 min輕輕震蕩幾次，30 min后加入700 uL氯仿∶異戊醇（24∶1），顛倒搖勻數(shù)次，在12 000 r/min條件下離心10 min。小心吸取上清液600μL轉入1.5 mL離心管，加入等體積的飽和酚和氯仿∶異戊醇（各300μL）溶液，混勻，在12 000 r/min條件下離心10 min。小心吸取上清液400μL轉入新離心管，加入等體積的異丙醇，混勻，室溫靜置10 min，在12 000 r/min條件下離心10 min，棄去上清液，用70%乙醇洗滌沉淀2次。室溫下干燥5～15 min后，溶于100μL TE溶液中，置于-20℃保存?zhèn)溆?。每個基因型材料DNA提取重復2次。

1.3.2 試劑盒法提取DNA 按試劑盒（DP305-2）說明書操作。提取馬鈴薯葉片基因組DNA后，置于-20℃保存?zhèn)溆谩Ｃ總€基因型材料DNA提取重復2次，驗證其DNA提取的效果。

1.4 DNA檢測

1.4.1 瓊脂糖凝膠電泳法 取DNA樣品5μL，與1μL 6×Loading Buffer混勻后上樣，以2 000 bp DNA Ladder Marker為參照，在含熒光染料EB的1%瓊脂糖凝膠上120 V電泳20 min。電泳結束后，通過凝膠成像系統(tǒng)（BIO-RAD，GelDocXR+）觀察拍照，進行純度、濃度檢測。

1.4.2 紫外分光光度法 取2μL DNA樣品，與498μL加ddH2O稀釋250倍至500μL，在紫菀分光光度計（島津，UV-240）上測定DNA OD260和OD280值，并計算OD260/OD280，以檢測純度和濃度。

1.5 SSR-PCR檢測

利用文獻公開發(fā)表的SSR引物STM0024［8］，對8份材料中的1個基因型的4份DNA樣品進行PCR擴增，引物由上海生工生物有限公司合成。STM0024引物序列：上游引物序列CATTACCTTGTGAGATTAGATTG（5′-3′），下游引物序列CATATAAGTAGGAATAGGAGGTTT（5′-3′），擴增目標片段135 bp。

PCR反應體系：在20μL反應體系中加入上下游引物各 1.20 uL（20 pmol/μL），10×Buffer（含Mg2+）為 2.0μL，dNTPs為 1.0μL，Taq酶為 0.1 μL（5U/μL），DNA模板為 0.8 uL（50 ng/μL）。擴增程序：95預變性3 min，95℃變性30 s，53.4℃退火30 s，72℃延伸1 min，共34循環(huán)，最后72℃延伸10 min，4℃保存PCR產物。

吸取 PCR產物 10μL，加 2μL 6×Loading Buffer配制樣品，以2000 bp DNA Ladder Marker為參照，在含熒光染料EB的2%瓊脂糖凝膠上，120 V電泳30 min，電泳結束后，通過凝膠成像系統(tǒng)（GelDocXR+）觀察拍照。

2 結果與分析

2.1 DNA樣品凝膠電泳檢測結果

圖1的Marker含6條帶，分子量由大到小依次為 2 000、1 000、750、500、250、100 bp，其中750 bp條帶的DNA濃度約為100 ng，其余條帶約50 ng。瓊脂糖凝膠電泳結果顯示，2種方法提取的DNA條帶均清晰整齊、DNA完整無雜帶。改良CTAB法提取的DNA點樣孔內有雜質且存在拖尾現(xiàn)象，試劑盒提取的DNA只有少量點樣孔內有雜質，表明試劑盒提取的DNA純度較高于改良CTAB法。改良CTAB法提取的1份樣品（109I）DNA濃度低于50 ng，8份材料2次重復共16份次的DNA得率為93.8%；試劑盒提取提取的5份樣品（010I，010II，039I，039II，043II）濃度低于50 ng，8份材料2次重復共16份次的DNA得率68.8%，說明改良CTAB法提取DNA得率高于試劑盒。2種方法提取的DNA樣品濃度、純度在各重復之間差異不明顯。

圖1 改良CTAB法與試劑盒法提取的基因型DNA樣品

表1 改良CTAB法與試劑盒法提取的DNA樣品純度

2.2 紫外分光光度法測定結果

DNA樣品的純度用OD260/OD280的比值來表示，當OD260/OD280比值接近1.8時，DNA純度符合質量標準；當OD260/OD280比值大于1.9時，表明有RNA污染，小于1.6時，表明樣品中存在蛋白質或酚污染［9-10］。根據(jù)紫外分光光度分析（表1），改良CTAB法提取的010I，039I，039II，043I，060I，060II，109I，111I、111II等9份DNA樣品吸光值比值大于1.9，說明有RNA污染，和圖1結果相同。試劑盒提取的043I，060I，109I，111I等4份DNA樣品吸光值比值小于1.6，說明有蛋白質、多糖或酚等雜質。改良CTAB法提取的DNA樣品OD260/OD280比值平均值1.89，試劑盒提取的DNA樣品OD260/OD280比值平均值1.66，2種方法提取的DNA樣品均符合質量標準。

2.3 SSR-PCR檢測

由圖2可以看出，2種方法提取的DNA樣品為模板進行SSR-PCR擴增反應，經瓊脂糖凝膠電泳檢測，產物條帶清晰，大小一致，說明兩種方法提取的DNA完全滿足馬鈴薯SSR-PCR擴增需要。

圖2 不同方法提取的DNA樣品PCR擴增結果

3 小結與討論

1）CTAB法作為DNA提取的經典方法，廣泛應用于植物基因組DNA提取，具有穩(wěn)定性好、得率高、成本低等優(yōu)點［4］，根據(jù)研究對象特點而進行改良后可以提取到高質量的 DNA［3，9，11］。但該方法在配制試劑過程中繁瑣耗時，步驟多，試劑組成復雜，易污染，在使用上收到了一定程度的限制［1］。從成本來看，試劑盒法所用藥品及耗材都需整套購買，費用較高，而CTAB法只需配好所需藥品，耗材不多。但試劑盒可用于多樣品同時操作，快速，準確，方便，無需酚、氯仿抽提，避免了有機質溶劑的污染，逐漸受到重視。從本研究結果來看，試劑盒法提取的DNA質量高、雜質少，DNA得率略低，CTAB法提取的DNA濃度大、量大，但雜質多。

2）本試驗選用的材料采自田間馬鈴薯植株，較組培苗葉片含有較多的酚類物質。試驗結果表明，改良CTAB法和試劑盒兩種方法都可得到滿足SSR-PCR反應擴增要求的DNA，能夠進行基于SSR標記的馬鈴薯遺傳多樣性分析試驗，各實驗室可根據(jù)實際條件、經費支出、人員配給等具體情況，選擇適合的方法進行馬鈴薯基因組DNA的提取。如果需要樣品DNA數(shù)量不多、質量高，樣本較多時建議選用試劑盒法提取，因為其操作過程簡便。相反，若是小規(guī)模提取、質量要求不是很高、樣本較少時建議選用CTAB法，因為其成本低、得率較高。

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