毛 磊,徐 慧,田迎櫻,徐 杰,王玉明,王靜鳳*,薛長湖
(中國海洋大學食品科學與工程學院,山東 青島 266003)
葉瓜參長鏈堿抑制3T3-L1前脂肪細胞分化作用機制
毛磊,徐慧,田迎櫻,徐杰,王玉明,王靜鳳*,薛長湖
(中國海洋大學食品科學與工程學院,山東 青島266003)
目的:研究葉瓜參長鏈堿(long-chain base from the sea cucumber Cucumaria frondosa,Cf-LCB)對3T3-L1前脂肪細胞分化的作用,并探 討其作用機制。方法:以四甲基偶氮唑藍(methyl thiazolyl tetrazolium,MTT)法檢測Cf-LCB對3T3-L1前脂肪細胞增殖活性的影響;采用傳統(tǒng)雞尾酒法誘導3T3-L1前脂肪細胞分化為成熟脂肪細胞,分別采用油紅O染色和甘油三酯(triglycerides,TG)含量測定法評價其對3T3-L1前脂肪細胞分化的影響;反轉(zhuǎn)錄實時熒光定量聚合酶鏈式反應(yīng)(quantity real-time reverse transcript polymerase chain reaction,qRT-PCR)法檢測脂肪細胞分化關(guān)鍵基因CCAAT增強子結(jié)合蛋白α(CCAAT/enhancer binding protein alpha,C/EBPα)、過氧化物酶體增殖物激活受體γ(peroxisome proliferators-activated receptors gamma,PPARγ)以及WNT/β-catenin通路關(guān)鍵基因WNT10b(wingless-type MMTV integration site family members)、卷曲蛋白1(frizzled protein1,F(xiàn)Z1)、低密度脂蛋白受體相關(guān)蛋白6(LDL-receptor-related protein6,LRP6)和β-連環(huán)蛋白(β-catenin)的mRNA表達水平;Western blotting法檢測WNT/β-catenin通路關(guān)鍵基因LRP6和β-catenin的蛋白表達量。結(jié)果:Cf-LCB能顯著抑制3T3-L1前 脂肪細胞的增殖;抑制3T3-L1細胞脂滴形成以及C/EBPα和PPARγ mRNA表達;顯著上調(diào)WNT/β-catenin通路關(guān)鍵基因FZ1、LRP6和β-catenin mRNA表達,對WNT10b的表達無影響;顯著促進LRP6和β-catenin的蛋白表達,提高核內(nèi)β-catenin含量。結(jié)論:Cf-LCB能夠顯著抑制3T3-L1前脂肪細胞分化,其作用機制與激活WNT/β-catenin通路有關(guān)。
葉瓜參;長鏈堿;3T3-L1前脂肪細胞;分化;WN T/β-catenin信號通路
肥胖是胰島素抵抗、2型糖尿病和心血管疾病等代謝綜合征的共同誘因,給人類健康和社會發(fā)展帶來嚴重危害[1]。研究表明,脂肪細胞過度分化是引起肥胖的重要原因[2],因此,控制脂肪細胞分化是預防和治療肥胖的重要途徑。Ahn等[3]研究發(fā)現(xiàn)WNT/β-catenin通路是脂肪細胞分化的“總開關(guān)”,WNT/β-catenin通路被激活后,最終通過抑制轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子CCAAT增強子結(jié)合蛋白α(CCAAT/ enhancer binding protein alpha,C/EBPα)和過氧化物酶體增殖物激活受體γ(peroxisome proliferators-activated receptors gamma,PPARγ)的表達抑制脂肪細胞分化。
長鏈堿(long-chain base,LCB)是鞘脂的特征性結(jié)構(gòu),屬于最簡單的鞘脂類化合物[4]。海洋無脊椎動物的LCB更易被機體吸收,且具有更強的生理活性[5]。目前國內(nèi)外關(guān)于海參LCB的研究較少,主要發(fā)現(xiàn)其具有抗腫瘤[6-7]、改善糖脂代謝[4]功能。然而,關(guān)于海參長鏈 堿對脂肪細胞功能影響的研究尚未見報道。
不同海參中鞘脂含量差異較大,有研究表明,葉瓜參是鞘脂含量較高的物種,可作為制備LCB的原料[8]。徐杰[9]通過液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀分析確認葉瓜參長鏈堿(long-chain base from the sea cucumber Cucumaria frondosa,Cf-LCB)主要包括d18∶2、d17∶1、d18∶3和d19∶34 種,其相對分子質(zhì)量范圍為238.4~320.5。本實驗從葉瓜參中制備得長鏈堿,研究Cf-LCB對3T3-L1前脂肪細胞增殖和分化的作用,并對其作用機制進行探討,為葉瓜參長鏈堿的進一步開發(fā)利用提供理論依據(jù),為預防和治療肥胖等代謝綜合征藥物的篩選提供科學依據(jù)。
1.1材料
葉瓜參(Cucumaria frondosa)干品,購自青島市南山水產(chǎn)市場;3T3-L1前脂肪細胞株,購自美國模式培養(yǎng)物保藏所(American Type Culture Collection,ATCC)。
1.2試劑
DMEM培養(yǎng)基美國Gibco公司;胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)美國Hyclone公司;四甲基偶氮唑藍(methyl thiazolyl tetrazolium,MTT)、二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO)、3-異丁基-1-甲基黃嘌呤(3-isobutyl-1-methylxanthine,IBMX)、地塞米松(dexamethasone,DEX)、胰島素、油紅O染料、胰蛋白酶美國Sigma公司;乳酸脫氫酶(lactic dehydrogenase,LDH)活性檢測試劑盒南京建成生物工程研究所;甘油三酯(triglycerides,TG)測定試劑盒北京Aibio公司;Trizol美國Invitrogen公司;M-MLV逆轉(zhuǎn)錄酶日本TaKaRa公司;SYBR Green熒光染料瑞士Roche公司;C/EBPα抗體、PPARγ抗體美國Abcam公司;30%丙烯酰胺、四甲基乙二胺(tetramethylethylenediamine,TEMED)、RIPA裂解液、牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)北京索萊寶科技有限公司;超敏發(fā)光液北京普利萊基因有限公司;脫脂牛奶美國BD公司;所有檢測基因引物均由生工生物工程(上海)股份有限公司合成;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。
1.3儀器與設(shè)備
2711型CO2培養(yǎng)箱德國Heraeus公司;DL-CJ-1N型超凈工作臺北京東聯(lián)哈爾儀器制造有限公司;IX51型倒置顯微鏡日本Olympus公司;HH-8型數(shù)顯恒溫水浴鍋金壇市雙捷實驗儀器廠;iQ5型實時熒光定量聚合酶鏈式反應(yīng)(quantity real-time polymerase chain reaction,qPCR)儀、680型酶標儀美國Bio-Rad公司;DYCP-40C型半干型轉(zhuǎn)膜工作儀、WD-9405A型脫色搖床北京六一儀器廠;EPS 600型電泳儀上海天能科技有限公司;PVDF膜美國Milipore公司;JS-780型全自動凝膠成像分析儀上海培清科技有限公司;Laborota 4000型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀德國Heidolph公司;1260型高效液相色譜儀美國Agilent公司。
1.4方法
1.4.1Cf-LCB的制備
稱取1 kg葉瓜參粉末,用4.5 L氯仿-甲醇(2∶1,V/V)浸提12 h,過濾。反復浸提3 次,合并浸提液,并旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至干,得脂質(zhì)粗提物。將脂質(zhì)粗提物經(jīng)4 mol/L KOH在37 ℃條件下皂化1 h,冷卻后用氯仿萃取3 次(氯仿、甲醇、水的體積比為2∶1∶0.9),收集下層組分,減壓濃縮至干。然后,用1 mol/L鹽酸80 ℃酸解反應(yīng)16 h,冷卻后用相同體積的正己烷萃取3 次,舍棄正己烷相,并調(diào)pH值至10。最后以0.5 倍體積乙醚萃取得到長鏈堿粗提物。采用正向硅膠柱層析法分離得到較純的Cf-LCB。經(jīng)高效液相色譜法分析,其純度在86%以上。實驗前,Cf-LCB溶解于DMSO中,且細胞培養(yǎng)液中DMSO的終體積分數(shù)小于0.1%。
1.4.23T3-L1前脂肪細胞的培養(yǎng)與分化
3T3-L1前脂肪細胞培養(yǎng)于含有體積分數(shù)10% FBS、100 μg/mL鏈霉素以及100 U/mL青霉素的DMEM培養(yǎng)基中,以0.25%胰酶消化傳代,于37 ℃、5% CO2且相對濕潤的孵箱中常規(guī)傳代貼壁培養(yǎng)。
取對數(shù)生長期的3T3-L1前脂肪細胞,以2×104個/孔接種于24 孔板中。待細胞融合后接觸抑制48 h(記為分化第0天),將細胞培養(yǎng)液換為含有0.5 mmol/L IBMX、1 μmol/L DEX、10 μg/mL胰島素和10% FBS的DMEM培養(yǎng)基。培養(yǎng)48 h后,再換用含10 μg/mL胰島素和10% FBS的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)48 h。以后每2 d更換1 次完全培養(yǎng)液(含10% FBS的DMEM培養(yǎng)基),并于第8天檢測脂肪含量。
1.4.3Cf-LCB對3T3-L1前脂肪細胞增殖活性的影響
取對數(shù)生長期的3T3-L1前脂肪細胞,以2×103個/孔接種于96 孔板中。貼壁培養(yǎng)24 h后棄培養(yǎng)基,將細胞分為對照組和Cf-LCB低、中、高劑量組,其中對照組不添加Cf-LCB,Cf-LCB低、中、高劑量組中Cf-LCB的含量分別為25、50、100 μg/mL,每組4 個復孔,每孔200 μL。培養(yǎng)96 h后,采用MTT法測定各處理組細胞在570 nm波長處吸光度(A570nm),按照下式計算細胞增殖率。
1.4.4Cf-LCB對3T3-L1前脂肪細胞培養(yǎng)上清液中乳酸脫氫酶活性的影響
細胞接種及加樣方法同1.4.3節(jié)。3T3-L1前脂肪細胞經(jīng)Cf-LCB作用96 h后,收集細胞培養(yǎng)上清液,采用試劑盒說明書方法測定上清液中LDH活性。
1.4.5Cf-LCB對3T3-L1前脂肪細胞分化的影響
3T3-L1前脂肪細胞以2×104個/孔接種于24 孔板中,按1.4.2節(jié)所述方法誘導細胞分化,在細胞分化第0天將細胞分為對照組和Cf-LCB低、中、高劑量組,加樣量同1.4.3節(jié)。將分化第8天的脂肪細胞用10%多聚甲醛固定1 h,0.5%油紅O染色30 min后,于倒置顯微鏡下觀察并拍照。拍照結(jié)束后,每孔加入800 μL異丙醇溶解與脂肪細胞結(jié)合的油紅O染液,并于490 nm波長處測定吸光度,半定量檢測脂肪細胞內(nèi)的脂肪含量。
1.4.6脂肪細胞中TG含量測定
3T3-L1前脂肪細胞以2×104個/孔接種于24 孔板中,按1.4.2節(jié)所述方法誘導細胞分化。至分化第8天,將脂肪細胞以0.5% BSA饑餓處理12 h,將細胞分為對照組和Cf-LCB低、中、高劑量組,加樣量同1.4.3節(jié)。繼續(xù)培養(yǎng)48 h后,用冰預冷的裂解液裂解細胞30 min,收集細胞裂解液,離心后收集上清液,采用試劑盒測定上清液中TG及蛋白質(zhì)含量。細胞中TG含量表示為TG質(zhì)量/蛋白質(zhì)質(zhì)量(mg/mg)。
1.4.7qRT-PCR法檢測脂肪細胞分化關(guān)鍵基因C/EBPα、PPARγ和WNT/β-catenin通路關(guān)鍵基因WNT10b、FZ1、LRP6、β-catenin mRNA的表達
3T3-L1前脂肪細胞以4.5×104個/孔接種于6 孔板中,按1.4.2節(jié)所述方法誘導細胞分化,于分化第0天時,分為對照組和Cf-LCB高劑量組(100 μg/mL)。分別至分化第0、2、4、8天時,采用Trizol法提取細胞中RNA。每組取1 μg RNA逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,以逆轉(zhuǎn)錄得到的cDNA為模板,qRT-PCR法檢測C/EBPα、PPARγ、WNT10b(wingless-type MMTV integration site family members)、卷曲蛋白1(frizzled protein1,F(xiàn)Z1)、低密度脂蛋白受體相關(guān)蛋白6(LDL-receptor-related protein6,LRP6)和β-連環(huán)蛋白(β-catenin)的mRNA表達。以β-actin作為內(nèi)參校正基因,基因的相對表達量以目的基因表達量/ β-actin表達量表示,引物序列見表1。
表1 3T3-L1前脂肪細胞分化和WNT/ -catenin通路關(guān)鍵基因引物序列Table 1 Primer sequences of the key factors for adipocytes differentiation and WNT/ -catenin pathway
1.4.8Western blotting法檢測WNT/β-catenin通路關(guān)鍵基因蛋白表達
3T3-L1前脂肪細胞以4.5×104個/孔接種于6 孔板中,按1.4.2節(jié)所述方法誘導細胞分化,于分化第0天時,分為對照組和Cf-LCB高劑量組(100 μg/mL)。于分化第4天時,提取細胞內(nèi)總蛋白和細胞核蛋白。采用Western blotting法測定LRP6、β-catenin的蛋白表達量。以β-actin作為總蛋白內(nèi)參,TATA結(jié)合蛋白(TATA-binding protein,TBP)為核蛋白內(nèi)參,蛋白質(zhì)的相對表達以目的蛋白表達量/β-actin(TBP)表達量表示。
1.5數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析
2.1Cf-LCB對3T3-L1前脂肪細胞增殖的影響
圖1 1 CfCf-LCB對3T3-L1前脂肪細胞增殖活性的影響Fig.1 Effect of Cf-LCB on the proliferation of 3T3-L1 preadipocytes
由圖1可知,Cf-LCB作用96 h后,能極顯著抑制3T3-L1前脂肪細胞的增殖(P<0.01),平均抑制率為20.07%。
2.2Cf-LCB對3T3-L1前脂肪細胞的毒性作用
LDH廣泛存在于所有組織細胞的胞質(zhì)中,當細胞膜結(jié)構(gòu)受到損傷時,細胞質(zhì)中的LDH會釋放到培養(yǎng)液中[10],因此,測定培養(yǎng)液中LDH活性可以反映受試物對細胞的損傷情況[11]。由圖2可知,Cf-LCB對3T3-L1前脂肪細胞培養(yǎng)上清液中LDH活性無顯著影響,說明其對3T3-L1前脂肪細胞無毒性作用,進一步證明了Cf-LCB對3T3-L1前脂肪細胞的增殖具有抑制作用。
圖2 2 CfCf-LCB對3T3-L1前脂肪細胞培養(yǎng)上清液中LDH活性的影響Fig.2 Effect of Cf-LCB on the activity of LDH in the supernatant of 3T3-L1 preadipocytes
2.3Cf-LCB對3T3-L1前脂肪細胞分化的影響
油紅O是一種脂溶性染料,可特異性地使細胞中的中性脂肪著色。油紅O染色結(jié)果顯示(圖3),從分化第0天開始加樣,Cf-LCB能顯著地降低3T3-L1成熟脂肪細胞數(shù)目及脂肪細胞中脂滴含量。半定量結(jié)果顯示,Cf-LCB對3T3-L1前脂肪細胞分化的平均抑制率為29.05%(P<0.01)。
圖3 3 CfCf-LCB對3T3-L1前脂肪細胞分化的影響Fig.3 Effect of Cf-LCB on the differentiation of 3T3-L1 preadipocytes
2.4Cf-LCB對已分化的3T3-L1前脂肪細胞TG含量的影響
圖4 4 CfCf-LCB對已分化的3T3-L1前脂肪細胞脂質(zhì)積累的影響Fig.4 Effect of Cf-LCB on the lipid accumulation of differentiated 3T3-L1 adipocytes
如圖4所示,與對照組相比,Cf-LCB能顯著降低細胞中TG含量,且劑量-效應(yīng)關(guān)系明顯,Cf-LCB劑量組TG含量平均降低20.44%(P<0.01)。
2.5Cf-LCB對3T3-L1前脂肪細胞分化關(guān)鍵基因C/EBPα和PPARγ mRNA相對表達量的影響
圖5 分化不同時期CCff--LLCCBB對 C/EEBBPPα、PPPPAARRγ mRNA相對表達量的影響Fig.5 Effect of Cf-LCB on mRNA expression of C/EBPα and PPARγ at different differentiation stages of 3T3-L1 preadipocytes
由圖5可知,隨著脂肪細胞分化過程的進行,C/EBPα和PPARγ的mRNA相對表達量逐漸升高,且PPARγ mRNA的相對表達量在分化第4天時達到最大。經(jīng)Cf-LCB干預后,C/EBPα mRNA的相對表達量在第4天和第8天分別降低了35.34%和50.00%(P<0.01);PPARγ mRNA的相對表達量在第4天和第8天分別降低了53.18%和47.71%(P<0.01)。
2.6Cf-LCB對WNT/β-catenin通路關(guān)鍵基因mRNA表達量的影響
由圖6可知,隨著3T3-L1前脂肪細胞分化過程的進行,WNT10b、FZ1、LRP6和β-catenin的mRNA相對表達量均呈下降趨勢。加入Cf-LCB干預后,F(xiàn)Z1、LRP6和β-catenin的mRNA相對表達量極顯著升高(P<0.01)。在分化的第4天,F(xiàn)Z1、LRP6和β-catenin的mRNA相對表達量分別升高了39.00%、52.68%和56.98%,在分化的第8天,F(xiàn)Z1、LRP6和β-catenin的mRNA相對表達量分別升高了25.80%、39%和137.11%。加入Cf-LCB干預后,WNT10b mRNA的相對表達量較對照組無顯著性變化,均處于較低水平。
圖6 分化不同時期CCff-LCB對WWNNTT//β-catenin通路關(guān)鍵基因mRRNNAA相對表達量的影響Fig.6 Effect of Cf-LCB on mRNA expressions of the key factors for WNT/β-catenin pathway at different differentiation stages of 3T3-L1 preadipocytes
2.7Cf-LCB對WNT/β-catenin通路關(guān)鍵基因蛋白表達的影響
LRP6和β-catenin是WNT/β-catenin通路的重要組成部分,也是脂肪細胞分化的重要負調(diào)控因子。上述實驗已經(jīng)證明在脂肪細胞分化第4天時,Cf-LCB增強WNT/ β-catenin通路的作用效果最佳。為了進一步驗證Cf-LCB對WNT/β-catenin的影響,本實驗測定了分化第4天時,100 μg/mL Cf-LCB對LRP6和β-catenin蛋白表達的影響。如圖7所示,Cf-LCB能顯著促進LRP6和β-catenin蛋白表達(P<0.01)。與對照組細胞相比,經(jīng)100 μg/mL Cf-LCB干預后,LRP6和β-catenin蛋白的相對表達量分別升高了286.84%和55.40%。WNT/β-catenin通路激活后,β-catenin在細胞質(zhì)中積累并轉(zhuǎn)移到細胞核中調(diào)控與脂肪細胞分化有關(guān)基因的表達。如圖7c所示,Cf-LCB能顯著促進細胞核內(nèi)β-catenin的含量。100 μg/mL Cf-LCB作用后的細胞,其細胞核內(nèi)β-catenin的含量比對照組增加了46.97%(P<0.01)。
圖7 分化第4天 時CCff-LCB對WWNNTT//β-catenin通路關(guān)鍵基因蛋白表達的影響Fig.7 Effect of Cf-LCB on protein expression in WNT/β-catenin pathway at day 4 of differentiation
脂肪細胞在機體能量代謝及平衡中發(fā)揮著重要作用[1]。脂肪細胞分化是細胞數(shù)量增加、體積增大及TG累積的過程[12]。研究表明,脂肪細胞分化過程紊亂可能是誘發(fā)肥胖及其他代謝綜合征的一個重要原因[13]。本實驗以3T3-L1前脂肪細胞為研究對象,考察了Cf-LCB對其分化的影響。結(jié)果表明,Cf-LCB能顯著抑制3T3-L1前脂肪細胞的增殖,降低3T3-L1成熟脂肪細胞數(shù)目及脂肪細胞中脂滴含量,減少TG在脂肪細胞內(nèi)的積累,提示其具有潛在的抗肥胖功效。
C/EBPα和PPARγ主要存在于脂肪細胞中,是脂肪細胞分化的兩個最重要的轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子[14]。研究證明,在沒有任何外界激素的刺激下,C/EBPα的激活可以單獨誘導脂肪細胞的分化[15]。PPARγ是唯一被證明在脂肪細胞分化中必不可少的轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子,功能喪失實驗證明PPARγ在脂肪細胞分化中是不可取代的[16]。本研究結(jié)果表明,Cf-LCB能顯著抑制C/EBPα和PPARγ的表達,證明其對脂肪細胞分化具有抑制作用。
WNT/β-catenin通路在細胞增殖及分化中發(fā)揮重要作用,研究發(fā)現(xiàn),在脂肪組織中激活WNT/β-catenin通路,不僅會引起脂肪細胞分化受阻,甚至導致成熟脂肪細胞去分化[17]。WNT10b是參與WNT/β-catenin通路的主要WNT蛋白,WNT10b與前脂肪細胞細胞膜上的FZ受體及LRPs輔助受體結(jié)合可導致WNT/β-catenin通路被激活[18]。WNT10b在前脂肪細胞中高表達,而隨著脂肪細胞分化的進行,其表達量急劇降低,與脂肪含量成負相關(guān)[19],本實驗結(jié)果與此結(jié)論一致。FZ及LRPs對于WNT/ β-catenin通路也具有重要的調(diào)控作用[20]。研究表明,LRP6缺失型小鼠胚胎可以自發(fā)地誘導脂肪細胞分化[21]。體外添加FZ的抑制劑可以在沒有任何外界刺激的情況下誘導3T3-L1細胞分化為成熟脂肪細胞[3]。本研究發(fā)現(xiàn),Cf-LCB可以顯著增強FZ1和LRP6的表達,這提示Cf-LCB可能通過提高FZ1及LRP6的表達而激活WNT/β-catenin通路。WNT/β-catenin通路被激活后,細胞質(zhì)中的β-catenin積累并轉(zhuǎn)移到細胞核中[22]。作為WNT/β-catenin通路的關(guān)鍵因子,β-catenin的高表達對于抑制脂肪細胞分化具有重要作用[23]。本研究發(fā)現(xiàn),Cf-LCB增強了β-catenin的表達,并促進其向細胞核轉(zhuǎn)移,這提示Cf-LCB通過激活WNT/β-catenin通路抑制脂肪細胞分化。
綜上所述,Cf-LCB通過上調(diào)WNT/β-catenin通路中關(guān)鍵受體FZ1和LRP6的表達啟動WNT/β-catenin通路,并通過提高β-catenin的表達及穩(wěn)定性,從而增強β-catenin向細胞核轉(zhuǎn)移及轉(zhuǎn)錄活性,抑制C/EBPα和PPARγ的表達,進而抑制3T3-L1前脂肪細胞向成熟脂肪細胞分化。
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Suppressive Effect of Long-Chain Base from Sea Cucumber Cucumaria frondosa on the Differentiation of 3T3-L1 Preadipocytes and Underlying Mechanism
MAO Lei, XU Hui, TIAN Yingying, XU Jie, WANG Yuming, WANG Jingfeng*, XUE Changhu
(College of Food Science and Engineering, Ocean University of China, Qingdao266003, China)
The aim of the present study was to observe the effect of Cf-LCB on the proliferation and differentiation of 3T3-L1 preadipocytes and to investigate the possible underlying mechanism. The effect of Cf-LCB on the proliferation of 3T3-L1 preadipocytes was evaluated by MTT assay. After using differentiation cocktail to differentiate 3T3-L1 preadipocytes, the effect of Cf-LCB on the differentiation of 3T3-L1 preadipocytes was evaluated by oil red O-staining and determining TG content. mRNA expression levels of key genes associated with differentiation and WNT/β-catenin signal pathway in 3T3-L1 preadipocytes were measured by qRT-PCR. Expression levels of key prote ins in WNT/β-catenin signal pathway were measured by Western blotting. Results showed that Cf-LCB significantly inhibited the proliferation o f 3T3-L1 preadi pocytes, prevented the formation of lipid droplets in mature 3T3-L1 adipocytes and down-regulated C/EBPα and PPARγ. The mRNA expression of FZ1, LRP6 and β-catenin was distinctly enhanced by Cf-LCB, suggesting activation of WNT/β-catenin pathway. The increased protein expressions of key factors in WNT/β-catenin pathway including LRP6,total and nuclear β-catenin further demonstrated that Cf-LCB could markedly suppress the proliferation and differentiation of 3T3-L1 preadipocytes by activating WNT/β-catenin pathway.
Cucumaria frondosa; long-chain base; 3T3-L1 preadipocytes; adipogenesis; WNT/β-catenin signal pathway
R282.77
A
1002-6630(2015)23-0241-06
10.7506/spkx1002-6630-201523044
2015-06-25
國家自然科學基金面上項目(31371876;31201329)
毛磊(1991—),女,碩士研究生,研究方向為海洋生物活性物質(zhì)。E-mail:1164161817@qq.com
王靜鳳(1964—),女,教授,博士,研究方向為海洋生物活性物質(zhì)及分子營養(yǎng)學。E-mail:jfwang@ouc.edu.cn