王偉濤,蔣志國(guó),張海德,彭健,許英豪,董安華,楊雪芳,蔣欣欣
(海南大學(xué)食品學(xué)院,海南 ???570228)
木瓜蛋白酶(EC3.4.22.2)是由 212個(gè)氨基酸殘基組成的蛋白質(zhì)單鏈,具有耐高溫、穩(wěn)定性好、蛋白水解能力強(qiáng)等特征,在食品、醫(yī)藥等領(lǐng)域有廣泛的應(yīng)用[1-3]。對(duì)木瓜蛋白酶的分離純化技術(shù)進(jìn)行深入研究,提取高品質(zhì)的木瓜蛋白酶具有重要的應(yīng)用價(jià)值。而傳統(tǒng)提取木瓜蛋白酶的方法存在酶活性不穩(wěn)定、純度不高、工藝煩瑣且很難大規(guī)模生產(chǎn),不能滿足現(xiàn)代工業(yè)的需求[4],因此有必要尋找制備高品質(zhì)、高活性木瓜蛋白酶的新方法。
雙水相萃取技術(shù)(ATPS)是近幾年出現(xiàn)的、非常有應(yīng)用前途的一種新型生物化工分離技術(shù)。雙水相萃取技術(shù)的特點(diǎn)主要有[5-7]:①兩相間的界面張力小,有利于強(qiáng)化相際間的物質(zhì)傳遞;②操作條件溫和,體系含水量高,在接近生理環(huán)境的體系中進(jìn)行萃取,有助于保持生物活性;③傳質(zhì)和平衡速度快,回收率高,分相的時(shí)間短,能耗較低;④成相的聚合物(如PEG)對(duì)人體無(wú)害,對(duì)環(huán)境污染??;⑤可以采用多種手段來(lái)提高選擇性和回收率;⑥易于連續(xù)化操作,設(shè)備簡(jiǎn)單,所以雙水相技術(shù)特別適合生物活性物質(zhì)的萃取[8-10]。
離子液體是近十年來(lái)迅速發(fā)展起來(lái)的一種全新綠色介質(zhì)和功能材料,具有不易揮發(fā)、不可燃、穩(wěn)定性高、溶解能力強(qiáng)、功能可調(diào)節(jié)等優(yōu)點(diǎn),其應(yīng)用領(lǐng)域正不斷擴(kuò)大。離子液體雙水相體系(ionic liquids aqueous two-phase system,ILATPS)一般是由親水性離子液體、無(wú)機(jī)鹽和水形成的雙水相體系,它綜合了離子液體和雙水相體系的優(yōu)點(diǎn)[11]。作為一種新型高效的綠色分離體系,與傳統(tǒng)聚合物雙水相體系相比,離子液體雙水相具有黏度低、分相快、不易乳化、回收率高、離子液體可以循環(huán)利用等優(yōu)點(diǎn),因此越來(lái)越受到學(xué)術(shù)界及產(chǎn)業(yè)界的重視。目前,利用離子液體雙水相萃取的蛋白質(zhì)、氨基酸、酶等活性物質(zhì)已達(dá)數(shù)十種[12-18]。
目前,雙水相萃取木瓜蛋白酶的研究國(guó)內(nèi)外已有報(bào)道,但主要集中在PEG/鹽雙水相系統(tǒng)[2,19-23]。曹對(duì)喜等[20]建立了 PEG/(NH4)2SO4體系提取木瓜蛋白酶,探討了 PEG 分子量、PEG 質(zhì)量分?jǐn)?shù)、(NH4)2SO4質(zhì)量分?jǐn)?shù)、pH以及粗酶添加量對(duì)木瓜蛋白酶萃取效果的影響,酶活回收率為89.30%。涂紹勇等[22]對(duì) PEG/(NH4)2SO4雙水相系統(tǒng)提取木瓜蛋白酶進(jìn)行了研究,得到雙水相體系最佳條件為:PEG600 27%、(NH4)2SO421%、pH 7.0 和溫度 60℃。Nitsawang等[2]對(duì)比研究了雙水相萃取法與兩步鹽析法對(duì)木瓜蛋白酶的純化效果,采用8% PEG/15%(NH4)2SO4雙水相體系分離純化木瓜蛋白酶的純度較兩步鹽析法高,并減少了提取時(shí)間,但未對(duì)雙水相體系進(jìn)行系統(tǒng)的優(yōu)化。Ling等[19]將活性染料Reactive Red 120 添加到PEG/(NH4)2SO4雙水相系統(tǒng)中,對(duì)木瓜蛋白酶分配的成相條件進(jìn)行了優(yōu)化,木瓜蛋白酶的分配比為1.92,得率為50.09%。但是,體系中加入的游離親和染料Reactive Red 120 對(duì)木瓜蛋白酶的分配無(wú)影響。
相對(duì)離子液體雙水相,聚乙二醇雙水相存在黏度大,后續(xù)酶的分離較困難;分相慢,有些PEG雙水相系統(tǒng)需要離心才能徹底分相;易乳化,單次酶處理量不多;以及萃取率不高等現(xiàn)象[24]。本文擬把離子液體雙水相應(yīng)用于木瓜蛋白酶的提取,可為該體系的放大實(shí)驗(yàn)和工業(yè)化大規(guī)模生產(chǎn)提供理論指導(dǎo)。
木瓜蛋白酶(生化酶3500 U·mg?1),生工生物(上海)股份有限公司;[C2mim]Cl、[C4mim]Cl、[C6mim]Cl、[C4mim]Br、[C4mim]BF4,上海成捷化學(xué)有限公司;K2HPO4(分析純)、NaH2PO4(分析純),廣州化學(xué)試劑廠;其他都為市售分析純。
TU1901紫外可見(jiàn)分光光度計(jì),北京普析通用有限責(zé)任公司;DK-98-1型恒溫水浴鍋,天津泰斯特儀器有限公司;FTIR-850傅里葉變換紅外光譜儀,天津港東科技發(fā)展股份有限公司。
(1)木瓜蛋白酶活性的測(cè)定 以酪蛋白為底物,測(cè)定木瓜蛋白酶的活性[3]。
(2)蛋白質(zhì)含量的測(cè)定 采用考馬斯亮藍(lán)法測(cè)定雙水相中木瓜蛋白酶蛋白質(zhì)的濃度[25]。
(3)離子液體對(duì)酶活性的影響 配制質(zhì)量分?jǐn)?shù)為 5.0%、15.0%、25.0%、35.0%、45.0%的離子液體,各取2.0 ml加1.0 ml稀釋一定倍數(shù)的酶溶液,放置10.0 min后測(cè)其酶活性??瞻兹?.0 ml去離子水加1.0 ml稀釋相同倍數(shù)的酶溶液,放置10.0 min后測(cè)其酶活性。以酶活性比X為指標(biāo),考察各成相試劑對(duì)酶活性的影響。
(4)離子液體雙水相體系提取木瓜蛋白酶 取5.0 ml刻度冷凍管,加入0.25 g·ml?1(離子液體質(zhì)量/體系體積,以下同)的離子液體、0.35 g·ml?1的K2HPO4、2.0 mg·ml?1(木瓜蛋白酶的質(zhì)量/體系體積,以下同)木瓜蛋白酶溶液,體系pH 7.0,30℃。研究酸度影響時(shí)加入不同pH的B.R緩沖溶液1.0 ml,加去離子水至5.0 ml,空白加與酶溶液相同pH和等體積的酶稀釋液,30℃振蕩30 min,靜置至分相。讀取上下相的體積V,測(cè)定上相的蛋白濃度(mg·ml?1)和酶活性濃度(U·ml?1),計(jì)算公式如下
式中,Ye為酶活性回收率,%;Etop為上相酶活性濃度,U·ml?1;Vtop為上相體積,ml;Me為加入體系的總酶活性,U。
式中,Yp為蛋白回收率,%;Ptop為上相蛋白濃度,U·ml?1;Mp為加入體系的總蛋白質(zhì)量,mg。
式中,SA為木瓜蛋白酶比活力,U·mg?1;E為酶活性濃度,U·ml?1;P為可溶性蛋白濃度,mg·ml?1。
式中,PF為純化因子;SAtop為上相酶的比活力;SAI為初始酶的比活力。
(5)木瓜蛋白酶在萃取體系中的結(jié)構(gòu)表征 為了鑒定萃取后木瓜蛋白酶的結(jié)構(gòu),分別表征了水溶液和離子液體中木瓜蛋白酶的 UV-vis吸收光譜以及木瓜蛋白酶、離子液體、離子液體中木瓜蛋白酶的FT-IR吸收光譜。
(6)數(shù)據(jù)處理 采用Origin8.0對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行處理,每組均重復(fù) 3次,數(shù)據(jù)表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差。
配制質(zhì)量分?jǐn)?shù)為5.0%、15.0%、25.0%、35.0%、45.0%的離子液體,固定 pH 8.0(添加 HCl或者NaOH),溫度 30℃,考察不同濃度的離子液體對(duì)酶活性的影響,結(jié)果見(jiàn)圖1。由圖1可知,在較低濃度(35%以下)時(shí),成相物質(zhì)的存在對(duì)酶活性沒(méi)有明顯的抑制作用,即使成相物濃度達(dá)到 35%,酶活性比仍在 85%以上,其中離子液體[C2mim]Cl對(duì)酶活性反而還有促進(jìn)作用;隨著成相劑濃度的進(jìn)一步增加,對(duì)酶活性的抑制作用加強(qiáng),故成相時(shí)離子液體的濃度不宜太大,控制在35%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))以下。
圖1 不同濃度的離子液體溶液對(duì)酶活性的影響Fig.1 Effect of concentration of ionic liquids on activity of enzyme
圖2 不同pH的離子液體溶液對(duì)酶活性的影響Fig.2 Effect of pH of ionic liquids on activity of enzyme
配制質(zhì)量分?jǐn)?shù)為 25%的離子液體溶液,溫度30℃,考察離子液體中不同pH對(duì)酶活性的影響,結(jié)果見(jiàn)圖2。如圖所示,在離子液體溶液中,當(dāng)pH<7.0時(shí),對(duì)酶活性有抑制作用,而且隨著pH的降低,抑制作用逐漸加強(qiáng);相反,當(dāng)pH>7.0時(shí),對(duì)酶活性有一定的促進(jìn)作用。故實(shí)驗(yàn)中為保持酶的活性,雙水相體系的pH應(yīng)保持在7.0以上。
配制質(zhì)量分?jǐn)?shù)為25%的離子液體溶液,固定pH為8.0,考察不同溫度的離子液體對(duì)酶活性的影響,結(jié)果見(jiàn)圖3。如圖3所示,隨著溫度的升高,離子液體溶液對(duì)酶活性的抑制作用逐漸加強(qiáng)。[C2mim]Cl受溫度的影響相對(duì)較小,在溫度60℃時(shí)酶活性比有90%;[C6mim]Cl受溫度的影響相對(duì)較大,在溫度60℃時(shí)酶活性比只有58%;[C4mim]Cl、[C4mim]BF4、[C2mim]Br溶液在溫度 50℃時(shí)酶活性比在 90%左右,當(dāng)溫度升到60℃時(shí),酶活性比都低于80%,說(shuō)明離子液體溶液在溫度較高時(shí)對(duì)酶活性影響較大。
圖3 不同溫度的離子液體溶液對(duì)酶活性的影響Fig.3 Effect of temperature of ionic liquids on activity of enzyme
圖4 不同離子液體雙水相體系對(duì)分配行為的影響Fig. 4 Effect of different ionic liquid aqueous two-phase systems on partitioning behavior
根據(jù)文獻(xiàn)[11],選取[C4mim]BF4/NaH2PO4、[C4mim]Cl/K2HPO4、[C4mim]Br/K2HPO4雙水相體系,考察不同離子液體雙水相體系對(duì)木瓜蛋白酶分配行為的影響,結(jié)果見(jiàn)圖 4。結(jié)果表明,在所研究的3個(gè)體系中,[C4mim]BF4體系萃取木瓜蛋白酶的回收率偏低,NaH2PO4濃度為0.40 g·ml?1時(shí)達(dá)到最大,為65.48%,萃取木瓜蛋白酶的效果不理想,故舍去。說(shuō)明離子液體種類(lèi)不同,對(duì)蛋白質(zhì)選擇性分離產(chǎn)生重要的影響,Zeng等[26]采用不同離子液體雙水相提取BSA,其萃取效果差異很大。[C4mim]Cl體系和[C4mim]Br體系的酶活性回收率和純化因子先增大后減小,在K2HPO4濃度為0.35 g·ml?1時(shí)達(dá)到最大,酶活性回收率分別為91.3%和86.55%,純化因子分別為1.48和1.49。原因是無(wú)機(jī)鹽的鹽析作用是雙水相成相的主要原因之一[27],增大 K2HPO4的濃度,無(wú)機(jī)鹽的鹽析作用加強(qiáng),木瓜蛋白酶更趨向分配于上相,但過(guò)多的鹽對(duì)木瓜蛋白酶的活性影響又較大,實(shí)驗(yàn)結(jié)果與Huang等[28]用離子液體雙水相提取BSA的結(jié)果相同。相比而言,[C4mim]Cl體系的酶活性回收率比[C4mim]Br體系的酶活性回收率整體偏高,純化因子相差不多,故選取 K2HPO4濃度0.35 g·ml?1的[C4mim]Cl體系進(jìn)一步優(yōu)化。
在上述最佳條件下,考察不同側(cè)烷基鏈長(zhǎng)度的離子液體([Cnmim]Cl,n=2,4,6)及濃度對(duì)分配行為的影響。由圖5可知,隨著離子液體濃度的增大,[C2mim]Cl體系、[C4mim]Cl體系、[C6mim]Cl體系的酶活性回收率先增大后較小,最大分別為93.41%、92.03%、59.53%。原因是隨著離子液體濃度的增加,相比逐漸增大,木瓜蛋白酶的回收率隨之增大,繼續(xù)增大離子液體的濃度,體積排阻效應(yīng)增大,導(dǎo)致木瓜蛋白酶在相間的傳遞以及在相中的擴(kuò)散阻力大大增大,不利于蛋白質(zhì)進(jìn)入離子液體相,回收率下降,相同的結(jié)果在Lin等[29]使用離子液體雙水相提取BSA的研究中也可以觀察到。
在相同離子液體濃度下,[C6mim]Cl體系酶活性回收率明顯低于[C2mim]Cl和[C4mim]Cl體系。隨著離子液體側(cè)烷基鏈的增長(zhǎng),疏水性增強(qiáng),其形成的雙水相臨界點(diǎn)越靠近原點(diǎn),越有利于蛋白質(zhì)選擇性分離,即易于分配于富含離子液體相中,分配系數(shù)增大[30],但離子液體側(cè)烷基鏈越長(zhǎng),反而對(duì)酶活性影響較大,不利于酶活性的保持。相比[C2mim]Cl和[C4mim]Cl體系,最高酶活性回收率基本相同,但圖5 (b)結(jié)果顯示,[C4mim]Cl體系木瓜蛋白酶的純化因子明顯高于[C2mim]Cl體系,0.25 g·ml?1時(shí)達(dá)到最大 1.5,而[C2mim]Cl體系純化因子最高為1.37。純化因子高,表明該體系對(duì)木瓜蛋白酶的分離選擇性好,酶純度高。綜合考慮,選取0.25 g·ml?1的[C4mim]Cl體系為最佳。
圖5 不同側(cè)烷基鏈長(zhǎng)度的離子液體及濃度對(duì)分配行為的影響Fig.5 Effect of alkyl chain length and concentration of ionic liquid on partitioning behavior
在上述最佳條件下,考察酶添加量對(duì)分配行為的影響。由圖6可知,酶添加量在2.2 mg·ml?1左右時(shí),酶活性回收率最大,為94.47%;在1.8 mg·ml?1時(shí)純化因子最大,為 1.51。酶添加量在 0.20~3.0 mg·g?1時(shí),酶活性回收率和純化因子的變化不大,說(shuō)明離子液體雙水相可以提供一個(gè)比較寬的酶添加范圍,這與 Cao等[31]利用離子液體雙水相提取HRP的結(jié)果相同。隨著酶添加量的增加,相比逐漸增大,回收率相對(duì)增加,繼續(xù)增加酶量,不僅上相發(fā)生微乳化現(xiàn)象,增大后續(xù)分離酶的工作量,也使上相的酶容量達(dá)到飽和,導(dǎo)致過(guò)多的木瓜蛋白酶分配于兩相中間,使回收率下降,造成酶的浪費(fèi)。綜合考慮,酶添加量為2.0 mg·ml?1比較合適,不僅酶活性回收率和純化因子較高,實(shí)驗(yàn)操作和計(jì)算也方便。
圖6 酶添加量對(duì)分配行為的影響Fig.6 Effect of dosage of papain on partition behavior
圖7 pH對(duì)分配行為的影響Fig.7 Effect of pH on partitioning behavior
在上述最佳條件下,考察pH對(duì)分配行為的影響,結(jié)果見(jiàn)圖 7。由于木瓜蛋白酶是中性蛋白,在pH 7.0左右酶活性最大,過(guò)酸或者過(guò)堿對(duì)酶活性的影響較大,為保證木瓜蛋白酶的活性不受太大影響,選取pH=5.0~11.0。由圖7所示,體系pH在5.0~7.5時(shí),木瓜蛋白酶的酶活性回收率逐漸增大;在所選取的7個(gè)pH中,pH 8.0時(shí),酶活性回收率和純化因子最大,分別為95.16%和1.50;pH在7.5~10.0時(shí),木瓜蛋白酶的回收率呈下降趨勢(shì),這與木瓜蛋白酶的等電點(diǎn)和電荷性質(zhì)有關(guān)[32]。蛋白質(zhì)是兩性電解質(zhì),離子液體雙水相體系pH的變化必然會(huì)改變蛋白質(zhì)的電荷性質(zhì),從而影響到離子液體咪唑類(lèi)陽(yáng)離子與蛋白質(zhì)之間的靜電相互作用。因此,靜電相互作用在蛋白質(zhì)選擇性分離中起著重要的作用。
在上述最佳條件下,考察溫度對(duì)分配行為的影響,結(jié)果如圖8所示。溫度的變化一方面影響相物理性質(zhì)的變化(例如黏度和密度等),從而影響蛋白質(zhì)的分配,另一方面溫度對(duì)體系的疏水相互作用和氫鍵作用也有影響,而疏水相互作用是蛋白質(zhì)在離子液體雙水相中分配的主要驅(qū)動(dòng)力,氫鍵相互作用對(duì)蛋白質(zhì)的分配也有重要影響[11]。在20~30℃時(shí)酶活性回收率變化不大,在 30℃時(shí)達(dá)到 93.77%,隨著溫度的繼續(xù)升高,酶活性回收率急劇下降;蛋白回收率先減小后增大,在 50℃時(shí)最小,只有32.8%。原因是,一方面在此溫度下成相物質(zhì)的密度、黏度等性質(zhì)發(fā)生變化,從而影響蛋白質(zhì)在離子液體雙水相中的分配;另一方面,隨著溫度的升高,疏水相互作用逐漸增強(qiáng),氫鍵作用逐漸減弱,在50℃時(shí),蛋白質(zhì)氨基酸殘基和水分子間的氫鍵作用遭到破壞。此時(shí)氫鍵(其他分子間)的形成受疏水相互作用的影響較少,導(dǎo)致疏水相互作用的效果減弱[26]。一般來(lái)說(shuō),適當(dāng)提高溫度有利于蛋白質(zhì)分配于富離子液體相,但在 60℃時(shí),蛋白回收率達(dá)到53.71%,而酶活性回收率只有13.49%。根據(jù)文獻(xiàn)[23]可知,木瓜蛋白酶具有耐高溫的特性,60℃對(duì)活性有一定影響,但影響不是很大,而離子液體的熱穩(wěn)定性非常好,咪唑類(lèi)離子液體在 400℃左右才開(kāi)始分解[33],結(jié)合2.3節(jié)實(shí)驗(yàn)可知,高溫(≥60℃)條件下,離子液體和木瓜蛋白酶之間存在相互作用,進(jìn)而影響了木瓜蛋白酶的結(jié)構(gòu)和活性。故提取木瓜蛋白酶的離子液體雙水相體系的溫度不宜太高,30℃左右為宜。
圖8 溫度對(duì)分配行為的影響Fig.8 Effect of temperature on partitioning behavior
木瓜蛋白酶在離子液體雙水相中選擇性分離的機(jī)理是比較復(fù)雜的。研究表明,在該體系中主要有3種作用力,即疏水相互作用、靜電相互作用和鹽析作用,蛋白酶的選擇性分配主要是這3種作用力的聯(lián)合效應(yīng),因此受到離子液體側(cè)烷基鏈長(zhǎng)度及濃度、鹽濃度、pH、溫度等因素的影響,而疏水相互作用是蛋白酶在雙水相體系中分配的主要驅(qū)動(dòng)力[11]。眾所周知,蛋白質(zhì)表面存在著大量如酪氨酸、苯丙氨酸等芳香族氨基酸殘基,約占總蛋白的10%左右,由于離子液體中的咪唑陽(yáng)離子與木瓜蛋白酶氨基酸的苯環(huán)上均含有π-電子結(jié)構(gòu),兩者之間存在強(qiáng)烈的π-π堆積作用,從而使木瓜蛋白酶趨于分配于富離子液體上相中[34]。
(1)通過(guò)對(duì)酶活性穩(wěn)定的考察可知,在溫度(≤30℃)較低時(shí),離子液體對(duì)木瓜蛋白酶的活性影響較小,低濃度時(shí)還能促進(jìn)酶活性;高溫(≥60℃)時(shí),離子液體對(duì)酶活性影響較大。
(2)考察不同離子液體雙水相系統(tǒng)對(duì)木瓜蛋白酶分配行為的影響,可知[C4mim]Cl和[C4mim]Br體系萃取木瓜蛋白酶的效果比[C4mim]BF4體系好。
(3)通過(guò)對(duì)溫度的考察可知,高溫(≥60℃)對(duì)離子液體雙水相體系萃取木瓜蛋白酶不利。
(4)實(shí)驗(yàn)優(yōu)化得到[C4mim]Cl/K2HPO4離子液體雙水相體系萃取木瓜蛋白酶的最佳條件為:[C4mim]Cl質(zhì)量濃度 0.25 g·ml?1,K2HPO4質(zhì)量濃度 0.35 g·ml?1,pH 8.0,酶添加量 2.0 mg·ml?1,30℃。此條件下木瓜蛋白酶的酶活性回收率達(dá)到95.16%,純化因子 1.5,萃取結(jié)果較理想。而采用PEG/鹽雙水相系統(tǒng)的酶活性回收率大都在 90%以下。
(5)實(shí)驗(yàn)中存在的不足在于離子液體的成本較高,對(duì)工業(yè)化大規(guī)模提取不利。今后實(shí)驗(yàn)室對(duì)廉價(jià)離子液體的合成進(jìn)行研究,是有實(shí)際應(yīng)用價(jià)值的。
[1]Sangeetha K, Abraham T E. Chemical modification of papain for use in alkaline medium [J].Journal of Molecular Catalysis B:Enzymatic,2006, 38 (3): 171-177
[2]Nitsawang S, Hatti-Kaul R, Kanasawud P. Purification of papain from Carica papaya latex: aqueous two-phase extraction versus two-step salt precipitation [J].Enzyme and Microbial Technology, 2006, 39 (5):1103-1107
[3]Su S N, Nie H L, Zhu L M,et al. Optimization of adsorption conditions of papain on dye affinity membrane using response surface methodology [J].Bioresource Technology, 2009, 100 (8): 2336-2340
[4]Zhang Haide (張海德), Wang Weitao (王偉濤), Jiang Xinxin (蔣欣欣). Progress on the study of mechanism and partition behavior of papain in affinity aqueous two-phase systems [J].Journal of Food Safety and Quality(食品安全質(zhì)量檢測(cè)學(xué)報(bào)), 2013, 2: 4
[5]Hatti-Kaul R. Aqueous two-phase systems [J].Molecular Biotechnology, 2001, 19 (3): 269-277
[6]Li Z, Liu X, Pei Y,et al. Design of environmentally friendly ionic liquid aqueous two-phase systems for the efficient and high activity extraction of proteins [J].Green Chemistry, 2012, 14 (10): 2941-2950
[7]Freire M G, Claudio A F M, Araujo J M M,et al. Aqueous biphasic systems: a boost brought about by using ionic liquids [J].Chemical Society Reviews, 2012, 41 (14): 4966-4995
[8]Gai Q, Qu F, Zhang T,et al. Integration of carboxyl modified magnetic particles and aqueous two-phase extraction for selective separation of proteins [J].Talanta, 2011, 85 (1): 304-309
[9]Huaxi L, Zhuo L, Jingmei Y,et al. Liquid-liquid extraction process of amino acids by a new amide-based functionalized ionic liquid [J].Green Chemistry, 2012, 14 (6): 1721-1727
[10]Deive F J, Rodríguez A, Rebelo L P N,et al. Extraction of Candida antarctica lipase A from aqueous solutions using imidazolium-based ionic liquids [J].Separation and Purification Technology, 2012, 97:205-210
[11]Liu Xiaogeng (劉曉庚), Gao Mei (高梅), Chen Meimei (陳梅梅).Ionic liquids aqueous two-phase system and its research in proteins’extraction [J].Journal of the Chinese Cereals and Oils Association(中國(guó)糧油學(xué)報(bào)), 2013, 28 (4): 118-123
[12]Pei Y, Li L, Li Z,et al. Partitioning behavior of wastewater proteins in some ionic liquids-based aqueous two-phase systems [J].Separation Science and Technology, 2012, 47 (2): 277-283
[13]Asenjo J A, Andrews B A. Aqueous two-phase systems for protein separation: phase separation and applications [J].Journal of Chromatography A, 2012, 1238: 1-10
[14]Pei Y, Li Z, Liu L,et al. Partitioning behavior of amino acids in aqueous two-phase systems formed by imidazolium ionic liquid and dipotassium hydrogen phosphate [J].Journal of Chromatography A,2012, 1231: 2-7
[15]Freire M G, Neves C M S S, Marrucho I M,et al. High-performance extraction of alkaloids using aqueous two-phase systems with ionic liquids [J].Green Chemistry, 2010, 12 (10): 1715-1718
[16]Novak U, Pohar A, Plazl I,et al. Ionic liquid-based aqueous two-phase extraction within a microchannel system [J].Separation and Purification Technology, 2012, 97: 172-178
[17]Pei Y C, Li Z Y, Liu L,et al. Selective separation of protein and saccharides by ionic liquids aqueous two-phase systems [J].Science China Chemistry, 2010, 53 (7): 1554-1560
[18]Li Z, Pei Y, Wang H,et al. Ionic liquid-based aqueous two-phase systems and their applications in green separation processes [J].TrAC Trends in Analytical Chemistry, 2010, 29 (11): 1336-1346
[19]Ling Y Q, Nie H L, Su S N,et al. Optimization of affinity partitioning conditions of papain in aqueous two-phase system using response surface methodology [J].Separation and Purification Technology, 2010, 73 (3): 343-348
[20]Cao Duixi (曹對(duì)喜), Du Zheng (杜征), Han Yuting (韓玉婷),et al.Purification of papain by aqueoustwo-phase extraction [J].Acad Period Farm Prod Proces(農(nóng)產(chǎn)品加工), 2010 (10): 21-23
[21]Li M, Su E, You P,et al. Purification andin situimmobilization of papain with aqueous two-phase system [J].PLoS ONE, 2010, 5 (12):e15168
[22]Tu Shaoyong (涂紹勇), Li Lu (李路), Yang Aihua (楊?lèi)?ài)華),et al.Study on the extraction of papain with aqueous two-phase system [J].Science and Technology of Food Industry(食品工業(yè)科技), 2010 (9):220-222
[23]Wan Jing (萬(wàn)婧). The study of extraction process of papain in papaya[D]. Haikou: Hainan University, 2010
[24]Xu Xiaodong (徐曉冬), Dan Yuanyuan (丹媛媛), Li Xinxin (李欣欣),et al. Aqueous biphasic system based on ionic liquid and its application in bioseparation [J].Biotechnology Bulletin(生物技術(shù)通報(bào)), 2008 (5): 88-91
[25]Pierce J, Suelter C H. An evaluation of the Coomassie brilliant blue G-250 dye-binding method for quantitative protein determination [J].Analytical Biochemistry, 1977, 81 (2): 478-480
[26]Zeng Q, Wang Y, Li N,et al. Extraction of proteins with ionic liquid aqueous two-phase system based on guanidine ionic liquid [J].Talanta, 2013 (116): 409-416
[27]Mehrnoush A, Sarker M Z I, Mustafa S,et al. Direct purification of pectinase from mango (Mangifera Indica cv. Chokanan)peel using a PEG/salt-based aqueous two phase system [J].Molecules, 2011, 16(10): 8419-8427
[28]Huang S, Wang Y, Zhou Y,et al. Choline-like ionic liquid-based aqueous two-phase extraction of selected proteins [J].Analytical Methods, 2013 (5): 3395-3402
[29]Lin X, Wang Y, Zeng Q,et al. Extraction and separation of protions by ionic liquid aqueous two-phase system [J].Analyst, 2013 (138):6445-6453
[30]Xia Hansong (夏寒松), Yu Jiang (余江), Hu Xuesheng (胡雪生),et al. Phase behavior of ionic liquids (Ⅱ): Aqueous two-phase [J].Journal of Chemical Industry and Engineering(China)(化工學(xué)報(bào)),2006, 57 (9): 2149-2151
[31]Cao Q, Quan L, He C,et al. Partition of horseradish peroxidase with maintained activity in aqueous biphasic system based on ionic liquid[J].Talanta, 2008 (77): 160-165
[32]Lu Y, Lu W, Wang W,et al. Thermodynamic studies of partitioning behavior of cytochrome c in ionic liquid-based aqueous two-phase system [J].Talanta, 2011, 85 (3): 1621-1626
[33]Gu Yanlong (顧彥龍), Peng Jiajian (彭家建), Qiao Kun (喬琨),et al.Room temperature ionic lliquids and their applications in catalysis and organic reactions [J].Progress in Chemistry(化學(xué)進(jìn)展), 2003,15 (3): 222-241
[34]Pei Y, Wang J, Wu K,et al. Ionic liquid-based aqueous two-phase extraction of selected proteins [J].Separation and Purification Technology, 2009, 64 (3): 288-295