王紅月,王 茉,張 晨,齊宏欣,遲寶榮
(1.吉林大學(xué)第一醫(yī)院腎內(nèi)科,吉林 長(zhǎng)春 130021;2.吉林大學(xué)藥學(xué)院再生醫(yī)學(xué)系,吉林 長(zhǎng)春 130021;3.吉林大學(xué)第一醫(yī)院肝膽胰內(nèi)科,吉林 長(zhǎng)春 130021)
肝細(xì)胞生長(zhǎng)因子 (hepatocyte growth factor,HGF)是一種重要的抗纖維化因子,具有抗肝纖維化作用[1]。近年來研究[2]顯示:HGF也有抗腎纖維化作用,但其抗腎間質(zhì)纖維化的作用機(jī)制目前尚不完全清楚。近年來研究[3-4]表明:HGF可通過抗腎小管上皮-肌成纖維細(xì)胞轉(zhuǎn)分化 (tubular epithelial-myofibroblast transdifferentiation,TEMT)而防止腎臟纖維化,TEMT被認(rèn)為是導(dǎo)致腎間質(zhì)纖維化的重要原因。近期研究[5-7]發(fā)現(xiàn):血管緊張素Ⅱ (angiotensinⅡ,AngⅡ)也是很強(qiáng)的致TEMT因子,且HGF與血管緊張素轉(zhuǎn)化酶抑制劑聯(lián)合有更好抗的TEMT作用,但關(guān)于HGF和AngⅡ?qū)EMT的影響及是否存在相關(guān)性尚無確切報(bào)道,本課題組主要針對(duì)HGF和AngⅡ與TEMT的關(guān)系進(jìn)行深入研究。
1.1 細(xì)胞和主要試劑 人腎近曲小管上皮細(xì)胞(human kidney proximaltubular cells-2, HK-2)購自中國(guó)生命科學(xué)院上海細(xì)胞庫。RPMI-1640和胎牛血清 (美國(guó) Gibco公司),CK-8試劑盒和BCA蛋白定量試劑盒 (碧云天生物有限公司),α-平滑肌肌動(dòng)蛋白 (α-SMA)抗體及二抗 (美國(guó)Santa Cruz),RT-PCR試劑盒 (日本 Takara公司)。
1.2 HK-2細(xì)胞培養(yǎng)HK-2細(xì)胞用含有10%RPMI-1640胎牛血清的培養(yǎng)液培養(yǎng)。在含10% 胎牛血清100U·mL-1青霉素和100mg·L-1鏈霉素的RPMI-1640培養(yǎng)基中傳代培養(yǎng)。將 HK-2細(xì)胞按1×106接種在75cm2Flask培養(yǎng)瓶中,培養(yǎng)條件為37℃、5%CO2,當(dāng)貼壁細(xì)胞達(dá)80%~90%融合時(shí)用無血清培養(yǎng)基洗3次,進(jìn)行傳代或種板,?、羝诩?xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
1.3 細(xì)胞分組及CCK8法檢測(cè) 以每孔1×103細(xì)胞接種于96孔板中,接種后6h加入刺激物,按加入刺激物的不同將HK-2細(xì)胞分對(duì)照組、AngⅡ組、HGF組和AngⅡ+HGF組,每組3復(fù)孔。對(duì)照組只加HK-2細(xì)胞,HGF和AngⅡ組在細(xì)胞的基礎(chǔ)上分別加入8μg·L-1HGF 和1×10-6mol·L-1AngⅡ,AngⅡ+HGF組在細(xì)胞基礎(chǔ)上同時(shí)加8μg·L-1HGF和1×10-6mol·L-1AngⅡ。24h后收集細(xì)胞,每孔加入10μL CCK8,37℃孵育1h后,檢測(cè)450nm處吸光度 (A)值。以A值表示細(xì)胞增殖活性。
1.4 RT-PCR法檢測(cè) HK-2細(xì)胞中α-SMA mRNA表達(dá)水平 采用Trizol法提取總RNA,檢測(cè)mRNA濃度,逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA。PCR擴(kuò)增α-SMA基因,β-actin為內(nèi)參。α-SMA,正義鏈5′-ACTGGGACGACTAGGAAAAAG-3′, 反 義 鏈5′-CATCTCCAGAGTCCAGCACA-3′。 β-actin,正 義 鏈 5′-ATCATGTTTGAGACCTTCAACAC-3′,反義鏈 5′-CATGGTGGTGCCGCCAGACAG-3′。PCR擴(kuò)增體系:cDNA模板2μL,去離子水14.5μL,10× PCR 緩 沖 液 2.5 μL,dNTP(2.5mmol·L-1)2μL,MgCl2(25mmol·L-1)1.5μL,上游引物 (50μmol·L-1)1μL,下游引物 (50μmol·L-1)1μL,ExTaqDNA聚合酶(5U·μL-1)0.5μL,總體積25μL。PCR擴(kuò)增反應(yīng)條件:94℃、5min,94℃變性30s,58℃退火45s,72℃延伸1min,共30個(gè)循環(huán);72℃延伸5min。PCR反應(yīng)產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳后,用Phoretix ID凝膠圖像分析軟件測(cè)定電泳條帶的灰度值,用內(nèi)參校準(zhǔn),以α-SMA/β-actin灰度值比值表示α-SMA mRNA表達(dá)水平。
1.5 Western blotting法檢測(cè) HK-2細(xì)胞中α-SMA蛋白表達(dá)水平 將細(xì)胞加入細(xì)胞裂解緩沖液,離心,提取總蛋白。取總蛋白50μg作SDS-PAGE電泳,凝膠濃度為10%,濃縮膠電壓110V,電泳30min,分離膠電壓100V,電泳90min。電泳結(jié)束后,用電轉(zhuǎn)印儀將蛋白轉(zhuǎn)移到PVDF膜上,時(shí)間60min,電流等于膠面積 (cm2)×0.55mA。PVDF膜用Blocking buffer(5% 脫脂奶粉)封閉4℃過夜。次晨,室溫1h,TBST[20mmol·L-1Tris-HCl(pH7.4),0.15mol·L-1NaCl,0.1%Tween]洗3次,加入α-SMA兔抗人多克隆抗體(1∶500)室溫孵育2h,TBST洗3次,加入辣根過氧化物酶交聯(lián)的羊抗兔IgG二抗 (1∶2000)1h,TBST洗3次,加入免疫印跡化學(xué)ECL發(fā)光試劑,暗室曝光顯影。用凝膠圖像分析系統(tǒng)掃描分析條帶的面積和灰度,蛋白區(qū)帶用積分灰度值表示,同時(shí)檢測(cè)β-actin的蛋白表達(dá)作為對(duì)照,其比值表示α-SMA蛋白表達(dá)水平。
1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。細(xì)胞增殖活性、α-SMA mRNA和蛋白表達(dá)水平均以表示,組間比較采用單因素方差分析。檢驗(yàn)水準(zhǔn)α=0.05。
2.1 各組 HK-2細(xì)胞的增殖活性 與對(duì)照組(0.668±0.030)比 較,HGF 組細(xì)胞增 殖 活 性(0.737±0.051)升高 (P<0.05),AngⅡ組和AngⅡ+HGF組細(xì)胞增殖活性 (0.235±0.015和0.466±0.023)降低 (P<0.05);與 AngⅡ組比較,AngⅡ+HGF組細(xì)胞增殖活性升高 (P<0.05)。
2.2 各組 HK-2細(xì)胞中α-SMA mRNA 表達(dá)水平與對(duì)照組比較,HGF組和AngⅡ+HGF組細(xì)胞中α-SMA mRNA表達(dá)水平降低 (P<0.05或P<0.01),AngⅡ組細(xì)胞中α-SMA mRNA表達(dá)水平升高 (P<0.05)。與AngⅡ 組比較,AngⅡ+HGF組細(xì)胞中α-SMA mRNA表達(dá)水平降低(P<0.05)。見圖1和表1。
2.3 各組HK-2細(xì)胞中α-SMA蛋白表達(dá)水平 與對(duì)照組比較,HGF組細(xì)胞中α-SMA蛋白表達(dá)水平降低 (P<0.05),AngⅡ組和 AngⅡ+HGF組細(xì)胞α-SMA蛋白表達(dá)水平升高 (P<0.05或P<0.01)。與AngⅡ 組比較,AngⅡ+HGF組細(xì)胞α-SMA蛋白表達(dá)水平降低 (P<0.05)。見圖2和表1。
圖1 各組HK-2細(xì)胞中α-SMA mRNA表達(dá)電泳圖Fig.1 Electrophoregram ofα-SMA mRNA expressions in HK-2cells in various groups
表1 各組HK-2細(xì)胞中α-SMA mRNA和蛋白表達(dá)水平Tab.1 Expression levels ofα-SMA mRNA and protein in HK-2cells in various groups (n=3,)
表1 各組HK-2細(xì)胞中α-SMA mRNA和蛋白表達(dá)水平Tab.1 Expression levels ofα-SMA mRNA and protein in HK-2cells in various groups (n=3,)
* P<0.05,** P<0.01 vs control group;△P<0.05 vs AngⅡgroup.
Group α-SMA mRNA Protein Control 210±30 199±25 AngⅡ 270±15* 796±55**HGF 120±41** 119±11*AngⅡ+HGF 150±23*△ 398±23*△
圖2 各組HK-2細(xì)胞中α-SMA蛋白表達(dá)電泳圖Fig.2 Electrophoregram ofα-SMA protein expressions in HK-2cells in various groups
HGF是一種非組織特異性生長(zhǎng)因子,是目前已知生物活性最廣泛的生長(zhǎng)因子之一,其可以刺激多種上皮細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞進(jìn)行有絲分裂、運(yùn)動(dòng)以及小管形態(tài)的發(fā)生[8]。HGF作為一種有效的、拮抗纖維化形成的內(nèi)源性因子,已經(jīng)被用于治療腎纖維化的實(shí)驗(yàn)及臨床研究中[9]。腎小管上皮細(xì)胞在某種刺激下激活,可表達(dá)α-SMA,顯示出肌成纖維細(xì)胞的形態(tài),增殖能力加強(qiáng),并產(chǎn)生大量間質(zhì)基質(zhì)成分,這一過程稱為TEMT。TEMT被認(rèn)為是一個(gè)相互協(xié)作、調(diào)節(jié)精準(zhǔn)的過程,包括4個(gè)重要步驟:①腎小管上皮細(xì)胞喪失細(xì)胞-細(xì)胞間連接,發(fā)生TEMT的早期,E-鈣黏蛋白的表達(dá)受抑;②α-SMA再表達(dá)和肌動(dòng)蛋白重組,利于轉(zhuǎn)化細(xì)胞遷移、侵襲、甚至獲得收縮能力,可以作為TEMT的標(biāo)志;③小管基底膜分裂破壞;④細(xì)胞遷移入侵能力增強(qiáng)。目前研究TEMT多以α-SMA為標(biāo)志。近期的研究結(jié)果[4]提示:腎間質(zhì)纖維化很大程度上是由于TEMT引起的,因此研究能夠抑制TEMT的物質(zhì)對(duì)防治腎間質(zhì)纖維化至關(guān)重要。國(guó)內(nèi)外的研究[10]及本課題組研究結(jié)果[3]顯示:HGF有逆轉(zhuǎn)TEMT的作用,但關(guān)于其具體機(jī)制尚在探討中,多數(shù)學(xué)者認(rèn)為其主要是通過對(duì)TGF-β1的抑制而實(shí)現(xiàn)的,目前有些研究[7,11-12]已顯示:HGF與AngⅡ的關(guān)系不容忽視。AngⅡ也是很強(qiáng)的致TEMT因子,前期的實(shí)驗(yàn)研究證實(shí)HGF與血管緊張素轉(zhuǎn)換酶抑制劑鹽酸貝納普利 (洛汀新)合用較單獨(dú)應(yīng)用HGF或洛汀新可更進(jìn)一步減輕腎間質(zhì)纖維化,二者有協(xié)同作用。而洛汀新的腎臟保護(hù)作用主要是由對(duì)AngⅡ的抑制作用而實(shí)現(xiàn)的,提示HGF亦可抑制AngⅡ,故兩者合用作用增強(qiáng),或通過其他途徑放大了洛汀新抑制AngⅡ的作用。
本研究結(jié)果顯示:與對(duì)照組比較,HGF組α-SMA mRNA和蛋白表達(dá)水平降低,促進(jìn)腎小管上皮細(xì)胞增生,而AngⅡ組α-SMA mRNA和蛋白的表達(dá)增多,抑制腎小管上皮細(xì)胞增生,說明HGF不但可以促進(jìn)腎小管上皮細(xì)胞增生,而且可以從基因及蛋白水平上抑制腎小管上皮細(xì)胞α-SMA的表達(dá),即可抑制TEMT;而AngⅡ可抑制細(xì)胞增生,促進(jìn)α-SMA的表達(dá),促進(jìn)TEMT,兩者作用相反。與單獨(dú)應(yīng)用AngⅡ?qū)Ρ?,同時(shí)加入HGF和AngⅡ時(shí),腎小管上皮細(xì)胞增生明顯,α-SMA的 mRNA及蛋白表達(dá)減少,即 HGF對(duì)AngⅡ抑制細(xì)胞增生及促進(jìn)TEMT方面有逆轉(zhuǎn)作用。本研究結(jié)果進(jìn)一步擴(kuò)充了HGF的作用機(jī)制,但在信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)方面需要深入探討。
[1]陳二林,陳 鐘.肝細(xì)胞生長(zhǎng)因子與肝臟疾病的研究進(jìn)展 [J].南通大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版,2013,33 (4):310-314.
[2]Wang HY,Yang LZ,Cui MJ,et al.Pathological changes,TGF-β1expression,and the effects of hepatocyte growth factor in 5/6nephrectomized rats [J].Ren Fail,2014,36 (3):393-399.
[3]Wang HY,Yang LZ,Cui MJ,et al.Hepatocyte growth factor-induced amelioration in chronic renal failure is associated with reduced expression ofα-smooth muscle actin [J].Renal Fail,2012,34 (7):862-870.
[4]Liu Y.New insight into epithelial-mesenchymal transition in kidney fibrosis[J].J Am Soc Nephrol,2010,21 (2):212-222.
[5]Yan Z,Yao F,Zhang LP,et al.Effects of irbesartan on expression of glycogen synthase kinase-3βin tubular epithelialmesenchymal transition induced by high glucose [J].Chin Pharmacol Bull,2009,25 (2):225-229.
[6]Chen J,Chen JK,Harris RC.Angiotensin Ⅱ induces epithelial-to-mesenchymal in renal epithelial cells through reactive oxygen species/Src/caveolin-mediated activation of an epidermal growth factor receptor-tracellular signal-regulated kinase signaling pathway [J].Mol Cell Biol,2012,32 (5):981-991.
[7]Wang HY,Wang YJ,Cui MJ,et al.Hepatocyte growth factor-induced amelioration in renal interstitial fibrosis is associated with reduced expression ofα-smooth muscle actin and transforming growth factor-β1 [J].Indian Biochem Biophys,2011,48 (5):308-315.
[8]Forte G,Minieri M,Cossa P,et al.Hepatocyte growth factor effects on mesenchymal stem cells:proliferation,migration,and differention [J].Stem cells,2006,24 (1):23-33.
[9]Nakamura T,Sakai K,Nakamura T,et al.Hepatocyte growth factor twenty years on:Much more than a growth factor[J].J Gastroenterol Hepatol,2011,26 (Suppl 1):188-202.
[10]崔清波,郭曉輝,楊書龍.HGF對(duì)TGF-β1誘導(dǎo)的α-SMA陽性肌腱成纖維細(xì)胞的影響 [J].哈爾濱醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2014,48 (1):9-12.
[11]Finckenberg P,Eriksson O,Baumann M,et al.Caloric restriction ameliorates angiotensin Ⅱ-induced mitochondrial remodeling and cardiac hypertrophy [J]. Hypertension,2012,59 (1):76-84.
[12]Liu Y,Shi QF,Qi M,et al.Interruption of hepatocyte growth factor signaling augmented oridonin-induced death in human non-small cell lung cancer A549cells via c-Met-nuclear factor-κB-cyclooxygenase-2 and c-Met-Bcl-2-caspase-3 pathways [J].Biol Pham Bull,2012,35 (7):1150-1158.
吉林大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版)2015年4期