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        單寧酸對(duì)臨床菌株的抗菌活性及其對(duì)生物膜的影響

        2015-10-13 02:57:02尉驍侯淵博周鐵麗陳華樂(lè)李斌杜佳曹建明
        關(guān)鍵詞:耐藥

        尉驍,侯淵博,周鐵麗,陳華樂(lè),李斌,杜佳,曹建明

        (1.溫州醫(yī)科大學(xué) 檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)院、生命科學(xué)學(xué)院,浙江 溫州 325035;2.溫州醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)中心,浙江 溫州 325015)

        單寧酸對(duì)臨床菌株的抗菌活性及其對(duì)生物膜的影響

        尉驍1,侯淵博1,周鐵麗2,陳華樂(lè)2,李斌2,杜佳2,曹建明1

        (1.溫州醫(yī)科大學(xué) 檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)院、生命科學(xué)學(xué)院,浙江 溫州 325035;2.溫州醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)中心,浙江 溫州 325015)

        目的:分析單寧酸對(duì)臨床常見(jiàn)分離菌株的抗菌活性及其對(duì)生物膜的影響。方法:收集9種臨床常見(jiàn)分離菌株:金黃色葡萄球菌、表皮葡萄球菌、溶血葡萄球菌、糞腸球菌、屎腸球菌、大腸埃希菌、肺炎克雷伯菌、銅綠假單胞菌、鮑曼不動(dòng)桿菌。采用瓊脂稀釋法測(cè)定各種抗菌藥物對(duì)上述臨床菌株的最低抑菌濃度(MIC),根據(jù)藥敏試驗(yàn)結(jié)果,將每種臨床菌株分為多重耐藥(MDR)組和非多重耐藥(nMDR)組,分別從各組隨機(jī)抽取30株共540株菌作為實(shí)驗(yàn)菌株。采用瓊脂稀釋法檢測(cè)單寧酸對(duì)上述菌株的MIC值,比較2組的差異。將單寧酸加入到生物膜培養(yǎng)基里以檢測(cè)其對(duì)各組細(xì)菌生物膜形成的影響。結(jié)果:?jiǎn)螌幩釋?duì)9種臨床菌株均表現(xiàn)出較強(qiáng)的抗菌活性,其中對(duì)葡萄球菌屬細(xì)菌的抗菌活性明顯大于對(duì)其他菌的活性(P<0.05)。單寧酸對(duì)細(xì)菌生物膜形成有一定的抑制作用。結(jié)論:?jiǎn)螌幩釋?duì)臨床常見(jiàn)分離菌株有抗菌作用且可以影響生物膜的形成。

        單寧酸;多重耐藥;抗菌活性;生物膜

        近年來(lái),由于抗菌藥物的大量使用,臨床分離細(xì)菌的耐藥現(xiàn)狀日益嚴(yán)峻,各種耐藥細(xì)菌相繼出現(xiàn),嚴(yán)重威脅著人類健康[1]。盡管人們正在努力控制耐藥細(xì)菌的增加并不斷研制各種新型抗菌藥物來(lái)消滅這些細(xì)菌,但細(xì)菌的變異速度及耐藥基因的傳播速度遠(yuǎn)遠(yuǎn)快于人們發(fā)現(xiàn)新型抗菌藥物的速度[2]。傳統(tǒng)藥方中的兒茶膏、五倍子等,主要有效成分為單寧酸(tannic acid),一直以來(lái)就有保護(hù)傷部、防止傷口感染等功效[3-4],但是關(guān)于其具體的抗菌活性以及對(duì)細(xì)菌生物膜抑制作用的相關(guān)研究尚少。本實(shí)驗(yàn)就以上兩個(gè)方面對(duì)單寧酸進(jìn)行研究分析。

        1 材料和方法

        1.1 材料

        1.1.1 菌株及來(lái)源:實(shí)驗(yàn)菌株包括金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus,S.aureus)、表皮葡萄球菌(Staphylococcus epidermidis,S.epidermidis)、溶血葡萄球菌(Staphylococcus haemolyt icus,S.haemolyt icus)、大腸埃希菌(Escherichia coli,E.coli)、糞腸球菌(Enterococcus faecalis,E.faecal is)、屎腸球菌(Enterococcus faecium,E.faecium)、肺炎克雷伯菌(Klebsiel la pneumoniae,K.pneumoniae)、銅綠假單胞菌(Pseudomonas aeruginosa,P.aeruginosa)、鮑曼不動(dòng)桿菌(Acinetobacter baumannii,A.baumannii)均分離自2013-2014年溫州醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院臨床送檢的各類標(biāo)本。所有菌株經(jīng)VITEK全自動(dòng)微生物分析儀鑒定確認(rèn)。E.col i ATCC25922、P.aeruginosa ATCC27853、K.pneumoniae ATCC13883、A.baumannii ATCC19606、S.aureus ATCC25923購(gòu)自美國(guó)國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)菌種保藏中心(ATCC)。

        1.1.2 儀器與試劑:VITEK細(xì)菌鑒定儀(法國(guó)生物梅里埃公司);全功能微孔板檢測(cè)酶標(biāo)儀(美國(guó)Biotek公司);單寧酸(Solarbio公司);無(wú)菌磷酸鹽緩沖液(美國(guó)Thermo公司);液體LB培養(yǎng)基、胰蛋白酶大豆肉湯培養(yǎng)基、營(yíng)養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基(英國(guó)Oxid公司);MTS測(cè)試條(意大利Liof ilchem公司);頭孢菌素類、碳青霉烯類、大環(huán)內(nèi)酯類、氟喹諾酮類、氨基糖苷類、四環(huán)素類、糖肽類等抗菌藥物標(biāo)準(zhǔn)品購(gòu)自中國(guó)食品藥品檢定研究院。

        1.2 方法

        1.2.1 藥敏試驗(yàn):所有臨床菌株經(jīng)VITEK全自動(dòng)微生物分析儀進(jìn)行常用抗菌藥物的敏感性檢測(cè),同時(shí)采用瓊脂稀釋法測(cè)定抗菌藥物對(duì)臨床菌株的最低抑菌濃度(minimal inhibi tory concent rat ion,MIC),藥敏結(jié)果解釋參照CLSI 2013標(biāo)準(zhǔn)[5],根據(jù)藥敏試驗(yàn)結(jié)果將9種臨床菌株分為多重耐藥(mul t idrugresistant,MDR)組和非多重耐藥(non-mul t idrugresistant,nMDR)組[6],從中各隨機(jī)抽取30株共540株菌作為本研究實(shí)驗(yàn)菌株。

        1.2.2 單寧酸抗菌實(shí)驗(yàn):采用瓊脂稀釋法測(cè)定單寧酸對(duì)試驗(yàn)菌株的MIC。①配制單寧酸溶液原液(200 mg·mL-1),備用。②以藥物原液為基礎(chǔ)進(jìn)行2倍系列稀釋,使其終濃度范圍為0.01~1.5 mg·mL-1。③分別取每一濃度藥物溶液2 mL加入一系列已做好標(biāo)記的內(nèi)徑為90 mm的平板內(nèi)。再取冷卻至50 ℃左右的MH瓊脂18 mL加入平板(藥物∶瓊脂=1∶9),并充分混勻,待室溫凝固后備用。④將0.5麥?zhǔn)蠞岫鹊母鞣N菌液稀釋10倍,用多頭接種儀吸取1~2 μL菌液接種在含藥平板上,置35 ℃孵育16~20 h。觀察菌落生長(zhǎng)情況,無(wú)菌落生長(zhǎng)的平板所含的單寧酸濃度即為單寧酸對(duì)該菌的MIC值。

        1.2.3 生物膜實(shí)驗(yàn):采用96孔板結(jié)晶紫染色法測(cè)定菌株體外生物膜形成能力。①菌株的活化:用接種環(huán)取一環(huán)純化后保存于-80 ℃的菌種,三區(qū)劃線接種到哥倫比亞血瓊脂平板上,35 ℃恒溫靜置培養(yǎng)18 h。②菌株的培養(yǎng):用接種環(huán)挑取上述培養(yǎng)后的單個(gè)菌落于4 mL LB培養(yǎng)基中,35 ℃條件下120 r/min振蕩培養(yǎng)18~20 h。吸取10 μL菌液至新鮮的4 mL LB培養(yǎng)基中進(jìn)行亞培養(yǎng)。同樣的方法共進(jìn)行3次亞培養(yǎng)。③生物膜的培養(yǎng):將亞培養(yǎng)后獲得的菌液用LB調(diào)至0.5麥?zhǔn)蠞岫?,然后?0 μL菌液加入到含有190 μL LB培養(yǎng)基的96孔細(xì)胞培養(yǎng)板,作為陰性對(duì)照;吸10 μL菌液和10 μL濃度為1.6 mg·mL-1的單寧酸加入到含有180 μL LB培養(yǎng)基的96孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,作為實(shí)驗(yàn)組;每株菌同時(shí)做3個(gè)復(fù)孔,在最后3個(gè)孔中僅加入200 μL LB作為空白對(duì)照。35 ℃恒溫靜置培養(yǎng)24 h。④生物膜的測(cè)定:吸去上層浮游菌,在風(fēng)干后加入200 μL結(jié)晶紫染液,震蕩3~5次,靜置染色20 min,棄去染液,置自來(lái)水水流下沖洗染液,直至水流無(wú)顏色。隨后室溫下風(fēng)干,每孔各加200 μL無(wú)水乙醇,用200 μL移液器反復(fù)吹打,使生物膜均勻懸浮于無(wú)水乙醇中,隨即用酶標(biāo)儀測(cè)定其在A=595 nm條件下的OD值。重復(fù)3次,取平均值。

        1.2.4 電鏡實(shí)驗(yàn):①在生物膜的培養(yǎng)基里面放入0.5 cm×0.5 cm的玻璃板,細(xì)菌將在其上形成生物膜,培養(yǎng)24 h。②吸去2孔中的菌液,用鑷子取出蓋玻片,正面向上,濾紙置于蓋玻片一側(cè)吸去菌液,吸取無(wú)菌0.1 mol·L-1PBS滴于生物膜載體標(biāo)本上,靜置8 min,吸水紙從邊緣吸去PBS,重復(fù)操作漂洗2遍去除浮游菌。③蓋玻片置于底面鋪有濾紙的6孔培養(yǎng)皿內(nèi),37 ℃干燥1~2 h。④取一塊銅板,無(wú)水乙醇清洗表面,干燥后表面貼上導(dǎo)電膠。⑤將長(zhǎng)有生物膜的蓋玻片貼于導(dǎo)電膠上(正面向上),在銅板上蓋玻片對(duì)應(yīng)的位置進(jìn)行編號(hào)。⑥打開(kāi)鍍膜儀,進(jìn)行60 s鍍膜。⑦開(kāi)蓋取出銅板,上機(jī)進(jìn)行電鏡掃描。

        1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理方法 用SPSS 17.0軟件對(duì)MIC數(shù)據(jù)資料進(jìn)行Wilcoxon秩和檢驗(yàn),對(duì)不同組的生物膜吸光度OD值行獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 實(shí)驗(yàn)菌株對(duì)抗菌藥物的耐藥性 根據(jù)瓊脂稀釋法藥敏試驗(yàn)結(jié)果,將9種臨床菌株分為MDR組和nMDR組。MDR組中,金黃色葡萄球菌對(duì)慶大霉素、莫西沙星、環(huán)丙沙星、克林霉素、紅霉素、四環(huán)素、青霉素G均表現(xiàn)為耐藥或中介;大腸埃希菌對(duì)慶大霉素、妥布霉素、阿米卡星、氨曲南、頭孢唑啉、頭孢曲松、環(huán)丙沙星、氨芐西林-舒巴坦、復(fù)方新諾明表現(xiàn)為耐藥或中介;肺炎克雷伯菌對(duì)慶大霉素、妥布霉素、氨曲南、頭孢曲松、頭孢唑啉、氨芐西林-舒巴坦表現(xiàn)為耐藥或中介。值得注意的是,本次實(shí)驗(yàn)檢出15株廣泛耐藥(ext remely-drug resistant,XDR)肺炎克雷伯菌,藥敏試驗(yàn)結(jié)果顯示XDR肺炎克雷伯菌對(duì)三、四代頭孢菌素、氟喹諾酮類藥物、碳青霉烯類藥物、氨基糖苷類藥物、β-內(nèi)酰胺類/β-內(nèi)酰胺酶抑制劑復(fù)合物等各類臨床藥物都表現(xiàn)出高水平耐藥。銅綠假單胞菌對(duì)亞胺培南、頭孢他啶、哌拉西林-他唑巴坦、環(huán)丙沙星、左氧氟沙星表現(xiàn)為耐藥或中介;鮑曼不動(dòng)桿菌對(duì)慶大霉素、妥布霉素、亞胺培南、環(huán)丙沙星、左氧氟沙星、哌拉西林-他唑巴坦、頭孢他啶、頭孢曲松、頭孢吡肟、氨芐西林-舒巴坦、復(fù)方新諾明表現(xiàn)為耐藥或中介。

        2.2 單寧酸抗菌活性實(shí)驗(yàn)結(jié)果 結(jié)果表明,單寧酸對(duì)臨床常見(jiàn)分離菌株有一定的抗菌活性,其對(duì)革蘭陽(yáng)性菌的MIC均值小于對(duì)陰性菌的MIC均值,但革蘭陽(yáng)性菌中,葡萄球菌屬的MIC值與腸球菌的MIC值比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。另外,單寧酸對(duì)每種菌的MDR組和nMDR組的抗菌活性差異并無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),表明單寧酸對(duì)MDR也有很好的抗菌活性。見(jiàn)表1。

        表1 單寧酸對(duì)9種臨床菌株的抗菌活性

        2.3 單寧酸對(duì)生物膜的影響 從表2可以得出,各種臨床菌株均可以形成一定程度的生物膜,其中銅綠假單胞菌形成生物膜能力相對(duì)較強(qiáng)。與未加入單寧酸的OD595A相比,加入單寧酸后的OD595B明顯下降,且不論是MDR組和nMDR組,生物膜形成均減少,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),表明單寧酸可以抑制各類細(xì)菌生物膜的形成。

        表2 單寧酸對(duì)9種臨床菌株生物膜抑制能力

        2.4 生物膜掃描電鏡實(shí)驗(yàn) 掃描電鏡下觀察可見(jiàn),未加入單寧酸溶液時(shí),細(xì)菌生物膜數(shù)量較多,縱橫交織,加入單寧酸溶液后,生物膜數(shù)量明顯減少,密度明顯下降(見(jiàn)圖1)。

        圖1 掃描電鏡觀察單寧酸對(duì)生物膜的影響(×1 000)

        3 討論

        “超級(jí)細(xì)菌”泛指臨床上出現(xiàn)的多重耐藥菌,如耐甲氧西林金黃色葡萄球菌(MRSA)、抗萬(wàn)古霉素腸球菌(VRE)以及產(chǎn)碳青霉烯酶肺炎克雷伯菌(KPC)等[7-8]。本研究篩選的多重耐藥菌表現(xiàn)出強(qiáng)勁的耐藥特性,MRSA菌株對(duì)β-內(nèi)酰胺類、氨基糖苷類、氟喹諾酮類、安沙霉素類、林可酰胺類、大環(huán)內(nèi)脂類、四環(huán)素類藥物中介或耐藥;大腸埃希菌、銅綠假單胞菌、鮑曼不動(dòng)桿菌、肺炎克雷伯菌對(duì)β-內(nèi)酰胺類、青霉素類、β-內(nèi)酰胺酶抑制劑類、氟喹諾酮類等藥物中介或耐藥。另有15株肺炎克雷伯菌XDR菌株對(duì)除黏菌素和替加環(huán)素外的其他抗菌藥物全部耐藥。目前,新型抗菌藥物的研發(fā)速度遠(yuǎn)遠(yuǎn)不及多重耐藥菌株獲得耐藥性及克隆傳播耐藥基因的速度,使臨床醫(yī)務(wù)工作者即將面臨無(wú)藥可用的困境[2]。因此,加快研究利用中藥控制微生物感染已越來(lái)越受到重視。

        許多中藥具有良好的抗菌作用,如傳統(tǒng)藥方中的兒茶膏、五倍子等,其主要有效成分為單寧酸,可以用來(lái)保護(hù)傷部,防止傷口被細(xì)菌感染[4,9]。本次實(shí)驗(yàn)選取的菌株為臨床上常見(jiàn)的細(xì)菌,將所選取的細(xì)菌根據(jù)其耐藥性分為了MDR組和nMDR組??咕Y(jié)果表明,單寧酸對(duì)MDR組和nMDR組的抗菌活性差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,表明我們可以利用單寧酸來(lái)治療臨床多重耐藥細(xì)菌所導(dǎo)致的感染。單寧酸對(duì)葡萄球菌屬的抗菌活性高于對(duì)革蘭陰性菌的抗菌活性,提示單寧酸可在控制葡萄球菌感染中發(fā)揮作用。

        細(xì)菌生物膜是細(xì)菌生存的一種優(yōu)勢(shì)生活方式,細(xì)菌通過(guò)產(chǎn)生胞外基質(zhì)將細(xì)菌群體包裹起來(lái),阻隔抗菌藥物及免疫因素的清除作用,細(xì)菌一旦形成生物膜,其耐藥性將會(huì)增加幾倍甚至幾十倍,且細(xì)菌能在被膜內(nèi)長(zhǎng)期增殖,易導(dǎo)致慢性難治性感染[10]。而單寧酸可以很好地抑制細(xì)菌的生物膜形成,在0.08 mg·mL-1濃度下,細(xì)菌形成生物膜的數(shù)量明顯減少(P<0.05)。細(xì)菌生物膜數(shù)量減少,其對(duì)藥物的屏蔽作用減弱,有助于抗菌藥物直接作用于細(xì)菌,提高藥物的療效并減少耐藥。

        綜上所述,單寧酸不僅可以抑制非多重耐藥細(xì)菌的生長(zhǎng),還能抑制多重耐藥細(xì)菌的生長(zhǎng),更明顯地降低細(xì)菌生物膜的形成。對(duì)其進(jìn)行進(jìn)一步深入的研究有助于為使用單寧酸作為臨床抗菌藥物提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

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        (本文編輯:丁敏嬌)

        Antim icrobial activity of tannic acid and its effect on biofilm s of clinical isolates

        YU Xiao1,HOU Yuanbo1,ZHOU Tieli2,CHEN Huale2,LI Bin2,DU Jia2,CAO Jianming1. 1.School of Laboratory Medicine and Life Science,Wenzhou Medical University,Wenzhou,325035; 2.Department of Laboratory Medicine,the Frist Affliated Hospital of Wenzhou Medical University,Wenzhou,325015

        Ob jective:To analyze the antimicrobial activity of tannic acid against clinical isolates and its effect on biof lms. M ethods:Nine kinds of common clinical isolates,including Staphylococcus aureus,Staphylococcus epidermidis,Hemolytic staphylococci,Enterococcus faecalis,Enterococcus faecium,Escherichia coli,Klebsiella pneumoniae,Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii were collected. All kinds of antim icrobial agents were evaluated w ith agar dilution method for the m inimal inhibitory concentrations (M IC). According to the results of susceptibility testing,9 kinds of clinical isolates were divided into multidrug-resistant (MDR) group or non-multidrug-resistant group (nMDR). Thirty strains from each group were random ly selected as experimental strains. Agar dilution method was used to detect tannic acid M IC of the strain. The difference of the 2 groups to refect the tannic acid antibacterial activities of common clinical isolates w as com pared. The effect on the biof lm formation was detected by adding tannic acid into the biof lm culture medium. Results:Tannic acid showed strong antibacterial activity to the 9 kinds of clinical isolates,antibacterial activity to the Staphylothermus bacteria was signif cantly greater than those for the other bacteria (P<0.05). Tannic acid could inhibit the bacterial biof lm formation. Conclusion:Tannic acid has antibacterial effect to common clinical isolates and can infuence the formation of biof lm.

        tannin acid; multiple drug resistance; antim icrobial activity; biof lm

        R378;R282

        A DOI:10.3969/j.issn.2095-9400.2015.10.002

        2015-03-30

        國(guó)家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(81171614);浙江省衛(wèi)生高層次創(chuàng)新人才培養(yǎng)工程項(xiàng)目(浙衛(wèi)發(fā)[2012]241號(hào))。

        尉驍(1990-),男,山西運(yùn)城人,碩士生。

        曹建明,教授,Emai l:wzc jming@163.com。

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