馬寅芙,李首慶,劉 磊,孫牧男,譚 巖
(吉林省人民醫(yī)院,吉林長(zhǎng)春130021)
慢性丙型肝炎患者外周血DNT細(xì)胞與HCV-RNA病毒載量關(guān)系的研究
馬寅芙,李首慶,劉 磊,孫牧男,譚 巖*
(吉林省人民醫(yī)院,吉林長(zhǎng)春130021)
丙型肝炎是由丙型肝炎病毒(hepatitis C virus,HCV)感染機(jī)體后所引起的傳染性疾病。大多數(shù)的丙型肝炎患者感染后轉(zhuǎn)為慢性,病毒在體內(nèi)持續(xù)存在,慢性丙型肝炎是引起肝硬化和肝癌的重要原因之一。CD3+CD4-CD8-T細(xì)胞(雙陰性T細(xì)胞,DNT)是一種新發(fā)現(xiàn)的調(diào)節(jié)性T細(xì)胞亞群,研究發(fā)現(xiàn)其在移植排斥、自身免疫性疾病、腫瘤免疫、感染性疾病、過敏性疾病以及移植物抗宿主病等疾病中發(fā)揮重要作用[1],成為近年來免疫學(xué)研究的熱點(diǎn)之一。本文利用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)慢性丙型肝炎患者外周血中CD3,CD4,CD8及DNT細(xì)胞的表達(dá),PCR方法檢測(cè)HCV-RNA病毒載量,研究慢性丙型肝炎患者外周血中DNT細(xì)胞的表達(dá)與HCV-RNA病毒載量的關(guān)系。
1.1 研究對(duì)象 選取我院2014年8月至2014年12月門診及住院慢性丙型肝炎患者78例,男性33例,女性45例,年齡18-70歲。病例診斷標(biāo)準(zhǔn)符合2004年中華醫(yī)學(xué)會(huì)傳染病與寄生蟲學(xué)分會(huì)、肝病學(xué)分會(huì)制定的《丙型肝炎防治指南》[2]。排除甲、乙型等肝炎其他病毒性疾病、自身免疫性肝病、藥物及酒精性肝炎等。健康對(duì)照組25例,男12例,女13例,年齡28-66歲,為我院體檢中心體檢結(jié)果正常的健康人群。
1.2 標(biāo)本采集和處理 患者空腹采集靜脈血3ml入生化管,離心取血清進(jìn)行PCR檢測(cè);1ml入EDTA抗凝管用于流式檢測(cè)。
1.3 試劑和儀器 流式細(xì)胞儀美國(guó)Beckman Coulter Epics XL;熒光定量PCR儀美國(guó)ABI 7500。OptiLyse C溶血素購(gòu)自美國(guó)貝克曼庫(kù)爾特公司;熒光抗體FITC-CD4/PE-CD8/PE-CY5-CD3購(gòu)自美國(guó)BD;HCV-RNA試劑盒購(gòu)自上海科華有限公司。
1.4 熒光定量PCR檢測(cè)HCV-RNA定量 參考上??迫A《丙型肝炎病毒核酸定量檢測(cè)試劑盒(PCR-熒光探針法)》說明書操作。將檢測(cè)結(jié)果分為兩組:HCV-RNA<1+E003IU/ml,HCV-RNA≥1+E003IU/ml。
1.5 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)T細(xì)胞亞群及DNT表達(dá)量管中加入100μl全血,加FITC-CD4/PE-CD8/PECY5-CD3抗體20μl,混勻室溫避光孵育15分鐘;加入1ml溶血素,混勻避光10分鐘;加入1ml生理鹽水,混勻1 500r/min離心5分鐘;棄上清,加入500μl生理鹽水混勻上機(jī)。
1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS17統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(x—±s)表示,樣本均數(shù)間差異比較采用單因素方差分析,兩組間比較采用t檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 HCV-RNA病毒含量不同的慢性丙型肝炎患者T細(xì)胞亞群表達(dá)
慢性丙型肝炎患者無論病毒含量高低CD4+T淋巴細(xì)胞比例及CD4+/CD8+比值均低于健康對(duì)照組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);隨著病毒含量的升高,CD4+/CD8+比值也在持續(xù)降低(P<0.05)(如表1)。
2.2 HCV-RNA病毒含量不同的慢性丙型肝炎患者DNT細(xì)胞表達(dá)
慢性丙型肝炎患者無論病毒含量的高低其外周血DNT細(xì)胞的表達(dá)量均高于健康對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。隨著丙肝病毒含量的升高,HCV-RNA≥1+E003IU/ml的患者外周血中DNT細(xì)胞的表達(dá)量高于HCV-RNA<1+E003 IU/ml患者的表達(dá)量,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(如表2)。
表1 HCV-RNA病毒含量不同的慢性丙型肝炎患者T細(xì)胞亞群表達(dá)
表2 HCV-RNA病毒含量不同的慢性丙型肝炎患者DNT細(xì)胞表達(dá)
丙型肝炎呈世界性分布,約80%的丙型肝炎患者為慢性化發(fā)展,約30%的患者發(fā)展為肝硬化、肝癌[3]。HCV-RNA是病毒復(fù)制的指標(biāo),臨床通過HCV-RNA病毒含量的變化來判斷病情,并在治療藥物的選擇及判斷療效上也具有重要意義[4]。目前HCV的致病機(jī)制正在研究中,HCV感染后,體內(nèi)T淋巴細(xì)胞缺失及功能紊亂,導(dǎo)致病毒持續(xù)感染,使丙型肝炎慢性化。有研究認(rèn)為[5],機(jī)體對(duì)HCV免疫應(yīng)答低下是導(dǎo)致HCV感染慢性化的主要原因之一。本文研究結(jié)果顯示慢性丙型肝炎患者CD4+T細(xì)胞及CD4+/CD8+比值低于健康對(duì)照組,T淋巴細(xì)胞亞群比例異常,導(dǎo)致機(jī)體免疫功能紊亂,免疫處于抑制狀態(tài),清除病毒能力下降,從而導(dǎo)致HCV病毒持續(xù)感染。
DNT細(xì)胞最早發(fā)現(xiàn)于成年小鼠的脾臟及人的外周血中,它的含量很低,僅占小鼠和人的外周血淋巴細(xì)胞的1%-3%[6,7]。對(duì)于DNT細(xì)胞的來源和成熟途徑尚不完全清楚。有研究發(fā)現(xiàn)DNT可能來源于胸腺pre-TCR DN細(xì)胞(DN3)[8]、CD8+T細(xì)胞[9,10]、CD4+T[11]、胸腺外器官[12,13]等。DNT細(xì)胞是一種特殊的調(diào)節(jié)T細(xì)胞,其在體內(nèi)的免疫調(diào)節(jié)機(jī)制縱說紛紜。DNT細(xì)胞能下調(diào)高度活化的效應(yīng)CD4+T細(xì)胞和CD8+T細(xì)胞的擴(kuò)增和細(xì)胞因子的產(chǎn)生[14],抑制B細(xì)胞、NK細(xì)胞的活化[15,16]。
病毒特異性CD8+T淋巴細(xì)胞應(yīng)答低下會(huì)導(dǎo)致循環(huán)病毒量增加,使病毒難以從機(jī)體內(nèi)被清除,而導(dǎo)致肝炎的慢性化[17]。孫穎[18]等研究發(fā)現(xiàn)DNT細(xì)胞能夠通過Fss/Fasl途徑殺傷病毒特異性CD8+T細(xì)胞。Zhang[19]等研究發(fā)現(xiàn)DNT細(xì)胞可殺傷B細(xì)胞、CD4+T細(xì)胞和CD8+T細(xì)胞。因此在慢性丙型肝炎患者體內(nèi),增高的DNT細(xì)胞抑制了CD4+T細(xì)胞及特異性抗病毒CD8+T細(xì)胞功能,機(jī)體清除HCV病毒能力下降,使病毒長(zhǎng)期存在造成慢性感染。本文研究結(jié)果慢性丙型肝炎患者CD4+T細(xì)胞比例下降,而CD8+T細(xì)胞并未降低,可能是非抗病毒CD8+T細(xì)胞增加,而特異性抗病毒CD8+T細(xì)胞減少。
本文研究結(jié)果顯示慢性丙肝患者T細(xì)胞DNT細(xì)胞表達(dá)明顯高于健康對(duì)照組,并且隨著HCVRNA載量的增加,慢性丙型肝炎患者外周血中DNT細(xì)胞表達(dá)與HCV-RNA病毒載量呈正相關(guān)。DNT細(xì)胞高表達(dá)使機(jī)體免疫應(yīng)答能力減弱,使機(jī)體抗病毒能力降低,丙型肝炎病毒在體內(nèi)持續(xù)復(fù)制呈現(xiàn)慢性發(fā)展。DNT細(xì)胞和T淋巴細(xì)胞亞群檢測(cè)對(duì)慢性丙型肝炎患者免疫功能狀態(tài)判斷、病情評(píng)估、治療效果中具有重要意義。
[1]D’acquisto F,Crompton T.CD3+CD4-CD8-(double negative)T cells:saviours or villains of the immune response[J].Biochem Phar-macol,2011,82(4):333.
[2]中華醫(yī)學(xué)會(huì)肝病學(xué)分會(huì),中華醫(yī)學(xué)會(huì)傳染病與寄生蟲病學(xué)分會(huì).丙型肝炎防治指南[J].中華內(nèi)科雜志,2004,43(7):551.
[3]Gao X,Cui Q,Shi X,et al.Prevalence and trend of hepatitis C virus infection among blood donors in Chinese mainland:a systematic review and meta-analysis[J].BMC Infect Dis,2011,11:88.
[4]Alter MJ,Kuhnert WL,F(xiàn)inelli L.Guidelines for laboratory testing and result reporting of antibody to hepatitis cvirus.Centers for disease control and prevention.MMWR[J].Recomm Rep,2003,52(RR-3):1.
[5]Mendez S,Reckling SK,Piccirillo CA,et al.Role for CD4+CD25+regulatory T cells in reactivation of persistent leishmaniasis and control of concomitant immunity[J].J Exp Med 2004,200:201.
[6]Schwadron RB,Palathumpat V,Strober S.Natural suppressor cells derived from adult spleen and thymus[J].Transplantation,1989,48(1):107.
[7]Fischer K,Voelkl S,Heymann J,et al.Isolation and characterization of human ntigen-specific TCR alphabeta+CD4-CD8-double-negative regulatory T cells[J].Blood,2005,105(7):2828.
[8]Hayes SM,Li L,Love PE.TCR signal strength Influences lphabeta/gammadelta lineage fate[J].Immunity,2005,22:583.
[9]Landolfi MM,Van Houten N,Russell JQ,et al.CD2-CD4-CD8-lymph node T lymphocytes in MRL lpr/lpr mice are derived from a CD2+CD4+CD8+thymic precursor[J].J Immunol,1993,151:1086.
[10]Crispín JC,Tsokos GC.Human TCR-alpha beta+CD4-CD8-T cells can derive from CD8+T cells and display an inflammatory effector phenotype[J].J Immunol,2009,183(7):4675.
[11]Zhang D,Yang W,Degauque N,et al.New differentiation pathway for double-negative regulatory T cells that regulates the magnitude of immune responses[J].Blood,2007,109:4071.
[12]Yamagiwa S,Sugahara S,Shimizu T,et al.The primary site of CD4-8-B220+alphabeta T cells in lpr mice:the appendix in normal mice[J].J Immunol,1998,160:2665.
[13]Ohteki T,Seki S,Abo T,et al.Liver is a possible site for the proliferation of abnormal CD3+CD4-CD8-double-negative lymphocytes in autoimmune MRL-lpr/lpr mice[J].J Exp Med,1990,172:7.
[14]Voelkl S,Gary R,Mackensen A.Characterization of the immunoregu-latory function of human TCR-alphabcta+CD4-CD8-doub-le-negative T ceu$[J].Eur J Immtmol,2011,41(3):739.
[15]Ford McIntyre MS,Gao JF,Li X,et al.Consequences of double negative regulatory T cell and antigen presenting cell interaction on immune response suppression[J].Int Immunophararmacol,2011,11(5):597.
[16]Su Y,Huang X,WaIlg S,et al.Double negative Treg cells pmmote nonmyeloablative bone marrow chimerism by inducing T-cell clonaI deletion and suppressing NK cell function[J].Eur J Immunol,2012,42(5):1216.
[17]Wu Z,Hart M,Chen T,et al.Acute liver failure:mechanisms of immune mediated liver injury[J].Liver Int,2010,30(6):782.
[18]孫 穎,王曉晶,譚振敏,等.CD4-CD8-T細(xì)胞對(duì)小鼠病毒性肝炎慢性化的免疫調(diào)節(jié)作用[J].中西醫(yī)結(jié)合肝病雜志,2014,(24)2:101.
[19]Zhang ZX,Ma Y,Wang H,et al.Double-negative T cells,activated by xenoantigen,lyse autologous B and T cells using aperforin/granzyme-dependent,F(xiàn)as-Fas ligand-independent pathway[J].J Immunol,2006,177(10):6920.
2015-03-09)
1007-4287(2015)10-1754-03
中青年科技創(chuàng)新領(lǐng)軍人才及團(tuán)隊(duì)項(xiàng)目,吉林省腫瘤生物治療創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)(20140519018JH);吉林省科技廳青年科研基金項(xiàng)目(20140520037JH)
*通訊作者