張芳芳，熊 靜，2，段明珠，李春艷，彭喜霞，黃文樹，2，3

（1.集美大學水產學院，福建廈門 361021；2.鰻鱺現(xiàn)代產業(yè)技術教育部工程研究中心，福建廈門 361021；3.福建省海洋生物資源開發(fā)利用協(xié)同創(chuàng)新中心，福建廈門 361021）

日本鰻鱺COX-2基因的克隆、鑒定及表達分析

張芳芳1，熊 靜1，2，段明珠1，李春艷1，彭喜霞1，黃文樹1，2，3

（1.集美大學水產學院，福建廈門 361021；2.鰻鱺現(xiàn)代產業(yè)技術教育部工程研究中心，福建廈門 361021；3.福建省海洋生物資源開發(fā)利用協(xié)同創(chuàng)新中心，福建廈門 361021）

應用PCR及RACE技術從日本鰻鱺（Anguillajaponica）中克隆獲得一個2463 bp環(huán)氧化酶基因（Cyclooxygenase-2，AjCOX-2）的cDNA序列.AjCOX-2前體為606肽，含有脊椎動物COX-2的保守結構域，以及加氧酶和過氧化物酶的活性位點.在正常生理條件下，AjCOX-2基因在日本鰻鱺的鰓、鰾和皮膚中高水平轉錄表達.脂多糖刺激后8 h，AjCOX-2基因在皮膚和鰾中的轉錄表達顯著上調（P＜0．05）；多聚胞苷酸刺激后8 h，AjCOX-2在皮膚、鰾和鰓中的轉錄表達顯著上調（P＜0．05）；遲緩愛德華氏菌（Edwardsiellatarda）刺激后8 h，AjCOX-2在鰾中的轉錄表達也極顯著上調（P＜0．01）．結果表明，AjCOX-2基因是對外來病原刺激的早期響應基因，參與機體抵抗外來刺激物的先天免疫應答.

日本鰻鱺；COX-2；脂多糖；多聚胞苷酸；遲緩愛德華氏菌

0 引言

環(huán)氧化酶（Cyclooxygenase，COX）也稱為前列腺素內過氧化物G／H合成酶（Peroxide G／H synthetase）（EC 1.14.99.1），具有催化花生四烯酸形成前列腺素內過氧化物G2（Prostaglandin endoperoxides G2，PGG2）的雙加氧酶（或環(huán)氧合酶）活性，以及還原PGG2形成PGH2（Prostaglandin endoperoxides H2，PGH2）的過氧化物酶活性［1］.PGH2是前列腺素（prostaglandins）、環(huán)前列腺素（prostacyclins）及血栓烷（thromboxanes）的前體.前列腺素類物質在發(fā)熱、炎癥反應、維持妊娠、調節(jié)離子運輸、水平衡和止血等多種生物過程中起重要作用［2］.

COX屬于血紅素依賴的髓過氧化物酶超家族，普遍存在于動物、單細胞生物和微生物中.此外，在植物和真菌中也發(fā)現(xiàn)了COX類似物，分別是病原誘導的加氧酶和亞油酸酯二醇合成酶［3］.已有研究表明，COX存在三種同工酶，即：COX-1、COX-2和COX-3.COX-3亦稱為COX-1B或COX-1變體（COX-1V），是COX-1的可變剪切體［4］.哺乳類COX-1和COX-2的氨基酸序列的一致性約為60%，其三級結構相似［2］，但表達模式不同［5］.COX-1在多種組織／細胞中是組成型表達，以維持細胞的正常功能；而COX-2是組織特異性表達，并受炎癥反應、細胞因子、生長因子和滲透力等誘導而上調［6］.

在硬骨魚類中，COX同源物已從虹鱒（Oncorhynchusmykiss）［7］、金魚（Carassiusauratus）［8］、斑馬魚（Daniorerio）［2］、青鳉（Oryziaslatipes）［9］、美洲紅點鮭（Salvelinusfontinalis）［10］、塞內加爾鰨（Soleasenegalensis）［11］、波紋絨須石首魚（Micropogoniasundulatus）［12］及狼鱸（DicentrarchuslabraxL）［13］等中得到克隆鑒定，并參與多種生物學過程.LPS、重組IL-1β和鰻弧菌（Vibrioanguillarum）可誘導狼鱸的頭腎白細胞中的COX-2基因上調轉錄表達［13］；LPS、重組IL-1β和天蠶抗菌肽B可上調虹鱒COX-2a在性腺細胞RTG-2中的轉錄表達［7］，表明COX-2參與炎癥反應.此外，在佛波酯PMA（phorbol-12-myristate-13-acetate）／A23187作用下，美洲紅點鮭COX-2在皮膚中轉錄表達量顯著上調［10］.而PMA／A23187誘導魚類合成前列腺素PGF及PGE，后者參與排卵的生理過程［11］，因而認為PMA／A23187可通過誘導COX-2上調表達，促進類固醇的合成，進而促進卵母細胞的成熟和排卵［13］.海水養(yǎng)殖的底鳉（Fundulusheteroclitus）鰓中COX-2的表達量比淡水養(yǎng)殖時高出3倍，并且在淡水—海水和海水—淡水急性轉移時COX-2的表達量迅速發(fā)生改變，表明COX-2可調節(jié)氯化鈉分泌［14］.在二惡英的誘導下，斑馬魚腦中COX-2的表達增加，進而促進了血栓素形成，導致中腦的靜脈循環(huán)衰竭［15］.

鰻鱺（Anguillaspp）是世界主要水產養(yǎng)殖種類之一，也是中國重要的經濟魚類，近十年來，鰻鱺養(yǎng)殖發(fā)展迅速，根據《2014年中國漁業(yè)年鑒》統(tǒng)計，2013年中國鰻鱺產量達到2.06×105t，有著巨大的經濟效益.然而，目前對其免疫反應機理的研究仍然匱乏，因此，期望通過研究中國主要養(yǎng)殖種類日本鰻鱺（Anguillajaponica）的COX-2基因及其表達規(guī)律，揭示其在免疫過程中的作用，這對于深入了解魚類抗病機制，對養(yǎng)殖魚類病害防治的免疫學基礎具有十分重要的意義.

1 材料和方法

1.1 實驗材料及樣品的采集

日本鰻鱺體重（200±53）g，購自福建省廈門市集美大學水產養(yǎng)殖基地，養(yǎng)殖水溫（28±2）℃、溶解氧（6.27±0.23）mg／L、亞硝酸鹽氮（1.60±0.39）mg／L及氨氮（17.99±7.82）mg／L.遲緩愛德華菌（Edwardsiellatarda）為本實驗室保存菌種.

用含丁香酚的冰水麻醉日本鰻鱺后，斷尾，采集血液于經肝素鈉預處理過的離心管中，混勻，2919 r／min離心20 min，收集下層細胞；隨后，解剖鰻鱺，采集肝臟、腸、皮膚、胃、頭腎、中腎、鰾、脾臟和鰓等組織／器官，分別于液氮中冷凍.保存于-80℃.

免疫原刺激試驗采用腹腔注射法.實驗分為：脂多糖（lipopolysaccharides，LPS）刺激組（Sig-ma，美國，貨號：L2880），注射劑量0.1 g／kg；多聚胞苷酸（polyinosinic-polycytidylic acid，Poly I∶C）刺激組（Sigma，美國，貨號：GE27-4732-01），注射劑量0.1 g／kg；遲緩愛德華氏菌刺激組，注射劑量為105cfu／g；陰性對照組為磷酸鹽緩沖液（PBS）.注射后分別于8，16，24，72 h采樣，每組每個時間點各采集日本鰻鱺6尾.

1.2AjCOX-2基因克隆

RNA提?。杭? mL Trizol試劑（Invitrogen，美國）和5顆直徑3 mm玻璃微珠至約100 mg日本鰻鱺各組織樣品中，勻漿（3000 r／min，20 s，Retsch MS100（日本））后，按照Trizol試劑盒說明書（Invitrogen，美國）提取總RNA.用瓊脂糖凝膠電泳法檢測總RNA的完整性，用分光光度計（Thermo，NanoDrop 2000，美國）檢測總RNA的濃度及純度.

RACE擴增及全長cDNA序列驗證：取日本鰻鱺脾臟總RNA（約2μg）進行反轉錄（SMARTerTMRACE cDNA Amplification kit，Clonetech，美國），制備RACE模板.根據日本鰻鱺脾臟cDNA文庫中COX-2的EST序列，用Premier 6.0軟件設計特異性引物（見表1），進行RACE（SMARTerTMRACE cDNA Amplification kit，Clonetech）和巢式PCR擴增，獲得日本鰻鱺COX-2（AnguillajaponicaCOX-2，簡稱AjCOX-2）cDNA的3′和5′末端序列.根據5′RACE和3′RACE序列，設計引物進行PCR驗證Aj-COX-2全長cDNA序列.PCR產物純化、回收和測序等參照文獻［16］的方法.

1.3 定量PCR

根據AjCOX-2 cDNA序列與AjCOX-2基因組序列（未發(fā)表數(shù)據），設計跨內含子區(qū)域引物（qAj-COX-2F和qAjCOX-2R，見表1），用Light Cycler?480 SYBR Green I試劑盒（Roche，德國）在LightCycler 480 IIRealtime PCR儀（Roche，德國）上進行AjCOX-2基因表達量分析，同時，以β-actin作為內參基因.每塊96孔PCR反應板設有系列已知拷貝數(shù)的含AjCOX-2或內參基因的質粒樣品，與cDNA樣品一起擴增，以獲得標準曲線及擴增效率.取4μg總RNA，用GoScripTMReverse Transcription System（Promega，美國）進行反轉錄，產物用TE buffer稀釋，qPCR反應體系及相關參數(shù)參考文獻［16］，并繪制產物的熔解曲線以驗證擴增的特異性.

表1 引物序列Tab.1 List o f prime r sequences

數(shù)據處理：以β-actin表達量為基準，對樣品進行標準化處理.不同組織／器官的AjCOX-2基因表達水平是以標準化樣品中靶基因的絕對表達量乘以1000來表示.免疫源刺激后基因的表達水平研究，是以同一時間點刺激組樣品中靶基因的絕對表達量除以生理對照組樣品中靶基因的絕對表達量來表示.

1.4 序列生物信息學分析

在NCBI網站（http：／／blast.ncbi.nlm.nih.gov／）進行序列基礎分析.利用ExPASy工具（http：／／web.expasy.org／translate／）翻譯氨基酸序列；SignalP 4.1 Server（http：／／www.cbs.dtu.dk／services／SignalP）分析信號肽；NetPhos Server（http：／／www.cbs.dtu.dk／services／NetPhos）分析糖基化位點；PROSITE（http：／／us.expasy.org／tools／scanprosite）分析蛋白質的功能域；SIAS（http：／／imed.med.ucm.es／Tools／sias.htm l）比較氨基酸序列一致性及同源性；使用MEGA 5.0軟件的鄰接法（N-J法）構建基于氨基酸序列的系統(tǒng)進化樹.氨基酸序列數(shù)據源于Ensembl網站（http：／／asia.ensembl.org／index.html）.

1.5 數(shù)據統(tǒng)計分析

數(shù)據結果使用Excel軟件計算，采用單因素變量方差分析法（ANOVA）分析免疫原刺激樣品間AjCOX-2表達量差異，利用Dunnett t-Test（2-sided）進行多重比對.所有數(shù)據均用平均值±標準誤差（SEM）的方式表示，P＜0．05表示差異顯著，P＜0．01表示差異極顯著.利用GraphPad Prism v5.0軟件作圖.

2 結果

2.1AjCOX-2基因的序列分析

根據AjCOX-2的EST序列，進行RACE和巢式PCR擴增，獲得5′RACE產物906 bp、3′RACE產物1801 bp及中間產物443 bp，經序列拼接后得到AjCOX-2的全長cDNA序列，并用引物AjCOX-2 fl-F和AjCOX-2 fl-R驗證其開放閱讀框.結果顯示：AjCOX-2 cDNA全長2463 bp，GenBank登錄號為KP888157，其中5′UTR為120 bp，開放閱讀框為1821 bp編碼一個607肽，3′UTR為523 bp.3′UTR中包含保守的終止信號（AATAAA）、PolyA序列，及6個與RNA不穩(wěn)定性相關的ATTTA位點.生物信息學分析結果：AjCOX-2前體肽相對分子質量為69 320，pI為7.06，N-末端21個氨基酸殘基為信號肽（見圖1）.此外，還含有脊椎動物COX-2前體肽保守的12個半胱氨酸殘基（其中C25—C36、C26—C149、C30—C46、C48—C58和C559—C566分別形成五對二硫鍵）、3個環(huán)氧化酶活性位點（Y375，H378和S520）、2個過氧化物酶活性位點（Q203和H207）、4個糖基化位點（N-57、-134、-406、-585）、2個血紅素結合域（212-KALGH-216和291-WLREHNRVCD-304），以及C-端的內質網滯留信號（604-TSEL-607）（見圖1）.

2.2AjCOX-2基因的氨基酸序列多重比對及系統(tǒng)進化樹構建

選取哺乳類、鳥類、兩棲類和硬骨魚類代表物種COX-2同源物與本研究AjCOX-2的全長氨基酸序列進行多重比對.結果顯示，AjCOX-2與其他物種COX-2的氨基酸序列一致性和相似性分別為0.678～0.777及0.7781～0.8515，其中與美洲紅點鮭COX-2a的一致性和相似性均最高，有趣的是，與其一致性最低的是兩棲類爪蟾，而與其相似性最低的卻是人類（見表2）.脊椎動物COX-2前體肽都含有信號肽序列，其中高等脊椎動物（兩棲類、雞以及哺乳動物）的信號肽長度小于20個氨基酸殘基，而硬骨魚均大于20.在脊椎動物COX-2蛋白質序列中含有1到多個糖基化位點，其中糖基化位點N-53（相對于人類COX-2氨基酸的位置）普遍存在于所選的物種中.

多數(shù)硬骨魚的COX-2有兩個亞型，即COX-2a和COX-2b，選取的代表性的硬骨魚類COX-2a和COX-2b進行多重比對，結果顯示，COX-2a和COX-2b的蛋白質都含有6個保守的結構域，從N-末端至C-末端分別為信號肽、二聚化作用結構域1、膜結合結構域、二聚化作用結構域2、催化作用域，以及C-端的內質網滯留信號［17］.二聚化作用結構域1中的7個半胱氨酸殘基位置高度保守，預測可形成3對二硫鍵（C21—C31、C26—C41、C43—C52），另一個半胱氨酸（C22）與催化作用域中的一個半胱氨酸（C145）形成二硫鍵（見圖2）.在催化作用域內，存在3個環(huán)氧化酶的活性位點（Y375，H378，S520）、2個過氧化物酶活性位點（Q203和H207）及2個血紅素結合域.此外，COX-2a和COX-2b前體肽分子的不同之處：COX-2a前體肽中第一個血紅素結合域為“XXLGH”，而在COX-2b中為“XGXXH”；COX-2a中內質網滯留信號為“S（S／T）EL”，而在COX-2b中則為“T（S／T）EL”.

用MEAG 5.0軟件的N-J法對上述16條COX-2全長氨基酸序列構建進化樹，如圖3所示，以人類COX-1全長氨基酸序列作為外參比.結果顯示，在COX-2支中，兩棲類、鳥類和哺乳類聚為一小支，魚類聚為另一小支，其中COX-2a聚為一簇，COX-2b聚為另一簇，AjCOX-2與硬骨魚的COX-2a聚在一簇.結果表明，COX-2的蛋白質符合傳統(tǒng)的進化模式，進化樹與物種之間的進化關系基本對應.

表2AjCOX-2與代表性脊椎動物的COX-2基因編碼蛋白的比對Fig．2 Between pro teins encoded byAjCOX-2 andCOX-2 gene in rep resentative vertebrates

圖2 A jCOX-2與其他代表物種的COX-2基因的氨基酸序列多重比對Fig.2 Multiple a lignmentof AjCOX-2 with COX-2s from some representative species

圖3 COX-2s的NJ統(tǒng)進化樹Fig.3 Phylogenetic analysis ofCOX-2s in vertebrate using neighbor joiningmethod

2.3AjCOX-2在正常養(yǎng)殖的日本鰻鱺中不同組織／器官的表達

用引物qAjCOX-2F和qAjCOX-2R擴增日本鰻鱺cDNA得到長度為346 bp片段，產物的熔解曲線呈單一對稱的峰圖，說明無特異性擴增，擴增效率為1.857～1.915，同時以日本鰻鱺基因組為模板，無法獲得有效擴增.以引物β-actinF和β-actinR擴增得到長度為178 bp的β-actin片段，其產物的熔解曲線也呈單一對稱的峰圖，擴增效率為1.903～1.927.

利用上述建立的qPCR檢測方法，分別單獨檢測了6尾正常養(yǎng)殖日本鰻鱺的鰓、鰾、皮膚、腎臟、脾臟、心臟、腸、胃、性腺、肝及血液等12個組織／器官中AjCOX-2的轉錄表達量，結果顯示，AjCOX-2 mRNA在所檢測組織／器官中均有不同程度的轉錄表達（見圖4），其中表達量較高的依次為鰓、鰾和皮膚，顯著高于其他各組織器官（P＜0.05），但是，該三者間差異不顯著（P＞0.05）；其次是腎臟（頭腎和中腎）、心臟、脾臟和腸，其表達量顯著高于其他被檢測樣品（性腺、血細胞、胃和肝）（P＜0.05）.

圖4 AjCOX-2在日本鰻鱺多組織中的表達譜Fig.4 Expression pro file of AjCOX-2 in multiple tissues of Anguilla japonica

2.4 LPS、E.tarda及Poly I∶C刺激后AjCOX-2基因表達變化

AjCOX-2在日本鰻鱺不同組織／器官中不同程度地表達，并且在鰓、鰾及皮膚中大量表達.因此，本文進一步檢測了LPS、Poly I∶C、E.tarda活體刺激后，該基因在鰓、鰾和皮膚中的轉錄表達變化情況，結果顯示：

1）LPS刺激.在皮膚中，LPS刺激后，短期內（8 h）AjCOX-2的轉錄表達量極顯著升高，是對照組的7.3倍（P＜0．01），至16 h已下降，但是仍顯著高于對照組（P＜0．05）（見圖5a）；在鰾中，LPS刺激后8 h，AjCOX-2轉錄表達也顯著上調（P＜0．05）（見圖5b）；然而，在鰓中，受LPS刺激后，前72 h，AjCOX-2的表達量不但沒有上調反而顯著下調，顯著低于對照組（P＜0．05）.

2）E.tarda人工感染.不同于LPS刺激結果，遲緩愛德華氏菌刺激后，皮膚中AjCOX-2基因的表達無顯著變化（P＞0．05）.在鰾中，刺激后8 h，AjCOX-2的表達量極顯著增加（P＜0.01），是對照組的6.08倍；16 h時，無顯著差異；而在24 h和72 h時顯著高于對照組（P＜0.05），但是上升的幅度不大，分別為2.31和2.19倍.在鰓中，刺激后8 h無顯著變化；在16 h時，AjCOX-2的表達量極顯著上調（P＜0．01）；24 h時，不顯著下降；而在72 h時卻極顯著下調（P＜0．001），僅為對照組的0.43倍（見圖5b）.

3）Poly I∶C刺激.在刺激后8 h時，AjCOX-2在鰓、皮膚及鰾中均顯著或極顯著上調（P＜0.05）；在刺激后16 h時，在鰓和皮膚中AjCOX-2的表達仍呈極顯著（P＜0．01）和顯著（P＜0．05）上調，隨后下降；在刺激后72 h，AjCOX-2在鰓中的表達量極顯著下調（P＜0．001）（見圖5c）.

圖5 AjCOX-2受LPS、E.tarda和Poly I:C誘導表達模式Fig.5 Modulation ofexp ression of AjCOX-2 in skin,swim bladderand gillafter intraperitonea linjection with LPS,E.tarda and Poly I:C

3 討論

COX-2是一種具有環(huán)氧化酶和過氧化酶活性的酶，參與發(fā)熱、維持妊娠、調節(jié)離子運輸、炎癥反應、水平衡和止血等多種生物過程［2］.本研究克隆了日本鰻鱺的COX-2（AjCOX-2）全長cDNA序列，解析其分子特征并研究了其表達模式.

3.1AjCOX-2屬于硬骨魚COX-2a基因

哺乳類、鳥類和兩棲類等高等脊椎動物體內僅存在一個COX-2基因，而在低等脊椎動物如硬骨魚中，可能由于進化過程中選擇性染色體區(qū)域的疊加作用，出現(xiàn)兩個COX-2基因，即COX-2a與COX-2b［7］.系統(tǒng)進化分析發(fā)現(xiàn)，本研究的AjCOX-2與其他硬骨魚的COX-2a聚在同一簇，支持率為100%；氨基酸序列多重比對的結果也支持AjCOX-2應歸屬于COX-2a，其與美洲紅點鮭COX-2a及虹鱒COX-2a的一致性及相似性都最高；此外，AjCOX-2的第一個血紅素結合域和C端的內質網滯留信號分別為KALGH與TSEL，符合硬骨魚COX-2a的“XXLGH”與“S（S／T）EL”，而明顯不同于COX-2b的基序.綜上，AjCOX-2應屬于硬骨魚COX-2a.

3.2AjCOX-2基因的表達具有組織特異性

硬骨魚COX-2基因的轉錄表達具有組織特異性.在正常養(yǎng)殖的日本鰻鱺中，AjCOX-2主要在鰓中高水平表達，該結果與其他硬骨魚COX-2基因的轉錄表達結果基本一致.比如，在塞內加爾鰨，COX-2在睪丸、輸卵管和鰓中高水平轉錄表達［11］；底鳉COX-2在鰓和腎臟中大量轉錄表達［14］；斑馬魚COX-2a在鰓、腸及睪丸中的高水平轉錄表達量，而COX-2b在鰓，心臟和卵巢中大量表達［2］.此外，有研究報道，COX-2在硬骨魚的卵巢／睪丸中高水平轉錄表達［2，10-11］.而本研究AjCOX-2在性腺中的轉錄表達量較低，原因可能是，前人報道的性腺高水平表達的魚類皆為性成熟的成魚［18-20］，而本研究中所選擇的日本鰻鱺雖然達到商品規(guī)格，但其性腺遠未成熟.然而，AjCOX-2在性腺表達量水平較低是否真與鰻鱺的性腺不成熟有關，有待進一步研究.此外，本研究發(fā)現(xiàn)AjCOX-2在鰾和皮膚中高水平轉錄表達，然而，有關COX-2基因在硬骨魚的鰾中轉錄表達的研究報道甚少，因此，本研究發(fā)現(xiàn)的COX-2基因在魚類鰾中高水平表達的現(xiàn)象，是日本鰻鱺特有，還是普遍存在于其他硬骨魚中，有待進一步研究確認.

此外，本文還發(fā)現(xiàn)COX-2基因在日本鰻鱺的玻璃鰻階段具有極高的轉錄表達水平，其表達量甚至是本研究日本鰻鱺黑仔鰻的鰓（轉錄水平最高的器官）的1.5倍（未發(fā)表數(shù)據）.分析原因，可能與玻璃鰻是從半咸水的河口中捕撈到的有關.有研究發(fā)現(xiàn)海水養(yǎng)殖的鳉COX-2在鰓中的表達量比淡水養(yǎng)殖時高出了3倍，并且在淡水—海水和海水—淡水急性轉移中會快速短暫地改變COX-2的表達量［14］.AjCOX-2是否參與氯化鈉的調節(jié)，及其調控模式有待進一步研究.

3.3 外源刺激物調節(jié)AjCOX-2基因的轉錄表達

有研究發(fā)現(xiàn)，受LPS刺激后6 h，金魚頭腎細胞中COX-2轉錄表達水平極顯著上調；受LPS刺激后6 h虹鱒COX-2a在性腺細胞RTG-2中的mRNA表達也顯著上調［7］；在LPS和重組IL-1β誘導后24 h狼鱸COX-2在其頭腎白細胞mRNA中的表達上調并達到最大值［13］；在鰻弧菌（Vibrio anguillarum）感染后2周，COX-2基因在狼鱸的頭腎白細胞中的表達達到了最大值，誘導后3周表達量下調［13］.這些結果與本研究相似，LPS刺激后8 h，AjCOX-2在皮膚和鰾中的轉錄表達顯著上調（P＜0．05）；Poly I∶C刺激后8 h，AjCOX-2在皮膚、鰾和鰓中均顯著上調表達（P＜0．05）；E．tarda刺激后8 h，AjCOX-2在鰾中的表達也極顯著上調（P＜0．01）.本研究表明，AjCOX-2是對外來病原刺激的早期響應基因，參與機體抗外來刺激物的先天免疫應答.

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（責任編輯 朱雪蓮 英文審校 張子平）

M olecular Cloning，Characterization and Expression ofCOX-2 in Japanese eel，Anguillajaponica

ZHANG Fang-fang1，XIONG Jing1，2，DUANMing-zhu1，LIChun-yan1，PENG Xi-xia1，HUANGWen-shu1，2，3
（1.Fishery College，Jimei University，Xiamen 361021，China；2.Engineering Research Center of the Modern Technology for Eel Industry，Ministry of Education，Xiamen 361021，China；3.Fujian Collaborative Innovation Center for Exploitation and Vtiligation of Marine Biological Resources，Xiamen 361021，China）

In this study，a full-length cDNA forCyclooxygenase-2（AjCOX-2）was successfully cloned from the Japanese eel（Anguillajaponica）by PCR and RACE.The predicted protein ofAjCOX-2 is606 amino acids in length，which contained all the conservative structural domains and the active sites for both the peroxidase and cyclooxygenase as in its vertebrate homologues.In physiological condition，AjCOX-2 mRNA was highly expressed in gill，skin and swim bladder in Japanese eel.Additionally，a significant increasingAjCOX-2 mRNA was detected in both skin and swim bladder（P＜0．05）at 8 h afterinvivointraperitoneal challenged with LPS and Poly I∶C，whilst a significant up-regulation ofAjCOX-2 mRNA was found only in swim bladder at8 h after challenged byEdwardsiellatarda，a pathogenic bacterium isolated from Japanese eel.The results suggested thatAjCOX-2 might be an early immediate gene in response to the immune stimuli and involved in the innate immune response against the pathogens infection in Japanese eel.

Anguillajaponica；COX-2；LPS；Poly I∶C；Edwardsiellatarda

S 917

A

1007-7405（2015）05-0321-12

2015-05-14

2015-06-05

國家自然科學基金項目（31172438）；福建省自然科學基金項目（2012J06008）；福建省科技項目（201311180002）；福建省教育廳項目（JA12195）

張芳芳（1990—），女，碩士，從事水產動物病害防治方向研究，通信作者：黃文樹（1973—），男，副教授.E-mail：wshuang＠jmu.edu.cn.