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        大豆過氧化氫酶的分離純化及性質(zhì)研究

        2015-12-07 02:58:20孫才云唐云明
        食品科學(xué) 2015年1期
        關(guān)鍵詞:蒜苗層析過氧化氫

        方 玲,孫才云,唐云明

        (西南大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,重慶市甘薯工程研究中心,三峽庫區(qū)生態(tài)環(huán)境教育部重點實驗室,重慶 400715)

        大豆過氧化氫酶的分離純化及性質(zhì)研究

        方 玲,孫才云,唐云明*

        (西南大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,重慶市甘薯工程研究中心,三峽庫區(qū)生態(tài)環(huán)境教育部重點實驗室,重慶 400715)

        新鮮大豆芽經(jīng)勻漿、磷酸緩沖液抽提、硫酸銨分級沉淀、DEAE-Sepharose離子交換層析、Superdex-200凝膠過濾層析,獲得電泳純的過氧化氫酶。該酶酶活回收率為30.92%,純化倍數(shù)為293.09,酶比活力達(dá)到26 322.43 U/mg。該酶全分子質(zhì)量為234.9 kD,亞基分子質(zhì)量為57.42 kD;最適pH值為7.2,最適溫度為30 ℃,在pH 4.0~10.6及25~35 ℃范圍內(nèi)有較好的穩(wěn)定性;在30 ℃、pH 7.2條件下測得該酶對過氧化氫的Km值為31.82 mmol/L;十二烷基硫酸鈉、草酸、Ag+、Cu2+對該酶有強(qiáng)烈的抑制作用,Pb2+對該酶有雙重作用,低濃度時有激活作用而高濃度時抑制酶活性。

        大豆;過氧化氫酶;分離純化;性質(zhì)

        過氧化氫酶(catalase,CAT;EC 1.1 1.1.6)又稱觸酶,是一類廣泛存在于動植物及需氧微生物體內(nèi)的末端氧化還原酶,主要功能是催化過氧化氫發(fā)生歧化反應(yīng)生成水和氧氣,清除體內(nèi)的過氧化氫,從而使細(xì)胞免于遭受H2O2的毒害[1]。其酶促活性為機(jī)體提供了抗氧化防御機(jī)理,是生物防御體系的關(guān)鍵酶之一[2]。它在農(nóng)業(yè)、醫(yī)藥、食品加工、紡織、印染、環(huán)保等方面有十分重要的應(yīng)用價值[3-10]。因此,獲得來源廣泛且成本低廉的CAT在理論和實踐方面有十分重要的意義。大豆(Glycine max),別名黃豆,一年生草本植物,起源于我國,至今已有5 000 年的種植史,具有美容養(yǎng)顏、抗癌、增強(qiáng)人體組織機(jī)能等作用[11-12]。大豆來源廣泛,成本低廉,四季均可取材,經(jīng)實驗發(fā)現(xiàn)大豆中CAT含量十分豐富,且從大豆中分離純化CAT還未見報道,故本實驗嘗試以大豆為材料從中分離純化CAT,并對部分酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行研究,旨在為該酶更深入研究、開發(fā)及應(yīng)用提供參考。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        以新鮮大豆芽為材料,購自重慶市北碚區(qū)永輝超市。

        DEAE-Sepharose、Superdex-200、凝膠過濾層析分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)品、蛋白質(zhì)SDS-PAGE標(biāo)準(zhǔn)品 美國GE Healthcare公司;丙烯酰胺、甲叉雙丙烯酰胺 瑞士Fluka公司;三羥甲基氨基甲烷、考馬斯亮藍(lán)R-250美國Bio-Rad公司;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

        1.2 儀器與設(shè)備

        精密電子天平 瑞士Mettler-Toledo公司;PHS-32W微電路pH計 上海理達(dá)儀器廠;Mill-Q plus超純水儀美國Millipore公司;GL-21M高速冷凍離心機(jī) 湖南湘儀公司;蛋白核酸定量儀 日本島津公司;蛋白質(zhì)純化系統(tǒng) 美國GE Healthcare公司;垂直板電泳槽和電泳儀 美國Bio-Rad公司;MC4L冷凍干燥機(jī) 德國Uni Equip公司。

        1.3 方法

        1.3.1 大豆CAT粗酶液的制備

        取新鮮的大豆芽的子葉部分30 g,用蒸餾水洗凈,按1∶15的比例加入預(yù)冷的磷酸鹽緩沖液(0.0 5 mol/L、pH 7.2、含1 mmol/L乙二胺四乙酸(ethylenediamine tetraacetic acid,EDTA)),勻漿后放于4 ℃冰箱中靜置抽提2 h后,紗布過濾,將濾液離 心40 min(4 ℃,12 000 r/min), 收集上清液即為粗酶液。

        1.3.2 硫酸銨分級鹽析

        于粗酶液中加入硫酸銨粉末至30%飽和度,4 ℃靜置鹽析2 h,10 000 r/min離心0.5 h,收集上清液;再向其中加入硫酸銨粉末至40%飽和度,4 ℃靜置鹽析2 h,6 000 r/min離心0.5 h,收集沉淀,沉淀用抽提緩沖液(0.05 mol/L,pH 7.2,含1 mmol/L EDTA)溶解,4 ℃條件下用0.25 mol/L磷酸鹽緩沖液(pH 7.2,含1 mmol/L EDTA)透析12 h后即為初酶液。

        1.3.3 DEAE-Sepharose離子交換層析

        先用 0.05 mol/L磷酸鹽緩沖液(pH 8.0,含1 mmol/L EDTA)平衡DEAE-Sepha rose離子交換層析柱后,取初酶液10 mL上柱,用0~0.5 mol/L的NaCl溶液(含0.05 mol/L,pH 8.0的磷酸緩沖液,1 mmol/L的EDTA)進(jìn)行線性梯度洗脫,流速0.65 mL/min,每管收集6.5 mL;測定各管CAT活性和蛋白含量,收集活性較高的各管酶液,于4 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.3.4 Superdex-200凝膠過濾層析

        先用0.05 mol/L磷酸鹽緩沖液(pH 8.0,含1 mmol/L EDTA)平衡Superdex-200層析柱后,取在1.3.3節(jié)中收集的活力較高的CAT酶液4 mL上柱,用0.05 mol/L pH 8.0磷酸緩沖液(含1 mmol/L的EDTA)洗脫,流速0.3 mL/min,每管收集10 min;測定各管CAT活性和蛋白含量;收集活性較高的酶液,4 ℃超純水透析脫鹽12 h,冷凍干燥后于-20 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.3.5 CAT活力的測定

        以H2O2為底物,采用鉬酸銨終止法[13]進(jìn)行測定。酶活力單位定義為:在測定條件下,每分鐘催化分解1 μmol H2O2所需的酶量為一個酶活力單位(U)。

        1.3.6 CAT純度鑒定與分子質(zhì)量測定[14]

        用十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)對大豆CAT進(jìn)行純度鑒定,采用質(zhì)量分?jǐn)?shù)為12%的分離膠和5%的濃縮膠,上樣量8 μL。該酶亞基分子質(zhì)量用SDS-PAGE測定,全分子質(zhì)量用Superdex-200凝膠過濾層析測定。

        1.3.7 蛋白質(zhì)含量的測定

        用Bradford染料法與紫外分光光度法進(jìn)行測定[14]。

        1.3.8 大豆CAT部分性質(zhì)研究

        1.3.8.1 CAT最適pH值及pH值穩(wěn)定性

        用不同pH值(3.0~10.6)的緩沖液配制底物過氧化氫溶液,在37 ℃條件下,測定CAT在pH 3.0~10.6反應(yīng)底物中的酶活力,每組實驗重復(fù)3 次,取平均值(以下實驗重復(fù)次數(shù)相同)。以酶活力最高值為100%,計算相對酶活力,以研究CAT最適pH值。將酶液置于不同pH值(3.0~10.6)的緩沖溶液中,室溫放置90 min后,測定CAT酶活力,以酶活力最高值為100%,計算該酶在不同pH值條件下的相對酶活力,研究該酶的pH值穩(wěn)定性。

        1.3.8.2 CAT最適溫度和熱穩(wěn)定性

        測定CAT在不同溫度(15~75 ℃),pH 7.2條件下的酶活力,以酶活力最高值為100%,計算相對酶活力,以研究CAT最適反應(yīng)溫度。將酶液分別置于不同溫度(25~65 ℃)下保溫不同時間(1~5 h)后,在pH 7.2、37 ℃條件下測定其酶活力,以酶液不保溫時的酶活力為100%,計算其相對酶活力,以研究CAT的熱穩(wěn)定性。

        1.3.8.3 CAT米氏常數(shù)(Km)的測定

        在最適條件下(30 ℃、pH 7.2),測定大豆CAT以不同濃度的過氧化氫(5、10、20、30、40、50 mmol/L)為底物時的酶活力,采用雙倒數(shù)法(Lineweaver-Burk法)[15],計算出該酶的Km值。

        1.3.8.4 不同化合物對CAT活 性的影響

        分別將不同化合物配成200 mmol/L母液,按一定比例與磷酸鹽抽提緩沖液和酶液混合,使得各化合物終濃度分別為5、10、15、20、25、30 mmol/L,在4 ℃條件下作用30 min后,測酶活力,以不加化合物時的酶活力為100%,計算CAT的相對酶活力。

        1.3.8.5 不同有機(jī)溶劑對CAT活性的影響

        分別將甲醇、乙醇、異丙醇按一定比例與磷酸鹽抽提緩沖液和酶液混合,使得各有機(jī)溶劑終體積分?jǐn)?shù)分別為10%、20%、30%、40%、50%、60%,在4 ℃條件下作用30 min后,測酶活力,以不加有機(jī)物時的酶活力為100%,計算CAT的相對酶活力。

        1.3.8.6 金屬離子對CAT活性的影響

        分別將不同金屬離子(K+、Mn2+、Co2+、Mg2+、Pb2+、Ca2+、Li+、Ba2+、Cd2+、Cu2+、Ag+)配成50 mmol/L母液,按一定比例與磷酸鹽抽提緩沖液和酶液混合,使得各金屬離子的終濃度分別為1、2、3、4、5 mmol/L,在4 ℃條件下作用30 min后,測酶活力,以不加金屬離子時的酶活力為100%,計算CAT的相對酶活力。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 大豆CAT的分離純 化

        圖1 大豆CAT的DEAE-Sepharose離子交換層析Fig.1 DEAE-sepharoseion-exchange chromatography profi le of crude CAT solution

        圖2 大豆CAT的Superdex-200凝膠過濾層析Fig.2 Superdex-200 gel fi ltration chromatography of catalase from Glycine max

        表1 大豆CAT的分離純化Table 1 Summary of isolation and purifi cation of catalase from soybean

        大豆CAT的初酶液經(jīng)DEAE-Sepharose離子交換層析的結(jié)果如圖1所示,酶活性主要集中在18~22 管,收集酶活性較高管的洗脫液直接用于凝膠層析,經(jīng)Superdex-200凝膠層析后的洗脫圖譜如圖2所示,酶活性主要集中在37~41 管,收集酶活性較高管的酶液,蒸餾水透析、冷凍干燥后,經(jīng)SDS-PAGE電泳,顯示為單一條帶(圖3),說明該酶經(jīng)過分離純化后已達(dá)到了電泳純。酶的整個分離純化結(jié)果如表1所示,最終得到大豆CAT的回收率為30.92%,酶比活力為26 322.43 U/mg,純化倍數(shù)為293.09。

        2.2 大豆CAT的分子質(zhì)量

        圖3 大豆CAT的SDS-PAGE電泳圖譜Fig.3 SDS-PAGE of purified catalase from soybean

        純化后的CAT用SDS-PAGE電泳分析為單一條帶(圖3),測得大豆CAT的亞基分子質(zhì)量為57.42 kD用Superdex-200凝膠過濾層析測得全酶的分子質(zhì)量為234.9 kD(圖4),由此可以推斷該酶由4 個相同的亞基組成。

        圖4 Superdex-200凝膠過濾層析測大豆CAT的分子質(zhì)量Fig.4 Molecular weight estimation of catalase by Superdex-200 gel fi ltration chromatography

        2.3 大豆CAT的最適溫度與熱穩(wěn)定性

        圖5 溫度對大豆CAT酶活力的影響Fig.5 Effect of temperature on CAT activity

        由圖5可知,大豆CAT的最適溫度為30 ℃。該酶在25~35 ℃范圍內(nèi)有相當(dāng)好的熱穩(wěn)定性,保溫5 h相對酶活力在86%以上,45 ℃時保溫5 h相對酶活 力仍在50%以上,超過此溫度相對酶活力迅速下降,65 ℃時保溫1 h,酶活力幾乎完全喪失(圖6)。可能是因為高溫破壞了酶分子的天然三維空間結(jié)構(gòu)使酶的催化功能發(fā)生改變。

        圖6 大豆CAT的熱穩(wěn)定性Fig.6 Thermal stability of CAT

        2.4 大豆CAT的最適pH值與pH值穩(wěn)定性

        圖7 pH值對大豆CAT酶活力的影響Fig.7 Effect of pH on catalase activity

        圖8 大豆CAT的pH值穩(wěn)定性Fig.8 pH stability of catalase activity

        由圖7可知,大豆CAT的最適pH值為7.2。由圖8可知,該酶在pH 4.0~10.6范圍內(nèi)穩(wěn)定性較好,室溫放置90 min,相對酶活力均保持在75%以上,說明該酶對酸堿的耐受范圍較廣,有非常好的應(yīng)用價值。

        2.5 米氏常數(shù)(Km)的測定結(jié)果

        由實驗結(jié)果可知,在30 ℃,pH 7.2條件下分別測定以不同濃度(5、10、20、30、40、50 mmol/L)為底物時該酶的反應(yīng)速率,按Lineweaver-Burk作圖法,計算出大豆CAT的Km值為31.82 μmol/L(圖9)。該酶Km值為31.82 μmol/L,與蘆薈[13](34 mmol/L)、蒜苗[16](38.2 mmol/L)、鴨肝[17](37.29 mmol/L)的Km值相接近,而遠(yuǎn)高于蘋果[18](2.27 mmol/L)、重組大腸桿菌[19](7.75 mmol/L)、發(fā)芽的黑綠豆(16.2 mmol/L)[20]的Km值,也遠(yuǎn)低于韭菜[20](46.93 mmol/L)、大鼠肝臟[21](56 mmol/L)、氧化葡糖桿菌[22](61 mmol/L)的Km值,說明不同來源的CAT對底物的親和力有差異。

        圖9 雙倒數(shù)法測得大豆CAT的米氏常數(shù)曲線Fig.9 Lineweaver-Burk plot for Kmdetermination of CAT

        2.6 不同有機(jī)溶劑對大豆CAT活性的影響

        圖10 甲醇、乙醇、異丙醇對大豆CAT酶活力的影響Fig.10 Effect of methanol. ethanol and isopropyl alcohol on CAT activity

        由圖10可知,3種有機(jī)溶劑對大豆CAT都有抑制作用,當(dāng)有機(jī)溶劑體積分?jǐn)?shù)在10%~30%范圍時,該酶的相對酶活性變化趨勢不大,超出此范圍,有機(jī)溶劑體積分?jǐn)?shù)越大,抑制作用就越大,可能是因為有機(jī)溶劑的加入使酶周圍的水化層被破壞,導(dǎo)致由水分子直接或間接參與形成的氫鍵、疏水鍵及范德華力已被破壞,從而引起酶構(gòu)象發(fā)生改變,使酶活性下降[23]。

        2.7 不同化合物對大豆CAT活性的影響

        圖11 不同化合物對大豆CAT的酶活力的影響Fig.11 Effect of various compounds on CAT activity

        由圖11可知,SDS對該酶活性的抑制作用最強(qiáng),當(dāng)濃度達(dá)到5 mmol/L時,酶活性完全喪失,可能是因為SDS是一種陰離子去污劑能夠破壞酶蛋白分子中的氫鍵和疏水鍵,改變酶的空間構(gòu)象,使酶活性降低[23]。草酸對該酶活性也有較強(qiáng)的抑制作用,當(dāng)濃度達(dá)到20 mmol/L時,酶幾乎完全失活。而脲素、EDTA對該酶活性影響不大,當(dāng)濃度達(dá)到30 mmol/L時,相對酶活力均在85%以上。

        2.8 金屬離子對大豆CAT活性的影響

        圖12 不同金屬離子對大豆CAT酶活力的影響Fig.12 Effect of metal ions on CAT activity

        由圖12可知,Cu2+、Ag+對大豆CAT的抑制作用最強(qiáng),當(dāng)濃度在1 mmol/L時,該酶的相對酶活力為0。Li+、Mn2+、Mg2+、K+對該酶活性的抑制作用相對較弱,而Ba2+、Cd2+、Co2+、Ca2+對該酶的抑制作用較明顯。Pb2+在低濃度(≤3 mmol/L)時對該酶活性有激活作用,高濃度(>3 mmol/L)時對該酶活性有抑制作用。

        3 討 論

        本實驗以來源廣泛、成本低廉、四季均可取材的大豆子葉為實驗材料,經(jīng)勻漿、磷酸緩沖液抽提、硫酸銨分級沉淀、DEAE-Sepharose離子交換層析及Superdex-200凝膠過濾層析,從大豆子葉中分離純化出了CAT的均一組分。用pH 7.2磷酸鹽緩沖液平衡DEAE-Sepharose離子交換柱時,目的蛋白沒有被該離子柱所吸附,通過實驗發(fā)現(xiàn),用pH 8.0的磷酸鹽緩沖液平衡柱子,目的蛋白能有效地吸附在離子柱上,與雜蛋白分離效果較好,且收集到的樣品酶活較高,無需濃縮可直接上Superdex-200凝膠過濾層析柱,減少實驗步驟的同時減少了酶活損失,同時得到了電泳純的大豆CAT;雖然酶活回收率低于蒜苗CAT[17](蒜苗CAT的回收率40.05%),但比活力和純化倍數(shù)高于蒜苗CAT[17](蒜苗CAT的比活力為25 975.36 U/mg,純化倍數(shù)為125.97)。

        該酶最適反應(yīng)溫度為30 ℃,與火龍果[27](30 ℃)的最適溫度一致,而低于其他來源的CAT的最適溫度,該酶在25~35 ℃范圍內(nèi)有相當(dāng)好的熱穩(wěn)定性,保溫5 h相對酶活力在86%以上,45 ℃時保溫5 h相對酶活仍在50%以上;該酶在pH 4.0~10.6范圍內(nèi)穩(wěn)定性較好,室溫放置90 min,相對酶活力均保持在75%以上,說明該酶對酸堿的耐受范圍較廣,有非常好的應(yīng)用價值,最適pH值為7.2,與韭菜[21](7.2)、蒜苗[16](7.2)的最適pH值相一致,而與鴨肝[17](7.0)、貽貝[26](7.0)、大鼠[22](7.5)、火龍果[27](7.0)、蘆薈[13](7.5)的最適pH值近似,說明不同來源的CAT對環(huán)境中的pH值有相似的適應(yīng)性。

        該酶亞基分子質(zhì)量為5 7.4 2 k D,與鴨肝[17](6 2.5 k D)、蒜苗[16](5 9.1 6 k D)、韭菜[21](62.34 kD)、蘆薈[13](60.60 kD)的亞基分子質(zhì)量相接近,而與貽貝[26](76 kD)的CAT的亞基分子質(zhì)量有差異,說明不同來源的CAT在分子結(jié)構(gòu)上具有物種特異性。

        通過實驗表明:Cu2+、Ag+對該酶有強(qiáng)烈的抑制作用,濃度為1 mmol/L時酶活完全喪失,與蒜苗[16]中Cu2+、Ag+對CAT的強(qiáng)烈抑制作用相似,可能是因為金屬離子直接作用于酶的活性部位,減弱了酶的催化功能[24],而在鴨肝[17]、貽貝[25]及火龍果[26]中Cu2+對酶有激活作用,可能是因為該金屬離子的加入促進(jìn)反應(yīng)時形成酶蛋白、金屬離子、底物三元配合物的穩(wěn)定過渡態(tài),從而降低反應(yīng)的活化能,使酶促反應(yīng)速度加快[29]。Pb2+對該酶活性有雙重作用,低濃度時對酶有激活作用高濃度時抑制酶活,可能是因為二價的 Pb2+的濃度會影響該酶本身的帶電情況,在低濃度時,可能對CAT的帶電量影響較弱,酶分子空間結(jié)構(gòu)沒有發(fā)生明顯變化,并可以促進(jìn)底物與酶活性中心相互結(jié)合,形成底物-酶-金屬離子復(fù)合物[23],因而對酶有激活作用;但當(dāng)Pb2+濃度增大時,大量Pb2+的聚集改變了酶蛋白本身的帶電情況,影響了酶分子的空間構(gòu)型,從而逐漸抑制酶活性。Li+、Mn2+、Mg2+、K+、Ba2+、Ca2+對該酶都有一定的抑制作用,而在鴨肝[17]和貽貝[25]中Mg2+對酶有激活作用,在蒜苗[16]中Li+對酶有激活作用,K+對酶有雙重作用,在嗜熱鏈霉菌[27]中Ca2+對酶有激活作用,在蘆薈[13]中K+、Ba2+對酶有激活作用,以上對比結(jié)果說明了同種金屬離子對不同來源的CAT有不同的作用,可能是因為不同物種對環(huán)境的適應(yīng)能力有差異和在進(jìn)化過程中基因選擇性表達(dá)的結(jié)果[25]。

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        Isolation, Purifi cation and Partial Characterization of Catalase from Soybean (Glycine max)

        FANG Ling, SUN Caiyun, TANG Yunming*
        (Key Laboratory of Eco-environments in Three Gorges Reservoir Region, Ministry of Education, Chongqing Sweet Potato Engineering Research Center, School of Life Science, Southwest University, Chongqing 400715, China)

        Electrophoresis-purity catalase (CAT) was obtained from freshly sprouted soybean (Glycine max) by the sequential steps of homogenization, buffer solution extraction, ammonium sulfate precipitation, DEAE-Sepharose ion exchange chromatography and Superdex-200 gel filtration chromatography. The purifi ed enzyme had a specifi c activity of 26 322.43 U/mg, with a 30.92% activity recovery and a 293.09-fold purifi cation. The molecular mass of the CAT enzyme comprising a 57.42 kD subunit was 234.9 kD. Its optimum pH and temperature were 7.2 and 30 ℃, respectively. This enzyme was stable at pH 4.0–10.6 and at 25–35 ℃. Its Kmtowards H2O2was 31.82 mmol/L. The enzyme activity was strongly inhibited by sodium dodecyl sulfate (SDS), oxalic, Ag+and Cu2+, but was activated by low concentration of Pb2+.

        soybean; catalase; isolation and purification; characterization

        Q946.5

        A

        1002-6630(2015)01-0140-06

        10.7506/spkx1002-6630-201501027

        2014-02-09

        重慶市科委科技攻關(guān)重點項目(CSTC2011AB1027)

        方玲(1988—),女,碩士研究生,主要從事蛋白質(zhì)與酶工程研究。E-mail:xuemeifl @163.com

        *通信作者:唐云明(1960—),男,教授,博士,主要從事蛋白質(zhì)與酶工程研究。E-mail:tbright@swu.edu.cn

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