宋 臻
(亞翔系統(tǒng)集成科技(蘇州)股份有限公司,江蘇 蘇州 215000)
胞苷二磷酸膽堿(CytidineDiphosphateCholine,分子結構式見圖1,別名胞磷膽堿或CDPC)是卵磷脂生物合成重要的中間產物。卵磷脂是細胞膜的重要組成成分,它的代謝正常與否直接影響細胞的通透性、能量代謝以及蛋白質生物合成等許多生物學功能。1963年,CDPC開始用于臨床。實踐證明,它對腦損傷引起的意識障礙以及其他神經系統(tǒng)疾病都有較好的療效,隨著社會的發(fā)展,CDPC更是作為預防老年癡呆的保健品得到大力的發(fā)展[1]。
圖1 CDPC分子結構
由于CDPC的廣泛應用,其市場需求量正逐步擴大,2007年,根據(jù)有關機構調查,CDPC在中國市場的年需求大約為250 t,但當年的供給量不足60 t,有著極大的需求缺口。因此,如何高效率、高質量、低成本的生產CDPC成為企業(yè)亟待解決的問題。
將灌流系統(tǒng)應用在CDPC生產中,可以大幅提高產品質量和產量產能,降低產品成本,進而快速填補市場的缺口,增加企業(yè)市場競爭力和企業(yè)效益。
胞磷膽堿的生產方法主要有化學合成法、酶轉化法、雙菌發(fā)酵法和酵母發(fā)酵法?;瘜W合成法是利用化工原料,經過逐級多步反應,再經提純得到最終產品。這種方法研發(fā)成功早,但缺點很多,目前只有少數(shù)企業(yè)在利用此法生產。90年代后日本研發(fā)成功并開始采用酵母酶轉化法生產胞磷膽堿,此法并非無菌發(fā)酵反應,它是利用廢舊酵母的多酶體系將胞苷酸(CMP)和輔料合成CDPC,但由于當時主要原料CMP的價格比較高,此法在當時未得到廣泛發(fā)展。2003年以后,由于CDPC的主要原料CMP的生產技術已經成熟,CMP價格大幅下降,加之經過優(yōu)化后轉化率大幅提高,我國開始大量采用酵母酶轉化法生產CDPC,目前市場大部分產品都由此法生產[2-3]。雖然成本問題得到了解決,但酵母酶轉化法也暴露了很多新的問題。2000年后日本開發(fā)了雙菌發(fā)酵法,即利用大腸桿菌和產氨棒桿菌等基因工程菌發(fā)酵生產CD PC。此法發(fā)酵工藝相對復雜,在CMP大幅降價后漸漸被淘汰。
近幾年來,隨著生物發(fā)酵技術的發(fā)展,酵母發(fā)酵法有了越來越大的優(yōu)勢。此法采用篩選過的高活力酵母為菌種,以CMP為原料采用無菌發(fā)酵技術生產CDPC,有菌種來源穩(wěn)定、菌種活力高、用量少、中間體雜質少、后處理簡單等特點[4]。但微生物發(fā)酵周期比較長,單位時間設備的產出比較小,需要更大的初期投入才能保證產能。
表1 胞磷膽堿合成方法優(yōu)缺點比較
灌流培養(yǎng)生產CDPC是在酵母發(fā)酵法的基礎上,利用特殊的設備,一方面源源不斷加入培養(yǎng)基和底物,另一方面通過重力沉淀、循環(huán)系統(tǒng)和切向過濾源源不斷提取出產品,從而實現(xiàn)連續(xù)培養(yǎng)的過程。通過此過程,可以在目前企業(yè)生產設備的基礎上,經過少量的設備改造,極大提高CDPC的產能和產量,提高設備利用率和產品質量,降低產品的成本。
1.2.1 灌流系統(tǒng)的組成
灌流系統(tǒng)由以下幾個部分組成:補料系統(tǒng)、循環(huán)過濾系統(tǒng)、出料系統(tǒng)、自動控制系統(tǒng)、其他輔助系統(tǒng)(在線清洗系統(tǒng)(CIP系統(tǒng))和在線滅菌系統(tǒng)(SIP 系統(tǒng)))。
補料系統(tǒng):向反應釜內補給發(fā)酵所需培養(yǎng)基以及CMP底物,需要無菌控制操作,由補料管路、補料罐、動力系統(tǒng)以及輔助的CIP、SIP組成。
循環(huán)過濾系統(tǒng):將罐內反應液從底部提升,通過動力泵(隔膜泵或者蠕動泵)經過切向過濾的過濾器后,再回流到罐內,通過重力沉降,切向過濾可以將料液源源不斷循環(huán),進而將不含細胞的反應液導出反應體系,是灌流系統(tǒng)的關鍵部分。
出料系統(tǒng):將透過切向過濾膜的無細胞反應液抽離反應體系,由過濾器、動力泵(隔膜泵或者蠕動泵)以及配套管路,容器組成。
控制系統(tǒng):整個系統(tǒng)的大腦,由PLC控制2臺變頻動力泵、液位控制器、自動隔膜閥、濁度控制器組成,一方面控制補料和出料的有序性,一方面保證細胞出料的清澈,保證濾膜不會過分堵塞。
其他輔助系統(tǒng):由于整個系統(tǒng)需要在無菌環(huán)境下進行,在中試、放大生產中要符合GMP等相關規(guī)范,因此還需要在線清洗系統(tǒng)、在線滅菌系統(tǒng)以及其他輔助系統(tǒng)。
圖2 灌流系統(tǒng)
1.2.2 過程和原理
初期細胞培養(yǎng)時,細胞處于恢復期,此時細胞濃度比較低,代謝水平較低,主要利用葡萄糖等易利用底物進行自身增殖,對于利用CMP產生CDPC的能力比較弱,一般恢復期持續(xù)的時間比較長,選用有利于細胞生產的營養(yǎng)豐富的培養(yǎng)基可以使細胞快速生長。
進入對數(shù)期,當細胞積累達到一定濃度后,源源不斷的加入CMP底物,在膽堿激酶和磷酸化酶為主的酶系的作用下,CMP和含有膽堿、磷酸的底物共同作用,發(fā)生生物酶反應,產生CDPC。
隨著CDPC的累計,當摩爾轉化率達到90%的時候,反應趨于平衡,此時繼續(xù)加入CMP會使得CMP和CDPC的濃度都增加,CDPC增加的速度較慢,摩爾轉化率反而降低。此時通過灌流系統(tǒng),將反應液抽出,抽出后再補料加入培養(yǎng)基和CMP的混合底物,一方面保證細胞的正常生長,一方面可以繼續(xù)轉化生成CDPC。灌流抽出一定的CDPC溶液,并補加適當量的CMP,此時CDPC轉化率會從90%立刻跌到70%左右,但由于平衡被破壞,在酶的作用下,CMP繼續(xù)反應生成CDPC,直到再次達到平衡。
圖3 灌流系統(tǒng)
經篩選過的啤酒酵母菌株LP30925(企業(yè)內部菌種編號)。
2.1.2 培養(yǎng)基
1)酵母發(fā)酵法所用培養(yǎng)基:
培養(yǎng)基1:酵母培養(yǎng)基。
培養(yǎng)基2:在培養(yǎng)基1的基礎上進行調配,調配后酵母濃度為3%~7%,磷酸膽堿0.5%~2%,磷酸0.5%~2%,葡萄糖10%~20%,硫酸鎂0.1%~0.5%,培養(yǎng)過程需要1~2次補糖,每次3%~10%。
2)灌流培養(yǎng)法所用培養(yǎng)基:
培養(yǎng)基1:酵母培養(yǎng)基。
培養(yǎng)基2:基本同酵母發(fā)酵法所用培養(yǎng)基2相同,葡萄糖濃度和補糖濃度同比降低25%~50%。
2.1.3 主要儀器和設備
DZ05A發(fā)酵罐、紫外分析儀、電泳儀(槽)、紫外分光光度計、高效液相色譜儀。
2.1.4 培養(yǎng)方法
1)酵母發(fā)酵法:將酵母菌株加入到預先滅菌的培養(yǎng)基1中,進行無菌培養(yǎng),10~15 h進入對數(shù)生長期,15~25 h后酵母濃度達到3%~7%,此時加入CMP、磷酸膽堿、糖等輔料,調配成培養(yǎng)基2的濃度進行反應,反應30 h左右,摩爾轉化率可以達到90%以上(折算重量轉化率142%);然后經過機械過濾、層析柱層析、減壓濃縮、甲乙醇結晶得到成品固體CDPC。
2)灌流培養(yǎng)法:30 h前培養(yǎng)方法同酵母發(fā)酵法,反應30 h左右,摩爾轉化率可以達到90%以上 (折算重量轉化率142%);此刻酵母濃度為9.5%以上,開始灌流,每2 h從罐內抽出25%體積的反應液,并補入同體積含適當CMP濃度的培養(yǎng)基,抽取補料過程消耗時間約20 min,剩余100 min為反應時間,100 min后,轉化率可再次達到90%,再次循環(huán)灌流,期間酵母濃度穩(wěn)定在9.5%~11%之間,緩慢提升。灌流72~96 h后,細胞活力下降,滅菌放罐結束反應并進行清洗滅菌等操作。
經試驗,灌流培養(yǎng)在轉化率達到平衡后可以維持72~96 h,最終因為酵母濃度過高,衰亡酵母自溶產物過多導致灌流系統(tǒng)能力下降,此時考慮結束灌流培養(yǎng),采用和舊法相同的滅活過濾方法獲得最終產品。
2.1.5 主要分析方法
1)酵母濃度檢測:離心管稱重,記為m1;稱取酵母發(fā)酵液樣品,計為m2,5000 r/min離心5 min后去上清,倒扣靜置1 min,擦拭離心管口的殘液后稱重,計為m3。酵母濃度根據(jù)以下公式計算:
酵母濃度C=(m3-m1)/(m2-m1)×100%。
此法檢測的酵母濃度為濕酵母濃度。
2)酵母摩爾轉化率快速檢測法:因為發(fā)酵液包含雜質很多,對色譜柱損傷比較大,加上HPLC檢測時間較長(一般30~40 min),在生產中一般使用酵母摩爾轉化率快速檢測法。
取酵母發(fā)酵液樣品離心后的上清液,取樣10 μL點入預先制備好的四硼酸鈉—瓊脂糖電泳凝膠中,在電泳槽內200~300 V電壓跑板3~6 min,在254 nm紫外燈下查看會出現(xiàn)清晰的兩條紫外吸收帶,其中遠端為CDPC,近端為CMP,割膠(含空白),把三段凝膠分別放入裝有5 mL pH 2.0的鹽酸溶液試管中,沸水浴3~5 min融膠,靜置放冷,在280 nm紫外分光光度計下以空白為對照測量光吸收率 (非OD值),CMP和CDPC光吸收值分別為Acmp和Acdpc,轉化率根據(jù)以下公式計算:
轉化率T=Acdpc/(Acmp+Acdpc)×100%。
此法速度比藥典HPLC法一般要快10~20 min,精度和藥典HPLC法最大相差3%,適用于生產中間體控制,本文發(fā)酵過程的轉化率數(shù)據(jù)是依據(jù)此法測定得出。
3)色度檢測法:色度是CDPC成品的瓶頸指標,其主要產生于酵母分解產生的黃色色素,在過程中以測定溶液的A430作為色度指標。取酵母發(fā)酵液樣品離心后的上清液,以純化水為對照測定A430,即為色度指標。
4)成品收率:成品收率 =CDPC固體成品重量/投入的CMP重量 ×100%,由于發(fā)酵后段收率基本恒定,也可以用發(fā)酵液色譜定量乘以一定的損耗系數(shù)進行計算。
酵母培養(yǎng)和灌流培養(yǎng)至10~15 h,酵母進入對數(shù)生長期,酵母濃度快速增加;15~25 h后酵母濃度達到3%~7%,此時加入CMP、磷酸膽堿、糖等輔料,調配成培養(yǎng)基2的濃度進行反應,酵母濃度和CDPC摩爾轉化率快速增長;反應30 h左右,酵母濃度和摩爾轉化率趨于穩(wěn)定(圖4、5)。
酵母培養(yǎng)在30 h后做滅活、放罐處理,若繼續(xù)培養(yǎng),酵母會進入衰亡期導致濃度下降,CDPC摩爾轉化率則受產物反饋抑制,停止增長。灌流培養(yǎng)由于源源不斷補充新鮮的培養(yǎng)基,能維持酵母濃度的緩慢增長,灌流培養(yǎng)每次分離提取掉1/4罐體積的CDPC溶液,并補充新的CMP底物,因為破壞了反應平衡,使得CDPC可以繼續(xù)得到轉化。由于稀釋作用,使得CDPC轉化率曲線呈現(xiàn)鋸齒狀。72~96 h后做滅活、放罐處理。
圖4 酵母濃度—時間的關系曲線
圖5 摩爾轉化率—時間的關系曲線
從表2看出,灌流培養(yǎng)可以拉長有效反應時間,使得灌流培養(yǎng)前期種子細胞復蘇時間和后處理時間比重大大降低,單位時間收獲到更多的產品,提高了設備的利用率,灌流培養(yǎng)的產能是非灌流法的3.96倍,大幅降低了生產成本。
色度是CDPC成品的瓶頸指標,在過程中以測定溶液的A430作為色度指標,CDPC溶液的色度越低,表明產品的質量越高。表3可以看出,酵母培養(yǎng)CDPC溶液色度質量為0.788,灌流培養(yǎng)CDPC溶液色度質量為0.176。灌流培養(yǎng)CDPC溶液色度(A430值)與非灌流法相比,降低了77.7%,產品質量顯著提高。原因是灌流培養(yǎng)弱化了高溫滅活操作,減少了細胞破損產生的雜質,使得溶液色度降低,另外純度的增加也有利于后處理收率的提高和成品質量的提高。
將灌流系統(tǒng)應用在CDPC生產中,可以大幅提高產品質量,提高產能,降低產品成本,進而快速填補市場的缺口,增加企業(yè)市場競爭力和企業(yè)效益。
表2 酵母發(fā)酵法和酵母發(fā)酵法灌流培養(yǎng)產量和產能對比
表3 酵母發(fā)酵法和酵母發(fā)酵法灌流培養(yǎng)質量(色度)對比
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