祝偉霞,楊冀州,郭慧領(lǐng),張 莉,王彩娟,張 麗
(河南出入境檢驗(yàn)檢疫局,河南 鄭州 450003)
β受體激動(dòng)劑是天然兒茶酚胺類化學(xué)合成的衍生物,具有苯乙醇胺結(jié)構(gòu)母核,因結(jié)構(gòu)中含有堿性β-羥胺側(cè)鏈,可與細(xì)胞膜的β-受體結(jié)合而得名,臨床主要用于治療哮喘、肺炎、休克等疾病[1]。在畜牧養(yǎng)殖生產(chǎn)中,β受體激動(dòng)劑類藥物常被非法添加到飼料中以提高動(dòng)物生長(zhǎng)率和瘦肉率[2],人類長(zhǎng)期亞劑量食用β受體激動(dòng)劑污染的食品易導(dǎo)致人體器官中毒[3]。農(nóng)業(yè)部196號(hào)和235號(hào)公告均禁止β受體激動(dòng)劑作為生長(zhǎng)促進(jìn)劑用于畜牧業(yè),為了逃避政府部門監(jiān)管,不法商家合成新的苯乙醇胺類替代物用于養(yǎng)殖過(guò)程,因此建立一種β受體激動(dòng)劑多殘留的分析方法對(duì)于獸藥殘留監(jiān)管具有重要意義。
目前,β受體激動(dòng)劑的多殘留檢測(cè)常采用酶聯(lián)免疫法(ELISA)[4]、氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法(GCMS)[5]、液相色譜 - 串聯(lián)質(zhì)譜法(LC - MS/MS)[6-8]和液相色譜 - 高分辨質(zhì)譜法(LC -TOF)[9]等。LC -MS/MS 和 LC - TOF 技術(shù)是目前測(cè)定飼料[10]、尿液[11-12]、動(dòng)物組織[13-14]和污水[15]等樣品的主要分析方法,樣品前處理采用傳統(tǒng)的離線固相萃取(SPE)法,而離線SPE需要多步驟的溶劑轉(zhuǎn)移和濃縮,實(shí)驗(yàn)操作繁瑣。近年來(lái)研究者開始采用在線SPE技術(shù)凈化樣品中β受體激動(dòng)劑類藥物[16],但未見(jiàn)有關(guān)全自動(dòng)在線固相萃取聯(lián)用質(zhì)譜技術(shù)分析尿液中16種β受體激動(dòng)劑的報(bào)道。本方法采用在線陽(yáng)離子渦流固相萃取柱凈化,通過(guò)對(duì)凈化、色譜分離和基質(zhì)效應(yīng)等條件的優(yōu)化,建立了豬尿液中16種β受體激動(dòng)劑的陽(yáng)離子渦流在線固相萃取/液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜全自動(dòng)分析的方法。
TranscendTM在線凈化液相色譜TSQ Ultra串聯(lián)四極桿分析系統(tǒng)(美國(guó)Thermo Fisher公司);16種β受體激動(dòng)劑標(biāo)準(zhǔn)品(純度均≥95%,德國(guó)Dr.Ehrenstorfer公司);β葡萄糖苷酸酶/芳基硫酸酯酶(德國(guó)Merck公司);甲醇、乙腈、異丙醇、丙酮、甲酸(色譜純,美國(guó)Fisher公司);甲酸銨(美國(guó)Sigma-Aldrich公司);其它試劑均為市售分析純;實(shí)驗(yàn)用水為Millipore純水系統(tǒng)制備的高純水(≥18 MΩ·cm)。
準(zhǔn)確稱取純度折算為100%的β受體激動(dòng)劑標(biāo)準(zhǔn)品各20.0 mg,以甲醇溶解并定容于100 mL容量瓶中,配成質(zhì)量濃度為200 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,于-18℃下保存;分別吸取500 μL標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,用甲醇稀釋成質(zhì)量濃度為1 μg/mL的混合標(biāo)準(zhǔn)工作溶液,于0~4℃下保存。取適量的標(biāo)準(zhǔn)混合液添加陰性豬尿液按本方法進(jìn)行分析,制得基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)工作溶液,現(xiàn)用現(xiàn)配。
TurboFlow凈化色譜柱為MCXTM(50 mm×0.5 mm);進(jìn)樣量為100 μL;TurboFlow上樣泵流動(dòng)相:水(A1)、氨水甲醇(B1)、乙腈-異丙醇-丙酮(4∶4∶2,C1)。液相分離色譜柱為SHISEIDO CAPCELL MGⅡ(150 mm ×2.0 mm,3.0 μm);進(jìn)樣量為50 μL,流動(dòng)相為0.1%甲酸甲醇(A2)、0.1%甲酸溶液中含5 mmol/L甲酸銨(B2),在線凈化和液相梯度洗脫程序見(jiàn)表1。
表1 16種β受體激動(dòng)劑的在線凈化與液相色譜洗脫程序Table 1 Online MCX SPE and HPLC elution program of 16 β-agonists
質(zhì)譜條件:電噴霧正離子模式下離子化(ESI+),蒸發(fā)溫度為300℃,毛細(xì)管溫度為350℃,噴霧電壓為3 500 V,鞘氣壓力為40 psi,輔助氣壓力為15 psi,檢測(cè)模式為選擇反應(yīng)監(jiān)測(cè)模式(SRM),檢測(cè)離子對(duì)、碰撞能量(CE)、聚焦電壓(Tublens)等質(zhì)譜參數(shù)見(jiàn)表2。
表2 16種β受體激動(dòng)劑的質(zhì)譜參數(shù)Table 2 Mass parameters of 16 β-agonists
量取5 mL尿液,加入4 mL 20 mmol/L乙酸銨溶液,用乙酸調(diào)至pH 5.2,加入50 μL β葡萄糖苷酸酶/芳基硫酸酯酶液,用乙酸銨定容至10 mL,于37℃下酶解過(guò)夜,取出后于4 000 r/min離心5 min,上清液經(jīng)0.22 μm濾膜過(guò)濾后,進(jìn)行Online-MCX-SPE和LC-MS/MS全自動(dòng)測(cè)定。
16種β受體激動(dòng)劑按苯環(huán)上取代基的差異可分為苯胺與苯酚兩種類型,其中克倫特羅、馬布特羅、西馬特羅等苯胺型激動(dòng)劑在動(dòng)物體內(nèi)主要發(fā)生氧化代謝作用,軛合反應(yīng)率低。但非諾特羅、萊克多巴胺、沙丁胺、特布他林等苯酚型化合物在生物酶的作用下易生成各種軛合物。研究表明,尿液中以軛合物代謝的苯酚型β受體激動(dòng)劑殘留物≥50%[12],因此苯酚型化合物測(cè)定前常需要酶解。本方法對(duì)比了豬尿液(萊克多巴胺和克倫特羅陽(yáng)性)分別在不酶解與酶解的測(cè)定結(jié)果,結(jié)果表明,在不酶解時(shí)萊克多巴胺的測(cè)定值為3.4 μg/L,克倫特羅為3.8 μg/L,而酶解后萊克多巴胺測(cè)定值為18.2 μg/L,克倫特羅為4.1 μg/L。為同時(shí)測(cè)定豬尿液中16種β受體激動(dòng)劑殘留,本實(shí)驗(yàn)選擇將豬尿液在37℃酶解過(guò)夜后測(cè)定。
β受體激動(dòng)劑結(jié)構(gòu)中含有苯胺和苯酚的氮堿性中心,屬中等極性的疏水物質(zhì),在酸性條件下呈陽(yáng)離子特征,離線SPE方法常采用反相C18和MCX柱凈化。為了建立在線SPE前處理方法,本文考察了5種TurboFlow在線凈化柱的效果,包括反相(Cyclone,Cyclone-p,C18,C18-P)以及陽(yáng)離子交換MCX柱,結(jié)果表明,異丙喘寧、沙丁胺醇、齊帕特羅、特布他林和西馬特羅5種分析物極性強(qiáng),在Cyclone,Cyclone-p,C18,C18-P柱中富集性差,相對(duì)回收率在6.7% ~71.5%之間;而MCX柱是基于尺寸排阻、反相和離子交換等多種混合保留機(jī)理的凈化柱,16種分析物在此柱上的回收率均不低于76.2%,因此本方法選擇MCX柱為在線凈化柱。
方法優(yōu)化了不同淋洗強(qiáng)度對(duì)于待測(cè)物的影響,分別將5%氨化甲醇與水的體積比設(shè)為0∶10,2∶8,4∶6,5∶5,6∶4,7∶3,8∶2,9∶1,10∶0進(jìn)行洗脫,16種β受體激動(dòng)劑的回收率結(jié)果顯示,淋洗強(qiáng)度對(duì)妥布特羅、克倫特羅、溴代克倫特羅、馬賁特羅、苯乙醇胺A、溴布特羅7種化合物的影響顯著,當(dāng)氨化甲醇比例增至90%時(shí),16種分析物的回收率不低于85.7%,因此本方法選用5%氨水甲醇水(體積比,9∶1)作為洗脫溶劑。
為了增加分析物洗脫的選擇性,實(shí)驗(yàn)對(duì)洗脫流速(10,20,30,50,80,100,150 μL/min)進(jìn)行了優(yōu)化。結(jié)果表明,10 μL/min和20 μL/min流速不利于化物洗脫,流速在30~80 μL/min范圍時(shí),待測(cè)物的響應(yīng)信號(hào)隨流速的增加呈線性增加,80 μL/min后增幅減少。由于在該洗脫模式時(shí),凈化泵和液相色譜泵串聯(lián),為了減少色譜柱的承受壓力,在保證16種分析物洗脫完全的條件下,本方法選用80 μL/min為洗脫流速。
β受體激動(dòng)劑類化合物具有疏水的飽和烴鏈,屬堿性或酸堿兩性物質(zhì),因此在反相色譜柱上的保留性弱。為增加化合物的保留行為,實(shí)驗(yàn)對(duì)比了CAPCELL MGⅡ柱和Sunshell C18兩種色譜柱的分離效果,結(jié)果發(fā)現(xiàn):Sunshell C18柱分析異丙喘寧時(shí)呈雙色譜峰,西馬特羅、特布他林和齊帕特羅3種物質(zhì)峰形展寬;而采用CAPCELL MGⅡ柱分析時(shí)16種化合物均得到較好的保留。因此,方法選用CAPCELL MGⅡ柱進(jìn)行分離。
實(shí)驗(yàn)以50 ng/mL標(biāo)準(zhǔn)溶液作為對(duì)照,比較了豬尿液加標(biāo)(50 ng/mL)后直接測(cè)定、經(jīng)TurboFlow凈化分析的相對(duì)回收率。測(cè)定結(jié)果表明,豬尿液未經(jīng)凈化直接分析時(shí)的質(zhì)譜響應(yīng)強(qiáng)度降低了42.1%~91.3%,其中對(duì)異丙喘寧、沙丁胺醇和克倫特羅的質(zhì)譜響應(yīng)值分別降低91.3%,81.4%和88.7%。而經(jīng)TurboFlow在線凈化后,基質(zhì)效應(yīng)明顯降低,而質(zhì)譜響應(yīng)值僅降低6.4%~17.2%。因此方法采用TurboFlow在線凈化來(lái)有效降低基質(zhì)干擾,并且采用基質(zhì)匹配校正曲線進(jìn)行定量分析。
向陰性豬尿液中添加不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液,按本方法進(jìn)行測(cè)定,以信噪比S/N≥3為方法檢出限(LOD),S/N≥10為定量下限(LOQ),16種 β受體激動(dòng)劑的 LOD為0.01~0.025 μg/L,LOQ為0.025~0.10 μg/L。在0.01~50 μg/L濃度范圍內(nèi),分析物的質(zhì)量濃度(X,μg/L)與對(duì)應(yīng)峰面積(Y)呈良好線性關(guān)系,相關(guān)系數(shù)(r2)≥0.998 3(見(jiàn)表3)。
采用陰性豬尿液在LOQ,2LOQ和4LOQ水平進(jìn)行加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn),色譜圖如圖1所示,每個(gè)水平平行測(cè)定10次,結(jié)果如表3所示。16種分析物的回收率為62.4%~117.1%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為3.9%~16.3%。
表3 方法的驗(yàn)證數(shù)據(jù)Table 3 The validated data of method
圖1 豬尿液在定量下限水平的加標(biāo)回收色譜圖Fig.1 Chromatograms of 16 β-agonists spiking at LOQ level in pig urine
為驗(yàn)證該方法的有效性,實(shí)驗(yàn)共收集了213個(gè)供港活豬尿樣進(jìn)行分析。在優(yōu)化條件下,根據(jù)保留時(shí)間和特征離子碎片對(duì)測(cè)定結(jié)果進(jìn)行確證分析,經(jīng)基質(zhì)匹配校正曲線定量,檢測(cè)結(jié)果均為陰性。本方法的測(cè)定結(jié)果與標(biāo)準(zhǔn)方法[17-18]的測(cè)定結(jié)果一致。
本方法采用Online-MCX-TurboFlow在線凈化,液相色譜分離,串聯(lián)四極桿質(zhì)譜在電噴霧模式下檢測(cè),建立了豬尿液中16種β受體激動(dòng)劑的在線全自動(dòng)分析方法。與標(biāo)準(zhǔn)方法相比,本方法減少了離線的手工操作,降低了操作人員的勞動(dòng)強(qiáng)度,減弱了基質(zhì)效應(yīng)。方法學(xué)驗(yàn)證和實(shí)際樣品分析表明,該方法的靈敏度高、準(zhǔn)確度好、操作簡(jiǎn)便,可用于實(shí)驗(yàn)室批量豬尿液中16種β受體激動(dòng)劑殘留的快速測(cè)定和確證。
[1]Courtheyn D,Le Bizec B L,Brambilla G,De Brabander H F,Cobbaert E,Van de Wiele M V,Vercammen J,De Wasch K.Anal.Chim.Acta,2002,473(1/2):71-82.
[2]Lopez-Carlos M A,Ramirez R G,Aguilera-Soto J I,Plascencia A,Rodriguez H,Arechiga C F,Rincon R M,Medina-Flores C A,Gutierrez-Bauelos H.Livestock Sci.,2011,138(1/3):251-258.
[3]Page K A,Hartzell D L,Li C L,Westby A L,Della-Fera M A,Azain M J,Dean Pringle T,Baile C A.Domestic Animal Endocrinol.,2004,26(1):23 -31.
[4]Cao B Y,He G Z,Yang H,Chang H F,Li S Q,Deng A P.Talanta,2013,115(15):624 -630.
[5]Caban M,Stepnowski P,Kwiatkowski M,Migowska N,Kumirska J.J.Chromatogr.A,2011,1218(44):8110-8122.
[6]Williams L D,Churchwell M I,Doerge D R.J.Chromatogr.B,2004,813(1/2):35 -45.
[7]Shao B,Jia X F,Zhang J,Meng J,Wu Y N,Duan H J,Tu X M.Food Chem.,2009,114(3):1115 -1121.
[8]Juan C,Igualada C,Moragues F,León N,Maes J.J.Chromatogr.A,2010,1217(39):6061 -6068.
[9]Wang X J,Zhang F,Ding F,Li W Q,Chen Q Y,Chu X G,Xu C B.J.Chromatogr.A,2013,1278(22):82-88.
[10]Gao Z,Wu M T,Cao J M.J.Instrum.Anal.(高照,吳侔天,曹建民.分析測(cè)試學(xué)報(bào)),2012,31(1):7-14.
[11]Moragues F,Igualada C.Anal.Chim.Acta,2009,637(1/2):193-195.
[12]Fiori M,Civitareale C,Mirante S,Magarò E,Brambilla G.Anal.Chim.Acta,2005,529(1/2):207 -210.
[13]Shishani E,Chai S C,Jamokha S,Aznar G,Hoffman M K.Anal.Chim.Acta,2003,483(1/2):137-145.
[14]Jiang W F,Zhao S.J.Instrum.Anal.(蔣萬(wàn)楓,趙珊.分析測(cè)試學(xué)報(bào)),2013,32(6):675-680.
[15]Salem A A,Wasfi I A,Al-Nassibi S S.J.Chromatogr.B,2012,908(1/2):27-38.
[16]Liu S,Wang M M,Ai L F,Xing T,Hao Y L,Wang X S.J.Instrum.Anal.(劉珊,王曼曼,艾連峰,邢濤,郝玉蘭,王學(xué)生.分析測(cè)試學(xué)報(bào)),2013,32(5):547-552.
[17]Ministry of Agriculture Proclamation 1063 -3 -2008.Determination of β-Agonists Residues in Pig Urine Liquid Chromatography-Tandem Mass Spectrometry.The Agricultural Ministry Standard of China(動(dòng)物尿液中11種β-受體激動(dòng)劑的檢測(cè)液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法.中國(guó)農(nóng)業(yè)部標(biāo)準(zhǔn)).
[18]Ministry of Agriculture Proclamation 1031 -3 -2008.Determination of β-Agonists Residues in Swine Liver and Urine Gas Chromatography-Mass Spectrometry Method.The Agricultural Ministry Standard of China(豬肝和豬尿中β-受體激動(dòng)劑殘留檢測(cè)氣相色譜-質(zhì)譜法.中國(guó)農(nóng)業(yè)部標(biāo)準(zhǔn)).